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PEG6000渗透胁迫对鸟巢蕨生理指标的影响



全 文 :2015年6月 甘 肃 农 业 大 学 学 报 第5 0卷
第3期92~96 JOURNAL OF GANSU AGRICULTURAL UNIVERSITY 双 月 刊
PEG6000渗透胁迫对鸟巢蕨生理指标的影响
梁晓华1,2,周晓俊1,徐成东1,2
(1.楚雄师范学院化学与生命科学系,云南 楚雄 675000;2.滇中高原生物资源开发与
利用研究所,云南 楚雄 675000)
摘要:研究在聚乙二醇6000(PEG6000)室内模拟干旱条件下,比较不同浓度PEG渗透胁迫对鸟巢蕨的叶片相
对含水量、可溶性糖含量、过氧化物酶活性、丙二醛含量以及游离脯氨酸量5个生理指标的影响.结果表明:鸟巢蕨
叶片相对含水量与胁迫程度呈负相关;复水后各浓度处理下的叶片含水量不能够恢复.丙二醛含量、游离脯氨酸量
与胁迫程度呈正相关.复水后各浓度处理下的丙二醛含量不能够恢复,游离脯氨酸含量恢复到对照水平,可溶性糖
均随着胁迫的时间延长而累积,20% 浓度胁迫12h时达到峰值105.31mg/g,是参与鸟巢蕨渗透调节的主要物质
之一,过氧化物酶活性呈先升高后降低的变化趋势,复水后降低至与对照组相近水平;说明鸟巢蕨逆境条件下,过
氧化物酶上升到一个较高水平,减轻膜伤害程度,但随着膜伤害程度加深,过氧化物酶不能够在发挥作用.综合各
项生理指标的分析认为,鸟巢蕨抗旱能力较差.
关键词:鸟巢蕨;PEG胁迫;室内模拟;生理指标
中图分类号:Q 945.17    文献标志码:A     文章编号:1003-4315(2015)03-0092-05
第一作者:梁晓华(1964-),女,教授,主要从事植物生理和植物有效成分分析研究.E-mail:lxh@cxtc.edu.cn
通信作者:徐成东,男,教授,博士,主要从事植物分类与植物生态学研究.E-mail:chtown@cxtc.edu.cn
基金项目:国家自然科学基金项目“云南产铁角蕨植物对水分和光照的生理响应”(31260095).
收稿日期:2014-06-27;修回日期:2014-12-31
Effect of PEG6000osmotic stress on physiological indexes
of Neottopteris nidus(L.)J.Sm.
LIANG Xiao-hua1,2,ZHOU Xiao-jun1,XU Cheng-dong1,2
(1.Department of Chemistry and Life Science,Chuxiong Normal University,Chuxiong 675000,China;
2.Institute of Bio-resources Research and Utilization in Central Yunnan,Chuxiong 675000,China)
Abstract:Under the condition of indoor simulation drought with PEG6000,the research was conduced
to compare the influence of osmotic stress of PEG6000with different concentrations on the relative water
content,soluble sugar content,peroxidase(POD)activity,malondialdehyde content and free proline content
of Neottopteris nidus(L.)J.Sm leaves.The results showed that the relative water content of leaf was
negatively correlated with stress level.Under the treatment of various PEG6000concentrations,the RWC
would not recover even after watering.Malondialdehyde content and free proline content were both posi-
tively correlated with stress levels.After watering,malondialdehyde content of each treatment would not
restore,while free proline content returned to control levels.Soluble sugars accumulated with stress time,
which reached to peak value of 105.31mg/g after stressed under 20%concentration for 12hours,and it
was the main material involved in the osmotic adjustment of Neottopteris nidus(L.)J.Sm.Activity of
peroxidase increased first and then decreased,lowered closely to the control group after watering.It was in-
dicated that in adversity conditions,peroxidase(POD)of Neottopteris nidus(L.)J.Sm increased to a high-
DOI:10.13432/j.cnki.jgsau.2015.03.012
第3期 梁晓华等:PEG6000渗透胁迫对鸟巢蕨生理指标的影响
er level to relieve membrane damage,however,peroxidase(POD)could not continue to play a role when
the membrane damage getting worse.Based on the analysis of the physiological indexes,we concluded that
the drought-resistant ability of Neottopteris nidus(L.)J.Sm was week.The study could provide theoreti-
cal basis for the moisture management of Neottopteris nidus(L.)J.Sm.
Key words:Neottopteris nidus(L.)J.Sm;PEG stress;indoor simulation;physiological indicators
  自20世纪90年代开始,中国蕨类植物的研究
逐渐由植物分类发展演变为对观赏蕨类的开发利
用.观赏植物的发展经历了一个由观花到观叶的过
程.目前,观花植物栽培技术已经较为成熟,品种也
很丰富,但一些观叶的蕨类植物则刚刚被认识、接
受,市场前景广阔.我国虽然拥有较为丰富的观赏蕨
类资源,但园林应用的种类及其应用方式都还十分
缺乏,国内现在的蕨类市场开发处于初创阶段.因
此,对观赏蕨类植物研究具有一定的经济效益和生
态意义.鸟巢蕨[Neottopteris nidus(L.)J.Sm.],
又名巢蕨、山苏花、王冠花,为铁角蕨科鸟巢蕨属多
年生阴生草本植物[1].鸟巢蕨可作为观赏植物栽培,
尤其是近年来用作切叶发展迅速,栽培面积不断扩
大.鸟巢蕨原产于热带亚热带地区,在我国广东、广
西、海南和云南等地均有分布,在亚热带其他地区也
有分布.其常成大丛附生于雨林或季雨林内树干上
或林 下 岩 石 上 或 灌 丛 基 部,适 生 海 拔 100~
1 900m[1].
聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)是模拟干
旱胁迫最好的材料[3].由于PEG的性质特殊,在很
多行业中都有广泛的用途[4].Rawlor[5]用随机标记
的 14C对PEG进行了测定,认为PEG1000、4000~
20000能模拟干旱逆境的原因是其可阻塞植物的输
导组织.Kaufmann和Eckard [6]对PEG反复研究
后得出的结论是,PEG6000诱导水份逆境所得的效
果与将土壤逐步干旱是一样的,唯PEG400有毒负
作用.聚乙二醇6000(PEG6000)模拟干旱胁迫环境
的研究越来越广泛,因本身不易自由通过植物组织
细胞壁,不易渗入活细胞内,不会给种子内增加营养
物质,无毒,但能使活细胞缓慢吸水等优点,而常被
作为干旱胁迫的渗透胁迫剂[4].
我国许多地区干燥少雨,易受到干旱胁迫的影
响,干旱胁迫是植物逆境最普遍的形式,它是影响植
物正常生长发育的主要非生物因素之一[7],能够引
起植物水分亏缺,进而影响植物的形态、光合和生理
生化指标的变化[8].掌握其栽培过程中的水分生理
尤为重要.因此,对植物的抗旱性及干旱胁迫下的生
理表现进行相关研究,有利于了解植物的干旱适应
机制,探求植物抗旱的适应调控措施,对充分发挥森
林的生态效益具有重要的作用,并为今后绿化应用
提供科学依据.
PEG渗透胁迫对植物生理指标的影响的研究
很多,但对蕨类植物的研究较少,而对鸟巢蕨的研究
尚未发现研究报道.因此,本研究拟通过PEG6000
室内模拟干旱-复水的方法[9-10],对鸟巢蕨进行干旱
处理,研究干旱胁迫对其叶片相对含水量、可溶性糖
含量、过氧化物酶活性、丙二醛含量、游离脯氨酸量
等相关生理指标的影响,探究鸟巢蕨适应生长的水
分环境,寻求水分环境对鸟巢蕨生理指标的影响规
律,以对鸟巢蕨的引种栽培、开发利用和科学研究提
供科学依据与参数.
1 材料与方法
1.1 试验材料
供试材料鸟巢蕨于2013年3月1日购买于云
南省楚雄市龙江公园,选择长势一致的12株苗盆
栽,盆规格统一为16cm×16cm,基质配比为腐殖
土∶蛭石∶沙=5∶1∶1[9],置于烘箱内60~80℃烘烤
2h.均匀分配于每个花盆,装置花盆14cm处.室内
养护,进行正常的水分管理.
1.2 试验方法
1.2.1 试验设计 2013年4月将盆栽苗木按照叶
面积均匀分成4组,每组3株.4月18日将根系用
清水小心洗净泥土,移入水中进行无土栽培.待生长
稳定后,再将其移入不同浓度的PEG6000溶液中对
苗木进行模拟干旱胁迫处理.利用不同浓度的
PEG6000溶液进行模拟干旱胁迫处理.设3个PEG
浓度为处理梯度:10%、20%、30%,以蒸馏水为对
照[9].处理开始后,分别于0、4、8、12、16、20、24、28h
39
甘 肃 农 业 大 学 学 报 2015年
取非当年生的成熟叶片进行生理指标测定,3次重
复.胁迫28h后复水,并于复水72h后来采样测定
复水情况[9].
1.2.2 生理指标的测定 叶片相对含水量(RWC)
采用烘干法[10]:迅速剪取植物材料,电子天平称取
鲜质量(FW).放入烘箱内,105℃杀青10min,然后
把烘箱的温度降到80℃左右,烘至恒质量.放入干
燥器中冷却至室温,称其干质量(DW).称过干质量
后浸入水中,数小时后取出,用吸水纸吸干表面水
分,立即称质量;重复浸泡一段时间后,再次取出,吸
干表面水分,称鲜质量,直到2次称质量的结果基本
相等,最后的结果即为饱和鲜质量(SFW).按公式
计算相对含水量:
RWC% =(FW-DW)/(SFW-DW)×100%
可溶性糖含量采用蒽酮比色法[9]:取鲜叶
0.5g,用蒸馏水研磨后于沸水中浸提 3 次,用
0.5mL蒽酮乙酸乙酯剂和5mL浓硫酸显色,用
722S型可见分光光度计在630nm处比色测定.
过氧化物酶(POD)活性采用愈创木酚法[10]:提
取粗酶液,测定酶活性,取光径1cm比色杯2只,于
1只中加入反应混合液3mL,KH2PO41mL,作为
较零对照,另1只中加入反应混合液3mL,上述酶
液1mL,立即开启秒表计时,于分光光度计470nm
波长下测量D值,每隔1min读数1次.以每分钟D
变化值表示酶活性大小,即以ΔA470/[min.鲜质量
g]表示.
丙二醛(MDA)含量采用硫代巴比妥酸法[11]:
剪取各不同处理的植株叶片中部0.5g,放人研钵
中,加入5%三氯乙酸(TCA)2.0mL,少量石英砂
研磨,研磨液倒人离心管中.另取3.0mL的 TCA
用来 清 洗 研 钵,清 洗 液 也 倒 入 离 心 管 中,在
3 000r/min的离心机中离心10min.分别取上清液
2mL各3份,各放人10mL管中,每管中加入2mL
0.67硫代巴比妥酸(TBA),混合后在100℃水浴中
煮沸 30 min.反应溶液冷却后 在 离 心 机 中 以
3 000r/min离心10min,最后分别在450,532和
600nm处测定上清液的吸光度.按公式:C=6.45
×(A532-A600)-0.56A450,计算 MDA含量.
游离脯氨酸量采用磺基水杨酸法[11]:取鲜叶
0.5g,用3%磺基水杨酸浸提,2.5mL酸性茚三酮
显色,5mL甲苯萃取,用722S型可见分光光度计在
520nm处比色测定.
1.3 数据处理
采用 Mcrosoft Excel 2003和SPSS 20.0对数
据进行统计分析.
2 结果与分析
2.1 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨叶片相对含水量的影

由图1可知,不同PEG浓度处理下,鸟巢蕨叶
片含水量均随着处理时间的延长而降低,下降幅度
随胁迫浓度的提高而变大.叶片相对含水量与胁迫
程度呈负相关(r* =0.706).在处理4h时,10%
PEG处理叶片含水量为84.15%,与对照差异不显
著(P=0.06),而20%和30%胁迫下的叶片含水量
分别为80.54%(P=0.04)和76.62%(P=0.02),
与对照差异显著.胁迫28h时30%、20%和10%浓
度处理的相对含水量分别为对照的 39.20%、
46.87%和50.37%.复水后各浓度处理下的叶片含
水量未恢复.
图1 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨叶片相对含水量的影响
Fig.1 The influence of PEG osmotic stress on leaf relative
water content of Neottopteris nidus(L.)J.Sm.
2.2 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨叶片可溶性糖含量的
影响
由图2可知,在PEG胁迫下,鸟巢蕨可溶性糖
的含量总体呈现先升后降的趋势,但每个处理水平
下达到峰值的时间不同.10%PEG 胁迫下24h时
达到最大值,为对照的268.68%.20%PEG胁迫下,
糖含量在上升过程中出现2次波峰,分别在12h,为
对照的295.98%,24h,为对照的226.09%.30%
PEG胁 迫 下 ,在8h时 达 到 最 大 值 ,为 对 照 的
49
第3期 梁晓华等:PEG6000渗透胁迫对鸟巢蕨生理指标的影响
图2 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨可溶性糖含量的影响
Fig.2 The influence of PEG osmotic stress on leaf
soluble sugar content of Neottopteris nidus(L.)J.Sm.
290.26%.复水后10%和20%胁迫的糖含量仍然高
于对照,分别为对照的196.6%和157.71%.30%梯
度的降为对照的88.12%.
2.3 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨过氧化物酶活性的
影响
由图3可知,随着PEG浓度的升高和胁迫时间
的延长,过氧化物酶活性呈先升高后降低的变化趋
势.复水后,过氧化物酶活性降低至与对照组相近水
平.10%PEG 胁迫下24h达到最大值,为对照的
450%.20%PEG 胁迫下20h达到最大值,为对照
的833.3%.30%PEG 胁迫下12h达到最大值,为
对照的533.3%.复水后,10%PEG胁迫的过氧化物
酶含量仍然高于对照,为对照的133.3%.20%PEG
胁迫的过氧化物酶含量与对照相同.30%PEG胁迫
的过氧化物酶含量低于对照,为对照的66.7%.
2.4 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨丙二醛含量的影响
由图4可知,不同PEG浓度处理下,鸟巢蕨丙
二醛含量均随着处理时间的延长而上升,上升幅度
随胁迫浓度的提高而变大.丙二醛含量与胁迫程度
图3 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨叶片过氧化物酶活性的影响
Fig.3 The influence of PEG osmotic stress on peroxidase
activity of Neottopteris nidus(L.)J.Sm.
呈正相关(r*=0.740).复水后各浓度处理下的丙二
醛含量未恢复.PEG胁迫24h时,10%PEG胁迫的丙
二醛含量为对照的418.7%,20%PEG胁迫的丙二醛
含量为对照的589.7%,30%PEG胁迫的丙二醛含量
为对照的654.2%.复水后,10%PEG胁迫的丙二醛
含量有下降的趋势,仍高于对照,为对照的382.1%.
20%、30%PEG胁迫下丙二醛含量保持上升趋势.
图4 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨丙二醛含量的影响
Fig.4 The influence of PEG osmotic stress on leaf
malondialdehyde content of Neottopteris
nidus(L.)J.Sm.
2.5 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨游离脯氨酸含量的
影响
由图5可知,不同PEG浓度处理下,鸟巢蕨叶
内游离脯氨酸含量均随着处理时间的延长而上升,
上升幅度随胁迫浓度的提高而变大.游离脯氨酸含
量与胁迫程度呈正相关(r**=0.993).复水后各浓
度处理下的游离脯氨酸含量恢复到对照水平.在处
理4h时,10%、20%和30%浓度PEG胁迫的游离
脯氨酸含量分别为对照的 116.3%、120.2%、
139.9%.胁迫28h时10%、20%和30%浓度PEG
图5 PEG渗透胁迫对鸟巢蕨游离脯氨酸含量的影响
Fig.5 The influence of PEG osmotic stress on leaf
free proline content of Neottopteris
nidus(L.)J.Sm.
59
甘 肃 农 业 大 学 学 报 2015年
胁迫的游离脯氨酸含量分别为对照的313.3%、
342.9%和370.6%.复水后各浓度胁迫的游离脯氨
酸含量恢复到与对照相近水平.
3 讨论与结论
叶片相对含水量的大小可以反映植物的渗透调
节能力,是水分缺失条件下植物是否维持正常生长
的重要指标[10].试验结果表明,随着PEG浓度的增
加和胁迫时间的延长,鸟巢蕨的叶片相对含水量与
胁迫程度呈负相关,复水后各浓度处理下的叶片含
水量不能够恢复,说明鸟巢蕨叶片保水能力差.
可溶性糖是植物叶片细胞内的一种渗透调节物
质,可溶性糖的主动积累,可以参与降低植物体内渗
透势,以利植物在于旱逆境下维持植物体正常生长
所需水分,以提高抗逆性[11].试验结果表明,鸟巢蕨
叶片中可溶性糖对渗透胁迫反应敏感,胁迫程度越
高,可溶性糖积累越迅速.但胁迫时间过长会使其进
入耗尽期,且胁迫浓度越高,进入耗尽期的时间越
早,此时再复水不能改变下降趋势.说明围栏网试验
渗透胁迫,鸟巢蕨叶内的可溶性糖含量的明显积累,
提高了抗逆性,而其含量的很快下降说明了鸟巢蕨
的抗逆性差.
过氧化物酶能有效清除活性氧,保证细胞正常
的生理功能,维持其对干旱胁迫的抗性.有研究表
明,耐旱植物在逆境条件下能使保护酶活力维持在
一个较高水平,有利于清除自由基,降低膜脂过氧化
水平,从而减轻膜伤害程度[15].试验结果表明,随着
PEG浓度的升高和胁迫时间的延长,鸟巢蕨过氧化
物酶活性呈先升高后降低的变化趋势.原因可能是
随着胁迫程度的上升,膜伤害程度加深,过氧化物酶
不能够在发挥作用.复水后,过氧化物酶活性降低至
与对照组相近水平,说明了鸟巢蕨不是耐旱植物.
丙二醛是植物细胞膜脂过氧化物之一,能与细
胞内各种成分发生反应,从而引起各种酶和膜的损
伤.MDA大量增加时,表明体内细胞受到较严重的
破坏,因此,丙二醛的含量是衡量膜透性的一个重要
指标[11].试验结果表明,丙二醛含量与胁迫程度呈
正相关;复水后各浓度处理下的丙二醛含量不能够
恢复;鸟巢蕨在受到干旱等胁迫时,丙二醛含量的高
低与细胞膜的伤害程度呈正相关,与其抗旱能力呈
负相关,说明鸟巢蕨抗旱能力较差.
植物遭受逆境后会积累脯氨酸,作为胞质渗透
调节剂,脯氨酸积累的多少与植物抗逆性有关,可作
为抗逆性筛选的重要指标[10].试验结果表明,游离
脯氨酸量与胁迫程度呈正相关.这和徐新雨[18]研究
报道一致,即不耐旱的植物在胁迫中表现出高的脯
氨酸含量.复水后各浓度处理下的游离脯氨酸含量
恢复到对照水平.
综合比较5个指标以及复水后的恢复情况,认
为鸟巢蕨对10~30%浓度的PEG胁迫都不具有适
应能力,是抗旱性极差的植物,在栽培管理过程中要
注意保持其充足的水分,进行严格的水分管理.
参考文献
[1] 黄益江,彭东辉.观赏蕨类的栽培及应用的研究[J].中
国林副特产,1998(3):20-21
[2] 姜殿强,张浪.环境因子对鸟巢蕨生长的影响[J].安徽
农业科学,2011,39(21):12700-12701
[3] 龚子端,李高阳.PEG干旱胁迫对植物的影响[J].河南
林业科技,2006,26(3):11-12
[4] 张立军,樊金娟,阮燕晔,等.聚乙二醇在植物渗透胁迫
生理研究中的应用[J].植物生理学通讯,2004,40(3):
5-6
[5] Rawlor D W.Absorption of polyethylene glycol by
plants and their effects on plant growth[J].New
Physiol,1970,9:501-513
[6] Kaufmann M R,Eckard A N.Evaluation of water
stress control withpolyethylene glycol by analysis of
guttation[J].Plant Physiol,1971,47:454-456
[7] 荣秀莲,王波,刘刊,等.PEG-6000模拟干旱胁迫对冷
季型草坪种子萌发特性影响[J].北方园艺,2010(8):
80-82
[8] 于世河,陆爱君,冯建,等.PEG模拟干旱胁迫对红松
幼苗生理生化指标的影响[J].辽宁农业科技,2011,33
(4):12-14
[9] 岳桦,孙笑从.PEG渗透胁迫对对开蕨生理特性的影
响[J].北方园艺,2011(1):91-94
[10] 杨海艳,李雪玲,王波,等.干旱胁迫对植物生理指标
的影响[J].安徽农业科学,2011,39(11):6316-6317
[11] 许桂芳.PEG胁迫对2种过路黄抗性生理生化指标
的影响[J].草业学报,2008,17(1):66-70
(下转第101页)
69
第3期 胡紫璟等:李广杏幼胚的离体培养
上,获得93.8%以上的萌发率,最高可达到100%.
本试验结果表明,李广杏胚培养中,诱导胚萌发的适
宜6-BA浓度为0.5mg/L,适宜IAA浓度为0.2
mg/L,在此条件下,培养30d时胚萌发率达100%,
胚培苗的平均株高为4.62cm,且胚培苗生长健壮.
由此说明,在胚培养过程中,细胞分裂素浓度并不是
越高越好.胚培苗的继代增殖过程中,适宜IAA浓
度为0.05mg/L,适宜6-BA浓度为1.0mg/L,该条
件下胚培苗继代增殖系数达3.42,显著高于其他处
理.在IAA浓度相同的条件下,1.0mg/L 6-BA处
理的增殖系数明显大于0.5mg/L处理下的.但是
因为只设定了IAA 0.5、1.0mg/L 2个浓度梯度,
所以不能说明6-BA浓度1.0mg/L就是胚培苗继
代培养的最佳浓度.
参考文献
[1] 郭德银.生物技术在果树上的应用[J].果树科学,
1992,9(3):173-178
[2] Ramming,David W.The use of embryo culture in fruit
breeding[J].Hort Science,1990,25(4):393-398
[3] Mathias R S,Espinosa G,Robbelen.A new embryo
rescue procedure for interspecific hybridization[J].
Plant Breeding,1990,104(3):258-261
[4] 王玉柱,石宏,赵敏,等.杏胚培养技术的研究(简报)
[J].农业生物技术学报,1995(3):98-99
[5] 庞勇,武国强.我国杏种质资源的研究进展及利用方向
[J].甘肃林业科技,2004,29(2):37-40
[6] 曾黎辉,吕柳新.木本果树遗传转化研究进展[J].果树
学报,2002,19(03):191-198
[7] 郑学平,曹君迈,陈彦云,等.不同因素对红掌增殖系数
的影响[J].北方园艺,2009(7):65-68
[8] 楚宗丽,王力荣,朱更瑞,等.杏胚珠培养及幼胚子叶不
定芽诱导研究[J].果树学报,2007,24(5):611-615
[9] 张存智,王发林,牛彩霞,等.陇东马牙枣幼胚培养[J].
果树学报,2008,25(3):418-421
[10] Viloria Z,Grosser J W,Bracho B.Immature embryo
rescue,culture and seedling development of acid citrus
fruit derived from interploid hybridization[J].Plant
Cel,Tissue and Organ Culture,2005,82(2):159-167
[11] 李芳东,乌云塔娜,杜红岩.杏李种间杂交新品“味王”
胚培养与植株再生[J].中南林业科技大学学报,
2008,28(3):18-22
[12] 邱春莲,齐国辉.植物生长调节剂在果树生产中的应
用[J].河北果树,2004(4):1-3
[13] 于亚军,代汉萍,李宝江.植物激素和生长调节剂在果
树组织培养中的应用[J].北方园艺,2002(6):68-70
[14] 王发林,赵秀梅,李红旭,等.李、杏属间远缘杂交及杂
种胚培养技术研究[J].果树学报,2003,20(2):103-
106
[15] Yang D,Li W,Li S,et al.In vitro embryo rescue cul-
ture of F1progenies from crosses between diploid and
tetraploid grape varieties[J].Plant Growth Regula-
tion,2007,51(1):63-71
[16] 王玉安.桃胚培养及种质创新研究[D].兰州:甘肃农
业大学,2008
(责任编辑 胡文忠


(上接第96页)
[12] Lagerwerff J V,Ogata G,Eagle H E.Control of os-
motic pressure of culture solution with polyethylene
glycol[J].Science,1961,133:1186-1487
[13] 马彦军,马瑞,曹致中,等.PEG胁迫对胡枝子幼苗叶
片生理特性的影响[J].中国沙漠,2012,32(6):3-4
[14] 张玉霞,杜晓艳,张玉芹,等.PEG胁迫对苔草渗透调
节特性的影响[J].内蒙古民族大学学报:自然科学
版,2008,23(3):3-4
[15] Bowler C,Van Camp W,Van Montagu M,et al.Su-
per-oxide dismutase in plants[J].Crit Rev Plant Sci,
1994,13:199-218
[16] 程玲,邱永福,刘兵,等.PEG胁迫下高羊茅幼苗几个
生理生化指标的变化[J].长江大学学报:自然科学
版,2011,8(1):4-5
[17] 郝伟伟,师帅,禤丽芳,等.PEG 胁迫下东方山羊豆抗
旱生理特性的研究[J].齐齐哈尔大学学报,2008,24
(1):5-6
[18] 徐新雨.作物的抗旱能力和体内的游离脯氨酸含量的
关系[J].国外农业科技,1983(9):19-23
(责任编辑 李辛)
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