全 文 :第39卷 第12期 西 南 师 范 大 学 学 报 (自然科学版) 2014年12月
Vol.39 No.12 Journal of Southwest China Normal University(Natural Science Edition) Dec.2014
DOI:10.13718/j.cnki.xsxb.2014.12.012
蕹菜过氧化物酶固定化条件分析
及固定化对其理化性质影响
①
王红扬1,2,3, 孙才云1,2,3, 黄 忙1,2,3, 唐云明1,2,3
1.西南大学 生命科学学院,重庆400715;2.重庆市甘薯工程研究中心,重庆400715;
3.三峡库区生态环境教育部重点实验室,重庆400715
摘要:利用0.2%聚乙烯醇-海藻酸钠(PVA-CA)作载体,饱和硼酸作交联剂,CaCl2 作固定剂固定蕹菜POD,通过
单因素试验探究了各个因素对固定化的影响;再通过正交实验分析,发现在饱和硼酸-6%CaCl2,固定化时间为45
min,载体与酶液比例为1∶2和0.2%PVA-3%CA条件下固定化蕹菜叶POD最佳.固定化酶的最适温度、温度稳
定性均升高,并且重复使用7次后酶活力还剩余50%以上.
关 键 词:固定化;蕹菜;过氧化物酶;理化性质
中图分类号:Q55 文献标志码:A 文章编号:1000-5471(2014)12-0058-07
过氧化物酶(Peroxidase,POD)是一类在生物体内普遍存在的、由单一肽链和铁卟啉组成的血红蛋白
类氧化酶,催化由 H2O2 参与的氧化反应,例如参与胺类和酚类化合物的氧化反应.POD在生物体内发挥
多种重要功能,例如参与分解吲哚乙酸[1]、合成木质素[2]和植物体内防御反应[3].当今,该酶不仅广泛用
于免疫印迹[4]、酶联反应[5]和电镜技术[6]等生物学研究,而且在污水处理[7]、生物传感器[8]等领域发挥重
要作用.
酶在催化过程中表现出来的高效性、专一性以及反应条件温和,使其得到越来越多的关注.但是另一
方面,酶的不稳定性,尤其是一次性使用也限制了其催化领域的进一步发展.固定化酶是指将酶与特定载
体相结合,从而将酶固定在载体上的过程.固定化的酶不但非常容易与底物以及产物分开,而且提高了酶
的稳定性,可以反复使用.目前虽然已有辣根[9]、大豆皮[10]、莲藕[11]、甘薯叶[12]、菊芋[13]过氧化物酶固定
化的相关报道,但是,本实验原材料蕹菜,又称空心菜 (Ipomoea aquatica Forsk),不但在我国华南、华中、
华东和西南各地普遍栽种,而且相对于其他植物,可持续收割,价格低廉,每公顷产高达75 000kg,是生
产廉价POD并进行固定化的理想材料.因此对于蕹菜来源的过氧化物酶的固定化进行研究具有很大意义,
本实验以分离纯化得到的蕹菜POD为材料,利用包埋法对其进行固定化,采用单因素和正交试验法分析
影响固定化的条件,并且对固定化前后的理化性质进行对比分析.
1 材料和方法
1.1 实验材料
以本实验室分离纯化得到的电泳纯的蕹菜POD作为实验材料.
① 收稿日期:2014-05-20
基金项目:重庆市科委重点攻关项目(CSTC,2011AB1027).
作者简介:王红扬 (1987-),男,河南南阳人,硕士研究生,主要从事蛋白质与酶工程的研究.
通信作者:唐云明,教授.
1.2 主要试剂与仪器
聚乙烯醇(PVA),海藻酸钠(CA),上海化学试剂公司;CaCl2,加拿大BIO BASIC公司,其余试剂均
为国产分析纯.
UV-2550紫外可见分光光度计,日本岛津公司;精密电子天平,Mettler-Toledo Group;Mil-Q plus超
纯水仪,Milipore;SevenEasy精密pH计,Mettler-Toledo.
1.3 实验方法
1.3.1 固定化过氧化物酶的制备
本实验运用了聚乙烯醇(PVA)-海藻酸钠(CA)为载体,包埋法固定蕹菜POD.海藻酸钠(CA)反应条
件温和,能够与二价阳离子Ca2+,Ba2+等结合后可形成凝胶,但是机械强度低,而聚乙烯醇(PVA)机械强
度大,因此将两种材料混合使用,以取得理想的包埋效果.
在加热条件下,0.2g聚乙烯醇(PVA)溶于100mL超纯水中,待溶液澄清后,加入一定量的海藻酸
钠,制得0.2%PVA-CA溶液,作为固定化酶的载体;冷却后加入酶液并混合均匀,用注射器滴入氯化钙
溶液中,4℃固定.待酶固定后,滤出并清洗3次,4℃下进行保存.
1.3.2 不同因素对固定化效果的影响
1.3.2.1 海藻酸钠浓度对固定化的影响
配制海藻酸钠浓度梯度为1~5%的0.2%PVA-CA溶液,再加入等体积酶液,摇匀后加入3%CaCl2-
饱和硼酸,4℃静置30min后测定相对酶活力.
1.3.2.2 CaCl2 浓度对固定化的影响
配制浓度分别为2%~10%的CaCl2-饱和硼酸,载体与酶液体积比为2∶1,二者混合,4℃静置30min
后测定相对酶活力.
1.3.2.3 加酶量对固定化的影响
将载体与酶液按照体积比1∶1,1∶1.5,1∶2,1∶2.5,1∶3混合,与饱和硼酸-3%CaCl2 溶液混合,
4℃静置30min后测定相对酶活力.
1.3.2.4 固定化时间对固定化效果的影响
将载体与酶液按体积比2∶1混匀,与3%CaCl2-饱和硼酸混合,4℃分别静置15,30,45,60min后测
定相对酶活力.
1.3.3 固定化酶条件的多因素优化———正交优化实验
1.3.3.1 因素以及水平的确定
通过单因素实验,我们得到影响酶固
定化的4个因素,即:海藻酸钠浓度A,
加酶量B,饱和硼酸-CaCl2 浓度C和固定
化时间D.为研究这4个因素共同作用时
对蕹菜过氧化物酶固定化的影响,我们确
定了3个水平(见表1),进行正交实验.
表1 正交实验设计因素及水平
因 素 水 平
CA浓度A/% 1,2,3
加酶量B 1∶1,1∶2,1∶3
饱和硼酸-CaCl2 浓度C/% 6,8,10
固定化时间D/min 15,30,45
1.3.3.2 正交优化设计
利用正交设计助手,考虑上述A,B,C,D4个因素,每个因素3个水平,按正交设计表L9(34)进行实验
设计,方案如表2所示.
1.3.4 固定化酶部分性质的测定
1.3.4.1 最适温度测定
分别测定固定化酶在20℃~80℃条件下的催化活性.
1.3.4.2 温度稳定性的测定
将酶分别在20℃~70℃条件下保存75min,每15min测定1次酶活.
95第12期 王红扬,等:蕹菜过氧化物酶固定化条件分析及固定化对其理化性质影响
表2 正交实验设计计划表
所在列 1 2 3 4
因素 A B C D
实验1 2% 1∶1 6% 15
实验2 2% 1∶2 8% 30
实验3 2% 1∶3 10% 45
实验4 3% 1∶1 8% 45
实验5 3% 1∶2 10% 15
实验6 3% 1∶3 6% 30
实验7 4% 1∶1 10% 30
实验8 4% 1∶2 6% 45
实验9 4% 1∶3 8% 15
1.3.4.3 最适pH值的测定
分别测定pH值在3~8条件下的催化活性.
1.3.4.4 pH稳定性的测定
将酶分别pH值在3~8条件下保存1h,每15min测定1次酶活.
1.3.4.5 固定化酶的重复使用稳定性
测定酶活后用双蒸水冲洗干净,连续测定,重复10次.
2 结果与分析
2.1 固定化酶条件的单因素优化结果
2.1.1 海藻酸钠浓度对固定化酶活性的影响
如图1所示,0.2%PVA-3%CA固定化后的酶活力最高,并且硬度大,有一定弹性,不易碎.
2.1.2 载体与酶的比例对固定化酶活性的影响
如图2所示,随比例的增加,酶活力逐渐升高;但是当比例大于1∶2之后,酶活力逐渐降低,因此载
体与酶最合适的比例是1∶2.
图1 海藻酸钠浓度
对固定化POD活性的影响
图2 载体与酶液比例
对固定化POD活性的影响
2.1.3 CaCl2 浓度对固定化酶活性的影响
如图3所示,在CaCl2 浓度为2%~8%浓度范围内,酶活力逐渐增加;当CaCl2 浓度大于8%时,酶活
逐渐减小.因此最适合的CaCl2 浓度是8%.
2.1.4 时间对固定化酶活性的影响
如图4所示,当固定化时间为30min时,固定化酶活性最高;之后随着时间延长,酶活逐渐降低.
06 西南师范大学学报(自然科学版) http://xbbjb.swu.cn 第39卷
图3 CaCl2 浓度对固定化蕹菜叶
POD活性的影响
图4 固定化时间对固定化蕹菜叶
POD活性的影响
2.2 固定化酶条件的多因素优化———正交优化实验结果
正交实验以及直观分析结果如表3所示.
表3 正交实验设计及结果计算表
试验号 A B C D 酶活回收率/%
实验1 2% 1∶1 6% 15 50.4
实验2 2% 1∶2 8% 30 45.9
实验3 2% 1∶3 10% 45 52.2
实验4 3% 1∶1 8% 45 48.6
实验5 3% 1∶2 10% 15 51.9
实验6 3% 1∶3 6% 30 54.7
实验7 4% 1∶1 10% 30 42.3
实验8 4% 1∶2 6% 45 56.7
实验9 4% 1∶3 8% 15 44.2
K1 49.500 47.100 53.933 48.833
K2 51.733 51.500 46.233 47.633
K3 47.733 50.367 48.800 52.500
极差 4.000 4.400 7.700 4.867
根据表3数据可知,4个因素对固定化酶的酶活力回收率的影响从大到小依次为C,D,B,A.因此蕹菜
POD固定化最佳组合为C1D3B2A2,即在饱和硼酸-6%CaCl2,固定化时间为45min,载体与酶液比例为
1∶2和0.2%PVA-3%CA条件下固定蕹菜POD最佳.
2.3 固定化酶性质鉴定
2.3.1 固定化蕹菜POD的最适温度
如图5所示,固定化后,酶的最适温度由固定前的40℃上升为60℃,说明固定化酶具有更高的稳定
性,可以在更高的温度下催化反应.
图5 蕹菜过氧化物酶固定后最适温度变化
16第12期 王红扬,等:蕹菜过氧化物酶固定化条件分析及固定化对其理化性质影响
2.3.2 固定化蕹菜叶POD的温度稳定性变化
如图6所示:固定化酶的活性在20℃~60℃范围内较稳定,与固定化前相比,在60℃时仍然能够保
持较高的酶活,说明蕹菜POD固定化后稳定性增加.
图6 蕹菜过氧化物酶固定化后热稳定性变化
2.3.3 固定化蕹菜叶POD的最适pH值变化
如图7所示,和固定化前相比,固定化后的蕹菜叶POD最适pH仍然为pH6.
图7 蕹菜过氧化物酶固定化后最适pH变化
2.3.4 固定化蕹菜叶POD的pH值稳定性变化
如图8所示,固定化后的蕹菜POD在pH值为5~8范围内具有较高活性,与固定前大致相同.
图8 蕹菜过氧化物酶固定化后pH稳定性变化
2.3.5 固定化蕹菜叶POD的重复使用稳定性
如图9所示,使用第4次时酶活力最大,达到96%,可能是由于浸泡后,凝胶通透性提高,增加了酶
与底物的接触面积.重复使用7次后,酶活力仍然大于50%,表明该固定化的酶具有良好的重复使用性.
26 西南师范大学学报(自然科学版) http://xbbjb.swu.cn 第39卷
图9 固定化酶的重复使用稳定性
3 讨 论
酶的固定化常见的方法有吸附法、包埋法、结合法、
交联法等,研究者使用不同方法采用不同载体对酶固定
化进行了深入的研究.董学卫等[14]使用交联法以聚乙二
醇改性壳聚糖为载体,对影响纤维素酶固定化的因素进
行了探讨.于海用共价结合法将辣根过氧化物酶(HRP)
固定在坚硬耐磨的石英砂上,研究固定化的最佳反应条
件.王苗苗[15]以新颖的介孔二氧化硅磁性复合材料为载
体,研究了固定漆酶的条件.曾嘉等[16]以壳聚糖微球为
载体,分析了固定化的葡萄糖氧化酶的性质.锁爱莉
等[17]分析以疏水-亲水型硅胶作为载体固定化葡萄糖氧化酶的性能,以期制备测定葡萄糖浓度的生物传
感器.
单因素条件分析,得到在0.2%PVA-3%CA,载体与酶比例1∶2,CaCl2 浓度是8%和固定化时间30
min时可以获得最佳固定效果.正交试验结果显示,各条件影响力的大小依序为CaCl2 浓度,固定化时间,
载体与酶比例,海藻酸钠浓度,因此最佳反应条件是饱和硼酸-6%CaCl2,固定化时间为45min,载体与酶
液比例为1∶2和0.2%PVA-3%CA,与甘薯叶固定化的最佳条件不同.CaCl2 的影响最大可能是因为,钙
离子与海藻酸钠结合生成海藻酸钙凝胶,影响凝胶的疏密程度,从而进一步影响了酶与底物的接触面积.
蕹菜POD经固定化后,最适温度由40℃上升为60℃,高于固定化的莲藕过氧化物酶的最适温度50℃,
表明固定化增加了酶的温度作用范围.固定化酶的活性在20℃~60℃范围内较稳定,略高于木素过氧化
物酶[18]稳定性.与固定化前相比,在60℃时仍然能够保持较高的酶活,说明蕹菜POD固定化后稳定性增
加.而固定化前后最适pH及其pH稳定性没有明显变化,而大豆皮过氧化物酶经氧化铝海藻酸钠固定化
后最适pH由5升高为6.此外,重复使用7次后,固定化酶的相对活力仍然大于50%,与固定化的菊芋叶
片POD的重复使用稳定性相似,说明蕹菜固定化的POD重复使用性良好,增加了该酶的使用效率.
参考文献:
[1] ZHENG X,VAN HUYSTEE R B.Oxidation of Tyrosine by Peroxidase Isozymes Derived from Peanut Suspension Cul-
ture Medium and by Isolated Cel Wals[J].Plant Cel,Tissue and Organ Culture,1991,25(1):35-43.
[2] CHRISTENSEN J H,BAUW G,et al.Purification and Characterization of Peroxidases Correlated with Lignification in
Poplar Xylem[J].Plant Physiology,1998,118(1):125-135.
[3] PASSARDI F,PENEL C,DUNAND C.Performing the Paradoxical:How Plant Peroxidases Modify the Cel Wal[J].
Trends in Plant Science,2004,9(11):534-540.
[4] 丁薪源,曹建康.果蔬过氧化物酶酶学特性研究进展 [J].食品科技,2012,37(10):62-66.
[5] 李宗妍,曹立民,林 洪,等.水产品中恩诺沙星残留的一步法酶联免疫检测研究 [J].食品科学,2009,30(10):
231-235.
[6] 钟 薇,秦培勇,刘长霞,等.辣根过氧化物酶修饰电极的电化学研究 [J].北京化工大学学报:自然科学版,2009,
36(2):18-22.
[7] LA ROTTA C E,BON E P.4-Chlorophenol Degradation by Chloroperoxidase from Caldariomyces Fumago:Formation
of Insoluble Products[J].Applied Biochemistry and Biotechnology,2002,98(3):191-204.
[8] 冯 东,李雪梅,王丙莲,等.用辣根过氧化物酶生物传感器测定啤酒中的过氧化氢 [J].酿酒科技,2011,12:
37-39.
[9] 于 海.辣根过氧化物酶在石英砂上的固定化以及在有机污染控制上的应用 [D].南京:南京农业大学,2012.
[10]高晶晶.大豆皮过氧化物酶提取、分离、纯化及其固定化研究 [D].西安:西北大学,2011.
36第12期 王红扬,等:蕹菜过氧化物酶固定化条件分析及固定化对其理化性质影响
[11]阙瑞琦,张丽丽,郭小路,等.莲藕过氧化物酶的分离纯化及性质研究 [J].西南大学学报:自然科学版,2007,
29(12):63-67.
[12]付伟丽,唐靓婷,王 松,等.甘薯叶过氧化物酶的分离纯化及其部分性质研究 [J].食品科学,2010,31(7):
223-227.
[13]胡丽莲.菊芋叶片过氧化物酶的分离纯化及其固定化研究 [D].桂林:广西师范大学,2003.
[14]董学卫,朱启忠,于秀敏,等.纤维素酶固定化研究 [J].哈尔滨理工大学学报,2008,13(5),118-122.
[15]王苗苗.介孔二氧化硅磁性复合微球的制备及漆酶固定化 [D].北京:北京工业大学,2012
[16]曾 嘉,郑连英,于世清.壳聚糖微球固定化:葡萄糖氧化酶的研究 [J].食品工业科技,2002.23(1):29-31.
[17]锁爱莉,姚 煜,李思孝.疏水-亲水型硅胶固定化葡萄糖氧化酶的研究 [J].西安交通大学学报:医学版,2004,
25(3):229-232.
[18]吴叶明.木素过氧化物酶的生产、固定化及其在染料降解中应用 [D].杭州:浙江工业大学,2008.
On Conditions of Immobilization and Its Effects on Characterization
of Peroxidase from Ipomoea Aquatica Forsk
WANG Hong-yang1,2,3, SUN Cai-yun1,2,3,
HUANG Mang1,2,3, TANG Yun-ming1,2,3
1.School of life Science,Southwest University,Chongqing 400715,China;
2.Chongqing Sweet Potato Enginneering Research Center,Chongqing 400715 ,China;
3.Key Laboratory of Eco-environments in Three Gorges Reservoir Region,Ministry of Education,Chongqing 400715,China
Abstract:Electrophoresis-purity peroxidase(POD)from Ipomoea aquatica Forskhas beenimmobilized with
0.2%PVA-CA as carrier,saturated boric acid solution as cross linker and CaCl2as fixing agent.Their
effects on POD immobilizationare determined by means of single factor analysis,and the optimal combina-
tion of their agents via orthogonal test are 0.2%PVA-3%CA,the 1∶2ratio between PVA-VA and en-
zyme,saturated boric acid-6%CaCl2and 45min immobilizing time.After immobilization,the optimal tem-
perature,stability in high temperature and the reuse stability enhanced.
Key words:Ipomoea aquatica Forsk;peroxidase;immobilization;characterization
责任编辑 周仁惠
46 西南师范大学学报(自然科学版) http://xbbjb.swu.cn 第39卷