全 文 ：园林绿化 Ｇａｒｄｅｎ ＆Ｌａｎｄｓｃａｐｉｎｇ
７６ ＦＯＲＥＳＴ ＳＣＩＥＮＣＥ ＡＮＤ ＴＥＣＨＮＯＬＯＧＹ
二
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一
六
年
第
三
期
林
业
科
技
通
讯
海州常山组培快繁技术＊
姜丽琼，李文俊，肖前刚，徐志萍，陈文灵
（成都市农林科学院，成都 ６１１１３０）
摘要：对引种的海州常山（Ｃｌｅｒｏｄｅｎｄｒｕｍ ｔｒｉｃｈｏｔｏｍｕｍ Ｔｈｕｎｂ．）进行优良单株选择，利用优良单株材料进行外植体诱导、
继代增殖、生根培养和炼苗移栽试验研究。筛选出海州常山最佳诱导培养基：ＭＳ＋６－ＢＡ １．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ ０．５ｍｇ／Ｌ；
增殖培养基：改良 ＭＳ１＋６－ＢＡ ０．２～０．４ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ ０．０５～０．１ｍｇ／Ｌ；生根培养基：改良 ＭＳ２＋ＡＢＴ ０．２ｍｇ／Ｌ；移
栽基质：腐殖土，成活率都在９２％以上。
关键词：海州常山；Ｃｌｅｒｏｄｅｎｄｒｕｍ ｔｒｉｃｈｏｔｏｍｕｍ Ｔｈｕｍｂ．；组织培养；外植体诱导；继代增殖；生根诱导；炼苗移栽
中图分类号：Ｓ６８５．９９ 文献标识码：Ｂ 文章编号：１６７１－４９３８（２０１６）０３－００２６－０４
ＤＯＩ：１０．１３４５６／ｊ．ｃｎｋｉ．ｌｙｋｔ．２０１６．０３．０２４
＊成都市农林科学院２０１０年青年基金项目（编号：１０ＹＴＺＤ０１４）。
作者简介：姜丽琼（１９７８—），高级工程师，主要从事林木种苗快繁
技术研究和推广。
通讯作者简介：肖前刚（１９６８—），高级工程师，主要从事林业生
态、林业产业及生态文明建设的应用技术研究与实用技术推广。Ｅ－
ｍａｉｌ：６４９８８１４４０＠ｑｑ．ｃｏｍ
海州常山（Ｃｌｅｒｏｄｅｎｄｒｕｍ ｔｒｉｃｈｏｔｏｍｕｍＴｈｕｎｂ．），别
名臭梧桐，马鞭草科祯桐属，落叶灌木或小乔木，高１．５
～８ｍ。花期长，花期６－９月，６月下旬开始白色花冠
罩满枝头，且散发出一种甜甜的香味，花香沁人心脾，
使人流连忘返。果熟期９－１１月，核果近球形，包于
宿存花萼内，熟时蓝紫色，整个花序可同时出现红色
花尊、白色花冠和兰紫色果实的丰富色彩，十分美丽，
花果观赏期可达５个月。海州常山是现代绿化中最
具特色的观赏树种，具有花形别致，花色美丽，花果观
赏期长等优点，是集绿化、美化、香化、药化于一体的
珍稀树种［１－２］。海州常山是野生植物资源，如何有效
保护好和综合利用好这一优良的野生植物资源，寻找
一种快速的繁殖途径，是综合利用这个野生植物资源
必须解决的问题。通过对海州常山的组培快繁研究，
可以对这一优良的野生资源进行规模化综合开发利
用的同时使其得以有效的保护。
１ 材料与方法
１．１ 实验材料
供试材料引自云南楚雄野生环境，早春采挖后用
黄泥浆浆根，３０ｃｍ定干，带回成都定植在金堂基地，
定植１５ｄ以后开始萌芽。选择当年生萌发枝条中生
长健壮、无病虫害的幼嫩部分和半木质化部分带芽茎
段，采集后随即带入实验室修剪掉多余的叶片，只保
留少许叶柄，用流水冲洗干净，在超净工作台用７５％
酒精处理和０．１％ＨｇＣｌ２ 溶液消毒，再用无菌水冲洗４
～５次，无菌滤纸吸干水分［３］，接入空白培养基中培
养，每３天观察１次，并随时清除污染的培养瓶，建立
无菌外植体系。
１．２ 试验方法
１．２．１ 基本培养基 采用 ＭＳ、改良 ＭＳ１和改良
ＭＳ２作为基本培养基。
１．２．２ 外植体的诱导 将无菌外植体接入外植体诱
导培养基中，放入培养室中暗培养２０ｄ左右，待腋芽
萌发后进行常规光照培养：光照强度１ ５００ｌｘ以上，温
度２５～２８℃，光照时间为１４ｈ／ｄ。诱导培养基采用
ＭＳ培养基，激素浓度设置了６－ＢＡ（０２，０．５，１．０，２０）
和ＮＡＡ（０．１，０．２，０．５，１．０）各４个水平共１６种处理，
每个处理接种２０个茎段，３０天统计其诱导率，以确定
海州常山的最佳外植体诱导培养基。
１．２．３ 丛生芽的继代培养 将诱芽萌发的小苗剪成
０．５～１．０ｃｍ长的茎段，接种在继代培养基中。接种
时，小苗平放在培养基的表面，伤口压入培养基中。
在 ＭＳ培养基基础上，提高了培养基中Ｃａ２＋、Ｍｇ２＋和
Ｆｅ２＋浓度并降低 ＮＯ３－浓度以消除其对玻璃化的影
响；培养基中琼脂含量０．３４％，糖３．０％，ｐＨ值５．２～
５．６，设６－ＢＡ（０．２，０．４，０．６，１．０）和 ＮＡＡ（０．０５，０．１，
０．２，０．４）各４个水平共１６种处理，每个处理接种２０
个芽，培养５０ｄ后统计增值率，取平均值进行数据分
析，以确定海州常山的最佳继代培养基［４－６］。
１．２．４ 生根培养 选取粗壮、半木质化的小苗接入
生根培养基中。生根培养基采用改良ＭＳ２培养基，并
添加琼脂０．３５％，糖２％，设 ＡＢＴ（０，０．２，０．４，０．６，
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０．８），ＩＢＡ（０，０．２，０．４，０．６），ＮＡＡ（０，０．２，０．４，０．６，
０．８）共１８种培养基，每个处理接种１０株，重复３次，
以确定最佳的生根培养基。先在培养室中弱光培养
１５～２０ｄ（光照强度为８００～１ ５００ｌｘ），待生根后放入
生根培养室中常规光照培养。培养４０ｄ后统计生根
率，取平均值进行分析，以确定海州常山的最佳生根
培养基［７－８］。
１．２．５ 炼苗移栽 瓶苗生根后，开盖炼苗７ｄ，洗净
基部培养基，用镊子移栽在准备好的育苗盘中，育苗
基质采用腐殖土、园土、以及４腐殖土＋园土共３个处
理。移栽完毕后，淋透水，覆膜，并在移栽后的１０ｄ内
保持８５％以上的湿度，１０ｄ后逐渐揭开塑料薄膜直至
完全过渡到自然条件生长。移栽５０ｄ后统计成活率，
以确定最佳移栽基质。
图１ 海州常山组培继代苗
图２ 海州常山组培生根苗
２ 结果与分析
２．１ 酒精和 ＨｇＣｌ２ 不同处理时间对无菌株得率的
影响
将预处理好的材料分成幼嫩和半木质化两种，用
酒精和 ＨｇＣｌ２ 处理，观测酒精和ＨｇＣｌ２ 不同处理时间
对无菌株得率的影响，试验结果见表１。
表１ 酒精和 ＨｇＣｌ２不同处理时间对无菌株得率的影响
木质化
程度
消毒处理
７５％
酒精
０．１％
ＨｇＣｌ２
接种株
数／株
无菌株
／株
无菌株
得率／％
幼嫩 — １ｍｉｎ ２５ ４ １６％
幼嫩 — ２ｍｉｎ ２５ １６ ６４％
幼嫩 — ２ｍｉｎ ３９ｓ ２９ ２３ ７９．３１％
半木质化 ２０ｓ ３ｍｉｎ ４６ｓ ２６ １５ ５７．６９％
半木质化 ２０ｓ ７ｍｉｎ １７ｓ ４４ １８ ４０．９％
半木质化 ２ ０ｓ １０ｍｉｎ ２４ ３ １２．５％
从表１可以看出，在海州常山幼嫩外植体无菌株
的建立中，ＨｇＣｌ２ 处理时间在１ｍｉｎ左右时无菌株得
率较低，２ｍｉｎ左右时成活率明显增加，说明幼嫩外植
体的处理时间控制在２ｍｉｎ左右最适佳。半木质化材
料消 毒 时 间 在 ３ ｍｉｎ 左 右 时 材 料 的 成 活 率 为
５５．６９％，在１０ｍｉｎ左右时仅为１２．５％，所以木质化
程度稍高的材料的最佳灭菌时间控制在３～７ｍｉｎ之
间，在实际操作中，应根据材料的木质化程度来决定
最佳消毒时间。
２．２ 不同种类浓度激素对外植体诱导的影响
表２ 不同激素浓度对外植体诱导率的影响
序号
６－ＢＡ
／（ｍｇ／Ｌ）
ＮＡＡ
／（ｍｇ／Ｌ）
接种株
数／株
萌芽株
数／株
萌芽率
／％
１ ０．２ ０．１ ２５ ７ ２８．００％
２ ０．２ ０．２ ２５ ８ ３２．００％
３ ０．２ ０．５ ２５ １２ ４８．００％
４ ０．２ １．０ ２５ ８ ３２．００％
５ ０．５ ０．１ ２５ ９ ３６．００％
６ ０．５ ０．２ ２５ １１ ４４．００％
７ ０．５ ０．５ ２５ １３ ５２．００％
８ ０．５ １．０ ２５ ７ ２８．００
９ １．０ ０．１ ２５ １３ ５２．００
１０ １．０ ０．２ ２５ １５ ６０．００
１１ １．０ ０．５ ２５ １９ ７６．００
１２ １．０ １．０ ２５ １６ ６４．００
１３ ２．０ ０．１ ２５ １４ ５６．００
１４ ２．０ ０．２ ２５ １６ ６４．００
１５ ２．０ ０．５ ２５ １４ ５６．００
１６ ２．０ １．０ ２５ １０ ４０．００
将无菌外植体接入１６种不同浓度激素处理培养
基中，培养８ｄ以后，部分外植体腋芽开始膨大萌发；
培养１０～１５ｄ时相继出现新芽。不同种类浓度激素
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处理对外植体芽的诱导效果不同。从表２可以看出，
海州常山的萌芽率最高可达到６３％。由表３可以看
出，６－ＢＡ浓度对海州常山诱导率的影响比较明显，当６－
ＢＡ浓度为０．２～１．０ｍｇ／Ｌ时，随着６－ＢＡ浓度的升高，
诱导率增加，但差异不显著，之后，随着６－ＢＡ浓度的继
续升高，诱导率呈下降趋势，但差异不显著。
ＮＡＡ浓度为０．１～０．５ｍｇ／Ｌ时，随着 ＮＡＡ浓
度的升高，诱导率增加，但差异不显著，之后随着
ＮＡＡ浓度的升高，诱导率呈下降趋势，当 ＮＡＡ浓度
达１．０ｍｇ／Ｌ时，诱导率差异极显著。综合表２和表３
的数据分析，海州常山的最佳诱导培养基为 ＭＳ＋６－
ＢＡ１．０＋ＮＡＡ０．５。
表３ 不同６－ＢＡ和ＮＡＡ浓度处理对出芽率的影响
６–ＢＡ／（ｍｇ／Ｌ） 差异显著性 ＮＡＡ／（ｍｇ／Ｌ） 差异显著性
０．２ ３５ｂＢ ０．１ ４３ａＡ
０．５ ４０ｂＢ ０．２ ５０ａＡ
１ ６３ａＡ ０．５ ５８ａＡ
２ ５４ａＡ １ １０．２５ｂＢ
注：同一列不同小写字母表示在０．０５水平差异显著，同一列不同
大写字母表示在０．０１水平差异极显著。下同。
２．３ 不同激素浓度对增值率的影响
将诱芽萌发的小苗剪成０．５～１．０ｃｍ长茎段，接
种在继代培养基中进行增殖培养，其增殖统计结果见
表４，分析结果见表５。
表４ 不同激素浓度对增值系数的影响
序号
６－ＢＡ
／（ｍｇ／Ｌ）
ＮＡＡ
／（ｍｇ／Ｌ）
接种株
数／株
转接时株
数／株
增值
系数
愈伤
大小
１ ０．２ ０．０５ ２０ ５７ ２．８５ 小
２ ０．４ ０．０５ ２０ ５７ ２．８５ 偏小
３ ０．６ ０．０５ １０ ２１ ２．１ 偏大
４ １．０ ０．０５ ２０ ６７ ３．３５ 大
５ ０．２ ０．１ ２０ ６１ ３．２１ 大
６ ０．４ ０．１ ２０ ４９ ２．５８ 大
７ ０．６ ０．１ ２０ ５２ ２．６０ 大
８ １．０ ０．１ ２０ ７６ ３．８０ 大
９ ０．２ ０．２ ２０ ５８ ３．２２ 大
１０ ０．４ ０．２ １０ １５ ２．１４ 偏大
１１ ０．６ ０．２ ２０ ６１ ３．０５ 偏大
１２ １．０ ０．２ ２０ ５６ ３．２９ 偏大
１３ ０．２ ０．４ １０ １８ ２．２５ 大
１４ ０．４ ０．４ ２０ ５３ ２．７９ 大
１５ ０．６ ０．４ ２０ ６１ ３．８１ 偏大
１６ １．０ ０．４ ２０ ６２ ３．６４ 大
由表５显著性分析看出，海州常山在不同激素浓
度中的增值率差异性不显著，增殖系数在２．１～３．８１
范围内，但６－ＢＡ浓度水平在０．４ｍｇ／Ｌ、ＮＡＡ浓度水
平在０．１ｍｇ／Ｌ以上时，愈伤组织增大，影响苗木质
量。综合增殖率和苗木质量情况，认为海州常山的最
佳继代增殖培养基为改良 ＭＳ１＋６－ＢＡ ０．２ｍｇ／Ｌ～
０．４ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ ０．０５ｍｇ／Ｌ～０．１ｍｇ／Ｌ。
表５ 不同６－ＢＡ、ＮＡＡ浓度处理对增殖系数的影响
６－ＢＡ／（ｍｇ／Ｌ） 差异显著性 ＮＡＡ／（ｍｇ／Ｌ） 差异显著性
０．２ ２．８８ａＡ ０．０５ ２．７９ａＡ
０．４ ２．５９ａＡ ０．１ ３．０５ａＡ
０．６ ２．８９ａＡ ０．２ ２．９３ａＡ
１．０ ３．５２ｂＢ ０．４ ３．１２ａＡ
注：愈伤大小范围：大表示直径＞０．５ｃｍ，偏大表示直径０．３～０．５
ｃｍ范围，偏小表示直径在０．１５～０．３ｃｍ范围，小表示直径＜０．１５ｃｍ。
２．４ 基本培养基成份对苗子玻璃化程度的影响
在培养前期，材料容易出现玻璃化现象，现对几
种大量和微量元素作适当调整，以降低苗子玻璃化程
度。接种时材料选择无玻璃化的健壮植株。
表６ 基本培养基成份的调整对玻璃化的影响
基本培养基
成份调整
接种株
数／株
转接时株
数／株
玻璃化株
数／株
玻璃化
率／％
降低２０％ ＮＯ［３－ ２０ ６２ １５ ２４．２％
增加２０％Ｃａ［２＋ ２０ ６５ １７ ２６．２％
增加２０％ Ｍｇ［２＋ ２０ ５９ １８ ３０．５％
增加２０％Ｆｅ［２＋ ２０ ６６ ２０ ３０．３％
ＣＫ ２０ ６０ ３０ ５０．０％
根据表６的数据可以看出，对基本培养基大量元
素作适当调整，对玻璃化率有一定程度的影响，其中
降低培养基中 ＮＯ３－含量效果最好，其余的效果也不
错，所以在前期的培养过程中，可以根据表６对培养
基作一定的调整，提高苗木质量。
２．５ 不同激素浓度对组培苗生根的影响
从表７的数据中可以看出，海州常山生根比较容
易，实验设计的１６个号，均能达到明显的生根效果，
其生根率从８５％～１００％不等，但各个号生根质量不
同，其中ＡＢＴ ０．２ｍｇ／Ｌ的生根培养基中，生根率最
高，苗木质量最好。综上所述，海州常山的最佳生根
培养基为改良 ＭＳ２＋ＡＢＴ ０．２ｍｇ／Ｌ。
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表７ 不同激素浓度对生根率的影响
序号
ＡＢＴ
／（ｍｇ／Ｌ）
ＩＢＡ
／（ｍｇ／Ｌ）
ＮＡＡ
／（ｍｇ／Ｌ）
接种株
数／株
生根株
数／株
生根率
／％
愈伤直
径／ｃｍ
１ ０ ０ ０．２ ２０ １９ ９５ ０．２～０．５
２ ０ ０ ０．４ ２０ ２０ １００ ０．５～０．７
３ ０ ０ ０．６ ２０ ２０ １００ ０．５～１．０
４ ０ ０ ０．８ ２０ ２０ １００ ０．５～０．８
５ ０ ０．２ ０ ２０ １８ ９０ ０．３～０．５
６ ０ ０．４ ０ ２０ ２０ １００ ０．３～１．０
７ ０ ０．６ ０ ２０ ２０ １００ ０．２～０．８
８ ０ ０．８ ０ ２０ ２０ １００ １．０～１．２
９ ０ ０．２ ０．４ ２０ ２０ １００ ０．８～１．５
１０ ０ ０．４ ０．２ ２０ ２０ １００ １．０～１．２
１１ ０ ０．６ ０．４ ２０ ２０ １００ ０．５～１．０
１２ ０ ０．４ ０．６ ２０ ２０ １００ ０．６～１．０
１３ ０．２ ０ ０ ２０ ２０ １００ ＜０．１５
１４ ０．４ ０ ０ ２０ １７ ８５ ＜０．１５
１５ ０．６ ０ ０ ２０ １９ ９５ ＜０．１５
１６ ０．８ ０ ０ ２０ １９ ９５ ＜０．１５
２．６ 不同基质对移栽成活率的影响
从表８可知，以腐殖土、园土和５０％腐殖土＋
５０％园土作为海州常山栽培基质，成活率均维持在
８５％以上的较高水平，其中腐殖土的成活率最高，达
到９２％，说明腐殖土是海州常山组培苗比较理想的栽
培基质。
表８ 不同栽培基质对其成活率的影响
栽培基质 栽培株数／株 成活株数／株 成活率／％
腐殖土 １００ ９２ ９２
原土 １００ ８５ ８５
５０％腐殖土＋５０％原土 １００ ８９ ８９
３ 结果与讨论
海州常山用幼嫩材料和半木质化２种材料，均可
诱导成功。在海州常山外植体无菌株的建立过程中，
幼嫩材料 ＨｇＣｌ２ 处理时间在２ｍｉｎ左右时成活率明
显增加，半木质化材料消毒时间控制在３～７ｍｉｎ之
间。在实际操作中，应根据材料的木质化程度来决定
最佳消毒时间，均可取得理想的效果。
海州常山在诱导和继代增殖培养过程中，往往容
易发生玻璃化现象，通过控制培养环境，如增加光照、
适当降低温度和空气湿度，并结合对培养基成份的调
整，如降低ＮＯ３－、增加Ｃａ２＋、增加 Ｍｇ２＋和增加Ｆｅ２＋
等，都能达到明显降低玻璃化率的效果。
海州常山在继代增殖培养和生根培养中，剪口部
位容易出现愈伤组织，因此，在确定最佳继代增殖最
佳生根培养基时，需要在保证增殖系数要求和生根要
求的前提下，兼顾愈伤形成的大小，确保苗木质量和
移栽成活率。
本试验研究当中，筛选出海州常山最佳诱导培养
基为 ＭＳ＋６－ＢＡ １．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ ０．５ｍｇ／Ｌ；最佳增
殖培养基为改良 ＭＳ１＋６－ＢＡ ０．２ｍｇ／Ｌ～０．４ｍｇ／Ｌ
＋ＮＡＡ ０．０５ｍｇ／Ｌ～０．１ｍｇ／Ｌ；最佳生根培养基为
改良 ＭＳ２＋ＡＢＴ ０．２ｍｇ／Ｌ；以腐殖土为移栽基质，成
活率在９２％以上，并且生根苗移栽３０ｄ左右材料木质
化程度较高时，可进行室外栽培。本研究建立的组培
体系稳定，具有苗木繁殖系数高、瓶苗生长健壮等优
点，同时应用腐殖土作为移栽基质，移栽成活率高，自
然过渡快等优点，完全可以达到进行工厂化育苗的标
准，在满足海州常山产业化发展对苗木需求的同时，
有效的保护了海州常山这一优质的野生植物资源。
参考文献：
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文摘，２０１１（９）：１４３－１４４
［２］ 张玉英 ．盐碱地区园林绿化的好树种———海州常山［Ｊ］．
河北林业科技，２０１０（３）：１０７－１０８．
［３］ 包峥焱 ．海州常山繁殖方法的研究［Ｊ］．北京园林，２００５
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东林业科技，２００４（４）：３６．
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２０１２，２５ ６（１）：７３－７４．
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枝扦插生根的影响［Ｊ］．东北林业大学学报，２０１２，４０
（８）：１０－１２，４６．★
（栏目责任编辑 蒋旭东）