全 文 ：亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗生长
及镁吸收的影响∗
杨全勇１　 王秀峰１，２∗∗　 韩宇睿１　 杨静静１　 魏　 珉１，２，３　 杨凤娟１，２　 史庆华１，２　 李　 岩１
（ １山东农业大学园艺科学与工程学院， 山东泰安 ２７１０１８； ２作物生物学国家重点实验室， 山东泰安 ２７１０１８； ３农业部黄淮海设
施农业工程科学观测实验站， 山东泰安 ２７１０１８）
摘　 要　 在亚适温条件（昼 ／夜 １８ ℃ ／ １２ ℃）下，研究硝酸盐胁迫 １和 １４ ｄ对黄瓜幼苗生长及
镁吸收的影响．结果表明： 亚适温条件下，硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗生长产生显著抑制作用．与
适温对照相比，其叶片的净光合速率、蒸腾速率、光系统Ⅱ最大光化学效率和实际光化学效率
均明显下降；幼苗根、茎、叶中镁含量明显下降，尤以处理Ⅳ（亚适温＋１４０ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ ＮＯ３
－ ＋
１ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ Ｍｇ２＋）最为显著；Ｍｇ２＋对 Ｋ＋和 Ｃａ２＋吸收有拮抗作用，增加营养液中的 Ｍｇ２＋浓度，
可使黄瓜幼苗的缺镁症状得到缓解．
关键词　 黄瓜幼苗； 亚适温； 硝酸盐胁迫； 镁
文章编号　 １００１－９３３２（２０１５）０５－１３４３－０８　 中图分类号　 Ｓ３１１， Ｓ６４２．２ 　 文献标识码　 Ａ
Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ａｂｓｏｒｂｉｎｇ ｕｎｄｅｒ ｓｕｂｏｐｔｉ⁃
ｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ． ＹＡＮＧ Ｑｕａｎ⁃ｙｏｎｇ１， ＷＡＮＧ Ｘｉｕ⁃ｆｅｎｇ１，２， ＨＡＮ Ｙｕ⁃ｒｕｉ１， ＹＡＮＧ Ｊｉｎｇ⁃ｊｉｎｇ１， ＷＥＩ
Ｍｉｎ１，２，３， ＹＡＮＧ Ｆｅｎｇ⁃ｊｕａｎ１，２， ＳＨＩ Ｑｉｎｇ⁃ｈｕａ１，２， ＬＩ Ｙａｎ１ （１Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｅｎｇｉ⁃
ｎｅｅｒｉｎｇ， Ｓｈａｎｄｏｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ， Ｔａｉ’ａｎ ２７１０１８， Ｓｈａｎｄｏｎｇ， Ｃｈｉｎａ； ２Ｓｔａｔｅ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ
ｏｆ Ｃｒｏｐ Ｂｉｏｌｏｇｙ， Ｔａｉ’ａｎ ２７１０１８， Ｓｈａｎｄｏｎｇ， Ｃｈｉｎａ； ３Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｏｂｓｅｒｖｉｎｇ ａｎｄ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｓｔａｔｉｏｎ ｏｆ
Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ｉｎ Ｈｕａｎｇ⁃Ｈｕａｉ⁃Ｈａｉ Ｒｅｇｉｏｎ， Ｍｉｎｉｓｔｒｙ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，
Ｔａｉ’ａｎ ２７１０１８， Ｓｈａｎｄｏｎｇ， Ｃｈｉｎａ） ． ⁃Ｃｈｉｎ． Ｊ． Ａｐｐｌ． Ｅｃｏｌ．， ２０１５， ２６（５）： １３４３－１３５０．
Ａｂｓｔｒａｃｔ： Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｔｈｅ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ ｏｆ ｃｕｃｕｍｂｅｒ
ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｗｅｒｅ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ ａｆｔｅｒ １ ａｎｄ １４ ｄ ｏｆ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ［１８ ℃ ／ １２ ℃ （ｄａｙ ／ ｎｉｇｈｔ）］
ｔｒｅａｔｍｅｎｔ． Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ， ｎｅｔ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｒａｔｅ， ｔｒａｎｓｐｉｒａｔｉｏｎ ｒａｔｅ， Ｆｖ ／ Ｆｍ
ａｎｄ ΦＰＳＩＩ ｏｆ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｗｅｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ ｂｙ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ ｕｎｄｅｒ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍ⁃
ｐｅｒａｔｕｒｅ． Ｔｈｅ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｗａｓ ａｌｓｏ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｄｅｃｒｅａｓｅｄ ｃｏｍｐａｒｅｄ
ｗｉｔｈ ｃｏｎｔｒｏｌ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ， ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｉｎ ｔｈｅ Ⅳ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ （ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ＋１４０ ｍｍｏｌ·Ｌ－１
ＮＯ３
－＋１ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ Ｍｇ２＋）， ａｎｄ ｔｈｅ ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｉｃ ｉｍｐａｃｔ ｏｆ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｉｏｎ ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ ｏｎ ｔｈｅ ａｂｓｏｒｐ⁃
ｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ａｎｄ ｃａｌｃｉｕｍ ｉｏｎ ｗａｓ ｏｂｓｅｒｖｅｄ． Ｔｈｅ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ ｓｙｍｐｔｏｍ ｏｆ ｃｕｃｕｍｂｅｒ
ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｐａｒｔｌｙ ａｌｌｅｖｉａｔｅｄ ｂｙ ｉｎｃｒｅａｓｉｎｇ ｔｈｅ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｎｕｔｒｉｅｎｔ
ｓｏｌｕｔｉｏｎ．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ： ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇ； ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ； ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ； ｍａｇｎｅｓｉｕｍ．
∗国家现代农业产业技术体系建设专项（ＣＡＲＳ⁃２５）和山东省财政支
持农业重大应用技术创新项目（２００９）资助．
∗∗通讯作者． Ｅ⁃ｍａｉｌ： ｘｆｗａｎｇ＠ ｓｄａｕ．ｅｄｕ．ｃｎ
２０１４⁃０４⁃２４收稿，２０１５⁃０２⁃２６接受．
　 　 我国北方大部分地区的设施黄瓜栽培以非加温
的日光温室和塑料大棚为主，低温冷害频繁发生，弱
光亚适温逆境也较为常见［１－２］ ．黄瓜属于喜温、喜光
植物，冬春季节的弱光亚适温严重影响了黄瓜的产
量和品质［３－５］ ．同时，设施栽培还具有封闭性的特点，
土壤缺少雨水淋洗，并且长期处于高度集约化、高复
种指数、高肥料施用量的生产状态下，极易发生土壤
次生盐渍化，影响植物正常生理代谢，导致植物生长
量下降［６－８］ ．目前，土壤的次生盐渍化已成为国内外
设施栽培中普遍存在的问题［９］，而其阴离子主要是
ＮＯ３
－，占阴离子总量的 ６７％～７６％，阳离子则以 Ｃａ２＋
和 Ｋ＋为主［１０－１１］ ．
土壤次生盐渍化引起的渗透胁迫会对作物造成
一系列的损害．研究表明，温室土壤发生次生盐渍化
应 用 生 态 学 报　 ２０１５年 ５月　 第 ２６卷　 第 ５期　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　
Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｅｃｏｌｏｇｙ， Ｍａｙ ２０１５， ２６（５）： １３４３－１３５０
致使土壤溶液浓度过高、渗透势增加，降低了土壤与
植物根系和植物叶片间的水势梯度，导致叶片细胞
膨压下降、气孔关闭，蒸腾作用和光合作用降低，使
植物生长发育受阻，干物质生产降低［１２－１５］ ．在较高
浓度的硝酸盐胁迫下，黄瓜幼苗出现了较为严重的
受胁迫症状，光饱和点和羧化效率减小，光补偿点和
ＣＯ２补偿点升高，黄瓜幼苗利用强光和弱光的能力
降低，幼苗中 Ｒｕｂｉｓｃｏ的活性以及固定低浓度 ＣＯ２的
能力降低，叶绿体超微结构受到不同程度的损害．由
于非气孔限制因素，黄瓜幼苗净光合速率明显下降．
在高浓度硝酸盐胁迫下，黄瓜幼苗叶片叶肉细胞气
孔扩散阻抗增大．光系统Ⅱ反应中心开放程度降低，
电子传递受到抑制，导致两个光系统之间激发能分
配不平衡，光化学效率降低，ＣＯ２同化力下降，最终
影响黄瓜幼苗的生长［１６］ ．但是，目前有关高浓度硝
酸盐胁迫对植株离子吸收的影响及其机理的研究
较少．
镁是植物生长发育的重要元素之一［１７］，在叶绿
体发育和维持功能过程中发挥着重要作用；镁参与
类囊体膜的组装和基粒垛叠，对维持叶绿体结构有
重要作用［１８］ ．镁可促进光合作用的碳同化［１９－２０］，还
是许多酶的活化剂［２１－２２］，能够稳定 ＤＮＡ和 ＲＮＡ，对
转录和翻译过程也有重要作用［２３］ ．研究表明，影响
温室黄瓜镁吸收的主要因素是根际镁离子浓度、其
他离子的拮抗作用以及环境因子（包括地温、气温
和光照等）的影响［２４－２５］ ．本试验通过研究亚适温条
件下硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗镁吸收的影响，探求在
亚适温和硝酸盐胁迫下的最佳镁肥施用量，避免废
液的富营养化及对环境造成的污染．
１　 材料与方法
１􀆰 １　 试验设计
试验于 ２０１３年 ３—８月在山东农业大学玻璃温
室内进行．供试黄瓜品种为‘津优 １号’，采用常规方
法浸种催芽，挑选发芽整齐的种子播于装有基质
（草炭 ∶ 蛭石＝ ２ ∶ １）的穴盘中，待第二片真叶展平
时，选取生长一致的幼苗移栽至盛有 １０ Ｌ营养液的
水培盆中，每盆 ８ 株，每 ３ ｄ 更换一次营养液，培养
至 ３叶 １心时进行处理．营养液中大量元素参照山
崎配方，微量元素参照 Ａｒｎｏｎ 配方，以浓 Ｈ２ＳＯ４调整
营养液 ｐＨ至 ５．５～６．５．
将水培黄瓜幼苗转移至宁波产 ＧＸＺ 型光照培
养箱内，在适温下适应 ３ ｄ 后进行亚适温处理．处理
前为 ０ ｄ．亚适温处理温度为 １８ ℃ ／ １２ ℃ （昼 ／夜），
适温对照为 ２５ ℃ ／ １８ ℃ （昼 ／夜） ［５］ ．光量子通量密
度（ＰＦＤ）为 ４００ μｍｏｌ·ｍ－２·ｓ－１，日照时数 １２ ｈ，相
对湿度 ８０％左右．试验设计 ７ 个处理：ＣＫ：适温 ＋
常规营养液（山崎配方，Ｍｇ２＋浓度 ２ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ ）；
Ⅰ：亚适温＋１４ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ＮＯ３
－ ＋１ ｍｍｏｌ·Ｌ－１Ｍｇ２＋；
Ⅱ：亚适温＋１４ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ ＮＯ３
－ ＋２ ｍｍｏｌ·Ｌ－１Ｍｇ２＋；
Ⅲ：亚适温＋１４ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ＮＯ３
－ ＋３ ｍｍｏｌ·Ｌ－１Ｍｇ２＋；
Ⅳ：亚适温＋１４０ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ＮＯ３
－ ＋１ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ Ｍｇ２＋；
Ⅴ：亚适温＋１４０ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ ＮＯ３
－＋２ ｍｍｏｌ·Ｌ－１Ｍｇ２＋；
Ⅵ：亚适温＋１４０ ｍｍｏｌ·Ｌ－１ ＮＯ３
－ ＋３ ｍｍｏｌ·Ｌ－１Ｍｇ２＋ ．
ＮＯ３
－由 Ｃａ（ＮＯ３） ２·４Ｈ２Ｏ 和 ＫＮＯ３提供，各占 １ ／ ２，
ｐＨ由 Ｈ２ＳＯ４调节，保持在 ５．５ ～ ６．５．胁迫处理开始
时，为防止盐刺激，ＮＯ３
－浓度按每天递增总浓度的
１ ／ ４处理，直至达到预定浓度 １４０ ｍｍｏｌ·Ｌ－１，然后
更换成标准处理营养液．每个处理 ３ 次重复，每 ３ ｄ
更换 １次营养液．
处理 １和 １４ ｄ 后，分别取各处理植株上数第二
至第四片叶片，测定各生理指标．重复 ３ 次，求平
均值．
１􀆰 ２　 测定项目与方法
１􀆰 ２􀆰 １生长量的测定 　 处理前、后分别用直尺测定
黄瓜幼苗的株高、叶宽和叶长计算叶面积［２６］；称量
法测定干物质量．
１􀆰 ２􀆰 ２电导率的测定 　 取鲜叶，用自来水冲洗并蘸
干表面水分，称取 ０．５ ｇ，装入大试管中，加入 ２０ ｍＬ
蒸馏水，抽气 ３次，室温保持 ３～４ ｈ，多次摇动，测定
电导率（Ｓ１），封口沸水浴 １０ ｍｉｎ，冷却，平衡 １０ ｍｉｎ
后测电导率（Ｓ２），同时测定蒸馏水电导率（Ｓ０）．
相对电导率＝（Ｓ１－Ｓ０） ／ （Ｓ２－Ｓ０）×１００％
１􀆰 ２􀆰 ３光合色素含量的测定 　 参照李合生等［２７］的
方法，以 ９６％乙醇浸提剪碎的叶片 ４８ ｈ，用日本产
ＵＶ⁃１６０分光光度计测定吸光度值，计算叶绿素 ａ
（Ｃｈｌ ａ）、叶绿素 ｂ（Ｃｈｌ ｂ）、［Ｃｈｌ （ａ＋ｂ）］含量．用 Ｌｉ⁃
６４００型光合速率测定仪（美国 Ｌｉ⁃Ｃｏｒ公司），于晴天
９：００—１１：００测定见光一致的上数第三片平展叶片
的净光合速率（Ｐｎ）、气孔导度（ｇｓ）、细胞间隙 ＣＯ２
浓度（Ｃ ｉ ）和蒸腾速率（ Ｔｒ ），测定时光强约为 ８００
μｍｏｌ·ｍ－２·ｓ－１，温度为 ２５ ℃，空气 ＣＯ２浓度为
（３８０±１０ μｍｏｌ·ｍｏｌ－１），每处理随机选取 ５ 株，求平
均值．
１􀆰 ２􀆰 ４叶绿素荧光参数的测定　 在各处理中选取生
长一致的黄瓜幼苗 ５ 株，将照光一致的上数第三片
叶暗适应 ３０ ｍｉｎ，用英国 Ｈａｎｓａｔｅｃｈ 生产的 ＦＭＳ２型
４４３１ 应　 用　 生　 态　 学　 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ２６卷
表 １　 亚适温和硝酸盐胁迫下黄瓜幼苗株高和叶面积的变化
Ｔａｂｌｅ １　 Ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｈｅｉｇｈｔ ａｎｄ ｌｅａｆ ａｒｅａ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｕｎｄｅｒ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
株高 Ｐｌａｎｔ ｈｅｉｇｈｔ （ｃｍ）
处理前
Ｂｅｆｏｒｅ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
处理后
Ａｆｔｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
增加量
Ｉｎｃｒｅｍｅｎｔ
叶面积 Ｌｅａｆ ａｒｅａ （ｃｍ２）
处理前
Ｂｅｆｏｒｅ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
处理后
Ａｆｔｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
增加量
Ｉｎｃｒｅｍｅｎｔ
ＣＫ ６．５０±０．５０ａ ２５．００±１．００ａ １８．５０±１．５０ａ ９５．４０±２．７８ａｂ ５８１．９９±３．６０ａ ４８６．５９±５．６９ａ
Ⅰ ６．１７±０．２９ａ １０．１７±０．２９ｄ ４．００±０．５０ｄ ８７．６４±６．５４ｂｃ ２２８．３９±５．８２ｃ １４０．７６±１．６３ｄ
Ⅱ ６．５０±０．５０ａ １２．００±０．５０ｂｃ ５．５０±０．８７ｂｃｄ ８６．６７±７．３２ｂｃ ２７８．５７±７．２８ｂ １９１．９０±１４．２０ｂｃ
Ⅲ ６．３３±０．２９ａ １２．６７±０．２９ｂ ６．３３±０．２９ｂｃ ８４．６７±５．４２ｃ ２９７．１８±６．１６ｂ ２１２．５１±５．３２ｂ
Ⅳ ５．８３±０．３０ａ ７．６７±０．７６ｅ １．８３±０．５８ｅ ８４．１８±４．３５ｃ １６６．６１±７．１０ｄ ８２．４３±４．２９ｅ
Ⅴ ６．１７±０．２８ａ １１．００±０．５０ｃｄ ４．８３±１．０４ｃｄ ８９．０４±２．０２ｂｃ ２３４．４７±５．３６ｃ １４５．４２±６．２２ｄ
Ⅵ ６．１７±０．２９ａ １３．００±０．５０ｂ ６．８３±０．２９ｂ ９８．４０±２．３６ａ ２８０．７０±４．３５ｂ １８２．３０±６．４２ｃ
同列不同字母表示差异显著（Ｐ＜０．０５）Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｌｕｍｎ ｍｅａｎｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｔ ０．０５ ｌｅｖｅｌ． 下同 Ｔｈｅ ｓａｍｅ ｂｅｌｏｗ．
调制式荧光仪测定相应光强下的各项荧光参数［２８］ ．
１􀆰 ２􀆰 ５镁离子含量测定　 不同部位新鲜黄瓜幼苗样
品用去离子水洗净后，吸水纸吸干水分，１０５ ℃下杀
青 １５ ｍｉｎ，７０ ～ ８０ ℃下烘干，磨碎后过 ６０ 目筛，精
确称取 ０．１０００ ｇ 样品放入硝煮管中，加入 ５ ｍＬ 浓
Ｈ２ＳＯ４，放置过夜，使样品充分被氧化．再逐滴加入
３０％Ｈ２Ｏ２后消煮，直至溶液由黑色变为无色清亮透
明为止．将溶液转移到 ５０ ｍＬ容量瓶中，用双蒸水定
容．溶液稀释 １０ 倍，用日立 Ｚ２０００ 原子吸收分光光
度计测定 Ｍｇ２＋浓度［２９］ ．
１􀆰 ３　 数据处理
采用 Ｅｘｃｅｌ ２００３ 软件处理数据和作图，采用
Ｄｕｎｃａｎ新复极差法进行差异显著性检验（α＝ ０．０５）．
２　 结果与分析
２􀆰 １　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗株高和叶面
积的影响
由表 １ 可知，处理 １４ ｄ 后，各处理植株的株高
和叶面积均产生显著差异．与适温对照相比，亚适温
条件下黄瓜幼苗的株高和叶面积增加值明显变小；
通过增加营养液中 Ｍｇ２＋浓度，黄瓜幼苗的株高和叶
面积增加值明显变大；硝酸盐胁迫处理的黄瓜幼苗
株高和叶面积增加值较正常硝酸盐浓度的黄瓜幼苗
明显偏低，说明亚适温和硝酸盐胁迫抑制了黄瓜幼
苗的生长．
２􀆰 ２　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗干物质量的
影响
由图 １ 可知，处理 １４ ｄ 后，各处理的黄瓜幼苗
干物质量差异显著．在 Ｍｇ２＋浓度相同的条件下，亚适
温条件下黄瓜幼苗干物质量较适温对照黄瓜幼苗显
著降低，说明亚适温影响黄瓜幼苗干物质积累．在亚
适温条件下，增加营养液中 Ｍｇ２＋浓度，黄瓜幼苗的
干物质量显著增大．亚适温条件下硝酸盐胁迫处理
黄瓜幼苗干物质量较适温对照黄瓜幼苗降低更为显
著，说明亚适温和硝酸盐胁迫严重抑制了黄瓜幼苗
的生长，通过增加营养液中 Ｍｇ２＋浓度可适当缓解胁
迫，黄瓜幼苗的干物质量明显升高．
２􀆰 ３　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗电解质渗漏
率的影响
由图 ２ 可以看出，亚适温处理 １４ ｄ 后，各处理
的黄瓜幼苗电解质渗漏率差异显著．亚适温处理下
图 １　 亚适温和硝酸盐胁迫条件下黄瓜幼苗干物质量的
变化
Ｆｉｇ．１　 Ｃｈａｎｇｅｓ ｏｆ ｄｒｙ ｍａｓｓ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｕｎｄｅｒ ｓｕｂｏｐ⁃
ｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ．
图 ２　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗电解质渗透率的影响
Ｆｉｇ．２ 　 Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ
ｅｌｅｃｔｒｏｌｙｔｅ ｌｅａｋａｇｅ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ．
５４３１５期　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 杨全勇等： 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗生长及镁吸收的影响　 　 　 　 　 　 　
表 ２　 亚适温和硝酸盐胁迫对不同镁处理黄瓜幼苗叶绿素含量的影响
Ｔａｂｌｅ ２　 Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ ｐｉｇｍｅｎｔ ｃｏｎｔｅｎｔ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
叶绿素 ａ
Ｃｈｌ ａ
（ｍｇ·ｇ－１ＦＭ）
叶绿素 ｂ
Ｃｈｌ ｂ
（ｍｇ·ｇ－１ＦＭ）
类胡萝卜素
Ｃａｒ
（ｍｇ·ｇ－１ＦＭ）
叶绿素（ａ＋ｂ）
Ｃｈｌ （ａ＋ｂ）
（ｍｇ·ｇ－１ＦＭ）
叶绿素 ａ ／ ｂ
Ｃｈｌ ａ ／ ｂ
ＣＫ １．８８±０．０１ａ ０．５４±０．０１ａ ０．３５±０．００ｂｃ ２．４２±０．０２ａ ３．４９±０．０９ｂ
Ⅰ １．３１±０．０４ｆ ０．３８±０．０１ｄ ０．２９±０．０１ｆ １．６８±０．０３ｆ ３．４３±０．２１ｂ
Ⅱ １．４５±０．０２ｅ ０．４２±０．０１ｃ ０．３２±０．０１ｄｅ １．８７±０．０３ｅ ３．４６±０．０４ｂ
Ⅲ １．４９±０．０１ｄ ０．４３±０．０１ｃ ０．３４±０．０１ｃｄ １．９２±０．００ｄ ３．５０±０．０１ｂ
Ⅳ １．５０±０．０２ｄ ０．４２±０．０１ｃ ０．３２±０．０１ｅ １．９３±０．０１ｄ ３．５５±０．０８ｂ
Ⅴ １．６３±０．０３ｃ ０．４２±０．０１ｃ ０．３７±０．０２ｂ ２．０５±０．０３ｃ ３．９２±０．０９ａ
Ⅵ １．７９±０．０２ｂ ０．４６±０．０１ｂ ０．３９±０．０１ａ ２．２５±０．０３ｂ ３．８６±０．０６ａ
黄瓜幼苗电解质渗漏率较适温对照黄瓜幼苗显著升
高．亚适温条件下，硝酸盐胁迫处理黄瓜幼苗电解质
渗漏率较适温对照黄瓜幼苗升高更为显著，说明亚
适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗造成双重逆境伤害．
通过增加营养液中 Ｍｇ２＋浓度，黄瓜幼苗的电解质渗
漏率降低，胁迫得到一定程度地缓解．
２􀆰 ４　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗叶绿素含量
的影响
由表 ２ 可以看出，处理 １４ ｄ 后，各处理的黄瓜
幼苗叶绿素含量差异显著，亚适温条件下黄瓜幼苗
叶绿素含量较适温对照黄瓜幼苗明显偏低，说明长
期亚适温处理导致黄瓜幼苗叶片中叶绿素含量下
降．通过增加营养液中 Ｍｇ２＋浓度，黄瓜幼苗叶片叶绿
素含量明显升高．在亚适温条件下，硝酸盐胁迫处理
的黄瓜幼苗叶片叶绿素含量较适温对照黄瓜幼苗显
著偏低，但较硝酸盐浓度正常的黄瓜幼苗显著偏高，
可能是由于硝酸盐胁迫下黄瓜幼苗的叶片变小、变
厚，对叶绿素具有一定的浓缩效应．
２􀆰 ５　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗光合活性的
影响
由表 ３ 可以看出，亚适温处理 １４ ｄ 后，黄瓜幼
苗叶片净光合速率（Ｐｎ） 、胞间ＣＯ２浓度（Ｃ ｉ） 、气孔
表 ３　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗光合活性的影响
Ｔａｂｌｅ ３　 Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ
ｏｎ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ ｏｆ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ
处理
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
光合速率
Ｐｎ
（μｍｏｌ·ｍ －２·
ｓ－１）
胞间 ＣＯ２浓度
Ｃ ｉ
（μｍｏｌ·ｍｏｌ－１）
气孔导度
ｇｓ
（ｍｍｏｌ·ｍ－２·
ｓ－１）
蒸腾速率
Ｔｒ
（ｍｍｏｌ·ｍ－２·
ｓ－１）
ＣＫ ８．２７±０．３２ａ ４４８．６７±４．０４ａ ０．４１±０．０１ａ ４．７０±０．０６ａ
Ⅰ ４．３０±０．１０ｅ ４２１．３３±５．８６ｂｃｄ ０．２３±０．０１ｂ ２．２６±０．０８ｄ
Ⅱ ５．０７±０．１５ｃ ４３２．３３±１．５３ｂ ０．２２±０．０１ｂ ２．７５±０．０８ｂ
Ⅲ ５．７０±０．１０ｂ ４２５．００±１．７３ｂｃ ０．２２±０．０１ｂ ２．６１±０．０６ｃ
Ⅳ ３．８０±０．１７ｆ ４１８．００±１．００ｃｄ ０．１５±０．００ｃ １．３６±０．０８ｆ
Ⅴ ４．５０±０．１０ｄｅ ４１１．００±２．００ｄ ０．１６±０．００ｃ １．５１±０．０３ｅ
Ⅵ ４．７３±０．１５ｄｅ ４２１．３３±２．５０ｂｃｄ ０．１５±０．００ｃ １．５８±０．０２ｅ
导度（ｇｓ）、蒸腾速率（Ｔｒ）较适温对照黄瓜幼苗明显
偏低，说明长期的亚适温环境对黄瓜幼苗的生长和
光合活性造成不利影响．亚适温条件下，缺镁处理的
黄瓜幼苗叶片 Ｐｎ较低，通过增加营养液中 Ｍｇ２
＋浓
度，黄瓜幼苗叶片 Ｐｎ显著升高．在亚适温条件下，硝
酸盐胁迫处理的黄瓜幼苗 Ｐｎ、Ｃ ｉ、ｇｓ和 Ｔｒ较适温对
照的黄瓜幼苗降低更为显著，Ｃ ｉ降低和 ｇｓ下降，说明
气孔限制是光合作用下降的主要因素，亚适温和硝
酸盐双重胁迫导致黄瓜幼苗叶片气孔部分关闭，通
过增加营养液中 Ｍｇ２＋浓度，黄瓜幼苗叶片 Ｐｎ值明显
升高．
２􀆰 ６　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗 Ｆｖ ／ Ｆｍ和
ΦＰＳＩＩ的影响
由图 ３ 可以看出，亚适温处理 １４ ｄ 后，黄瓜幼
苗叶片光系统Ⅱ最大光化学效率（Ｆｖ ／ Ｆｍ）和光系统
Ⅱ的实际光化学效率（ΦＰＳⅡ）较适温对照黄瓜幼苗
明显下降，硝酸盐胁迫处理黄瓜幼苗叶片 Ｆｖ ／ Ｆｍ和
ΦＰＳⅡ下降更为明显，说明亚适温和硝酸盐双重胁迫
对黄瓜幼苗的生长产生的抑制作用更大，影响光系
统Ⅱ电子传递效率，导致Ｆｖ ／ Ｆｍ和ΦＰＳⅡ降低 ．通过
图 ３　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗 Ｆｖ ／ Ｆｍ和 ΦＰＳⅡ的影响
Ｆｉｇ．３ 　 Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ
Ｆｖ ／ Ｆｍ ａｎｄ ΦＰＳⅡ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ．
６４３１ 应　 用　 生　 态　 学　 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ２６卷
增加营养液中Ｍｇ２＋浓度黄瓜幼苗叶片ΦＰＳⅡ显著增加．
２􀆰 ７　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗根、茎、叶中
镁含量的影响
由图 ４可以看出，在亚适温条件下，与适温对照
相比， Ｍｇ２＋浓度相同处理（Ⅱ）的黄瓜幼苗根、茎、叶
中 Ｍｇ含量明显降低，说明亚适温抑制黄瓜幼苗根
系对 Ｍｇ的吸收及往地上部输送，通过增加营养液
中Ｍｇ２＋浓度（Ⅲ），黄瓜幼苗根、茎中的Ｍｇ含量没有
增加，而幼苗叶片中 Ｍｇ含量显著增加，与对照适温
相比没有显著差异．亚适温条件下，硝酸盐胁迫处理
黄瓜幼苗根、茎、叶中 Ｍｇ含量较适温对照黄瓜幼苗
降低更为显著，增加营养液中 Ｍｇ２＋浓度（Ⅵ），黄瓜
幼苗根、茎、叶中 Ｍｇ含量虽比正常浓度处理（Ⅴ）有
所增加，但与对照适温相比差异仍非常明显．说明亚
适温和硝酸盐双重胁迫进一步抑制了黄瓜幼苗对
Ｍｇ的吸收和运输．
２􀆰 ８　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗根、茎、叶中
钙、钾含量的影响
由图 ５ 可以看出，在亚适温条件下，黄瓜幼苗
根、茎、叶中 Ｃａ和 Ｋ含量较适温对照的黄瓜幼苗显
著降低，说明亚适温影响黄瓜幼苗对 Ｃａ 和 Ｋ 的吸
收．亚适温条件下，硝酸盐胁迫的黄瓜幼苗根、茎、叶
中 Ｃａ和 Ｋ含量较适温对照的黄瓜幼苗显著升高，
亚适温条件下硝酸盐胁迫促进了黄瓜幼苗对 Ｃａ 和
Ｋ的吸收及往地上部的运输，但营养液中 Ｍｇ２＋浓度
的变化对黄瓜幼苗根茎叶中 Ｃａ 和 Ｋ 含量的影响不
明显．在亚适温条件下，营养液中 Ｍｇ２＋浓度增加黄瓜
幼苗茎中 Ｋ含量明显降低，而对根、叶中 Ｋ 含量以
及根茎叶中 Ｃａ 含量影响不明显．另外，黄瓜幼苗茎
叶中 Ｃａ２＋远比根中的多，而黄瓜幼苗根茎中的 Ｋ＋远
图 ４　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗根、茎、叶中镁含量
的影响
Ｆｉｇ．４ 　 Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ
ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｃｏｎｔｅｎｔ ｉｎ ｒｏｏｔ， ｓｔｅｍ ａｎｄ ｌｅａｆ ｏｆ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ．
Ⅰ： 根 Ｒｏｏｔ； Ⅱ： 茎 Ｓｔｅｍ； Ⅲ： 叶 Ｌｅａｆ． 下同 Ｔｈｅ ｓａｍｅ ｂｅｌｏｗ．
比叶中的多．
２􀆰 ９　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗根、茎、叶中
Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋和 Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋影响
由图 ６可以看出，在亚适温条件下，与适温对照
图 ５　 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗根、茎、叶中钙、钾含
量的影响
Ｆｉｇ．５ 　 Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ
ｃａｌｃｉｕｍ ａｎｄ ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｉｎ ｒｏｏｔ， ｓｔｅｍ ａｎｄ ｌｅａｆ ｏｆ ｃｕｃｕｍ⁃
ｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ．
图 ６　 亚适温条件下硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗根、茎、叶中
Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋和 Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋影响
Ｆｉｇ．６ 　 Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｓｕｂｏｐｔｉｍａｌ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ＮＯ３
－ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ
Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋ ａｎｄ Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋ ｉｎ ｒｏｏｔ， ｓｔｅｍ ａｎｄ ｌｅａｆ ｏｆ ｃｕｃｕｍｂｅｒ
ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ．
７４３１５期　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 杨全勇等： 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗生长及镁吸收的影响　 　 　 　 　 　 　
相比，正常硝酸盐浓度处理黄瓜幼苗根中 Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋
和 Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋差异不显著，而茎、叶中 Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋和
Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋随营养液中 Ｍｇ２＋浓度的增加有减小的趋
势；硝酸盐胁迫处理黄瓜幼苗根、茎、叶中 Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋
和 Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋显著增高，而随营养液中 Ｍｇ２＋浓度的
增加明显变小．说明营养液中 Ｍｇ２＋浓度的增加对 Ｋ
和 Ｃａ的吸收产生明显的拮抗作用，硝酸盐胁迫下
黄瓜幼苗根和茎中 Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋明显大于 Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋，说
明 Ｍｇ２＋对 Ｋ＋的抑制作用大于对 Ｃａ２＋的抑制作用．
３　 讨　 　 论
我国土壤缺镁的面积约占全国耕地总面积的
６％，在一些设施栽培中，植株缺镁而出现失绿现象
更加严重［３０－３３］ ．研究表明，不同植物对镁的需求不
同，因而对镁的吸收也不相同，影响植株对镁吸收的
主要因素有：温度、介质中的 ｐＨ 值、供水、外源物
质、根际镁浓度、根际溶液浓度（ＥＣ 值）、钾、钙的含
量以及田间农艺措施［３４］ ．
胡文海等［３５］研究表明，低温弱光条件下番茄株
高受抑制，地上部干物质量下降．苏秀荣等［１６］和杨
凤娟［３６］研究表明，ＮＯ３
－浓度较低时，短时间内有利
于黄瓜植株的生长，叶面积增加，干物质积累增多；
当 ＮＯ３
－高于一定浓度后就表现出胁迫作用，且对地
上部的胁迫作用较大．本研究表明，亚适温胁迫条件
下，黄瓜幼苗生长受到显著抑制，株高和叶面积降
低、干物质量明显下降；亚适温条件下硝酸盐胁迫处
理黄瓜幼苗干物质量较适温对照黄瓜幼苗降低更为
显著，双重胁迫加重了对黄瓜幼苗生长的抑制作用．
增加营养液中 Ｍｇ２＋浓度，黄瓜幼苗株高和叶面积增
加值比低浓度 Ｍｇ２＋处理明显升高，干物质量显著增
大．表明提高营养液中 Ｍｇ２＋浓度可以部分缓解由于
亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜生长所造成的抑制
作用．
杨晓玉等［３７］研究表明，硝酸盐胁迫下，黄瓜幼
苗根、茎、叶中 Ｍｇ、Ｆｅ和 Ｍｎ含量均有不同程度的下
降．裴孝伯等［３８］研究表明，冬春茬黄瓜的镁吸收速
率较秋冬茬黄瓜快，主要是秋冬茬黄瓜的生长环境
是弱光、亚适温或低温．本研究表明，在根际 Ｍｇ２＋浓
度相同条件下，亚适温环境抑制了黄瓜幼苗对 Ｍｇ２＋
的吸收，使黄瓜幼苗根、茎、叶中 Ｍｇ２＋含量降低，植
株出现缺镁症状．这与谢小玉等［３４］的研究结果一致．
在亚适温和硝酸盐双重胁迫下，黄瓜幼苗根、茎、叶
中 Ｍｇ含量较适温对照的黄瓜幼苗降低更为显著，
双重胁迫加重了黄瓜幼苗对 Ｍｇ 的吸收和运输的抑
制作用．增加营养液中 Ｍｇ２＋浓度，在一定程度上可以
使亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗造成的缺镁抑制
症状得到部分缓解．
Ｍｅｎｇｅｌ等［３９］研究表明，土壤中某些养分离子的
生物有效性，除了受其有效含量影响外，还受与其他
离子间的平衡关系影响，同电性离子间具有拮抗作
用．有研究表明，过多的 Ｋ＋、Ｃａ２＋会抑制植物对 Ｍｇ２＋
的吸收［４０－４１］，尤其是 Ｋ＋对 Ｍｇ２＋、Ｃａ２＋吸收具有较强
的竞争作用．陈竹君等［４２］研究表明，Ｋ＋对 Ｍｇ２＋的拮
抗作用大于 Ｃａ２＋对 Ｍｇ２＋的拮抗作用，可能是离子拮
抗引起番茄缺镁的主要原因．本研究中，与适温对照
相比，亚适温影响了黄瓜幼苗对 Ｃａ 和 Ｋ 的吸收；亚
适温条件下，硝酸盐胁迫反而促进了黄瓜幼苗对 Ｃａ
和 Ｋ的吸收以及往地上部的运输，但营养液中 Ｍｇ２＋
浓度的增加对黄瓜幼苗根茎叶中 Ｃａ 和 Ｋ 含量的影
响不显著；由亚适温条件下硝酸盐胁迫处理的黄瓜
幼苗根茎中 Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋明显高于 Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋可以看出，
Ｍｇ２＋对 Ｋ＋吸收的拮抗作用远远大于对 Ｃａ２＋的拮抗
作用，反向说明与陈竹君等［４２］研究结论相同，表明
同电性离子间的拮抗作用反而小．增加营养液中
Ｍｇ２＋浓度，Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋和 Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋明显下降，也说明
黄瓜幼苗的缺镁抑制症状得到部分缓解．
Ｈｅｍａｎｓ等［４３］研究表明，缺镁会导致黄瓜叶片
的光合速率和光合关键酶活性下降．谢小玉等［３４］研
究表明，低温下缺镁胁迫显著抑制了黄瓜幼苗的生
长，叶绿素含量低导致净光合速率下降．本研究表
明，亚适温条件下，缺镁黄瓜幼苗生长受到显著抑
制，净光合速率明显下降，通过增加营养液中 Ｍｇ２＋
浓度，黄瓜幼苗的缺镁症状得到缓解，Ｐｎ、Ｔｒ、ΦＰＳⅡ
显著提高． Ｆａｒｑｕｈａｒ 等［４４］研究表明，在盐逆境胁迫
下，引起植物叶片光合速率降低的植物自身因素主
要有：由于气孔的部分关闭导致的气孔限制和叶肉
细胞光合活性下降导致的非气孔限制两类，Ｃ ｉ降低
和 ｇｓ下降，气孔因素起主要作用；Ｃ ｉ升高和 ｇｓ下降则
是非气孔因素起主要作用．史庆华等［４５］研究表明，
Ｃａ（ＮＯ３） ２胁迫下，番茄幼苗叶片 ｇｓ下降、Ｃ ｉ也下降，
推断气孔限制是导致番茄幼苗光合下降的主要原
因．本研究表明，亚适温条件下，硝酸盐胁迫处理的
黄瓜幼苗 Ｐｎ显著下降，ｇｓ和 Ｃ ｉ同时下降，说明气孔
限制因素导致光合下降．王强等［４６］研究表明，碳氮
同化之间不仅存在物质竞争，还存在能量上的竞争．
因此，高浓度 ＮＯ３
－胁迫下，植株体内的氮代谢旺盛，
与光合碳同化竞争光反应所产生的同化力（ＡＴＰ 和
ＮＡＤＰＨ），使 ＣＯ２同化速率降低，造成碳、氮代谢失
８４３１ 应　 用　 生　 态　 学　 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ２６卷
调，是导致光合速率降低的另一个原因．
亚适温条件下，硝酸盐胁迫处理的黄瓜幼苗生
长受到明显抑制，植株体内的 Ｍｇ 含量和叶绿素含
量降低，净光合速率下降，亚适温和硝酸盐胁迫对黄
瓜幼苗产生明显抑制作用；通过增加营养液中 Ｍｇ２＋
浓度，黄瓜幼苗受亚适温和硝酸盐胁迫的抑制症状
得到一定程度缓解．黄瓜幼苗根、茎、叶中的Ｋ＋ ／ Ｍｇ２＋
和 Ｃａ２＋ ／ Ｍｇ２＋比值，说明营养液中 Ｍｇ２＋浓度的增加
对 Ｋ和 Ｃａ的吸收产生明显的拮抗作用，而 Ｍｇ２＋对
Ｋ＋的抑制作用大于对 Ｃａ２＋的抑制作用；营养液中较
高浓度的 ＮＯ３
－影响黄瓜幼苗对镁的吸收，同时
ＮＯ３
－对 Ｍｇ２＋的吸收也有拮抗作用．
参考文献
［１］　 Ｗａｎｇ Ｙ⁃Ｊ （王永健）， Ｚｈａｎｇ Ｈ⁃Ｙ （张海英）， Ｚｈａｎｇ Ｆ
（张 　 峰）． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ｌｏｗ ｌｉｇｈｔ
ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｉｎ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｖａｒｉｅｔｉｅｓ． Ａｃｔａ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｅ Ｓｉｎａｃａ （园艺学
报）， ２００１， ２８（３）： ２３０－２３４ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［２］　 Ｈｕ Ｗ⁃Ｈ （胡文海）， Ｙｕ Ｊ⁃Ｑ （喻景权）． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ
ｃｈｉｌｌｉｎｇ ｕｎｄｅｒ ｌｏｗ ｌｉｇｈｔ ｏｎ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ａｎｄ ｃｈｌｏｒｏ⁃
ｐｈｙｌｌ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃ ｉｎ ｔｏｍａｔｏ ｌｅａｖｅｓ． Ａｃｔａ
Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｅ Ｓｉｎａｃａ （园艺学报）， ２００１， ２８（１）： ４１－
４６ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３］　 Ｇａｏ Ｌ⁃Ｈ （高丽红）， Ｃｈｅｎ Ｑ⁃Ｊ （陈青君）， Ｚｈａｎｇ Ｆ⁃Ｍ
（张福墁）． Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ａｄａｐｔａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｙｐｅｓ ｏｆ
ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｖａｒｉｅｔｉｅｓ ｕｎｄｅｒ ｐｒｏｔｅｃｔｅｄ ｃｕｌｔｕｒｅ． Ｃｈｉｎａ Ｖｅｇｅ⁃
ｔａｂｌｅｓ （中国蔬菜）， ２００２（３）： ２０－２３ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［４］　 Ｇａｏ Ｌ⁃Ｈ （高丽红）， Ｚｈａｎｇ Ｆ⁃Ｍ （张福墁）， Ｃｈｅｎ Ｑ⁃Ｊ
（陈青君）． Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｔｙｐｅ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｖａｒｉｅｔｉｅｓ ａｎｄ ｉｔｓ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｗｉｔｈ ｅｎｖｉｒｏｎ⁃
ｍｅｎｔ ｆａｃｔｏｒ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈｉｎａ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ （中
国农业大学学报）， ２０００， ５（３）： ５８－６２ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［５］　 Ｃｈｅｎ Ｑ⁃Ｊ （陈青君）， Ｚｈａｎｇ Ｆ⁃Ｍ （张福墁）， Ｗａｎｇ Ｙ⁃
Ｊ （王永健）， ｅｔ ａｌ． Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｆ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ
ｏｆ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｔｏ ｌｏｗ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ｐｏｏｒ
ｌｉｇｈｔ． Ｓｃｉｅｎｔｉａ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａ Ｓｉｎｉｃａ （中国农业科学），
２００３， ３６（１）： ７７－８１ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［６］　 Ｇｒａｔｔａｎ ＳＲ， Ｇｒｉｅｖｅ ＣＭ． Ｍｉｎｅｒａｌ ｅｌｅｍｅｎｔ ａｃｑｕｉｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ
ｇｒｏｗｔｈ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｏｆ ｐｌａｎｔｓ ｇｒｏｗｎ ｉｎ ｓａｌｉｎｅ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓ．
Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ， Ｅｃｏｓｙｓｔｅｍｓ ＆ Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ， １９９２， ３８：
２７５－３００
［７］　 Ｆｅｎｇ Ｇ （冯　 固）， Ｂａｉ Ｄ⁃Ｓ （白灯莎）， Ｙａｎｇ Ｍ⁃Ｑ （杨
茂秋）， ｅｔ ａｌ． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｓａｌｉｎｉｔｙ ｏｎ ＶＡ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｆｏｒｍａ⁃
ｔｉｏｎ ａｎｄ ｏｆ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ＶＡＭ ｆｕｎｇｉ ｏｎ ｓａｌｉｎｅ⁃
ｔｏｌｅｒａｎｃｅ ｏｆ ｐｌａｎｔ． Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｅｃｏｌｏｇｙ
（应用生态学报）， １９９９， １０（１）： ７９－８２ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［８］　 Ｌｉｕ Ｒ⁃Ｊ （刘润进）， Ｌｉｕ Ｐ⁃Ｑ （刘鹏起）， Ｘｕ Ｋ （徐
坤）， ｅｔ ａｌ． Ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ａｒｂｕｓｃｕｌａｒ ｍｙｃｏｒ⁃
ｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ ｉｎ ｓａｌｉｎｅ⁃ａｌｋａｌｉｎｅ ｓｏｉｌｓ ｏｆ Ｃｈｉｎａ． Ｃｈｉｎｅｓｅ
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｅｃｏｌｏｇｙ （应用生态学报）， １９９９， １０
（６）： ７２１－７２４ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［９］　 Ｎｉｎｇ Ｙ⁃Ｗ （宁运旺）， Ｚｈａｎｇ Ｙ⁃Ｃ （张永春）． Ｔｈｅ
ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｏｆ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｓａｌｉｎｅ ｏｆ ｐｒｏｔｅｃｔｅｄ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ
ｓｏｉｌ ａｎｄ ｉｔｓ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ａｎｄ ｃｕｒｅ． Ｊｉａｎｇｓｕ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ
Ｓｃｉｅｎｃｅｓ （江苏农业科学）， ２００１ （ ４）： ４９ － ５２ （ ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１０］　 Ｔｏｎｇ Ｙ⁃Ｗ （童有为）， Ｃｈｅｎ Ｄ⁃Ｆ （陈淡飞）． Ｓｔｕｄｙ ｏｎ
ｔｈｅ ｃａｕｓｅ ａｎｄ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｓａｌｉｎｅ ｓｏｉｌｓ ｉｎ ｇｒｅｅｎ⁃
ｈｏｕｓｅｓ． Ａｃｔａ Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒａｅ Ｓｉｎａｃａ （园艺学报）， １９９１，
１８（２）： １５９－１６２ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１１］　 Ｘｕｅ Ｊ⁃Ｃ （薛继澄）， Ｂｉ Ｄ⁃Ｙ （毕德义）， Ｌｉ Ｊ⁃Ｊ （李家
金）， ｅｔ ａｌ． Ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒｓ ａｎｄ ｃｏｕｎｔｅｒｍｅａｓｕｒｅｓ ｏｆ ｐｒｏｔｅｃｔｅｄ
ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｖｅｇｅｔａｂｌｅｓ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｄｉｓｏｒｄｅｒｓ． Ｓｏｉｌｓ
ａｎｄ Ｆｅｒｔｉｌｉｚｅｒｓ （土壤肥料）， １９９４（１）： ４－９ （ ｉｎ Ｃｈｉ⁃
ｎｅｓｅ）
［１２］　 Ｒｕｂｅｉｚ ＩＧ， Ｏｅｂｋｅｒ ＮＦ， Ｓｔｒｏｅｈｌｅｉｎ ＪＬ． Ｓｕｂｓｕｒｆａｃｅ ｄｒｉｐ
ｉｒｒｉｇａｔｉｏｎ ａｎｄ ｕｒｅａ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ｆｅｒｔｉｇａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｖｅｇｅｔａｂｌｅｓ ｏｎ
ｃａｌｃａｒｅｏｕｓ ｓｏｉｌｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ， １９８９， １２：
１４５７－１４６５
［１３］　 Ｓａｈｒａｗａｔ ＫＬ． Ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｕｒｅａ ｈｙｄｒｏｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｎｉｔｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ
ｉｎ ｓｏｉｌ ｂｙ ｃｈｅｍｉｃａｌｓ： Ｐｒｏｓｐｅｃｔｓ ａｎｄ ｐｒｏｂｌｅｍｓ． Ｐｌａｎｔ ａｎｄ
Ｓｏｉｌ， １９８０， ５７： ３３５－３５２
［１４］ 　 Ｗｕ Ｘ⁃Ｘ （吴雪霞）， Ｚｈｕ Ｗ⁃Ｍ （朱为民）， Ｚｈｕ Ｙ⁃Ｌ
（朱月林）． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｘｏｇｅｎｏｕｓ ｎｉｔｒｉｃ ｏｘｉｄｅ ｏｎ ｐｈｏｔｏ⁃
ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｕｎｄｅｒ ＮａＣｌ
ｓｔｒｅｓｓ． Ｐｌａｎｔ Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ｆｅｒｔｉｌｉｚｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ （植物营养
与肥料学报）， ２００７， １３（６）： １１０５ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１５］　 Ｆａｎ Ｈ⁃Ｆ （樊怀福）， Ｇｕｏ Ｓ⁃Ｒ （郭世荣）， Ｚｈａｎｇ Ｒ⁃Ｈ
（张润花）， ｅｔ ａｌ． Ｔｈｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｅｘｏｇｅｎｏｕｓ ｎｉｔｒｉｃ ｏｘｉｄｅ
ｏｎ ｇｒｏｗｔｈ， ａｃｔｉｖｅ ｏｘｙｇｅｎ ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ａｎｄ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ
ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｕｎｄｅｒ ＮａＣｌ ｓｔｒｅｓｓ．
Ａｃｔａ Ｅｃｏｌｏｇｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ （生态学报）， ２００７， ２７ （ ２）：
５４６－５５３ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１６］　 Ｓｕ Ｘ⁃Ｒ （苏秀荣）， Ｗａｎｇ Ｘ⁃Ｆ （王秀峰）， Ｙａｎｇ Ｆ⁃Ｊ
（杨凤娟）． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ＮＯ３
－ ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ ｏｎ
ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ ｉｎ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇ．
Ｐｌａｎｔ Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ｆｅｒｔｉｌｉｚｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ （植物营养与肥料
学报）， ２００８， １４（６）： １１１０－１１１７ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１７］　 Ｂｅａｌｅ ＳＩ． Ｅｎｚｙｍｅｓ ｏｆ ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌｌ ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ． Ｐｈｏｔｏｓｙｎ⁃
ｔｈｅｓｉｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， １９９９， ６０： ４３－７３
［１８］　 Ｈａｏ Ｎ⁃Ｂ （郝廼斌）， Ｌｉ Ｔ⁃Ｚ （李桐柱）， Ｚｈａｎｇ Ｑ⁃Ｄ
（张其德）， ｅｔ ａｌ． Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｈｌｏｒｏ⁃
ｐｌａｓｔ ｍｅｍｂｒａｎｅ． Ⅷ． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｉｏｎｓ ｏｎ ｃｈｌｏｒｏ⁃
ｐｈｙｌｌ⁃ｐｒｏｔｅｉｎ ｃｏｍｐｌｅｘ ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｏｆ Ｌｉｂａｔｉｏｎ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ
ｔｈｙｌａｋｏｉｄ． Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃｓ （生物化学与生
物物理学报）， １９８１， １３（４）： ３６５－３７２ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［１９］　 Ｗｕ Ｗ， Ｐｅｔｅｒｓ Ｊ， Ｂｅｒｋｏｗｌｔｚ ＧＡ． Ｓｕｒｆａｃｅ ｃｈａｒｇｅ ｍｅｄｉａ⁃
ｔｅｄ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ Ｍｇ Ｏｎ Ｋ ｆｌｕｘ ａｃｒｏｓｓ ｔｈｅ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｅｎｖｅ⁃
ｌｏｐｅ ａｒｅ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｔｒｏｍａｌ ｐＨ ａｎｄ
ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ． Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ， １９９１， ９７： ５８０－５８７
［２０］　 Ｐｉａｚｚａ ＧＪ， Ｇｉｂｂｓ Ｍ． Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ ｏｆ ａｄｅｎｏｓｉｎｅ ｐｈｏｓｐｈａｔｅｓ
ａｎｄ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｏｎ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｉｎ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔｓ ｆｒｏｍ
ｐｅａｓ， ｓｅｄｕｍ， ａｎｄ ｓｐｉｎａｃｈ． Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ， １９８３，
７１： ６８０－６８７
［２１］　 Ｒａｏ Ｌ⁃Ｈ （饶立华）． Ｐｌａｎｔ Ｍｉｎｅｒａｌ Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ｄｉａｇ⁃
ｎｏｓｔｉｃｓ． Ｂｅｉｊｉｎｇ： Ｃｈｉｎａ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｐｒｅｓｓ， １９９３： ７８－８２
（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［２２］ 　 Ｌｉ Ｙ （李 　 岩）， Ｌｉｕ Ｘ⁃Ｈ （刘星辉）， Ｚｈｕａｎｇ Ｗ⁃Ｍ
（庄卫民）． Ａｄｖａｎｃｅｓ ｉｎ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｎｕｔｒｉｔｉｏｎａｌ ｐｈｙｓｉｏｌｏ⁃
ｇｙ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｆｕｊｉａｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ （福
建农业大学学报）， ２０００， ２９（１）： ７４－ ８０ （ ｉｎ Ｃｈｉ⁃
ｎｅｓｅ）
［２３］　 Ｈｏｒｌｉｔｚ Ｍ， Ｋｌａｆｆ Ｐ． Ｇｅｎｅ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｔｒａｎｓ ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ ｆｕｎｃ⁃
ｔｉｏｎｓ ｏｆ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｆｏｒ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｍＲＮＡ ｓｔａｂｉｌｉｔｙ ｉｎ
ｈｉｇｈｅｒ ｐｌａｎｔｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ， ２０００，
９４３１５期　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 杨全勇等： 亚适温和硝酸盐胁迫对黄瓜幼苗生长及镁吸收的影响　 　 　 　 　 　 　
２７５： ３５６３８－３５６４５
［２４］　 Ｏｈｎｏ Ｔ， Ｇｒｕｎｅｓ Ｌ． Ｐｏｔａｓｓｉｕｍ⁃ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ
ａｆｆｅｃｔｉｎｇ ｎｕｔｒｉｅｎｔ ｕｐｔａｋｅ ｂｙ ｗｈｅａｔ ｆｏｒａｇｅ． Ｓｏｉｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ
Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ Ｊｏｕｒｎａｌ， １９８５， ４５： ６８５－６９０
［２５］　 Ｐｅｉ Ｘ⁃Ｂ （裴孝伯）， Ｚｈａｎｇ Ｆ⁃Ｍ （张福墁）， Ｗａｎｇ Ｌ
（王　 柳）． Ｅｆｆｅｃｔ ｏｆ ｌｉｇｈｔ ａｎｄ ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｏｎ ｕｐｔａｋｅ
ａｎｄ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｎｉｔｒｏｇｅｎ， ｐｈｏｓｐｈｏｒｕｓ ａｎｄ ｐｏｔａｓｓｉｕｍ
ｏｆ ｓｏｌａｒ ｇｒｅｅｎｈｏｕｓｅ ｃｕｃｕｍｂｅｒ． Ｓｃｉｅｎｔｉａ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａ Ｓｉｎｉ⁃
ｃａ （中国农业科学）， ２００２， ３５（１２）： １５１０－１５１３ （ ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［２６］　 Ｒｏｂｂｉｎｓ ＮＳ， Ｐｈａｒｒ ＤＭ． Ｌｅａｆ ａｒｅａ ｐｒｅｄｉｃａｔｉｏｎ ｍｏｄｅｌ ｆｏｒ
ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｆｒｏｍ ｌｉｎｅａｒ ｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔｓ． Ｈｏｒｔｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｓｃｉ⁃
ｅｎｃｅ， １９８７， ２２： １２６４－１２６６
［２７］　 Ｌｉ Ｈ⁃Ｓ （李合生）， Ｓｕｎ Ｑ （孙　 群）， Ｚｈａｏ Ｓ⁃Ｊ （赵世
杰）． Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ
Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ． Ｂｅｉｊｉｎｇ： Ｈｉｇｈｅｒ Ｅｄｕｃａｔｉｏｎ
Ｐｒｅｓｓ， ２０００： １３８－１４２ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［２８］　 Ｄｅｍｍｉｎｇ⁃Ａｄａｍｓ Ｂ， Ａｄａｍｓ ＷＷⅢ． Ｘａｎｔｈｏｐｈｙｌｌ ｃｙｃｌｅ
ａｎｄ ｌｉｇｈｔ ｓｔｒｅｓｓ ｉｎ ｎａｔｕｒｅ： Ｕｎｉｆｏｒｍ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｅｘｃｅｓｓ
ｄｉｒｅｃｔ ｓｕｎｌｉｇｈｔ ａｍｏｎｇ ｈｉｇｈｅｒ ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ． Ｐｌａｎｔａ，
１９９６， １９８： ４６０－４７０
［２９］　 Ｚｈａｎｇ Ｑ⁃Ｋ （张起凯）， Ｙａｏ Ｄ⁃Ｍ （姚冬梅）， Ｌｉｕ Ｌ⁃Ｘ
（刘立行）， ｅｔ ａｌ． Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｃａｌｃｉｕｍ ａｎｄ ｚｉｎｃ ｉｎ
ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｂｙ ｆｌａｍｅ ａｔｏｍｉｃ ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ． Ａｎａ⁃
ｌｙｔｉｃａｌ Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ （分析仪器）， ２００６（２）： ３１－３２ （ ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３０］　 Ｗｕ Ｊ⁃Ｊ （吴俊江）． Ａｔｔｅｎｔｉｏｎ ｔｏ ｎｕｔｒｉｔｉｏｎａｌ ｂａｌａｎｃｅ ｏｆ
ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｓｐａｒｓｅ ｃｒｏｐｓ． Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ＆ Ｃｏｍｐｏｕｎｄ Ｆｅｒｔｉｌ⁃
ｉｚｅｒ （磷肥与复肥）， ２００４， １９（３）： ７４－ ７６ （ ｉｎ Ｃｈｉ⁃
ｎｅｓｅ）
［３１］　 Ｗａｎｇ Ｓ⁃Ｊ （王世济）， Ｊｉ Ｘ⁃Ｊ （季学军）， Ｚｕ Ｃ⁃Ｌ （祖朝
龙）． Ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｓ ｏｆ Ｗａｎｎａｎ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ
ｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ ｉｎ ｔｏｂａｃｃｏ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｎｈｕｉ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｓｃｉ⁃
ｅｎｃｅｓ （安徽农业科学）， ２００７， ３５（２７）： ８５０８ （ｉｎ Ｃｈｉ⁃
ｎｅｓｅ）
［３２］　 Ｗａｎｇ Ｙ⁃Ｊ （王银均）， Ｆｅｎｇ Ｙ⁃Ｆ （冯咏芳）． Ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ
ａｎｄ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｆ ｖｅｇｅｔａｂｌｅ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ ｄｉｓｅａｓｅ．
Ｓｈａｎｇｈａｉ Ｖｅｇｅｔａｂｌｅｓ （上海蔬菜）， ２００７（５）： １０８－１０９
（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３３］　 Ｚｈａｎｇ Ｘ⁃Ｓ （张西森）． Ｈａｚａｒｄｓ ａｎｄ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ ｇｒｅｅｎ⁃
ｈｏｕｓｅ ｔｏｍａｔｏ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ． Ｍｏｄｅｒｎ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ
ａｎｄ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ （现代农业科技）， ２００７（１２）： ７５ （ ｉｎ
Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３４］　 Ｘｉｅ Ｘ⁃Ｙ （谢小玉）， Ｚｏｕ Ｚ⁃Ｒ （邹志荣）， Ｄｅｎｇ Ｘ⁃Ｙ
（邓小勇 ）， ｅｔ ａｌ． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｓｔｒｅｓｓ ａｎｄ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｏｎ ｔｈｅ ｃｏｗｈａｎｄ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｃｈａｒａｃｔｅｒ ｏｆ
ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈｏｎｇｑｉｎｇ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ
（Ｎａｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ） （重庆大学学报：自然科学版），
２００９， ３２（２）： ２２７－２３２ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３５］　 Ｈｕ Ｗ⁃Ｈ （胡文海）， Ｙｕ Ｊ⁃Ｑ （喻景权）． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｌｏｗ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ａｎｄ ｌｏｗ ｌｉｇｈｔ ｏｎ ｔｈｅ ｇｒｏｗｔｈ， ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ
ａｎｄ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｐｌａｎｔｓ． Ｃｈｉｎｅｓｅ
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｅｃｏ⁃Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ （中国生态农业学报），
２００３， １１（３）： ６１－６３ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３６］　 Ｙａｎｇ Ｆ⁃Ｊ （杨凤娟）． Ｓｔｕｄｙ ｏｎ Ｉｎｊｕｒｙ Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ Ｉｎ⁃
ｄｕｃｅｄ ｂｙ ＮＯ３
－ Ｓｔｒｅｓｓ ｔｏ Ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ Ｃｕ⁃
ｃｕｍｂｅｒ （ Ｃｕｃｕｍｉｓ ｓａｔｉｖｕｓ Ｌ．）． ＰｈＤ Ｔｈｅｓｉｓ． Ｔａｉ ’ ａｎ：
Ｓｈａｎｄｏｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ， ２００６ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３７］　 Ｙａｎｇ Ｘ⁃Ｙ （杨晓玉）， Ｈｕ Ｃ⁃Ｃ （胡淳淳）， Ｗａｎｇ Ｘ⁃Ｆ
（王秀峰）， ｅｔ ａｌ． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｎｉｔｒａｔｅ ｓｔｒｅｓｓ ｏｎ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ
ｍｉｎｅｒａｌ ｅｌｅｍｅｎｔ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ． Ｓｈａｎ⁃
ｄｏｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ （山东农业科学）， ２００８， ９
（８）： ６１－６５ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３８］　 Ｐｅｉ Ｘ⁃Ｂ （裴孝伯）， Ｚｈａｎｇ Ｆ⁃Ｍ （张福墁）， Ｇａｏ Ｌ⁃Ｈ
（高丽红）． Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｕｐｔａｋｅ ａｎｄ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ Ｃａ ａｎｄ
Ｍｇ ｏｆ ｓｏｌａｒ ｇｒｅｅｎｈｏｕｓｅ ｃｕｃｕｍｂｅｒ ｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｓｅａｓｏｎ．
Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｕｌｌｅｔｉｎ （中国农学通报），
２００１， １７（６）： ７－１１ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［３９］　 Ｍｅｎｇｅｌ Ｋ， Ｋｉｒｋｂｙ ＥＡ． Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ．
Ｂｅｒｌｉｎ： Ｓｐｒｉｎｇｅｒ， ２００１： ５４１－５５２
［４０］　 Ｄｉｎｇ Ｙ， Ｌｕｏ Ｗ， Ｘｕ Ｇ． Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ
ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ａｎｄ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ａｎｄ ｐｏｔａｓｓｉｕｍ ｉｎ
ｒｉｃｅ． Ａｎｎａｌｓ ｏｆ Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｌｏｇｙ， ２００６， １４９： １１１－１２３
［４１］　 Ｂｅｒｎｓｔｅｉｎ Ｎ， Ｉｏｆｆｅ Ｍ， Ｌｕｒｉａ Ｇ， ｅｔ ａｌ． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ Ｋ ａｎｄ Ｎ
ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ｏｎ ｆｕｎｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｒａｎｕｎｃｕｌｕｓ ａｓｉａｔ⁃
ｉｃｕｓ． Ｐｅｄｏｓｐｈｅｒｅ， ２０１１， ２１： ２８８－３０１
［４２］　 Ｃｈｅｎ Ｚ⁃Ｊ （陈竹君）， Ｚｈａｏ Ｗ⁃Ｙ （赵文艳）， Ｚｈａｎｇ Ｘ⁃
Ｍ （张晓敏）， ｅｔ ａｌ． Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｏｆ ｍａｇｎｅｓｉｕｍ ｄｅｆｉ⁃
ｃｉｅｎｃｙ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ ｗｉｔｈ ｓａｌｔ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ａｎｄ ｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ
ｉｎ ｇｒｅｅｎｈｏｕｓｅ ｓｏｉｌ． Ａｃｔａ Ｐｅｄｏｌｏｇｉｃａ Ｓｉｎｉｃａ （土壤学
报）， ２０１３， ５０（２）： ３８８－３９５ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［４３］　 Ｈｅｒｍａｎｓ Ｃ， Ｖｅｒｂｒｕｇｇｅｎ Ｎ． Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａ⁃
ｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｇ ｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ ｉｎ Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ ｔｈａｌｉａｎａ． Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ
Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｂｏｔａｎｙ， ２００５， ５６： ２１５３－２１６１
［４４］　 Ｆａｒｑｕｈａｒ ＧＤ， Ｓｈａｒｋｅｙ ＴＤ． Ｓｔｏｍａｔａｌ ｃｏｎｄｕｃｔａｎｃｅ ａｎｄ
ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ． Ａｎｎｕａｌ Ｒｅｖｉｅｗ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，
１９８２， ３３： ３１７－３４５
［４５］　 Ｓｈｉ Ｑ⁃Ｈ （史庆华）， Ｚｈｕ Ｚ⁃Ｊ （朱祝军）， Ｑｉａｎ Ｑ⁃Ｑ
（钱琼秋）， ｅｔ ａｌ． Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｉｓｏ⁃ｏｓｍｏｔｉｃ Ｃａ（ＮＯ３） ２ ａｎｄ
ＮａＣｌ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ ｏｎ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｉｎ ｌｅａｖｅｓ ｏｆ ｔｏｍａｔｏ．
Ｐｌａｎｔ Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ａｎｄ Ｆｅｒｔｉｌｉｚｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ （植物营养与肥料
学报）， ２００４， １０（２）： １８８－１９１ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［４６］　 Ｗａｎｇ Ｑ （王　 强）， Ｚｈｏｎｇ Ｘ⁃Ｈ （钟旭华）， Ｈｕａｎｇ Ｎ⁃
Ｒ （黄农荣）， ｅｔ ａｌ． Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｎｉｔｒｏｇｅｎ ｗｉｔｈ ｌｉｇｈｔ ｉｎ
ｔｈｅ ｐｈｏｔｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｔｒａｉｔｓ ａｎｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ ｏｆ ｃａｒｂｏｎ ａｎｄ
ｎｉｔｒｏｇｅｎ ｏｆ ｃｒｏｐ． Ｇｕａｎｇｄｏｎｇ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ （广东
农业科学）， ２００６（２）： ３７－４０ （ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）
作者简介　 杨全勇，男，１９８８年生，硕士研究生． 主要从事设
施蔬菜与无土栽培研究． Ｅ⁃ｍａｉｌ： ｙａｎｇｑｙ０７ｚ３＠ １６３．ｃｏｍ
责任编辑　 张凤丽
０５３１ 应　 用　 生　 态　 学　 报　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 　 ２６卷