全 文 ：天然产物研究与开发 Nat Prod Ｒes Dev 2015，27:534-539
文章编号:1001-6880(2015)3-0534-06
收稿日期:2014-07-24 接受日期:2015-01-06
基金项目:国家自然科学基金(31260135);国家中医药管理局
2012 年中医药行业科研专项(201207002)
* 通讯作者 Tel:86-931-4938619;E-mail:xuelg@ mail． lzjtu． cn
大孔吸附树脂纯化绿茄叶黄酮的工艺研究
莫天录1，薛林贵1* ，高 慧2，李彩霞3，李旭东1，李文伟1，李国强1，杨蕊琪1
1兰州交通大学化学与生物工程学院，兰州 730070;
2兰州大学 生命科学学院，兰州 730020;3 河西学院农业与生物技术学院，张掖 734000
摘 要:研究大孔吸附树脂纯化绿茄叶黄酮粗提取物的最佳工艺。通过比较 10 种大孔吸附树脂纯化黄酮粗提
取物的吸附及解吸性能，筛选出纯化树脂 XDA-1，并考察 XDA-1 树脂对黄酮粗提取物的静态、动态吸附与解吸
的性能。结果表明，XDA-1 树脂对黄酮粗提取物纯化的最佳工艺参数:吸附平衡时间 8 h，吸附浓度 2． 00 mg /
mL，pH值 3． 0，温度 25 ℃，上样流速 2 BV /h;解吸平衡时间 2 h，解吸剂为 pH值为 3． 0 的体积分数 80%的乙醇
溶液，解吸流速 3 BV /h，纯化倍数 2． 37。该研究证实大孔吸附树脂纯化绿茄叶黄酮的方法简单可行，为绿茄叶
黄酮的分离纯化提供了实验依据。
关键词:大孔吸附树脂;绿茄叶;黄酮;纯化
中图分类号:Q283． 6 文献标识码:A DOI:10． 16333 / j． 1001-6880． 2015． 03． 033
Purification of Flavonoids from Green Eggplant Leaves Using Macroporous Ｒesin
MO Tian-lu1，XUE Lin-gui1* ，GAO Hui2，LI Cai-xia3，LI Xu-dong1，LI Wen-wei1，LI Guo-qiang1，YANG Ｒui-qi1
1School of Chemical and Biological Engineering，Lanzhou Jiaotong University，Lanzhou，730070，China;
2School of Life Science，Lanzhou University，Lanzhou 730020，China;
3School of Agriculture and Biotechnology，Hexi University，Zhangye 734000，China
Abstract:The optimal conditions for purifying flavonoids from green eggplant leaves using macroporous resin were stud-
ied． The absorption and desorption properties of 10 different macroporous resins for purifying flavonoids from green egg-
plant leaves were compared． The results showed that XDA-1 had the best adsorption and desorption performance． Fur-
thermore，the static and dynamic absorption and desorption properties of XDA-1 on flavonoids were investigated． The op-
timal conditions for the separation and purification of flavonoids from green eggplant leaves were listed as follows:equi-
librium adsorption time，8 hrs;concentration，2． 00 mg /mL;pH，3;temperature，25 ℃;velocity of sample solution，3 BV /
hrs;equilibrium desorption time，2 hrs;elution velocity，3 BV /hrs;and mobile phase solvent，using 80% aqueous ethanol
(pH = 3)． The flavonoid content in the purified product was 2． 37 times higher than that in the raw material． In conclu-
sion，our study provided a simple and feasible purification method for purifying flavonoids from the leaves of green egg-
plant．
Key words:macroporous resin;green eggplant leaves;flavonoids;purification
茄子(Solanum melongena L．)别名落苏、昆仑紫
瓜、矮瓜、草鳖甲、吊菜子等，是以浆果为产品的一年
生草本植物，广泛种植于地中海、亚洲、中欧和东南
欧地区［1］。而茄叶是茄子生产的下脚料，资源丰
富，且茄子采收后，其茎、叶、根腐烂在田埂上或者被
农户作为烧柴，使得资源附加值变低。因此，从茄叶
中分离并纯化黄酮具有一定的开发价值。
黄酮类化合物是植物重要的次级代谢产物，广
泛存在于植物的各个器官。研究发现黄酮类化合物
具有抗氧化、抗感染、抗癌、抗炎［2］、保肝［3］以及防
止心血管疾病［4］等多种生理功能，因而黄酮被称为
“第七类营养素”。目前，黄酮类化合物大多来源于
药用植物，也有来源于生物质和果实的报道［5，6］。
由于黄酮具有很好的医药保健等功能，因此从生物
质资源中提取并纯化黄酮，可以变废为宝，解决黄酮
提取材料不足等问题。
大孔吸附树脂具有容量大、选择性好、吸附率
高、重复性好、解吸容易、理化性质稳定等优点。近
年来，大孔吸附树脂分离技术已成为天然活性成分
分离纯化的有效方法之一。目前，大孔树脂已应用
在樱桃叶、香椿叶、桑叶、竹叶、侧柏叶等的黄酮类粗
提物的纯化，但有关纯化绿茄叶黄酮的工艺研究还
未见报道，本文研究了大孔吸附树脂对绿茄叶黄酮
粗提物的吸附与解吸附情况，并确立了其纯化工艺
参数，为茄叶活性成分的开发利用提供理论依据。
1 材料与方法
1． 1 材料与仪器
1． 1． 1 材料
绿茄叶采于河西学院农业与生物技术学院试验
园，叶子清洗后阴干，粉碎过筛(60 目)，避光备用。
1． 1． 2 试剂
芦丁(Ｒutin)购自 Sigma 公司，其余试剂均为国
产分 析 纯;X-5、AB-8、NKA-9、NKA-Ⅱ、D4020、
D3520、D101 大孔吸附树脂，天津南开大学化工厂
产品;XDA-1、LX-38、ADS-17 大孔吸附树脂，西安蓝
晓科技有限公司。
1． 1． 3 仪器
SHZ-2000 型双配套循环水式多用真空泵，河南
省巩义市英峪予华仪器厂;DHG-9140A 型电热恒温
鼓风干燥箱，上海恒科有限公司;Spectrμmlab24 分
光光度计，上海棱光技术有限公司;HH-4 数显恒温
水浴锅，国华电器有限公司;AE200 电子分析天平，
瑞士 Mettler Toledo公司;层析柱 Φ15 × 30 mm 上海
亚荣生化仪器厂;ＲG-2000A 旋转蒸发器，巩义市京
华仪器有限责任公司;HZQ-X400 恒温振荡培养箱，
太仓市华美生化仪器厂;AP-9925 无油真空泵，天津
奥特赛恩斯仪器有限公司;HD-97-1 紫外检测仪，上
海康华生化仪器厂。
1． 2 黄酮的提取与测定
1． 2． 1 黄酮粗提取物的提取流程
绿茄叶粉末→75%乙醇回流提取→减压浓缩
(45 ℃，0． 08 Mpa)→真空干燥→黄酮粗提物→4 ℃
低温保存
1． 2． 2 黄酮的测定
1． 2． 2． 1 黄酮标准曲线绘制
标准曲线的制作方法参照文献［7］，准确称取芦
丁标准品 20． 0 mg，用 70%乙醇溶解，转移至 100 mL
容量瓶中，并定容至刻度，即芦丁标准品的质量浓度
为 0． 20 mg /mL，冷藏备用。精确吸取芦丁标准溶液
1． 00、2． 00、3． 00、4． 00、5． 00、6． 00 mL，分别置于 10
mL容量瓶中，加入 5%亚硝酸钠溶液 0． 3 mL，摇匀，
静置 6 min;然后加入 10%硝酸铝溶液 0． 3 mL，摇
匀，静置 6 min;再加入 4%氢氧化钠 4． 00 mL，用
30%乙醇定容至刻度，摇匀，静置 15 min，以试剂空
白为参比，在波长 510 nm处测定吸光度。以吸光度
(y)为纵坐标，芦丁的质量(x，mg)为横坐标，制作标
准曲线。
1． 2． 2． 2 粗提物总黄酮含量的测定
准确移取 0． 2 mL 待测提取液于 10 mL 容量瓶
中，根据 1． 2． 2． 1 的方法测定波长 510 nm处的吸光
度，根据公式(1)计算绿茄叶中总黄酮的含量 C0。
黄酮含量(%)= C × V × NW × v × 1000 × 100 (1)
式中:C:提取液中黄酮含量(mg)V:总样品体
积(mL)W:样品重量(g)v:测定的样品体积(mL)
N:稀释倍数。
1． 3 最佳树脂类型的筛选
1． 3． 1 树脂的预处理
大孔吸附树脂用无水乙醇浸泡 24 h，充分溶胀，
用无水乙醇淋洗至析出液加适量水(1∶ 5)无白色浑
浊为宜，用去离子水洗至无醇，然后用 5% HCl浸泡
3 h，用去离子水洗至中性，再用 2% NaOH浸泡 3 h，
再用去离子水洗至中性，沥干树脂中水分备用。
1． 3． 2 10 种大孔吸附树脂吸附率和解吸率的测定
准确称取 10 种预处理树脂各 3 份，每份 2． 0 g，
置于 100 mL 三角瓶中，分别加入 15 mL 提取液，并
测定波长 510 nm 处吸光度 A0，封口，置于 25 ℃，
150 r /min的恒温振荡吸附 24 h，充分吸附后过滤，
测滤液吸光值 A1;再向滤出树脂中加入 70%乙醇溶
液，封口，继续振荡 24 h，充分解吸后过滤，测滤液的
吸光值 A2，得到黄酮含量 C1、C2，按公式(2)计算吸
附率 α、解吸率 β［8］。
α(%)=
C0 － C1
C0
× 100%
β(%)=
C2
C0 － C1
× 100% (2)
1． 3． 3 静态吸附-解吸试验
1． 3． 3． 1 静态吸附试验
称取 2． 0 g 预处理树脂 XDA-1，置于 50 mL 三
角瓶中，以吸附时间、pH、浓度、温度为单变量，加入
15 mL粗提液，各 3 份，封口，在 25 ℃，150 rpm恒温
振荡箱中振荡吸附，按 1． 2． 2． 1 方法测定黄酮含量，
并计算吸附率。分别以吸附率对时间、pH、浓度、温
度作图，绘制静态吸附曲线。
535Vol. 27 莫天录等:大孔吸附树脂纯化绿茄叶黄酮的工艺研究
1． 3． 3． 2 静态解吸试验
称取 2． 0 g 吸附饱和树脂 XDA-1，置于 50 mL
三角瓶中，以解吸时间、解吸剂体积分数、pH值为单
变量，加入 15 mL 乙醇洗脱液，同上条件解吸，按
1. 2． 2． 1 方法测定黄酮含量，并计算解吸率。分别
以解吸率对时间、解吸剂 pH、解吸剂体积分数作图，
绘制静态解吸曲线。
1． 3． 4 动态吸附-解吸试验
1． 3． 4． 1 动态吸附试验
预处理的树脂 XDA-1，湿法装柱(层析柱内径
1． 5 cm，树脂高 11 cm，柱床体积 20 mL)，以 20 BV
去离子水除杂后，取质量浓度为 2． 02 mg /mL 黄酮
粗提取液上柱纯化，分别以 1、2、3 BV /h 的流速上
柱。每隔 10 管取一管，按 1． 2． 2． 1 方法测定黄酮含
量，测定流出液黄酮的含量，至流出液浓度接近上样
液浓度且维持恒定，停止上样。以流出液柱床体积
为横坐标，流速为变量，黄酮含量为纵坐标，绘制动
态吸附曲线。
1． 3． 4． 2 动态解吸试验
装柱、除杂同 1． 3． 4． 1 的方法。上样以 3 BV /h
流速至流出液为上样液质量浓度为 1 /5 时，停止上
柱。先以 20 BV 去离子水冲洗，再分别以 1、2、3
BV /h流速的 80%乙醇(pH = 3)洗脱，每隔 5 管取
一管，同上，绘制动态洗脱曲线。
1． 3． 5 纯化后黄酮的纯度
称取粗提取物和纯化物各 0． 25 g，用体积分数
为 70%乙醇溶解并定容，各取 0． 1 mL，按 1． 2． 2． 1
方法测定黄酮含量，并计算出纯化倍数。
1． 3． 6 树脂的重复次数
称取 2． 00 g XDA-1 预处理树脂，以吸附次数为
变量，步骤同 1． 3． 3． 1，吸附-解吸后，继续取解吸后
的树脂重复操作。
1． 3． 7 数据分析
采用 Excel 2003 数据处理，Origin 8． 0 作图，使
用 SPSS 16． 0 统计分析软件进行分析，各树脂间的
显著性差异采用新 Duncan复极差法比较，以上指标
测定均重复三次，图中数据均为三次重复的均值加
标准差。
2 实验结果
2． 1 最佳树脂类型的筛选
不同的树脂对吸附液中各组分的吸附强弱与解
吸难易存在差异［9］。影响因素很多，包括树脂的极
性、比表面积、粒径、孔径、被吸附物的极性、分子大
小。通常，被吸附物的极性与树脂的极性相同或相
近时，吸附效果较好;树脂孔径是被吸附分子大小的
多倍数时吸附性能最好。因此筛选树脂时要综合考
虑树脂的比表面积、极性、孔径等因素，多数黄酮类
化合物分子极性不太高，在弱极性或非极性树脂上
会有更好的吸附效果［10］。由标准曲线得到回归方
程:Y = 1． 0256X + 0． 0195，Ｒ2 = 0． 9989，据此选择最
佳吸附树脂结果见图 1。推测:树脂 NKAⅡ相比其
他极性树脂，其比表面积最小，吸附效果差;X-5 树
脂比表面积稍大于 D101 树脂，因此 X-5 树脂对黄
酮化合物的吸附量略大。而 X-5 树脂比表面积虽是
NKA-9 树脂的 2 倍，可能 NKA-9 树脂孔隙略大的原
因，使其吸附率大一些;X-5 树脂是非极性，相比
AB-8 树脂略强，可能 X-5 树脂与茄叶黄酮的极性相
近，故吸附率高;非极性树脂中，XDA-1 树脂比表面
积大于其余树脂，使其吸附、解吸效果明显。如图 1
所示，采用 Duncan 新复极差法进行比较，从吸附率
看，NKA-9 与其它树脂相比较差异显著(P ＜ 0． 05);
从解吸率看，NKAⅡ与其它树脂间差异显著(P ＜
0. 05)，虽然 NKA-9 吸附率最高，但解吸率低于
XDA-1，NKAⅡ解吸率最高，但吸附率也低于 XDA-
1。综合吸附率和解吸率两个参数，认为 XDA-1 类
型树脂是比较好的吸附树脂，故以下实验重点考察
XDA-1 大孔树脂对绿茄叶黄酮的纯化效果。
表 1 吸附树脂的物理性质
Table 1 Physical properties of the adsorption resin
树脂型号
Model resin
外观
Exterior
极性
Polarity
比表面积
The specific
surface area
(m2 /g)
平均孔径
The average
pore size
(nm)
孔隙率
Porosity
(%)
孔隙
Pore
(m2 /g)
粒径范围
Size range
(mm)
AB-8 乳白色球状颗粒 弱极性 480 ～ 520 130 ～ 140 42 ～ 48 0． 73 ～ 0． 77 0． 315 ～ 1． 25
NKA-9 乳白色至微黄色 极性 250 ～ 290 155 ～ 165 46 ～ 50 15． 5 ～ 16． 5 0． 315 ～ 1． 25
X-5 乳白色球状颗粒 非极性 500 ～ 600 290 ～ 300 50 ～ 60 1． 20 ～ 14 0． 315 ～ 1． 25
D4020 乳白色球状颗粒 非极性 540 ～ 580 100 ～ 105 74 ～ 78 2． 88 ～ 2． 92 0． 315 ～ 1． 25
635 天然产物研究与开发 Vol. 27
NKA-Ⅱ 红棕色球状颗粒 极性 160 ～ 200 145 ～ 155 － － 0． 315 ～ 1． 25
D101 乳白色球状颗粒 非极性 500 ～ 550 90-100 65-75 1． 18 ～ 1． 24 0． 3 ～ 1． 25
XDA-1 棕红色球状颗粒 非极性 1200 ～ 1300 85 ～ 95 70-80 － 0． 3 ～ 1． 25
D3520 乳白色球状颗粒 非极性 480 ～ 520 85 ～ 90 65 ～ 70 2． 10 ～ 2． 15 0． 3 ～ 1． 25
ADS-17 乳白色球状颗粒 非极性 90 ～ 150 5 ～ 30 64 ～ 68 0． 74 ～ 0． 78 0． 3 ～ 1． 25
LX-38 乳白色球状颗粒 弱极性 480 ～ 520 25-30 65-75 － 0． 3 ～ 1． 25
Adsorption%rate
Desorption%rate
100
80
60
40
20
0
Ad
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rp
tio
n%
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te
%of
%
de
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tio
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(%
)
X鄄
5
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A鄄
II
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9
D1
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XD
A鄄
1
AB
鄄8
AD
S鄄1
7
D3
52
0
D4
02
0
LX
鄄38
Kinds%of%resin
图 1 10 种大孔吸附树脂对绿茄叶黄酮吸附率和解吸率
的影响
Fig. 1 Effect of 10 macroporous resins on absorption and de-
sorption rates of flavonoids from green eggplant leaves
注:不同字母表示差异显著(P ＜ 0． 05);同一字母代表差异不显
著(P ＞ 0． 05)。
Note:different letters indicated significance difference at P ＜ 0． 05，
same letters indicated no significant difference at P ＞ 0． 05．
2． 2 静态吸附试验
2． 2． 1 时间对 XDA-1 树脂吸附黄酮的影响
XDA-1 树脂纯化黄酮粗提物吸附时间的试验，
结果如图 2(A)所示。随着时间的延长，吸附逐渐
达到饱和。当吸附 7 h 时，XDA-1 树脂对绿茄叶黄
酮的吸附率高达 89． 91%，8 h 黄酮的吸附率达到平
衡。因此，后续吸附时间采用 8 h。
2． 2． 2 粗提液 pH值对 XDA-1树脂吸附黄酮的影响
分别将黄酮粗提取液的 pH 值调至 3． 0、4． 0、
5. 0、6． 0、7． 0，XDA-1 树脂对黄酮吸附的结果如图 2
(B)所示。当 pH值为 3． 0 时，吸附率最大，吸附效
果最好，随 pH 升高吸附率呈下降趋势。可能因为
黄酮类化合物含有酚羟基，呈现一定的酸性，在微酸
性条件下以分子形式存在容易被树脂吸附［11］。当
pH值再增大到中性至碱性，黄酮类化合物容易转变
为佯盐，而以盐的形式存在不易被树脂吸附，且黄酮
分子上的酚羟基容易被氧化而使溶液颜色变深［12］。
故上样液的 pH值应控制在 3． 0 左右。
2． 2． 3 温度对 XDA-1 树脂吸附黄酮的影响
研究温度对吸附的影响，对进一步阐明树脂的
吸附作用机理和热力学具有重要意义。将装入黄酮
粗提取液和树脂的锥形瓶分别置于温度为 25、30、
35、40、45 ℃的摇床中振荡吸附，结果如图 2(C)所
示。温度对黄酮的整体影响较大，在 25 ℃时吸附率
最高，可能因为温度较低时，黄酮类化合物相对比较
稳定。因此，上样液温度以 25 ℃效果最佳。
2． 2． 4 浓度对 XDA-1 树脂吸附黄酮的影响
固定其它因素，分别配制质量浓度为 0． 50、
1. 00、1． 50、2． 00、2． 50、3． 00 mg /mL 的黄酮提取液
(pH 3． 0)，考察黄酮质量浓度对 XDA-1 树脂吸附性
能的影响，其结果如图 2(D)所示。绿茄叶黄酮的
吸附率随黄酮质量浓度的升高，呈先上升后平衡的
趋势。在 2． 00 mg /mL时最高，此后波动不大，可能
因为浓度过大，黄酮向树脂内的扩散速度减慢，容易
使过饱和而成糊状，对树脂的孔隙产生了影响［13］;
其次浓度太大会使杂质竞争吸附，黄酮物质在树脂
内部的扩散能力会降低，而且随着质量浓度的增加，
将加重浓缩工艺负荷，造成质量浓度过高而引起上
样困难［11］。因此，质量浓度为 2． 00 mg /mL 吸附效
果最佳。
2． 3 静态解吸试验
2． 3． 1 洗脱液 pH 值对 XDA-1 树脂解吸黄酮的影
响
分别配制 pH值为 3． 0、4． 0、5． 0、6． 0、7． 0 的体
积分数为 70%乙醇溶液，考察洗脱液 pH值对 XDA-
1 树脂解吸黄酮的影响，其结果如图 3(A)所示。随
着洗脱液 pH 值的增加黄酮的解吸率先下降后升
高，可能乙醇减弱了黄酮与树脂之间的吸附力，同时
酸的电离作用将增加乙醇溶液的极性从而增大树脂
的解吸率，而碱的电离作用产生的 OH-极性效果低
于 H +的效果，故酸性溶液中的黄酮类化合物易被
解吸出来。因此，宜选用 pH = 3． 0 的乙醇溶液作为
洗脱剂。
2． 3． 2 时间对 XDA-1 树脂解吸黄酮的影响
时间对 XDA-1 树脂解吸黄酮的影响，结果如图
3(B)所示，2 h 时，绿茄叶黄酮的解吸率达到最高，
735Vol. 27 莫天录等:大孔吸附树脂纯化绿茄叶黄酮的工艺研究
随后解吸率维持恒定，从提高效率和经济性的原则 出发，因此解吸时间选择 2 h。
100
80
60
40
20
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) 95
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(%
)
0% 2% 4% 6% 8
Time(h)
3% 4% 5% 6% 7
pH
25% 30% 35% 40% 45% 50
Temperature(℃)
0.5% 1.0% 1.5% 2.0% 2.5% 3.0
Concentration(mg/mL)
A B C D
图 2 时间(A)、pH(B)、温度(C)及浓度(D)对绿茄叶黄酮吸附率的影响
Fig. 2 Effects of time (A)，pH (B) ，temperature (C)and concentration (D)on absorption rate of flavonoids from green eggplant
leaves
2． 3． 3 乙醇体积分数对 XDA-1树脂解吸黄酮的影响
分别配制体积分数为 60%、70%、80%、90%、
100%(pH = 3)的乙醇溶液，考察乙醇体积分数对
XDA-1 树脂解吸黄酮的影响，其结果如图 3(C)所
示。随着乙醇体积分数的升高，解吸率呈先升高后
下降的趋势。当洗脱液为体积分数 80%乙醇溶液
时，解吸率最高。可能是黄酮类化合物与树脂间的
强烈氢键作用，导致吸附在树脂上的黄酮类成分不
容易被水和低浓度的乙醇洗脱下来［14］，而无水乙醇
洗脱时解吸率明显下降，这可能是因为提取液含有
水溶性黄酮类化合物，故洗脱液宜选体积分数为
80%(pH =3)的乙醇溶液。
70
60
50
40De
so
rp
tio
n%
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(%
) 90
80
70
60
50
403% 4% 5% 6% 7
pH
0.5% 1.0% 1.5% 2.0% 2.5% 3.0
Time(h)
60% 70% 80% 90% 100
Volume%fraction%of%ethanol(%)
-5% 0% 5% 10% 15% 20% 25% 30% 35
Bed%volume
A B C D7570
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55
50
45
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35
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m
L)
图 3 pH(A)、时间(B)、洗脱剂体积分数(C)及上样流速(D)对绿茄叶黄酮解吸率的影响
Fig. 3 Effects of pH(A)，time (B) ，ethanol volume fraction (C)and velocity of sample solution(D)on desorption rate of fla-
vonoids from green eggplant leaves
2． 4 XDA-1 树脂动态吸附曲线
XDA-1 树脂对绿茄叶黄酮的动态吸附曲线如
图 3(D)所示，均呈特殊的“S”型，流速 2 BV /h 时趋
势最好。当上柱体积为 10 BV 时，流出液的质量浓
度为 0． 42 mg /mL，接近上柱液质量浓度的 1 /5，达
到了泄漏点的质量浓度。因此，XDA-1 树脂对质量
浓度为 2． 02 mg /mL 粗提液的处理能力是 10 BV。
当吸附 27 BV时，流出液质量浓度趋于平衡吸附达
到饱和，此时即为上样的终点。
2． 5 XDA-1 树脂动态解吸曲线
结果如图 4 所示，用 80%乙醇洗脱，流速 3 BV /
h时峰值最高，黄酮含量的峰值出现在 1 ～ 10 BV，峰
尖而宽，峰左侧线性增加，表明急速洗脱，在 2． 3 BV
时，黄酮含量最高，洗出液颜色为金黄色。在 14 BV
后，黄色逐渐消失，表明绝大部分黄酮已被解吸，因
此 14 BV为合理的洗脱剂量。
0% 5
Bed%volume
1%BV/h
2%BV/h
3%BV/h
M
as
s%c
on
ce
nt
ra
tio
n%
of
fla
vo
no
id
s(m
g/
m
L)
5
4
3
2
1
0
10% 15% 20
图 4 XDA-1 树脂动态解吸曲线
Fig. 4 Dynamic desorption curve of XDA-1
0% 1% 2% 3% 4% 5% 6% 7% 8% 9
Times
90
80
70
60
50A
bs
or
pt
io
n%
ra
te
(%
)
图 5 XDA-1 树脂重复次数
Fig. 5 XDA-1 resin repetitions
835 天然产物研究与开发 Vol. 27
2． 6 大孔吸附树脂的重复次数
XDA-1 树脂重复使用次数如图 5 所示，树脂使
用次数在 1 ～ 6 次之间时，黄酮的吸附率变化幅度较
小，使用 6 次以后，吸附性能急剧下降，说明 XDA-1
树脂可重复使用 6 次。
3 结论
10 种供试大孔树脂中，XDA-1 树脂对绿茄叶黄
酮粗提物有较好的吸附和解吸性能，吸附量为
14. 50 mg /g，解吸率为 85． 29%，因此 XDA-1 树脂适
合绿茄叶黄酮粗提物的纯化。XDA-1 树脂纯化绿
茄叶黄酮粗提取的最佳工艺参数:吸附平衡时间 8
h，吸附浓度 2． 00 mg /mL，pH 值 3． 0，温度 25 ℃，上
样流速 2 BV /h;解吸平衡时间 2 h，解吸剂乙醇的体
积分数为 80%，pH值 3． 0，解吸流速 3 BV /h。此条
件下的纯化物浸膏中黄酮的质量浓度为 5． 68 mg /
mL，纯化倍数为 2． 37。目前生物活性物质的纯化是
我们亟待解决的问题，本课题主要研究了树脂法纯
化绿茄叶黄酮粗提物的工艺过程，后续将比较树脂
纯化前、后黄酮的抗氧化能力和抑菌能力以及其组
分。
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