全 文 ： 收稿日期：2007-08-15
基金项目：国家自然科学基金（30300244）资助
作者简介：徐彬（1979-），男，山东枣庄人，硕士，从事园林植物与观赏园艺研究。
注：王广东为通讯作者。

花烛苞片离体培养及植株再生(简报)
徐 彬 1，王广东 1，郭维明 1，文方德 2
(1.南京农业大学 园艺学院，江苏 南京 210095；2.珠海市园艺研究所，广东 珠海 519070)
In vitro Culture and Plantlet Regeneration of Spathe of Anthurium andraenum
XU Bin1, WANG Guang-dong1, GUO Wei-ming1, WEN Fang-de2
(1.College of Horticulture, Nanjing Agriculture University，Nanjing 210095, Jiangsu China; 2.Zhuhai Institute of Horticulture，
Zhuhai 519070, Guangdong China)

摘 要：以花烛苞片为外植体进行离体再生体系研究, 结果表明, 改良 Nitsch＋BA 1.0mg/L＋2,4-D 0.4mg/L＋
蔗糖20g/L＋椰汁 15%(V/V)为适宜愈伤组织诱导培养基; 改良Nitsch＋BA 0.25mg/L＋KT0.1mg/L＋蔗糖 20g/L
＋椰汁 15%(V/V)为适宜不定芽分化培养基; 适宜生根壮苗培养基: 改良 Nitsch＋BA 0.25mg/L＋IBA0.2mg/L
＋蔗糖 30g/L＋活性炭 2g/L。 愈伤组织诱导培养 2个月后转入不定芽诱导培养基中, 2个月后不定芽陆续发出。
关键词：花烛；苞片；离体培养；植株再生
中图分类号：Q943.1 文献标识码：B 文章编号：1009-7791(2007)04-0055-01

1 植物材料 花烛(Anthurium andraenum)
2 材料类别 苞片
3 培养条件 （1）愈伤组织诱导培养基：改良 Nitsch＋BA 1.0mg/L＋2,4-D 0.4mg/L＋蔗糖 20g/L＋椰
汁 15%(V/V)；（2）分化培养基：改良 Nitsch＋BA 0.25mg/L＋KT 0.1mg/L＋蔗糖 20g/L＋椰子汁
15%(V/V)；（3）生根壮苗培养基：改良 Nitsch＋BA 0.25mg/L＋IBA 0.2mg/L＋蔗糖 30g/L＋活性炭 2g/L；
pH 5.5；添加 5.5g/L琼脂粉。愈伤组织诱导在黑暗条件中，分化与生根壮苗培养光照 1 500～2 000 lx，
光照时间 16h/d；温度 25～28℃，每月转接一次，愈伤组织诱导培养两个月后转入不定芽诱导培养基
中。2个月后不定芽陆续发出，不定芽长至 1cm高后转入生根壮苗培养基。
4 生长与分化
4.1 愈伤组织诱导 从温室取新展开的花烛苞片，流水冲洗，去除肉穗花序和花梗。在超净工作台上，
75%乙醇浸泡 10s，无菌水冲洗 3次，0.1% HgCl2灭菌 9min，无菌水冲洗 4次。然后切成 0.8cm×0.8cm
小块，转入培养基（1）中暗培养，1个月后可观察到愈伤组织，2个月后转入不定芽诱导培养基。
4.2 不定芽分化 在不定芽诱导培养基中愈伤组织继续增大，光照下培养 2个月后可见不定芽分化。
4.3 生根与壮苗 当分化出的不定芽生长至 1cm以上时，将不定芽团转至培养基（3）中。通过继代培
养，无菌苗数目不断增多，并利用无菌苗侧芽增殖进行快繁。5～10 月，将生长至 2cm高，有 3 条以
上不定根的无菌苗移栽于蛭石、腐熟芦苇末（1﹕1）的混合基质中，成活率达 80%以上。
5 意义与进展 花烛为天南星科花烛属的重要花卉，其总销售量在热带花卉中仅次于兰花。目前，花
烛的繁殖主要通过组织培养方法。花烛的组织培养在 1974 年由 Pierik首次报道。近 20 年来，国内外
有以其叶片、茎尖、茎段、根尖、根段、花序为外植体建立无菌系的报道，但以苞片为外植体建立离
体再生方法尚未见报道。以苞片为外植体诱导不定芽再生，为花烛的离体繁殖提供了新的途径，特别
是在花色、花型出现变异的情况下，可以通过该途径有效保存变异株；同时也为花烛遗传转化提供新
的再生体系。

2007,36(4):55.
Subtropical Plant Science