全 文 ：黄蜀葵中活性成分含量测定
李　永，葛兆宏＊，段琼辉，于生兰，李勇军，谈祥宇，王　丹
（江苏农牧科技职业学院，江苏 泰州２２５３００）
摘　要：目的：测定黄蜀葵中主要活性成分的含量。方法：采用硫酸－苯酚法测定多糖的含量，采用分光
光度法测定总黄酮的含量，采用 ＨＰＬＣ法测定槲皮素和金丝桃苷的含量。结果：黄蜀葵中多糖含量为
５．６８％，总黄酮含量为１．５７７　５％，金丝桃苷和槲皮素含量分别为１．１０２％、０．４０４　１％。结论：黄蜀葵中
多糖、总黄酮、金丝桃苷、槲皮素等活性成分含量较高，所选的相应测定方法简便，结果可靠，可作为其质
量控制参考。
关键词：黄蜀葵；活性成分；含量测定；金丝桃苷；槲皮素；多糖；总黄酮
中图分类号：Ｒ２８４．１　　　文献标识码：Ａ　　　文章编号：１６７３－２１９７（２０１４）２２－００１６－０３
收稿日期：２０１４－０９－１７
基金项目：江苏农牧科技职业学院大学生实践创新训练计划项目（２０１３１２８０６０２３Ｘ，２０１４１２８０６０２８Ｘ）
作者简介：李永（１９８０－），男，江苏农牧科技职业学院讲师，研究方向为中药学教育教学与科研。
通讯作者：葛兆宏（１９５４－），男，江苏农牧科技职业学院教授。
Ｃｏｎｔｅｎｔ　Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ａｃｔｉｖｅ　Ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ　ｉｎ　Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｉ　Ｃｏｒｏｌａ
Ｌｉ　Ｙｏｎｇ，Ｇｅ　Ｚｈａｏｈｏｎｇ，Ｄｕａｎ　Ｑｉｏｎｇｈｕｉ，Ｙｕ　Ｓｈｅｎｇｌａｎ，Ｌｉ　Ｙｏｎｇｊｕｎ，Ｔａｎ　Ｘｉａｎｇｙｕ，Ｗａｎｇ　Ｄａｎ
（Ｊｉａｎｇｓｕ　Ａｇｒｉ－ａｎｉｍａｌ　Ｈｕｓｂａｎｄｒｙ　Ｖｏｃａｔｉｏｎａｌ　Ｃｏｌｅｇｅ，Ｔａｉｚｈｏｕ　２２５３００，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｏ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ａｃｔｉｖｅ　ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ　ｉｎ　Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｉ　ｃｏｒｏｌａ．Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｔｈｅ　ｐｈｅｎｏｌμｓｕｌｆｕｒｉｃ　ａｃｉｄ　ｍｅｔｈｏｄ　ｗａｓ　ｅｍ－
ｐｌｏｙｅｄ　ｔｏ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ，ｔｈｅ　ｍｅｔｈｏｄ　ｏｆ　ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｒｙ　ｗａｓ　ｅｍｐｌｏｙｅｄ　ｔｏ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｔｏｔａｌ
ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ＨＰＬＣ　ｗａｓ　ｕｓｅｄ　ｔｏ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｈｙｐｅｒｆｉｎｅ　ａｎｄ　ｑｕｅｒｃｅｔｉｎ．Ｒｅｓｕｌｔｓ：Ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ　ｉｎ
Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｉ　ｃｏｒｏｌａ．ｉｓ　５．６８％，Ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｔｏｔａｌ　ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ　ｉｎ　Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｉ　ｃｏｒｏｌａ．ｉｓ　１．５７７　５％，Ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｈｙｐｅｒｆｉｎｅ　ｉｎ　Ａｂｅｌ－
ｍｏｓｃｈｉ　ｃｏｒｏｌａ．ｉｓ　１．１０２％，Ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｑｕｅｒｃｅｔｉｎ　ｉｎ　Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｉ　ｃｏｒｏｌａ．ｉｓ　０．４０４１％．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎｓ：Ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ａｃｔｉｖｅ　ｃｏｎｓｔｉｔｕ－
ｅｎｔｓ　ｉｎ　Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｉ　ｃｏｒｏｌａ．ｉｓ　ｈｉｇｈｅｒ．Ｔｈｅ　ｍｅｔｈｏｄｓ　ａｒｅ　ｓｉｍｐｌｅ　ａｎｄ　ｃａｎ　ｂｅ　ａｄｏｐｔｅｄ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｑｕａｌｉｔｙ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｏｆ　Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｉ　ｃｏｒｏｌａ．
Ｋｅｙ　Ｗｏｒｄｓ：Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｉ　Ｃｏｒｏｌａ；Ａｃｔｉｖｅ　Ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ；Ｃｏｎｔｅｎｔ　Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ；Ｈｙｐｅｒｆｉｎｅ；Ｑｕｅｒｃｅｔｉｎ；Ｐｏｌｙｓａｃｃｈａｒｉｄｅ；Ｔｏｔａｌ　Ｆｌａｖｏｎｏｉｄｓ
　　黄蜀葵始载于《嘉佑本草》，资源丰富，药用历史十分悠 久，在民间常用于治疗疔疮、腮腺炎、肺热咳嗽等，其根、茎

、
　　（３）流动相系统选择：本实验共考察了甲醇－水、
甲醇－０．１％磷酸、乙腈－０．１％磷酸等度和梯度洗脱，结果
表明采用乙腈－０．１％磷酸梯度洗脱时分离效果较好。
综上所述，本研究建立的同时测定松塔中槲皮素与山
奈酚含量方法结果准确，重复性良好，对云南产几种松塔药
材的质量控制有实际应用价值，为进一步制定松塔药材的
质量标准提供了科学依据。
参考文献：
［１］　中国科学院中国植物志编辑委员会．中国植物志［Ｍ］．第７
卷．北京：科学出版社，１９７８：５２４．
［２］　国家药典委员会．中华人民共和国药典［Ｍ］．第１部．北京：
人民卫生出版社，１９７７：３３４．
［３］　杨鑫，丁怡，孙志浩，等．松塔化学成分的研究［Ｊ］．药学学报，
２００５，４０（５）：４３５－４３７．
［４］　ＦＡＮＧ　Ｍ，ＬＡＮＧ　Ｃ　Ｉ，ＣＨＥＮ　Ｗ　Ｌ，ｅｔ　ａｌ．Ｄｉｔｅｒｐｅｎｏｉｄ　ａｃｉｄｓ
ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｌｅａｖｅｓ　ｏｆ　ａｒｍａｎｄ　ｐｉｎｅ［Ｊ］．Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１９９１，３０
（８）：２７９３－２７９５．
［５］　吕永俊，王士贤，彭芳，等．松果有效成分研究—Ⅵ红松与油
松松塔及松子壳的抗癌活性［Ｊ］．大理学院学报，２００８，７（２）：
１－２．
［６］　ＷＡＴＡＮＡＢＥ　Ｋ，ＭＯＭＯＳＥ　Ｆ，ＨＡＮＤＡ　Ｈ，ｅｔ　ａｌ．Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ
ｂｅｔｗｅｅｎ　ｉｎｆｌｕｅｎｚａ　ｖｉｒｕｓ　ｐｒｏｔｅｉｎｓ　ａｎｄ　ｐｉｎｅ　ｃｏｎｅ　ｓｕｂｓｔａｎｃｅ　ｔｈａｔ
ｉｎｈｉｂｉｔｓ　ｔｈｅ　ｖｉｒｕｓ　ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎｄ　Ｂｉｏｐｈｙｓｉ－
ｃａｌ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，１９９５，２１４（２）：３１８－３２３．
［７］　ＵＮＴＥＮ　Ｓ，ＳＡＫＡＧＡＭＩ　Ｈ，ＫＯＮＮＯ　Ｋ．Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｇｒａｎ－
ｕｌｏｃｙｔｉｃ　ｃｅｌ　ｉｏｄｉｎａｔｉｏｎ　ｂｙ　ｐｉｎｅ　ｃｏｎｅ　ａｎｔｉｔｕｍｏｒ　ｓｕｂｓｔａｎｃｅｓ［Ｊ］．
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ　Ｂｉｏｌｏｇｙ，１９８９，４５（２）：１６８－３７５．
（责任编辑：尹晨茹）
—６１—
叶、花及种子等均可入药，药用最多的部位为花［１］。黄蜀葵
花为锦葵科植物黄蜀葵Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｕｓ　ｍａｎｉｈｏｔ（Ｌ．）Ｍｅｄｉｃ．
的干燥花冠，夏、秋两季花开时采摘，及时干燥即得。其性
甘、寒，归肾、膀胱经，具有清利湿热、消肿解毒的功效，临床
用于湿热壅遏、淋浊水等症的治疗，外治痈疽肿毒、水火烫
伤等［２］。现代研究表明，黄蜀葵的主要化学成分为金丝桃
苷等黄酮类和多糖类成分，对肾炎、心肌损伤、脑缺血损伤
等具有较好的治疗效果［３－５］。江苏苏中药业集团股份有限公
司以黄蜀葵花为主要原料，生产研制的三类新药“黄葵胶
囊”已经上市，用于治疗肾炎、类风湿性关节炎等疾病。该
药疗效确切，市场前景看好，大力促进了江苏省泰州市黄蜀
葵种植业的蓬勃发展，目前在泰州市兴化、泰兴、姜堰、高港
等不同地区均有农户种植。为合理科学地评价黄蜀葵药材
的质量，笔者分别采用分光光度法和高效液相色谱法对泰
州市黄蜀葵花中的活性成分含量进行了测定，以期为该药
材的质量控制方法提供参考。
１　仪器与试药
１．１　仪器
高效液相色谱仪：ＬＣ－２０Ａ高效液相色谱仪（日本岛津，
ＳＰＤ－２１Ａ型紫外检测器，Ｎ２０００色谱工作站）；ＵＮＩＣ　３８０２
双波长紫外－可见分光光度计；ＩＫＡ　ＨＢ１０旋转蒸发仪；
ＨＨ－４数显恒温水浴锅；ＴＤＺ５台式低速离心机；ＢＰ２１１Ｄ电
子天平。
１．２　试药
硫酸、苯酚、亚硝酸钠、硝酸铝、氢氧化钠、磷酸、乙醇等
试剂均为分析纯；市售金丝桃苷（批号：１１１５２１－２０１２０５）对照
品、槲皮素（１０００８１－２００９０７）对照品；无水葡萄糖（批号：
１１０８３３－２０１２０５）；芦丁（ＣＥＧＰ－４Ｌ７０）购自中国食品药品检定
研究院；高效液相所用乙腈为色谱纯，水为超纯水（自制）。
黄蜀葵花药材采收自泰州地区黄蜀葵种植户，经江苏
农牧科技职业学院李勇军副教授鉴定为锦葵科植物黄蜀葵
Ａｂｅｌｍｏｓｃｈｕｓ　ｍａｎｉｈｏｔ（Ｌ．）Ｍｅｄｉｃ．的干燥花冠和花萼。药
材经低温干燥后，粉碎，过筛，得干燥粉末，备用。
２　方法与结果
２．１　黄蜀葵花中多糖含量测定［６］
２．１．１　葡萄糖标准曲线 　 精确称取标准葡萄糖溶液
（０．１ｍｇ／ｍＬ）０．２ｍＬ、０．４ｍＬ、０．６ｍＬ、０．８ｍＬ及１．０ｍＬ置于
容量瓶内，加入相应量的蒸馏水补至２．０ｍＬ，然后加入
５０ｇ／Ｌ苯酚１．０ｍＬ及浓硫酸５．０ｍＬ，迅速摇匀，置于沸水浴
中５ｍｉｎ，后取出冷却至室温。于４８５ｎｍ 波长下测定吸光
值，以２．０ｍＬ水按同样显色操作作为空白。以葡萄糖浓度
为横坐标，以吸光值为纵坐标，绘制标准曲线，得多糖标准
曲线为Ｙ＝１５．６３Ｘ－０．００６，ｒ＝０．９９９　５。结果表明葡萄糖
在０．０１～０．０５ｍｇ／ｍＬ浓度范围内与其吸光度值呈良好的
线性关系。
２．１．２　样品溶液制备　 称取黄蜀葵花粉末适量，置于
５０ｍＬ容量瓶中，加水４０ｍＬ左右，于沸水浴上加热２ｈ，冷却
至室温后补加水至刻度，混匀后，过滤，弃去初滤液，收集余
下滤液供沉淀多糖用。准确吸取滤液５ｍＬ，至于５０ｍＬ离
心管中，加无水乙醇２０ｍＬ，混匀，静置５ｍｉｎ，以３　０００ｒ／ｍｉｎ
离心２０ｍｉｎ。弃去上清液，残渣用水溶解并定容至２５ｍＬ，即
得。
２．１．３　样品含量测定　 取０．５ｍＬ样品溶液置于容量瓶
中，以蒸馏水补至２．０ｍＬ，然后加入５０ｇ／Ｌ苯酚１．０ｍＬ及
浓硫酸５．０ｍＬ，迅速摇匀，置于沸水浴中５ｍｉｎ，取出后流水
中冷却５ｍｉｎ至室温。于４８５ｎｍ波长处测定吸光值，将吸光
度值代入葡萄糖标准曲线，得出黄蜀葵花中多糖含量为
５．６８％。
２．２　黄蜀葵花中总黄酮含量测定［７］
２．２．１　芦丁标准曲线　 精密量取芦丁标准液１ｍＬ、
２ｍＬ、３ｍＬ、４ｍＬ、５ｍＬ，置于试管中，加水至６ｍＬ，加１ｍＬ
５％ＮａＮＯ２溶液，摇匀静置６ｍｉｎ，再加１ｍＬ　１０％Ａｌ（ＮＯ３）３
溶液，摇匀静置６ｍｉｎ，加氢氧化钠试液１０ｍＬ，加水定容至
２５ｍＬ。以相应试剂为空白，静置１５ｍｉｎ后于５１０ｎｍ处测定
吸光值 Ａ，以吸光值 Ａ 为纵坐标，对照品质量浓度 Ｃ
（ｍｇ／ｍＬ）为横坐标，绘制标准曲线。得芦丁标准曲线Ｙ＝
３．４９５Ｘ－０．０１６，ｒ＝０．９９９。结果表明芦丁在０．０３６　１７～
０．１８０　８３ｍｇ／ｍＬ质量浓度范围内与其峰面积积分呈良好的
线性关系。
２．２．２　样品溶液制备　 称取黄蜀葵药材样品约１ｇ，加
７５％甲醇５０ｍＬ，超声提取３０ｍｉｎ，过滤，残渣重复提取１次，
过滤，合并两次滤液置于水浴上蒸干，用甲醇溶解定容至
２５ｍＬ，过滤，备用。
２．２．３　样品含量测定　 准确吸取样品溶液２ｍＬ，按上述
硝酸铝法测定吸光度值，设置自身对照，进行测定。根据标
准曲线计算黄蜀葵中总黄酮的含量，结果得黄蜀葵花中总
黄酮含量为１．５７７　５％。
２．３　黄蜀葵花中槲皮素和金丝桃苷含量测定［８－９］
２．３．１　色谱条件与系统适用性试验　 色谱柱：Ｋｒｏｍａｓｉｌ
Ｃ１８（４．６ｍｍ×２５０ｍｍ，５μｍ）；流动相：乙腈（Ａ）－０．４％磷酸
水溶液（Ｂ）；洗脱条件：梯度洗脱：０～４０ｍｉｎ，体积分数
Ａ１０％～１５％；４０～６０ｍｉｎ，体积分数 Ａ１５％～４０％；检测波
长：３６０ｎｍ；柱温：室温；流速：１．０ｍＬ／ｍｉｎ；进样量：２０μＬ。
理论塔板数应不低于３　０００。
２．３．２　混合对照品溶液制备　 精密称取金丝桃苷对照
品１２．５９ｍｇ，置于１００ｍＬ容量瓶中，加甲醇溶解并定容，作
为对照品储备液Ⅰ；精密称取槲皮素对照品１２．７６ｍｇ，置于
２５ｍＬ容量瓶中，加甲醇溶解并定容，作为对照品储备液Ⅱ。
精密吸取对照品储备液Ⅰ１ｍＬ、对照品储备液Ⅱ１ｍＬ于
５ｍＬ容量瓶中，加甲醇溶解并定容至刻度，作为混合对照品
溶液，按照上述色谱条件进样测定，结果见图１。
２．３．３　供试品溶液制备　 取已经过６０目筛的黄蜀葵药
材粉末１ｇ，精密称定，置于２５０ｍＬ锥形瓶中，加入体积分数
７０％乙醇约１５０ｍＬ，超声提取３０ｍｉｎ，放至室温，转移至
—７１—
５００ｍＬ容量瓶中，用体积分数７０％乙醇定容，振摇均匀，取
适量溶液离心１０ｍｉｎ（１２　０００ｒ／ｍｉｎ），取上清液作为供试品
溶液。
２．３．４　线性关系考察　 精密量取混合对照品溶液
０．１ｍＬ、０．２ｍＬ、０．４ｍＬ、０．６ｍＬ、０．８ｍＬ、１．０ｍＬ，依次用甲
醇稀释定容至１．０ｍＬ，分别精密吸取２０μＬ溶液，按“２．３．１”
项下色谱条件，测定金丝桃苷和槲皮素峰面积。以对照品
溶液质量浓度Ｘ（μｇ／ｍＬ）为横坐标，峰面积积分值Ｙ为纵
坐标，绘制标准曲线，得金丝桃苷回归方程Ｙ＝４５２．６６Ｘ＋
２３２．４６，ｒ＝０．９９９　６；槲皮素回归方程 Ｙ＝４７４．９３Ｘ＋
１３４．４５，ｒ＝０．９９９　８。结果表明金丝桃苷在５．０３６～５０．３６
μｇ／ｍＬ，槲皮素在５．１０４～５１．０４μｇ／ｍＬ质量浓度范围内与
各自峰面积积分呈良好的线性关系。
图１　混标ＨＰＬＣ色谱
　　　　　　　　　注：１．金丝桃苷；２．槲皮素　
２．３．５　加样回收率试验　 取已知金丝桃苷和槲皮素含
量的样品６份，分别精密加入一定量的混合对照品溶液，按
照“样品含量测定”项下方法测定，计算加样回收率，测得金
丝桃苷和槲皮素平均回收率分别为１０１．１７％和１００．０８％，
ＲＳＤ分别为１．７９％和０．５９％。表明该测定方法符合要求。
２．３．６　样品中金丝桃苷和槲皮素含量测定　 分别按
“供试品溶液制备”方法处理样品各３份，精密吸取供试品
溶液２０μＬ，注入高效液相色谱仪测定，将所得峰面积代入
标准曲线，求得样品中金丝桃苷和槲皮素的含量分别为
１．１０２％、０．４０４　１％。见图２。
图２　黄蜀葵花样品ＨＰＬＣ色谱
　　　　　　　　　注：１．金丝桃苷；２．槲皮素　
３　讨论
黄蜀葵在我国历代医籍中均有记载，民间使用亦很普
遍。黄蜀葵全身都是宝，其茎皮纤维可替代麻制造人造棉；
种子、根和花可入药，具有清热解毒、凉血、消肿等功效，根
主要含有黏液质、淀粉和糖类等化学成分。现有文献对黄
蜀葵花中化学成分的报道较少，且主要集中在以金丝桃苷
和槲皮素为代表的黄酮类成分上，对其多糖类成分的报道
更少。多糖作为一种具有广泛药理活性的大分子物质，越
来越受到关注，而硫酸－苯酚法是较为理想的多糖含量测
定方法，因此笔者采用该法对黄蜀葵花中的多糖含量进行
了测定。实验结果表明，黄蜀葵中总多糖含量为５．６８％。
本试验测定结果表明，黄蜀葵花中总黄酮含量为
１．５７７　５％，而金丝桃苷和槲皮素含量分别为１．１０２％、
０．４０４　１％，两者含量加和略低于总黄酮含量，究其原因可能
与总 黄 酮 测 定 方 法 有 关。有 文 献 报 道 采 用 ＮａＮＯ２－
Ａｌ（ＮＯ３）３－ＮａＯＨ显色法测定总黄酮时，槲皮素－３＇－葡萄糖
苷、棉皮素－３＇－葡萄糖苷和杨梅素这三种黄酮类化合物不显
色。因此在５１０ｎｍ处测定黄蜀葵花药材中总黄酮含量时，
这３种成分的含量就没有计入总黄酮含量中，且黄蜀葵花
中槲皮素－３＇－葡萄糖苷含量较高，因此采用该法测得的总黄
酮含量略低。
综上所述，黄蜀葵中多糖、总黄酮、金丝桃苷、槲皮素等
活性成分含量较高，本研究所选的相应测定方法简便，结果
可靠，可作为其质量控制参考。
参考文献：
［１］　居文政．黄蜀葵的本草考证［Ｊ］．时珍国药研究，１９９４，５（２）：
６－７．
［２］　国家药典委员会．中华人民共和国药典［Ｍ］．第１部．北京：中
国医药科技出版社，２０１０：２８７．
［３］　谭业华，陈珍，顾种宜．中草药黄蜀葵的研究现状与展望［Ｊ］．
海南师范学院学报：自然科学版，２００６，１９（２）：１６３－１６７．
［４］　杨静，李爽，钱芳，等．响应面法优选黄蜀葵花多糖的提取工
艺［Ｊ］．中国药房，２０１３，２４（３９）：３６８８－３６９０．
［５］　刘爽，江蔚新，吴斌．黄蜀葵化学成分及药理活性研究进展
［Ｊ］．中国现代中药，２０１０，１２（８）：５．
［６］　白虹．保健食品功效成分检测方法［Ｍ］．北京：中国中医药出
版社，２０１１：７３－７５．
［７］　许海顺，蒋剑平，徐攀，等．白花蛇舌草不同萃取物的抗氧化
作用研究［Ｊ］．甘肃中医学院学报，２０１２，２９（２）：４８－５１．
［８］　徐柏颐，谈献和，朱华云，等．黄蜀葵花 ＨＰＬＣ指纹图谱研究
［Ｊ］．中药材，２０１１，３４（６）：８８８－８９０．
［９］　刘霖，唐海涛，刘汉清，等．黄葵胶囊中５种黄酮类成分的含
量测定及其特征图谱研究［Ｊ］．中药材，２０１３，３６（１）：１３２－１３６．
（责任编辑：尹晨茹）
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