全 文 ：西北农业学报 ２０１４，２３（２）：１９１－１９７
Ａｃｔａ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｅ Ｂｏｒｅａｌｉ－ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ Ｓｉｎｉｃａ ｄｏｉ：１０．７６０６／ｊ．ｉｓｓｎ．１００４－１３８９．２０１４．０２．０３３
网络出版时间：２０１４－０２－２３
网络出版地址：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｎｋｉ．ｎｅｔ／ｋｃｍｓ／ｄｏｉ／１０．７６０６／ｊ．ｉｓｓｎ．１００４－１３８９．２０１４．０２．０３３．ｈｔｍｌ
不同产地土壤因子与黄顶菊黄酮类成分相关性分析
收稿日期：２０１３－０７－１５ 修回日期：２０１３－０９－１２
基金项目：河北省自然科学基金（Ｃ２０１００００２７３）。
第一作者：李建恒，男，教授，在读博士，从事天然植物有效成分研究。Ｅ－ｍａｉｌ：ｌｉｊｉａｎｈｅｎｇ＠ｈｂｕ．ｃｎ
李建恒１，２，侯力峰１，乔亚君１，贺学礼２
（１．河北大学 药学院，河北保定 ０７１００２；２．河北大学 生命科学学院，河北保定 ０７１００２）
摘 要 分析黄顶菊黄酮类成分与土壤因子的相关性，为黄顶菊的综合利用与防治提供理论依据。以河北省
献县的３个村庄附近黄顶菊样地为研究对象，测定样地土壤养分质量分数及黄顶菊黄酮类成分，利用
ＳＰＳＳ１９．０软件对数据进行多重比较和相关分析。结果显示，速效磷、碱性磷酸酶对黄顶菊地上部分黄酮类成
分的积累显著相关；环境的微小变化会影响黄顶菊黄酮类成分的累积。
关键词 黄顶菊；土壤因子；相关分析
中图分类号 Ｓ５６７ 文献标志码 Ａ 文章编号 １００４－１３８９（２０１４）０２－０１９１－０７
Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｂｅｔｗｅｅｎ Ｓｏｉｌ Ｆａｃｔｏｒｓ ａｎｄ Ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ ｏｆ
Ｆｌａｖｅｒｉａ ｂｉｄｅｎｔｉｓ（Ｌ．）Ｋｕｎｔｚｅ ｉｎ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ Ａｒｅａ
ＬＩ Ｊｉａｎｈｅｎｇ１，２，ＨＯＵ Ｌｉｆｅｎｇ１，ＱＩＡＯ Ｙａｊｕｎ１ ａｎｄ ＨＥ Ｘｕｅｌｉ ２
（１．Ｃｏｌｅｇｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｈｅｂｅｉ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｂａｏｄｉｎｇ Ｈｅｂｅｉ ０７１００２，Ｃｈｉｎａ；
２．Ｃｏｌｅｇｅ ｏｆ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｈｅｂｅｉ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｂａｏｄｉｎｇ Ｈｅｂｅｉ ０７１００２，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ ｏｆ Ｆｌａｖｅｒｉａ ｂｉｄｅｎｔｉｓ（Ｌ．）Ｋｕｎｔｚｅ ａｎｄ ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒｓ
ｍａｙ ｐｒｏｖｉｄｅ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ ｏｆ Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ．Ｔｈｒｅｅ ｓａｍｐｌｅｓ ｏｆ
Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ ｗｅｒｅ ｃｏｌｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｘｉａｎ ｃｏｕｎｔｙ ｉｎ Ｈｅｂｅｉ ｐｒｏｖｉｎｃｅ ｔｏ ｍｅａｓｕｒｅ ｔｈｅ ｎｕｔｒｉｅｎｔ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｉｎ ｔｈｅ
ｓｏｉｌ ａｎｄ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ ｏｆ Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ．Ｔｈｅ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ ａｎｄ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ｗｅｒｅ ｃｏｎｄｕｃｔｅｄ
ｗｉｔｈ ＳＰＳＳ１９．０ｓｏｆｔｗａｒｅ ｐａｃｋａｇｅ．Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｃｏｎｔｅｎｔｓ ｏｆ ａｖａｉｌａｂｌｅ ｐｈｏｓｐｈａｔｅ ａｎｄ ａｌ－
ｋａｌｉｎｅ ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ ｈａｄ ｔｈｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ ｏｆ ａｅｒｉａｌ ｐａｒｔｓ ｏｆ
Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ．Ｔｈｅ ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ ｏｆ Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ ｗａｓ ａｆｆｅｃｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ ｃｈａｎｇｅ．
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ Ｆｌａｖｅｒｉａ ｂｉｄｅｎｔｉｓ（Ｌ．）Ｋｕｎｔｚｅ；Ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒｓ；Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ
黄顶菊［Ｆｌａｖｅｒｉａ ｂｉｄｅｎｔｉｓ（Ｌ．）Ｋｕｎｔｚｅ］是
菊科黄顶菊属（Ｆｌａｖｅｒｉａ）的一年生草本植物［１］。
黄顶菊作为一种入侵植物，在中国多个省份均有
发现，它具有极强的生态适应性和生长可塑性［２］，
严重挤压入侵地植物的生存空间，对生态环境及
经济发展造成巨大危害［３］。在中国，黄顶菊的研
究主要集中在形态特征、发生特点、危害和防除对
策以及杀虫、除草活性等方面［４］，黄顶菊药用成分
研究相对较少。Ｂａｒｄóｎ等［５］、闫宏等［６］和芦站根
等［７］研究发现，黄顶菊的提取物对部分真菌和细
菌有抑制作用；Ｆｅｒｒａｒｏ等［８］对菊科植物进行药用
筛选发现，黄顶菊具有一定的抗病毒活性；此外，
Ｇｕｇｌｉｅｌｍｏｎｅ等［９］分离得到的黄酮类物质（如
ＱＴＳ）还具良好的抗凝血活性；另有文献报道［１０］，
黄顶菊为阿根廷传统药材，具有退热、防腐抗菌、
通经、助消化等功效。综上所述，黄顶菊具有较高
的潜在药用价值，妥善的开发和利用，可将其变废
为宝。
土壤是陆地生态系统不可或缺的组成部分。
土壤养分直接影响植物的生长，及代谢产物的产
生与积累，对中药材品质有较大影响［１１－１３］。目前
有关土壤因子状况差异与黄顶菊黄酮类成分间相
关性分析的文献报道较少。本研究通过对不同样
地黄顶菊黄酮类成分以及土壤因子进行测定，所
测数据用于多重比较和相关分析，揭示黄顶菊生
长地土壤因子与黄顶菊黄酮类成分间的关系，为
进一步研究和开发黄顶菊提供理论依据。
１ 材料与方法
１．１ 仪器和试剂
岛津 ＬＣ－２０Ａ 分 析 型 高 效 液 相 色 谱 仪
（ＨＰＬＣ）系统（日本东京理化器械株式会社），
ＡＴ－９５０型柱温箱（天津奥特赛斯仪器有限公
司），Ａｐｏｌｏ Ｃ１８（１５０ｍｍ×４．６ｍｍ），Ｎ１１００型
旋转蒸发仪（上海爱郎仪器有限公司），ＫＨ－２５０
型超声波清洗器（江苏昆山禾创超声仪器有限公
司），ＤＺＫＷ－４型电热恒温水浴锅（北京中兴伟业
仪器有限公司），ＡＬ１０４型电子天平［梅特勒－托利
多仪器（上海）有限公司］等。
甲醇为色谱纯（科密欧化学试剂有限公司，批
号２０１２０４０７），超纯水，其他试剂均为分析纯。
１．２ 样品采集
献县位于河北省东南部，地处东经１１５°５０′～
１１６°３０′、北纬３８°３′～３８°２２′，属暖温带大陆性季
风气候，四季分明。年平均气温１２．２℃，年降水
量５６０ｍｍ，年日照２ ８００ｈ，无霜期４ ５３６ｈ（即
１８９ｄ）。全境平均海拔１２ｍ，地势平坦，土层深
厚，土质多为冲积层淤积壤土。
２０１１年９月，从河北献县陈庄、陌南、商林乡
取样，每个样地随机选取５株生育正常无损伤的
黄顶菊，记录并编号后放入水桶带回实验室。采
集黄顶菊根围０～３０ｃｍ土层土壤样品约１ｋｇ，同
时在无黄顶菊生长的空地采集对照土样，记录并
编号后带回实验室。植物地上部分用于药用成分
分析，土样用于土壤理化性质测定。
１．３ 黄顶菊黄酮类成分提取和分离
用柔软的湿布将取回的新鲜黄顶菊样品擦
净，然后将样品置于烘箱，在１０５℃烘１５ｍｉｎ后，
立即在７５℃烘至质量恒定。将黄顶菊地上部分全
草粉碎，然后过４０目筛，在阴暗干燥处保存，待用。
选用回流提取法，提取黄顶菊中的总黄酮。
设计４因素（乙醇体积分数、料液比、回流时间、回
流次数）３水平的正交试验（表１），优化回流提取
工艺。
查阅相关文献，确定黄顶菊总黄酮提取物
ＨＰＬＣ分离条件，并将分离条件应用于所有样地
的供试品。
１．４ 土壤理化性质测定
将土壤样品置于干燥、洁净、通风的室内阴
干。捡去动植物残体、结核后过２ｍｍ筛，将直径
小于２ｍｍ的土壤装入密封袋，０～４℃保存，用
于土壤理化性质测定。
土样的ｐＨ用电位法测定［１４］；土壤有机质用
重铬酸钾氧化法测定［１４］；土壤碱解氮用碱解扩散
法测定［１４］；土壤速效磷用碳酸氢钠浸提－钼锑抗
比色法测定［１４］；脲酶活性是指每克土样３８℃培
养３ｈ催化尿素分解产生氨的量，用 Ｈｏｆｆｍａｎｎ
与Ｔｅｉｃｈｅｒ比色法测定［１５］；磷酸酶活性以每小时
每克土催化生成的对硝基苯酚量表示，用 Ｔａｂａ－
ｔａｂａｉ和Ｂｒｅｍｎｅｒ法测定［１５］。
１．５ 数据处理
用Ｅｘｃｌｅ和ＳＰＳＳ １９．０软件对数据进行统计
分析。
２ 结果与分析
２．１ 黄顶菊黄酮类成分提取结果
提取率受各因素影响不等，通过正交试验全
面考察影响因素。综合表２和表３知，各因素对
浸膏收率的影响顺序为回流次数＞乙醇体积分数
＞料液比＞回流时间，确定最佳工艺条件为体积
分数８０％的乙醇，料液比１∶２０（ｍ／Ｖ），每次回流
７５ｍｉｎ，回流２次。黄顶菊干粉浸膏收率可达
１７．６２％。
表１ 黄顶菊黄酮类物质提取的试验因素与水平
Ｔａｂｌｅ １ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｆａｃｔｏｒｓ ａｎｄ ｌｅｖｅｌｓ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ ｆｒｏｍＦ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ
水 平
Ｌｅｖｅｌ
乙醇体积分数／％
Ｖｏｌｕｍｅ ｆｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｅｔｈａｎｏｌ
料液比（ｍ∶Ｖ）
Ｓｏｌｉｄ－ｌｉｑｕｉｄ ｒａｔｉｏ
回流时间／ｍｉｎ
Ｒｅｆｌｕｘ ｔｉｍｅ
回流次数
Ｒｅｆｌｕｘ ｔｉｍｅｓ
１ ７０ １∶１０ ４５ １
２ ８０ １∶１５ ６０ ２
３ ９０ １∶２０ ７５ ３
·２９１· 西 北 农 业 学 报 ２３卷
表２ 正交试验结果
Ｔａｂｌｅ ２ Ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｒｅｓｕｌｔｓ
编 号
Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔ ｃｏｄｅ
因素Ｆａｃｔｏｒ
乙醇体积分数
Ｖｏｌｕｍｅ ｆｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｅｔｈａｎｏｌ
料液比
Ｓｏｌｉｄ－ｌｉｑｕｉｄ
ｒａｔｉｏ
回流时间
Ｒｅｆｌｕｘ ｔｉｍｅ
回流次数
Ｒｅｆｌｕｘ ｔｉｍｅｓ
浸膏收率／％
Ｅｘｔｒａｃｔ ｙｉｅｌｄ
１ １ １ １ １ ９．３１
２ １ ２ ２ ２ １５．０４
３ １ ３ ３ ３ １５．２４
４ ２ １ ２ ３ １４．８２
５ ２ ２ ３ １ １１．８４
６ ２ ３ １ ２ １７．６２
７ ３ １ ３ ２ １３．７３
８ ３ ２ １ ３ １３．６３
９ ３ ３ ２ １ ９．７２
ｋ１ １３．１９７ １２．６２０ １３．５２０ １０．２９０
ｋ２ １４．７６０ １３．５０３ １３．１９３ １５．４６３
ｋ３ １２．３６０ １４．１９３ １３．６０３ １４．５６３
Ｒ ２．４００ １．５７３ ０．４１０ ５．１７３
表３ 方差分析
Ｔａｂｌｅ ３ Ｖａｒｉａｎｃｅ ｏｆ ａｎａｌｙｓｉｓ
方差来源
Ｓｏｕｒｃｅ
偏差平方和
Ｓｕｍ ｏｆ ｓｑｕａｒｅ
ｏｆ ｄｅｖｉａｔｉｏｎｓ
自由度
Ｄｅｇｒｅｅ ｏｆ
ｆｒｅｅｄｏｍ
均方
Ｍｅａｎ ｓｑｕａｒｅ
Ｆ值
Ｆｖａｌｕｅ
显著性
Ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ
Ａ ８．９０４ ２ ４．４５２ ３１．５７４ ＊
Ｂ ３．７３２ ２ １．８６６ １３．２３４ ＊
Ｃ ０．２８２ ２ ０．１４１ １
Ｄ ４５．８３５ ２ ２２．９１８ １６２．５３５ ＊＊
误差Ｅｒｒｏｒ ０．２８２ ２
注：Ｆ０．１０（２，２）＝９．０，＊ 表示显著，＊＊表示极显著。
Ｎｏｔｅ：Ｆ０．１０（２，２）＝９．０，＊ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ，＊＊ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｈｉｇｈｌｙ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ．
２．２ 液相分离结果
黄顶菊提取物的部分成分极性极为相似，易
出现堆叠现象，较难分离。降低流动相初始洗脱
强度以及梯度陡度，结果黄酮类成分的保留时间
增加，目标峰的分离度无较大改善。另外试验过
程中发现黄顶菊提取物对温度变化较敏感，在
１０、１５、２０、３０和３５ ℃ ５个温度下研究表明，
１０℃时目标峰的分离度分别为１．２５和１．２３，较
之前有较大改善。最终确定色谱分离条件为色谱
柱Ａｐｏｌｏ Ｃ１８（１５０ｍｍ×４．６ｍｍ），流动相Ａ为
甲醇溶液，Ｂ为体积分数０．０５％磷酸水溶液，洗
脱梯度（０～８ｍｉｎ，φ＝６５％Ｂ→φ＝５５％Ｂ；８～２５
ｍｉｎ，φ＝５５％Ｂ→φ＝５０％Ｂ；２５～３０ｍｉｎ，φ＝５０％
Ｂ→φ＝４５％Ｂ；３０～５０ｍｉｎ，φ＝４５％Ｂ；５０．０１～
５５．０１ｍｉｎ，φ＝６５％Ｂ），流速１．０ｍＬ／ｍｉｎ，检测
波长３６０ｎｍ，柱温１０℃。检测分离得到５种物
质，１号峰为万寿菊素糖苷，２号峰为槲皮素糖苷，
３号峰为异鼠李素硫酸酯，４号峰为６－甲氧基山
奈酚糖苷，５号峰为紫云英苷（图１）。
２．３ 不同产地黄顶菊共有峰峰面积比较
将优化后的液相条件应用于不同样地的黄顶
菊粗品，定性分析表明，黄顶菊中共有峰峰面积有
较大差别（表４）。
采用ｏｎｅ－ｗａｙ ＡＮＯＶＡ对不同样地黄顶菊
共有峰进行多重比较（表５），结果显示，４号物质
在３个样地间无显著差异，陈庄和陌南峰面积接
近，商林样地较低。陌南的２、３、５号物质峰面积
均显著大于其他两地，而就其他两地相比较，陈庄
的２号物质小于商林，而３、５号物质均大于商林。
商林的１号物质显著小于其他样地，陈庄与陌南
间无显著差异，但陌南要高于陈庄。说明，不同产
地同种植物间的相同成分存在一定的差异。由于
取样地较接近，这种情况的产生，极有可能与土壤
因子差异有关。
２．４ 土壤理化性质
２．４．１ 空白样地土壤因子 由表６可知，９月份
·３９１·２期 李建恒等：不同产地土壤因子与黄顶菊黄酮类成分相关性分析
陌南样地ｐＨ 最高，为７．５６，其他样地ｐＨ 均较
低。陈庄空白样地土壤有机碳质量分数为５６．８０
ｍｇ·ｇ－１，较其他两地高。陈庄和陌南样地土壤
速效磷质量分数差异不明显，商林样地较低，为
１．３８μｇ·ｇ
－１。陈庄样地土壤碱解氮质量分数最
低，为 １８．７３ μｇ·ｇ
－１；商 林 样 地 最 高，为
５１．１７μｇ·ｇ
－１。陈庄样地土壤脲酶活性最高，为
２４．１３μｇ·ｇ
－１·ｈ－１，其次是陌南，商林最低。土
壤碱性磷酸酶活性以陈庄样地为最低，为７７．５０
μｇ·ｇ
－１·ｈ－１，其他两样地无较大差别；土壤酸
性磷酸酶活性也是以陈庄样地为最低，为６９．８５
μｇ·ｇ
－１·ｈ－１，与其他两地有较大差别。３个样
地无黄顶菊生长的土地，本身也有一定差别，可能
与环境的微小变化有关。
２．４．２ 黄顶菊样地土壤因子 由表７可知，３个
样地土壤间存在一定差异。黄顶菊根围土壤ｐＨ
以陈庄样地最高，为７．７８，与ｐＨ 最低的商林样
地有显著差异，而陈庄和商林样地与陌南样地均
无显著差异。土壤有机碳质量分数以陈庄样地最
大，为４３．３７ｍｇ·ｇ－１；商林样地次之，为４２．０３
ｍｇ·ｇ－１；陌南样地最小，为３９．２４ｍｇ·ｇ－１，３个
１．万寿菊素糖苷 Ｐａｔｉｎｌｅｔｉｎ－３－Ｏ－ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ；２．槲皮素糖苷
Ｑｕｅｒｃｅｔｉｎ－３－Ｏ－ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ；３．异鼠李素硫酸酯 Ｉｓｏｒｈａｍｎｅｔｉｎ－３－
ｓｕｌｐｈａｔｅ；４．６－甲氧基山奈酚糖苷 ６－ｍｅｔｈｏｘｙ－ｋａｅｍｐｆｅｒｏｌ－３－Ｏ－
ｇｌｕｃｏｓｉｄｅ；５．紫云英苷 Ａｓｔｒａｇａｌｉｎ
图１ １０℃时黄顶菊提取物的ＨＰＬＣ谱图
Ｆｉｇ．１ ＨＰＬＣ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｍｓ ａｂｏｕｔ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｓ
ｆｒｏｍＦ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ ａｔ １０℃
表４ 不同黄顶菊样品主要共有峰蜂面积
Ｔａｂｌｅ ４ Ｔｈｅ ｄａｔｅ ｏｆ ｃｏｍｍｏｎ ｐｅａｋ ａｒｅａｓ ａｂｏｕｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｓａｍｐｌｅｓ ｏｆ Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ
峰面积
Ｐｅａｋ ａｒｅａ
陈庄Ｃｈｅｎｚｈｕａｎｇ
重复１
Ｒｅｐｅａｔ １
重复２
Ｒｅｐｅａｔ ２
重复３
Ｒｅｐｅａｔ ３
陌南 Ｍｏｎａｎ
重复１
Ｒｅｐｅａｔ １
重复２
Ｒｅｐｅａｔ ２
重复３
Ｒｅｐｅａｔ ３
商林Ｓｈａｎｇｌｉｎ
重复１
Ｒｅｐｅａｔ １
重复２
Ｒｅｐｅａｔ ２
重复３
Ｒｅｐｅａｔ ３
峰面积１Ｐｅａｋ ａｒｅａ １ ４９６ ３４５ ５５９ ８１８ ５７３ ９４４ ５９５ １８５ ５３１ ０３０ ６７４ ５３７ ４１０ ９２８ ４５３ ０８６ ４２７ ２９６
峰面积２Ｐｅａｋ ａｒｅａ ２ ２６６ １１７ ３１２ ０６７ ２６９ ４７７ ５４２ ６２３ ４７５ １４８ ６３７ ９５７ ３０５ ２２８ ３５１ ３０３ ３０９ ５４８
峰面积３Ｐｅａｋ ａｒｅａ ３ ４７８ ８６６ ５０５ ８８８ ５２７ ９９０ １ ０５５ ４１８ ９６８ ５８４ １ １４７ ３７７ ４５７ ５０２ ５０７ ７７９ ４９６ ５２９
峰面积４Ｐｅａｋ ａｒｅａ ４ ２１５ １６１ ２２７ ３４３ １９３ ８９６ ２０４ ２７５ １７９ ７１７ ２５４ ０２４ １５２ １３１ １７６ ４４７ １５７ ０５３
峰面积５Ｐｅａｋ ａｒｅａ ５ １ ２０７ ８４４ １ ２９１ ４７１ １ ３７６ ３１６ １ ８４５ ４７６ １ ６６７ ２４９ ２ ０２５ ０５８ １ ０８２ ００７ １ ２２６ ７８８ １ ２６１ １５７
表５ 不同产地黄顶菊共有峰峰面积多重比较
Ｔａｂｌｅ ５ Ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ａｂｏｕｔ ｃｏｍｍｏｎ ｐｅａｋ ａｒｅａｓ ｏｆ Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ａｒｅａ
样地
Ｓｉｔｅ
峰面积１
Ｐｅａｋ ａｒｅａ １
峰面积２
Ｐｅａｋ ａｒｅａ ２
峰面积３
Ｐｅａｋ ａｒｅａ ３
峰面积４
Ｐｅａｋ ａｒｅａ ４
峰面积５
Ｐｅａｋ ａｒｅａ ５
陈庄Ｃｈｅｎｚｈｕａｎｇ ５４３ ３６９．００ａ ２８２ ５５３．６７ｂ ５０４ ２４８．００ｂ ２１２ １３３．３３ａ １ ２９１ ８７７．００ｂ
陌南 Ｍｏｎａｎ ６００ ２５０．６７ａ ５５１ ９０９．３３ａ １ ０５７ １２６．３３ａ ２１２ ６７２．００ａ １ ８４５ ９２７．６７ａ
商林Ｓｈａｎｇｌｉｎ ４３０ ４３６．６７ｂ ３２２ ０２６．３３ｂ ４８７ ２７０．００ｂ １６１ ８７７．００ａ １ １８９ ９８４．００ｂ
注：同列数据后不同字母表示样地间差异显著（Ｐ＜０．０５）。表７同。
Ｎｏｔｅ：Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｅｔｔｅｒｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｌｕｍｎ ｍｅａｎ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｍｏｎｇ ｓａｍｐｌｅｓ（Ｐ＜０．０５）．Ｔｈｅ ｓａｍｅ ａｓ Ｔａｂｌｅ ７．
表６ 空白样地土壤因子
Ｔａｂｌｅ ６ Ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒｓ ｏｆ ｔｈｅ ｂｌａｎｋ ｓａｍｐｌｅ
空白样地
Ｂｌａｎｋ ｓｉｔｅ ｐＨ
ｗ（有机碳）／
（ｍｇ·ｇ－１）
Ｏｒｇａｎｉｃ ｃａｒｂｏｎ
ｗ（速效磷）／
（μｇ·ｇ－１）
Ａｖａｉｌａｂｌｅ Ｐ
ｗ（碱解氮）／
（μｇ·ｇ－１）
Ａｖａｉｌａｂｌｅ Ｎ
脲酶活性／
（μｇ·ｇ－１·ｈ－１）
Ｕｒｅａｓｅ
碱性磷酸酶活性／
（μｇ·ｇ－１·ｈ－１）
Ａｌｋａｌｉｎｅ
ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ
酸性磷酸酶活性／
（μｇ·ｇ－１·ｈ－１）
Ａｃｉｄ
ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ
陈庄Ｃｈｅｎｚｈｕａｎｇ ７．１６ ５６．８０ １．５１ １８．７３ ２４．１３ ７７．５０ ６９．８５
陌南 Ｍｏｎａｎ ７．５６ ４３．２４ １．５７ ４６．６２ １９．２３ ９２．７１ ８９．３９
商林Ｓｈａｎｇｌｉｎ ７．２４ ５０．７３ １．３８ ５１．１７ １７．０５ ９７．０１ ９５．１７
·４９１· 西 北 农 业 学 报 ２３卷
样地间无显著差异。土壤速效磷质量分数以商林
样地最高，为２．５２μｇ·ｇ
－１，显著高于陈庄样地，
而陈庄和商林样地与陌南样地均无显著差异。３
个样地土壤碱解氮质量分数存在显著差异，其中，
商林样地最高，为７０．８９μｇ·ｇ
－１；陈庄最低，为
３６．６５μｇ·ｇ
－１。土壤脲酸活性以陈庄样地最
高，为３２．８３μｇ·ｇ
－１·ｈ－１。３样地间无显著差
异。土壤碱性磷酸酶活性以商林样地最高，为
８１．０３μｇ·ｇ
－１·ｈ－１；陈庄样地最低，为４０．１７
μｇ·ｇ
－１·ｈ－１，且其土壤碱性磷酸酶活性显著低
于其他样地。土壤酸性磷酸酶与碱性磷酸酶情况
类似，以商林样地最高，为８９．１３μｇ·ｇ
－１·ｈ－１；
陈庄样地最低，为６０．３６μｇ·ｇ
－１·ｈ－１，其中陈
庄样地与其他样地间差异显著，陌南样地与商林
样地间无显著差异。
２．４．３ 空地与样地土壤因子比较 由表８可知，
陈庄和商林黄顶菊样地土壤ｐＨ都显著大于空白
样地，陌南样地也大于空白样地，但不存在显著差
异。陈庄和商林黄顶菊样地土壤有机质质量分数
都显著小于空白样地，陌南样地也小于空白样地，
但无显著性差异。陈庄、陌南和商林３样地土壤
速效磷质量分数高于空白样地，其中，仅陌南样地
达到显著水平。３样地土壤碱解氮质量分数均显
著高于空白样地。３个黄顶菊样地土壤脲酶活性
均显著高于空白样地，但仅陌南样地达到显著水
平。３个黄顶菊样地碱性磷酸酶活性均显著低于
空白样地。陌南黄顶菊样地的酸性磷酸酶活性显著
低于空白样地，陈庄与商林样地均无显著差异。
土壤是陆地生态系统不可或缺的组成部分。
土壤养分直接影响黄顶菊的生长及代谢产物的积
累。本研究选取具代表性的土壤因子，可一定程
度反映土壤的肥力状况。由研究结果可知，黄顶
菊样地ｐＨ、速效磷河碱解氮质量分数及脲酶活
性均高于空白样地，可能是由于动植物残体在分
解过程中向土壤中释放了营养物质，亦有可能有
些许的肥料被人为用于该土壤。土壤有机碳是植
物生长所需氮和磷的重要来源，另外，其还可以提
高土壤保肥性和缓冲性等特性，是评价土壤肥力
高低的一个重要指标，黄顶菊样地与空白样地相
比有机碳质量分数下降，其中，陈庄和商林黄顶菊
表７ 不同黄顶菊样地土壤因子
Ｔａｂｌｅ ７ Ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒｓ ｏｆ Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ’ｓａｍｐｌｅ
空白样地
Ｂｌａｎｋ ｓｉｔｅ ｐＨ
ｗ（有机碳）／
（ｍｇ·ｇ－１）
Ｏｒｇａｎｉｃ
ｃａｒｂｏｎ
ｗ（速效磷）／
（μｇ·ｇ－１）
Ａｖａｉｌａｂｌｅ Ｐ
ｗ（碱解氮）／
（μｇ·ｇ－１）
Ａｖａｉｌａｂｌｅ Ｎ
脲酶活性／
（μｇ·ｇ－１·ｈ－１）
Ｕｒｅａｓｅ
碱性磷酸酶活性／
（μｇ·ｇ－１·ｈ－１）
Ａｌｋａｌｉｎｅ
ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ
酸性磷酸酶活性／
（μｇ·ｇ－１·ｈ－１）
Ａｃｉｄ
ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ
陈庄Ｃｈｅｎｚｈｕａｎｇ ７．７８ａ ４３．３７ａ １．７３ｂ ３６．６５ｃ ３２．８３ａ ４０．１７ｂ ６０．３６ｂ
陌南 Ｍｏｎａｎ ７．６３ａｂ ３９．２４ａ ２．１９ａｂ ５４．７０ｂ ２７．５１ａ ６９．３６ａ ７９．５０ａ
商林Ｓｈａｎｇｌｉｎ ７．５１ｂ ４２．０３ａ ２．５２ａ ７０．８９ａ ２６．２２ａ ８１．０３ａ ８９．１３ａ
均值 Ｍｅａｎ ｖａｌｕｅ ７．６４ ４１．５５ ２．１５ ５４．０８ ２８．８５ ６３．５２ ７６．３３
表８ 空白样地与黄顶菊样地土壤因子比较
Ｔａｂｌｅ ８ Ｔｈｅ ｃｏｎｔｒａｓｔ ｏｆ ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｂｌａｎｋ ｓａｍｐｌｅ ａｎｄ Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ’ｓａｍｐｌｅ
样地
Ｓｉｔｅ
组别
Ｇｒｏｕｐ
土壤因子Ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒ
ｐＨ
ｗ（有机碳）／
（ｍｇ·ｇ－１）
Ｏｒｇａｎｉｃ
ｃａｒｂｏｎ
ｗ（速效磷）／
（μｇ·ｇ－１）
Ａｖａｉｌａｂｌｅ Ｐ
ｗ（碱解氮）／
（μｇ·ｇ－１）
Ａｖａｉｌａｂｌｅ Ｎ
脲酶活性／
（μｇ·ｇ－１·ｈ－１）
Ｕｒｅａｓｅ
碱性磷酸
酶活性／
（μｇ·ｇ－１·ｈ－１）
Ａｌｋａｌｉｎｅ
ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ
酸性磷酸
酶活性／
（μｇ·ｇ－１·ｈ－１）
Ａｃｉｄ
ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ
陈庄Ｃｈｅｎｚｈａｎｇ空白Ｂｌａｎｋ ７．１６ｂ ５６．８０ａ １．５１ａ １８．７３ｂ ２４．１４ａ ７７．５１ａ ６９．８５ａ
黄样Ｓａｍｐｌｅ ７．７８ａ ４３．３７ｂ １．７３ａ ３６．６５ａ ３２．８３ａ ４０．１７ｂ ６０．３６ａ
陌南 Ｍｏｎａｎ 空白Ｂｌａｎｋ ７．５６ａ ４３．２４ａ １．５７ｂ ４６．６２ｂ １９．２３ｂ ９２．７１ａ ８９．３９ａ
黄样Ｓａｍｐｌｅ ７．６３ａ ３９．２４ａ ２．５２ａ ５４．７０ａ ２７．５１ａ ６９．３６ｂ ７９．５０ｂ
商林Ｓｈａｎｇｌｉｎ 空白Ｂｌａｎｋ ７．２４ｂ ５０．７３ａ １．３８ｂ ５１．１７ｂ １７．０５ａ ９７．０１ａ ９５．１７ａ
黄样Ｓａｍｐｌｅ ７．５１ａ ４２．０３ｂ ２．１９ａ ７０．８９ａ ２６．２２ａ ８１．０３ｂ ８９．１３ａ
注：同列数据后不同字母表示黄顶菊样地土壤因子和空地土壤因子间差异显著（Ｐ＜０．０５）。
Ｎｏｔｅ：Ｔｈｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ａｌｐｈａｂｅｔｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｏｌｕｍｎ ｍｅａｎｓ ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒｓ ａｒｅ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｂｅｔｗｅｅｎ ｂｌａｎｋ ｓａｍｐｌｅ ａｎｄ Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ’ｓ
ｓａｍｐｌｅ（Ｐ＜０．０５）．
·５９１·２期 李建恒等：不同产地土壤因子与黄顶菊黄酮类成分相关性分析
样地土壤有机质质量分数均显著小于空白样地，
黄顶菊的入侵使土壤贫瘠。土壤酶主要来源于土
壤动物、植物根系和微生物的细胞分泌物以及残
体的分解物，是一类具有高度催化作用的蛋白质，
在土壤生态系统里的各种生物化学反应中发挥重
要作用。土壤酶活性影响生物化学反应的方向及
相对强度的同时可间接反映具体物质在土壤中的
转化情况。脲酶可直接参与转化土壤中含氮有机
化合物，其质量分数高低与土壤含氮量密切相关，
本研究中碱解氮质量分数及脲酶活性均高于空白
样地很好的印证这一点。磷酸酶可以将土壤环境
中最难移动和最难被利用的有机磷化合物转化成
可以被植物直接利用的速效磷，低磷的状态会刺
激土壤磷酸酶活性的增加，这与本研究中黄顶菊
样地速效磷质量分数高于空白样地，而磷酸酶活
性均小于空白样地的结果相一致。土壤酸性磷酸
酶活性大于碱性磷酸酶且差距逐渐变大，这可能
与ｐＨ增加使碱性磷酸酶活性增强及其在磷的转
化过程中起主导作用有关。
２．５ 土壤因子与黄顶菊黄酮类成分相关性
黄顶菊中黄酮类成分与土壤不同因子间相关
性分析表明（表９），速效磷质量分数与峰面积２、
３、５均显著正相关，相关系数分别为 ０．７０１、
０．６７０、０．６８１，其他土壤因子与峰面积２、３、５均未
达显著水平。碱性磷酸酶活性与峰面积１、４均显
著负相关，相关系数分别为－０．７４０、－０．７７７，其
他土壤因子与峰面积１、４均未达显著水平。由此
可见，速效磷与碱性磷酸酶对黄顶菊黄酮类成分
的积累有显著作用。
表９ 土壤因子与黄顶菊黄酮类成分的相关性
Ｔａｂｌｅ ９ Ｔｈｅ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ ｏｆ Ｆ．ｂｉｄｅｎｔｉｓ ａｎｄ ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒｓ
ｐＨ
有机碳
Ｏｒｇａｎｉｃ ｃａｒｂｏｎ
速效磷
Ａｖａｉｌａｂｌｅ Ｐ
碱解氮
Ａｖａｉｌａｂｌｅ Ｎ
脲酶
Ｕｒｅａｓｅ
碱性磷酸酶
Ａｌｋａｌｉｎｅ
ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ
酸性磷酸酶
Ａｃｉｄ
ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ
峰面积１Ｐｅａｋ ａｒｅａ １ ０．２２０ －０．０１０ ０．３４２ －０．５１１ ０．２１３ －０．７４０＊ －０．１８８
峰面积２Ｐｅａｋ ａｒｅａ ２ －０．２０６ －０．２０８ ０．７０１＊ ０．１６５ －０．２１２ －０．１３７ ０．３１９
峰面积３Ｐｅａｋ ａｒｅａ ３ －０．０８８ －０．２６５ ０．６７０＊ ０．０１４ －０．０９４ －０．２０９ ０．１８２
峰面积４Ｐｅａｋ ａｒｅａ ４ ０．４８９ ０．１０１ －０．０３８ －０．６１７ ０．０３３ －０．７７７＊ －０．４４０
峰面积５Ｐｅａｋ ａｒｅａ ５ －０．０７３ －０．２２２ ０．６８１＊ －０．０７９ ０．０５９ －０．３４４ ０．１３７
注：＊表示在０．０５水平显著相关。
Ｎｏｔｅ：＊ ｍｅａｎｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ａｔ ０．０５ｌｅｖｅｌ．
３ 讨 论
黄顶菊作为一种入侵植物，近年来在中国大
面积繁殖，对生物多样性以及生态系统平衡产生
较大影响。但同时黄顶菊具有较高的潜在药用价
值，如加以合理研究开发，对改变现有的不利状态
具有较大意义。
土壤在陆地生态系统中占据重要位置，为植
物生长提供重要的营养物质，土壤因子的变化对
植物主要化学成分的形成与积累有较大影响。黄
顶菊入侵会与本地土壤间产生交互效应。本研究
发现，黄顶菊地上部分药用成分的积累与土壤速
效磷、碱性磷酸酶活性显著相关。土壤中的磷素
大多来自土壤有机质，土壤全磷包括有机磷和无
机磷２种，且大都以迟效性状态存在。速效磷是
土壤中可被植物吸收磷，是土壤磷素养分供应水
平高低的重要指标。磷酸酶可以将土壤环境中最
难移动和最难被利用的有机磷化合物转化成可以
被植物直接利用的速效磷。磷可以以多种方式参
与黄顶菊体内的各种代谢活动，对其生长发育起
重要的作用，另外磷还具有提高植物的抗逆性和
适应外界环境条件的能力，这与黄顶菊极强的环
境适应特性相吻合。在此研究基础上还需对黄顶
菊主要药用成分指纹图谱的建立，以及药用成分
的积累和磷质量分数关联强度等方面进行进一步
研究和验证。
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ｎａｌ ｐｌａｎｔ：ａｎｔｉｖｉｒａｌ ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ［Ｊ］．Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ
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ｉａ ｂｉｄｅｎｔｉｓ ａｎｄ Ｆｌａｖｅｒｉａ ｈａｕｍａｎｉｉ－ｅｆｆｅｃｔｓ ａｎｄ ｂｉｏａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ
ｓｕｌｐｈａｔｅｄ ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ［Ｍ］／／Ｒｅｃｅｎｔ Ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｉｎ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ
Ｐｌａｎｔｓ．Ｈｏｕｓｔｏｎ：Ｓｃｉ Ｔｅｃｈ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｉｎｃ，２０１０：１－１７．
［１１］ ＷＡＮＧ Ｌｉｌｉ（王利丽），ＺＨＡＮＧ Ｔａｏ（张 涛），ＣＨＥＮ
Ｓｕｉｑｉｎｇ（陈随清）．Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ ｃｈｅｍｉｃａｌ ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ
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Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｆｏｒｍｕｌａｅ（中
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ｃａｒｏｔｅｎｏｉｄ ｏｆ Ｌｙｃｉｕｍ ｂａｒｂａｒｕｍ ｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｒｅｇｉｏｎｓ ｏｆ
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Ｓｈｉｂｏ（李士博），ｅｔ ａｌ．Ｔｈｅ ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ａｎｄ ｇｒａｙ ｃｏｒ－
ｒｅｌａｔｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ｂｅｔｗｅｅｎ Ｂａｎｌａｎｇｅｎ ａｃｔｉｖｅ ｉｎｇｒｅｄｉｅｎｔ ｃｏｎ－
ｔｅｎｔ ａｎｄ ｓｏｉｌ ｆａｃｔｏｒｓ［Ｊ］．Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｕｌｅ－
ｔｉｎ（中国农学通报），２０１２，２８（３０）：１５１－１５４（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ
ｗｉｔｈ Ｅｎｇｌｉｓｈ ａｂｓｔｒａｃｔ）．
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Ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｎ Ｓｏｉｌ（土壤农业化学分析方法）［Ｍ］．Ｂｅｉｊｉｎｇ：Ｃｈｉ－
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［１５］ ＺＨＯＵ Ｌｉｋａｉ（周礼恺）．Ｓｏｉｌ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（土壤酶学）［Ｍ］．
Ｂｅｉｊｉｎｇ：Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｒｅｓｓ，１９８７（ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ）．
·７９１·２期 李建恒等：不同产地土壤因子与黄顶菊黄酮类成分相关性分析