免费文献传递   相关文献

Control effects of Ricinus communis extracts on Meloidogyne incognita.

蓖麻提取物对南方根结线虫的防治作用



全 文 :蓖麻提取物对南方根结线虫的防治作用*
高倩圆摇 胡飞龙摇 祝红红摇 刘满强摇 李辉信摇 胡摇 锋**
(南京农业大学资源与环境科学学院, 南京 210095)
摘摇 要摇 通过毒力测定及盆栽试验,研究了蓖麻提取物对南方根结线虫的杀线活性及防治效
果.结果表明: 蓖麻碱及蓖麻水提液均具有较强毒杀线虫活性,蓖麻碱浓度为 2 g·L-1、处理
48 h杀线虫活性最强,线虫校正死亡率达 91. 5% ,LC50为 0. 6 g·L-1;蓖麻水提液浓度为 100
g·L-1、处理 48 h杀线虫活性最强,线虫校正死亡率达 83. 5% ,LC50为 18. 3 g·L-1;蓖麻碱、蓖
麻水提液和蓖麻叶植物粉处理接种南方根结线虫的番茄苗后,植株平均根结数分别为
(17郾 6依1. 7)、(20郾 6依1. 5)和(22郾 8依3. 7),均显著低于对照(37郾 4依2. 3),根长分别比对照提高
46. 8% 、34. 5%和 33. 8% ,株高分别比对照提高 33. 5% 、22. 6%和 15. 8% ,植株鲜质量分别比
对照增加 41. 4% 、18. 9%和 10. 1% .蓖麻提取物能减轻线虫危害,对盆栽番茄南方根结线虫
病控制效果明显.
关键词摇 蓖麻摇 提取物摇 南方根结线虫摇 杀线活性
文章编号摇 1001-9332(2011)11-3033-06摇 中图分类号摇 S433. 89摇 文献标识码摇 A
Control effects of Ricinus communis extracts on Meloidogyne incognita. GAO Qian鄄yuan, HU
Fei鄄long, ZHU Hong鄄hong, LIU Man鄄qiang, LI Hui鄄xin, HU Feng (College of Resources and En鄄
vironmental Science, Nanjing Agricultural University, Nanjing 210095, China) . 鄄Chin. J. Appl.
Ecol. ,2011,22(11): 3033-3038.
Abstract: Toxicity test and pot experiment were conducted to study the nematocidal activity and
control effects of Ricinus communis extracts on Meloidogyne incognita. The results showed that both
the ricinine and the R. communis water extracts had high nematocidal activity. The ricinine at con鄄
centration 2 g·L-1 and treated for 48 hours had the strongest nematocidal activity, leading to
91郾 5% of corrected mortality of M. incognita and with the LC50 being 0. 6 g·L-1, whereas the R.
communis water extracts at concentration 100 g·L-1 and treated for 48 hours had the strongest
nematocidal activity, which led to 83. 5% of corrected mortality of M. incognita, and the LC50 was
18. 3 g·L-1 . With the inoculation of M. incognita treated with ricinine, R. communis water ex鄄
tracts, and R. communis leaf powder, respectively, on tomato seedlings, the mean number of plant
root鄄knots was 17郾 6依1. 7, 20郾 6依1. 5 and 22郾 8依3. 7, respectively, being significantly lower than
the control (37郾 4依2. 3), and the root length increased by 46. 8% , 34. 5% and 33. 8% , and the
plant height increased by 33. 5% , 22. 6% and 15. 8% , and the fresh mass increased by 41郾 4% ,
18郾 9% and 10郾 1% , respectively, compared with the control. All the results suggested that R.
communis extracts could mitigate the harm of M. incognita, and had obvious effects on potted toma鄄
to against M. incognita.
Key words: Ricinus communis; extract; Meloidogyne incognita; nematocidal activity.
*国家农业部公益性行业项目(200903011)资助.
**通讯作者. E鄄mail: fenghu@ njau. edu. cn
2011鄄02鄄28 收稿,2011鄄08鄄01 接受.
摇 摇 根结线虫(Meloidogyne spp郾 )是一类重要的植物
病原线虫,其寄主植物范围很广泛,遍及粮食作物、油
料作物、纤维作物、烟草、茶叶、果树、蔬菜、药材和花
卉等,常造成严重的经济损失.常见的有 4 个种:南方
根结线虫(M. incognita)、爪哇根结线虫(M. javani鄄
ca)、花生根结线虫(M. arenaria)和北方根结线虫
(M. hapla) [1] .我国南方地区蔬菜地由根结线虫引发
的线虫病害发生非常普遍,对蔬菜生产造成严重影
响.目前,化学防治仍是植物寄生线虫病害最主要的
防治措施,但化学杀线剂存在毒性大、残留高、成本
高、易污染环境、环境相容性较差等问题[2-3] .天然杀
应 用 生 态 学 报摇 2011 年 11 月摇 第 22 卷摇 第 11 期摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇
Chinese Journal of Applied Ecology, Nov. 2011,22(11): 3033-3038
虫植物具有分解快、残留低、污染少和毒性小等特点,
因此利用植物源活性物质防治植物寄生线虫的研究
逐渐受到重视并引起广泛关注[4-5] .
蓖麻(Ricinus communus)属大戟科蓖麻属,为双
子叶一年生或多年生植物. 蓖麻是具有特殊工业用
途的油料植物,是集多种开发功能于一体的生物资
源,也是一种重要的生物杀虫、抗癌和生物抗污染
源[6] .从蓖麻中提取的蓖麻毒素具有较强的杀虫、
杀菌作用,是制造生物农药的重要来源[7] . 本文以
南方根结线虫为研究对象,通过毒力测定及盆栽试
验研究了蓖麻提取物的杀线虫活性及防治效果,以
期为该病害的生物防治提供参考.
1摇 材料与方法
1郾 1摇 供试材料
毒力测试于 2010 年 4—7 月在南京农业大学土
壤生态实验室进行,盆栽试验于 2010 年 8—10 月在
南京农业大学土壤生态实验室温室大棚进行. 供试
蓖麻叶于 2009 年 9 月采自山东家祥蓖麻研究所.供
试番茄(Lycopersicon esculentum)品种为苏粉八号,由
江苏省江蔬种苗科技有限公司生产. 供试线虫经鉴
定为南方根结线虫[8] .
1郾 2摇 南方根结线虫二龄幼虫和卵囊的获得
在江苏省宜兴市固体有机废弃物资源化高技术
重点实验室周边根结线虫危害严重的农田采集土
样,接种至番茄苗上进行人工繁殖.从感染根结线虫
的番茄病根挑取新鲜卵囊,置于培养皿(d = 6 cm),
皿底垫湿润滤纸 1 张,置于 (25 依 1) 益 培养箱,
5 ~ 7 d后待卵孵化产生大量 2 龄幼虫时,收集线虫
备用[9] .
取病根于解剖镜下挑取大小一致的卵囊,用
1%的次氯酸钠表面消毒 3 ~ 4 min,无菌水漂洗 4 ~
5 次,备用[10] .
1郾 3摇 蓖麻碱和蓖麻水提液的制备
供试蓖麻先采用微波提取法粗提.然后粗提物
采用索氏提取法精提. 得到精提物为白色针状结
晶[11] .该精提物经核磁共振1H 谱结构确定为蓖麻
碱(ricinine),测其纯度为 89郾 1% .
称取已灭菌的蓖麻叶干粉 5 g,加无菌水 50
mL,于 30 益振荡浸提 24 h,1000伊g低速离心 2 min,
用无菌滤纸过滤,滤液用无菌水定容至 50 mL,制成
100 g·L-1蓖麻水提液[12] .
1郾 4摇 试验设计
1郾 4郾 1 提取物对二龄幼虫的毒力试验摇 参考翁群芳
等[9]浸渍法测定提取物对二龄幼虫的毒力. 根据预
试验的结果,用灭菌水将制备的蓖麻碱溶解稀释成
5 个浓度梯度: 2、1郾 5、1、0郾 5 和 0郾 25 g·L-1;蓖麻水
提液稀释成 5 个浓度梯度:100、50、25、12郾 5 和 6郾 25
g·L-1 .分别量取 3 mL稀释液加入 d = 2郾 5 cm 的培
养皿(12 孔板)中,随后加入 50 ~ 100 条线虫,每处
理 4 个重复,以灭菌水为对照,放置于 25 益培养箱
中,48 h 后用针触法镜检线虫死亡数量. 按 Abbott
公式计算校正死亡率,根据浓度对数和死亡机率值,
采用最小二乘法求取毒力回归方程,计算 LC50 .
1郾 4郾 2 提取物对卵囊孵化的影响试验摇 在每个培养
皿(d=6 cm)中放入 2 个制备好的南方根结线虫的
卵囊,处理分别加 4 mL蓖麻碱稀释液(1 g·L-1)和
4 mL蓖麻水提液(25 g·L-1),对照加 4 mL灭菌水.
处理和对照各 4 次重复.置于 25 益培养箱中,分别
在 2、6、10 和 14 d 于解剖镜下观察卵孵化数,并计
算蓖麻碱和水提液对卵囊孵化的抑制率[13] .
1郾 4郾 3 盆栽试验 摇 根据对二龄幼虫的毒力测定结
果,以蓖麻碱稀释液 1 g · L-1、蓖麻水提液 25
g·L-1、灭菌蓖麻叶植物粉(与干沙土以 1 颐 150 施
用)分别为处理组,以灭菌水为溶剂对照,并设
0郾 36%苦参碱水剂(山西省侯马市星火化工厂生
产)稀释 1000 倍为植物源农药对照,辛硫磷(上海
爱帮农科技有限公司生产)与干沙土以 1 颐 150 施用
为常规化学农药对照.
采用灭菌土栽培法,将出苗 30 d 后的番茄植株
幼苗移栽至装有灭菌土(沙、土比为 1 颐 1)的直径为
9 cm的塑料杯中,每盆 1 株,每处理 5 个重复,置于
25 益温室内生长.定植后 5 d 的番茄植株分别接种
1000 条南方根结线虫二龄幼虫. 6 d 后分别以蓖麻
碱稀释液、蓖麻水提液、灭菌水、苦参碱各 6 mL 灌
根,以灭菌蓖麻叶植物粉、辛硫磷各 1郾 4 g 穴施,正
常水肥管理,20 d后调查试验结果.
1郾 5摇 调查方法
常规指标:挖取各处理番茄植株,洗净抹干,将
番茄植株平铺,量地上部植株高度及地下部根长度,
用电子天平准确称量地上部植株鲜质量. 以对照为
标准,分别计算:地上部植株株高增长率、地上部植
株鲜质量增长率、根长增长率. 统计每株根结数,计
算根结指数(GI)和根结形成抑制率.
生化指标:采用 琢鄄萘胺法[14]测定根系活力;采
用氮蓝四唑(NBT)法测定叶片的超氧化物歧化酶
(SOD) [15] 活性,紫外吸收法测定过氧化氢酶
(CAT) [16]活性.
4303 应摇 用摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 22 卷
表 1摇 蓖麻提取物对南方根结线虫二龄幼虫的毒力测试
Table 1摇 Toxicity test of Ricinus communis extracts on the second stage juveniles of Meloidogyne incognita
处理
Treatment
浓度
Concentration
(g·L-1)
浓度对数
Concentration
logarithm
校正死亡率
Corrected
Mortality
(% )
校正死亡
率机值
Corrected
mortality
probit value
毒力回归方程
Toxicity regression
equation
LC50
Median lethal
concentration
(g·L-1)
相关系数
r
蓖麻碱 2 3郾 3 91郾 5A 6郾 4 y=2郾 1017x-0郾 8161 0郾 6 0郾 962
Ricinine 1郾 5 3郾 2 79郾 4AB 5郾 8
1 3郾 0 60郾 1BC 5郾 3
0郾 5 2郾 7 37郾 4CD 4郾 7
0郾 25 2郾 4 28郾 3D 4郾 4
蓖麻水提液 100 2郾 0 83郾 5A 6郾 0 y=1郾 1412x+3郾 5588 18郾 3 0郾 982
Ricinus communis 50 1郾 7 64郾 8B 5郾 4
water extract 25 1郾 4 52郾 4C 5郾 1
12郾 5 1郾 1 43郾 2D 4郾 8
6郾 25 0郾 8 31郾 9E 4郾 5
不同大写字母表示处理间差异显著(P<0郾 01) Different capital letters meant significant difference among treatments at 0郾 01 level郾
1郾 6摇 数据处理
采用 SPSS 13郾 0统计软件进行方差分析Duncan多
重比较方差分析,显著性水平设为 0郾 05.图表中数据均
用平均值依标准差表示.采用 Excel 2003软件制图.
2摇 结果与分析
2郾 1摇 提取物对二龄幼虫的毒力
毒力测定显示,不同浓度蓖麻碱对南方根结线
虫二龄幼虫均有毒杀效果(表 1),其毒力回归方程、
LC50分别为 y=2郾 1017x-0郾 8161 和 0郾 6 g·L-1 .随着
处理浓度的提高其毒杀效果随之增强. 浓度为 2 和
1郾 5 g · L-1 的处理,线虫校正死亡率分别达到
91郾 5%和 79郾 4% ,均显著高于其他 3 个处理. 浓度
为 1 g·L-1时,校正死亡率为 60郾 1% ,且随着浓度的
降低毒杀效果显著降低.
不同浓度蓖麻水提液对南方根结线虫二龄幼虫
的毒杀效果不同(表 1),其毒力回归方程、LC50分别
为 y=1郾 1412x+3郾 5588 和 18郾 3 g·L-1 .随着处理浓
度的提高其毒杀效果随之增强. 浓度为 100 和 50
g·L-1的处理,线虫校正死亡率分别为 83郾 5% 和
64郾 8% ,均显著高于其他 3 个处理,浓度为 25
g·L-1时,校正死亡率为 52郾 4% .
2郾 2摇 提取物对卵囊孵化的抑制作用
经过 2、6、10 和 14 d 的观察发现,所有蓖麻碱
和蓖麻水提液的处理对南方根结线虫卵孵化都有抑
制作用(表 2). 14 d时蓖麻碱抑制作用最明显,抑制
率高达 61郾 7% ,显著高于蓖麻水提液(49郾 0% ). 蓖
麻碱和蓖麻水提液处理均在 2 d 时就表现出抑制作
用,6 d时抑制率出现小幅度下降,10 ~ 14 d 时抑制
率出现上升趋势并最终达到最大值. 6 d 时抑制率
下降的原因可能是线虫的孵化速率减慢. 10 ~ 14 d
抑制率上升可能是由于处理液作用时间较长,导致
孵化出的线虫在一定程度上发生死亡分解.
2郾 3摇 提取物对番茄生长及根结的影响
2郾 3郾 1 对番茄株高、地上部鲜质量及根长的影响 摇
由表 3 可知,蓖麻提取物对番茄株高、地上部鲜质量
及根长的影响相似,均有促进增长作用. 其中,蓖麻
碱处理的番茄株高、地上部鲜质量及根长的增长率
显著大于其他处理.蓖麻碱、蓖麻水提液和蓖麻叶植
物粉处理的番茄株高分别比对照增长 33郾 5% 、
22郾 6%和 15郾 8% ,与对照药剂苦参碱和辛硫磷处理
的增长率 10郾 2%和 12郾 3%相比差异显著.蓖麻碱和
蓖麻水提液处理的番茄地上部鲜质量分别比对照增
长 41郾 4%和 18郾 9% ,与对照药剂苦参碱和辛硫磷相
比差异显著.蓖麻叶植物粉处理的番茄鲜质量增长
率为 10郾 1% ,与对照药剂差异不显著.蓖麻碱、蓖麻
水提液和蓖麻叶植物粉处理的番茄根长分别比对照
增长46郾 8% 、34郾 5%和33郾 8% ,与对照药剂苦参碱
表 2摇 蓖麻提取物对南方根结线虫卵孵化的影响
Table 2摇 Effects of Ricinus communis extracts on egg hatch鄄
ing of Meloidogyne incognita
处理
Treatment
处理 14 d后的卵块
Eggmass after treatment 14 days
孵化的线虫数
Number of
hatched juveniles
抑制率
Inhibition rate
(% )
蓖麻碱 Ricinine 448依14c 61郾 7
蓖麻水提液
Ricinus communis water extract 595依9b 49郾 0
对照 Control 1294依45a -
不同小写字母表示处理间差异显著(P<0郾 05) Different small letters
meant significant difference among treatments at 0郾 05 level. 下同 The
same below郾
530311 期摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 高倩圆等: 蓖麻提取物对南方根结线虫的防治作用摇 摇 摇 摇 摇 摇
表 3摇 蓖麻提取物对南方根结线虫的温室防治效果
Table 3摇 Effects of Ricinus communis extracts on the control of Meloidogyne incognita in greenhouse
处理
Treatment
株高增长率
Increase rate
of plant height
(% )
地上部鲜
质量增长率
Increase rate
of fresh mass
(% )
根长增长率
Increase rate
of root length
(% )
根结数
Number of
root鄄knots
根结形成
抑制率
Inhibition rate
of root鄄knots
(% )
根结指数
Gall index
蓖麻碱 Ricinine 33郾 5a 41郾 4a 46郾 8a 17郾 6依1郾 7c 52郾 9a 24郾 5依5郾 9c
蓖麻水提液
Ricinus communis water extract
22郾 6b 18郾 9b 34郾 5b 20郾 6依1郾 5b 44郾 9ab 34郾 1依18郾 7bc
蓖麻叶植物粉
Plant powder of R. communis leaf
15郾 8bc 10郾 1bc 33郾 8b 22郾 8依3郾 7b 39郾 0b 38郾 0依5郾 9bc
苦参碱 Matrine 10郾 2bc 8郾 7bc 24郾 5c 25郾 6依3郾 4b 31郾 6bc 45郾 1依12郾 1b
辛硫磷 Phoxim 12郾 3bc 6郾 6c 28郾 1c 27郾 4依3郾 9b 26郾 7c 51郾 0依14郾 4b
对照 Control - - - 37郾 4依2郾 3a - 72郾 4依18郾 4a
和辛硫磷处理的增长率 24郾 5%和 28郾 1%相比差异
显著.
线虫为害寄主植物时能分泌特殊物质造成植株
形成根结、肿瘤和虫瘿,导致寄主植物发育停滞,矮
化或叶片变薄、变黄等[17] .以上试验结果表明,蓖麻
提取物 3 种处理对南方根结线虫有一定的抑制作
用,在很大程度上能促进植株的生长.
2郾 3郾 2 对番茄根结、根结形成抑制率及根结指数的
影响摇 表 3 显示,番茄根结数直观地反映了蓖麻提
取物对南方根结线虫的控制效果,对照每株根结数
多达(37郾 4依2郾 3)个,蓖麻提取物各处理植株根结数
均显著低于对照. 其中,蓖麻碱处理后根结数最少,
仅为每株(17郾 6依1郾 7)个,与对照药剂苦参碱和辛硫
磷处理的每株根结数(25郾 6依3郾 4)和(27郾 4依3郾 9)个
相比差异显著;其次为蓖麻水提液、蓖麻叶植物粉处
理,根结数分别为每株(20郾 6 依1郾 5)和(22郾 8 依3郾 7)
个,与对照相比差异显著. 蓖麻碱、蓖麻水提液和蓖
麻叶植物粉处理的番茄根结形成抑制率分别比对照
增长 52郾 9% 、44郾 9%和 39郾 0% ,与对照药剂苦参碱
和辛硫磷处理的根结形成抑制率 31郾 6%和 26郾 7%
相比差异显著.其中,蓖麻碱处理的根结形成抑制率
显著大于其他处理. 根结指数可作为作物对根结线
虫的抗性及杀线剂药效的评价指标[1] . 蓖麻碱处理
后根结指数最低,仅为(24郾 5依5郾 4),与对照药剂苦
参碱和辛硫磷处理的(45郾 1依12郾 1)和(51郾 0依14郾 4)
相比差异显著,且显著低于溶剂对照的 (72郾 4 依
18郾 4).说明蓖麻碱处理的植株对根结线虫抗性最
大,蓖麻碱的杀线作用最强.蓖麻碱处理与蓖麻水提
液及蓖麻叶植物粉处理的(34郾 1 依18郾 7)和(38郾 0 依
5郾 9)相比差异显著,蓖麻水提液与蓖麻叶植物粉处
理之间差异不显著,但均显著低于对照.
番茄根结数、根结形成抑制率及根结指数均能
客观反映蓖麻提取物对南方根结线虫的控制效果.
以上试验结果说明,蓖麻提取物能抑制根结形成,减
少植株根结数,防治效果优于商品杀虫剂(苦参碱、
辛硫磷).
2郾 3郾 3 对番茄根系活力和叶片酶活性的影响摇 由图
1 可知,不同处理对番茄植株根系活力的影响不同,
蓖麻碱处理的番茄植株根系活力最大,达到 121郾 6
滋g·g-1·h-1,远大于对照的 79郾 9 滋g·g-1·h-1,其
处理效果最佳,最适合番茄植株根系的生长发育.蓖
麻水提液与苦参碱处理、蓖麻叶植物粉与辛硫磷处理
的根系活力差异不显著,处理效果接近,但均高于对
照.根系活力反映植物根系吸收与代谢能力的强弱,
直接影响植株的抗逆性及地上部茎叶的生长和作物
产量[18] .由于蓖麻碱处理的根系活力最大,说明该处
理下根结线虫对根系的影响最小,其防治效果最好.
而对照的根系活力最小,说明该处理下根系对根结线
虫的抗性最弱,根结线虫对根系的影响最大.
由图 2 可知,不同处理对番茄植株叶片 SOD酶
图 1摇 不同处理对番茄植株根系活力的影响
Fig. 1摇 Effects of different treatments on root activity in tomato.
玉:蓖麻碱 Ricinine; 域:蓖麻水提液 Ricinus communis water extract;
芋:蓖麻叶植物粉 Plant powder of Ricinus communis leaf; 郁:苦参碱
Matrine; 吁:辛硫磷 Phoxim; 遇:对照 Control郾 下同 The same below.
6303 应摇 用摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 22 卷
图 2摇 不同处理对番茄植株叶片 SOD、CAT酶活性的影响
Fig. 2摇 Effects of different treatments on SOD and CAT activi鄄
ties of tomato leaves.
和 CAT酶活性的变化趋势相似,处理与对照之间总
体呈升高趋势.由于在逆境条件下植物会增加活性
氧自由基的清除能力,所以其体内超氧化物歧化酶
(SOD)、过氧化氢酶(CAT)等保护酶会增加,以减轻
活性氧对植物的伤害[19-20] . 而对照处理叶片 SOD
酶活性最大,达到 196郾 5 U·g-1,说明在线虫侵染的
状态下,植株体内 SOD 酶增加,以对抗线虫侵染下
活性氧的增加.蓖麻碱处理的叶片 SOD酶活性相对
最小,达到 191郾 5 U·g-1,说明蓖麻碱处理中根结线
虫对植株的影响最小,植株受害程度最小.其余各处
理的叶片 SOD 酶活性差异不显著,处理效果接近,
均低于对照处理,这说明植株受害程度均比对照处
理弱.番茄植株叶片 CAT酶活性在对照处理达到最
大值 21郾 0 U·g-1 ·min-1,蓖麻碱处理为最小值
15郾 0 U·g-1·min-1,其他处理 CAT 酶活性相近,变
化幅度较小,差异不显著,但均低于对照处理. 该试
验中 CAT 酶在叶片中的活性及含量相对 SOD 酶
弱,但其作用与 SOD 酶相似,也能间接指示植株在
逆境下的抗性及受害程度.
3摇 讨摇 摇 论
南方根结线虫作为重要的植物害虫,国内外均
非常重视寻找合适的高效控制方法,其中印楝(Aza鄄
dirachta indica)、乌桕 ( Sapium sebiferum)、柠檬桉
(Eucalyptus citriodora)、胡黄连 (Picrorhiza scrophu鄄
lariiflora)、鱼腥草 ( Houttuynia cordata) 和夹竹桃
(Nerium indicum)等植物源物质对其均有较好的控
制作用[21-24] . 有报道,蓖麻碱对天幕毛虫(Malaco鄄
som neustria testacea)、桃蚜(Myzus persicae)、小菜蛾
(Plutella xyllostella)等 3 种害虫有不同程度的杀灭
作用[25],蓖麻叶粉碎与肥料混施可以减少根瘤,有
效控制根结线虫二龄幼虫[17] .
本试验结果表明,蓖麻碱、蓖麻水提液和蓖麻叶
植物粉 3 种物质均对南方根结线虫具有强烈或较强
的毒杀活性,而且能显著促进盆栽番茄地上部植株
高度、鲜质量和根长生长,显著降低番茄根结数,降
低根结指数,对根结形成具有较强的抑制效果,盆栽
控制效果良好.根系活力反映植物根系吸收与代谢
能力的强弱,直接影响植株的抗逆性及地上部茎叶
的生长和作物产量[26],本试验通过对根系活力的测
定可以间接反映不同处理对根结线虫的防治效果.
同样,对 SOD 和 CAT 两种抗氧化酶的测定可以间
接反映在逆境条件下植物的受害情况[27] .
苦参碱和辛硫磷是目前农药市场上常用的两种
杀线剂[28] .试验发现,与同稀释浓度的苦参碱、辛硫
磷相比,蓖麻碱对降低寄主植物根结数的作用效果
更优,而蓖麻水提液和蓖麻叶植物粉处理与两种农
药的作用效果接近.
蓖麻精提物的化学成份为蓖麻碱,其化学名称
为 3鄄氰基鄄4鄄甲氧基鄄1鄄甲基鄄2鄄吡啶酮,是一种中性生
物碱.其分子中含氰基,所以毒性很大. 蓖麻碱作为
杀虫剂具有速杀性,不但配制方便,成本低廉,杀虫
效果好,而且对作物植株具有叶面追加有机肥源的
功效,不易产生抗毒性.粗提物蓖麻水提液主要杀虫
活性物质为蓖麻碱和毒蛋白,毒蛋白表现为触杀作
用,蓖麻碱则表现为触杀和胃毒的综合作用,并具有
一定拒食作用[7] .蓖麻叶植物粉的化学成分较为复
杂.蓖麻提取物在生理生化水平上对线虫的作用机
理尚不明确.今后应该开展更加具体的蓖麻杀线虫
活性成分、作用机制和杀线虫谱等方面研究,为寻找
新型、合理的生物杀线虫活性物质提供基础.
综上所述,蓖麻提取物对根结线虫的防治具有
一定的效果,可在一定程度上增强植株根系自身的
调节能力,促进植株生长,缓解病害.
参考文献
[1] 摇 Liu W鄄Z (刘维志). Plant Pathogen Nematology. Bei鄄
jing: China Agriculture Press, 2000 (in Chinese)
730311 期摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 高倩圆等: 蓖麻提取物对南方根结线虫的防治作用摇 摇 摇 摇 摇 摇
[2] 摇 Chen P鄄S (陈品三). The main types, characteristics
and action mechanisms of nematicides. Pesticide Science
and Administration (农药科学与管理), 2001, 22
(2): 33-35 (in Chinese)
[3]摇 Thomas SH, Schroeder J, Murray LW. Cyperus tubers
protect Meloidogyne incognita from 1, 3鄄dichlo鄄ropro鄄
pene. Journal of Nematology, 2004, 36: 131-136
[4]摇 Wen Y鄄H (文艳华), Feng Z鄄X (冯志新), Xu H鄄H
(徐汉虹), et al. Screening for nemaicidal activity of
some Chinese plant extracts against plant parasitic nem鄄
atodes, Bursaphelenchus xylophilus, Meloidogyne arena鄄
ria and Hirschmanniella oryzae. Journal of Huazhong
Agricultural University (华中农业大学学报), 2001,
20(3): 235-238 (in Chinese)
[5] 摇 Chitwood DJ. Phytochemical based strategies for nema鄄
tode control. Annual Review of Phytopathology, 2002,
40: 221-249
[6]摇 Huang J鄄X (黄家祥). Technology of Comprehensive
Development and Utilization in Ricinus communis Pro鄄
duction. Beijing: China Agriculture Press, 2005 ( in
Chinese)
[7]摇 Wen Y鄄M (温燕梅), Feng Y鄄F (冯亚非), Zheng M鄄
Z (郑明珠). Extraction and content of the ricinine for
different parts of Ricinus communis. Agrochemicals (农
药), 2008, 47(8): 584-585 (in Chinese)
[8]摇 Eisenback JD, Hirschmann H, Sasser JN, et al. Trans:
Yang B鄄J (杨宝君). A Guide to the Four Most Com鄄
mon Species of Root鄄Knot Nematodes ( Meloidogyne
spp. ), With A Pictorial Key. Kunming: Yunnan Peo鄄
ple Press, 1986 (in Chinese)
[9]摇 Weng Q鄄F (翁群芳), Zhong G鄄H (钟国华), Wang
W鄄X (王文祥), et al. Effectiveness of plant extracts
for the control of Meloidogyne incognita. Journal of
South China Agricultural University (华南农业大学学
报), 2006, 27(1): 55-60 (in Chinese)
[10]摇 Maghodia AB, Spiegeland Y, Sela S. Interactions be鄄
tween Escherichia coli and the plant鄄parasitic nematode
Meloidogyne javanica. Journal of Applied Microbiology,
2008, 105: 1810-1816
[11]摇 Zhou Y鄄Q (周勇强), Lai C鄄M (赖春媚), Zhang X鄄Y
(张晓燕), et al. Study on microwave extracting of the
ricinine. Guangzhou Chemical Industry (广州化工),
2006, 34(4): 30-35 (in Chinese)
[12]摇 Yang X鄄J (杨秀娟), He Y鄄X (何玉仙), Chen Q鄄H
(陈庆和), et al. Adaptability of Paecilomyces lilacinus
and synergism between P. lilacinus and two kinds of
plants against Meloidogyne incognita. Journal of Fujian
Agriculture and Forestry University ( Natural Science)
(福建农林大学学报·自然科学版), 2005, 34(3):
290-293 (in Chinese)
[13]摇 Wang B (王摇 波), Li H鄄M (李红梅), Wang B (王
碧), et al. Biological control of Meloidogyne incognita
by combination of Paecilomyces lilacinus and Actinomy鄄
cetes spp. Journal of Nanjing Agricultural University (南
京农业大学学报), 2009, 32 (1): 55 -60 ( in Chi鄄
nese)
[14]摇 Zheng B鄄S (郑炳松). Research Techniques in Contem鄄
porary Plant Physiology and Biochemistry. Beijing: Me鄄
teorology Press, 2006 (in Chinese)
[15] 摇 Li H鄄S (李合生). Principles and Techniques of Plant
Physiological Biochemical Experiment. Beijing: Higher
Education Press, 2000 (in Chinese)
[16]摇 Dhindsa RS, Plumb鄄Dhindsa P, Thorpe TA. Leaf se鄄
nescence: Correlated with increased levels of membrane
permeability and lipid peroxidation, and decreased lev鄄
els of superoxide dismutase and catalase. Journal of Ex鄄
perimental Botany, 1981, 32: 93-101
[17]摇 Duan Y鄄X (段玉玺), Wu G (吴摇 刚). Disease Con鄄
trol of Plant Nematodes. Beijing: China Agricultural
Science and Technology Press, 2002 (in Chinese)
[18]摇 Wang X鄄K (王学奎). Principles and Techniques of
Plant Physiological and Biochemical Experiment. Bei鄄
jing: Higher Education Press, 2006 (in Chinese)
[19]摇 Zhang L鄄J (张立军), Liang Z鄄S (梁宗锁). Plant
Physiology. Beijing: Science Press, 2007 (in Chinese)
[20]摇 Li Y (李摇 影), Liu D鄄Y (刘登义). Physiological me鄄
tabolism and protective enzyme activity of Equisetum
ramosissimum under Cu stress. Chinese Journal of Ap鄄
plied Ecology (应用生态学报), 2006, 17(3): 498-
501 (in Chinese)
[21]摇 Pandey R. Management of Meloidogyne incognitain in
Artemisia pallens with bio鄄organics. Phytoparasitica,
2005, 33: 304-308
[22]摇 Agbenin NO, Emechebe AM, Marley PS, et al. Evalua鄄
tion of nematicidal action of some botanicals on Meloido鄄
gyne incognita in vivo and in vitro. Journal of Agricul鄄
ture and Rural Development in the Tropics and Subtrop鄄
ics, 2005, 106: 29-39
[23] 摇 Jiang N (蒋 摇 妮), Gao W鄄W (高微微), Miao J鄄H
(缪剑华). Bioactivities of ethanol extracts from leaves
of Sapium sebiferum to Meloidogyne incognita. Chinese
Agricultural Science Bulletin (中国农学通报), 2007,
23(11): 305-308 (in Chinese)
[24]摇 Wang H鄄H (王惠惠), Liao J鄄L (廖金铃), Wen Y鄄H
(文艳华). Nematicidal activity of ethanol extracts from
eucalyptus plants against Meloidogyne javanica. Journal
of Huazhong Agricultural University (华中农业大学学
报), 2010, 29(6): 696-699 (in Chinese)
[25]摇 Liu X (刘 摇 骁), Li D (李 摇 端). Biological activity
of ricinine and outlook of its applied development. Chi鄄
nese Journal of Pharmacology and Toxicology (中国药
理学与毒理学杂志), 2006, 20(1): 76-78 ( in Chi鄄
nese)
[26]摇 Li S (李摇 邵), Xue X鄄Z (薛绪掌), Guo W鄄S (郭文
善), et al. Effects of water supply tension on photosyn鄄
thetic characteristics and root activity of green鄄house cu鄄
cumber. Chinese Journal of Applied Ecology (应用生态
学报), 2010, 21(1): 67-73 (in Chinese)
[27]摇 Liu Y鄄L (刘义玲), Li T鄄L (李天来), Sun Z鄄P (孙周
平), et al. Impacts of root鄄zone hypoxia stress on
muskmelon growth, its root respiratory metabolism, and
antioxidative enzyme activities. Chinese Journal of Ap鄄
plied Ecology (应用生态学报), 2010, 21(6): 1439-
1445 (in Chinese)
[28]摇 Zou Y鄄X (邹雅新), Cao S鄄F (曹素芳), Ma J (马
娟), et al. Effects of abamectin and cadusafos on the
southern root鄄knot nematode, Meloidogyne incognita.
Plant Protection (植物保护), 2009, 35(2): 39 -43
(in Chinese)
作者简介摇 高倩圆,女,1985 年生,硕士.主要从事恢复生态
学研究. E鄄mail: gaoqianyuan126@ 126. com
责任编辑摇 肖摇 红
8303 应摇 用摇 生摇 态摇 学摇 报摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 摇 22 卷