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高温胁迫对大花三色堇幼苗相关生理指标的影响



全 文 :第30卷第6期
2012年12月
上 海 交 通 大 学 学 报 (农 业 科 学 版)
JOURNAL OF SHANGHAI JIAOTONG UNIVERSITY(AGRICULTURAL SCIENCE)
Vol.30No.6
 Dec.2012
文章编号:1671-9964(2012)06-0066-06  DOI:10.3969/J.ISSN.1671-9964.2012.06.0013
收稿日期:2012-06-25
作者简介:彭华婷(1987-),女,硕士生,研究方向:观赏植物逆境生理,E-mail:sherry626@sjtu.edu.cn;
杜红梅(1974-)为本文通讯作者,女,博士,副教授,研究方向:植物逆境生理,E-mail:hmdu@sjtu.edu.cn
高温胁迫对大花三色堇幼苗相关生理指标的影响
彭华婷1,高 悦1,杜红梅1,钱海忠2,王培宏2
(1.上海交通大学 农业与生物学院,上海200240;2.上海源怡种苗有限公司,上海201314)
摘 要:由高温引起的幼苗死亡,成苗率低是大花三色堇育苗以及幼苗生长过程中存在的主要问
题。本文以大花三色堇(Viola tricolor var.hortensis)“和谐系列”抗热的黄色品种和不抗热的绯
红渐变品种为材料,研究了12d的高温处理(35℃/30℃)对大花三色堇幼苗相关生理指标的影
响。结果表明,在高温胁迫下,2个品种的Fv/Fm值下降;与绯红渐变品种相比,在高温胁迫下黄
色品种的叶片具有较强的水分保持能力;随着高温胁迫时间的延长,2个品种的电解质外渗和丙二
醛含量增加,而且与黄色品种相比,高温胁迫对绯红渐变品种的影响更显著;与0d相比,在长时间
高温胁迫下,2个品种的CAT活性显著下降,SOD活性显著上升,而且黄色品种的SOD活性均显
著高于绯红渐变品种。
关键词:大花三色堇;高温胁迫;电解质外渗;丙二醛含量;过氧化氢酶;超氧化物歧化酶
中图分类号:S681.9    文献标识码:A
Efects of Heat Stress on Related Physiological Indexes of
Pansy Cultivar Seedlings
PENG Hua-ting1,GAO Yue1,DU Hong-mei1,QIAN Hai-zhong2,WANG Pei-hong2
(1.School of Agriculture and Biology,Shanghai Jiaotong University,Shanghai 200240,China;
2.Shanghai Yuanyi Seedling Co.,Ltd.,Shanghai 201314,China)
Abstract:High temperature stress is a serious issue inducing seedling death and low plantlet formation in
Pansy(Viola tricolor var.hortensis)seeding and seedling growth.Seedlings from two cultivars of Pansy,
heat-tolerant yelow cultivar (‘Harmony’series)and heat-sensitive shadowed crimson cultivar,were
chosen respectively to investigate the effect of high temperature(35℃/30℃)treatment for 12days on
their related physiological indexes.The results showed that heat stress caused a significant decrease in Fv/
Fm for two cultivars.Compared with shadowed crimson cultivar,yelow cultivar had a greater water-
holding capability.With the extension of heat stress,electrolyte leakage and MDA content increased in both
cultivars.Furthermore,compared with yelow cultivar,the effects of heat stress on shadowed crimson
cultivar were more serious.The activity of CAT decreased significantly while the SOD activity increased
significantly compared with that of treatment at 0dunder long-term heat stress.The activity of SOD in
yelow cultivar was significantly higher than that in shadowed crimson cultivar.
Key words:Viola tricolor var.hortensis;heat stress;electrolyte leakage;malondialdehyde content;
catalase;superoxide dismutase
第6期 周 音,等:钩唇石斛离体快速繁殖技术体系的建立
  高温是限制植物生长和发育最重要的非生
物胁迫因子之一[1]。近年来,随着全球气温升
高,高温胁迫对于植物生长发育的影响引起了各
国研究者的广泛关注[2]。以抗高温的品种为材
料,研究植物抗高温的分子机理,提高热敏感品
种对高温的抗性,已经成为目前植物抗逆生理研
究中 的 一 项 紧 迫 任 务。大 花 三 色 堇 (Viola
tricolor var.hortensis)为堇菜科堇菜属的二年生
花卉。它品种繁多,花色鲜艳,花期长,有“花坛
皇后”的美誉,是上海地区最常用的冬春季花坛
花卉。大花三色堇的育苗主要在夏秋季进行,此
时正值高温,由于高温引起的成苗率低以及种苗
移栽初期死亡率高,是目前大花三色堇推广过程
中遇到的主要问题。不同大花三色堇品种的抗
热性不同。田间观察发现,与红色系的品种相
比,黄色系的品种对高温的抗性强,种苗的成苗
率高(未发表)。
高温胁迫影响植物的形态结构和生理功能。叶
片的相对含水量(relative water content,RWC)、光
化学效率(photochemical efficiency,Fv/Fm)和细
胞膜稳定性的变化和植物的抗热性有关。叶绿素荧
光反应植物的光化学效率。电解质外渗(electrolyte
leakage,EL)是衡量细胞膜稳定性的重要指标。高
温胁迫下,月季、萱草等植物叶片的RWC下降、Fv/
Fm降低、EL值增加[3-5]。膜脂过氧化作用是导致
膜结构破坏,引起植物损伤甚至死亡的重要原因。
丙二醛(malondialdehyde,MDA)是膜脂过氧化的重
要产物。大量研究表明,高温胁迫导致 MDA的含
量升 高[1,4,6]。植 物 体 内 过 氧 化 氢 酶 (catalase,
CAT)、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,
SOD)等细胞膜保护酶与植物的耐热性有关[7]。高
温胁迫下,玉簪的CAT活性下降[8],矮牵牛的SOD
活性上升[9]。孔令芳[10]等的研究结果表明,在高温
胁迫条件下,大花三色堇幼苗的细胞膜透性增加,
MDA含量上升。而关于高温胁迫对大花三色堇幼
苗RWC的影响以及抗氧化酶活性的变化与大花三
色堇幼苗抗热性的关系,均未见报道。
本文以大花三色堇“和谐系列”抗热的黄色品种
和热敏感的绯红渐变品种为材料,研究了12d的高
温处理对大花三色堇叶片RWC、光化学效率、细胞
膜的稳定性、膜脂过氧化以及抗氧化酶活性的影响,
旨在为大花三色堇品种的育苗、苗期管理以及抗高
温品种的选育提供依据。
1 材料与方法
1.1 实验材料及培养条件
以上海源怡种苗公司提供的大小一致,生长良
好的‘和谐’系列的黄色和绯红渐变2个花色的品种
为材料。在5叶1心期(苗龄42d左右)将幼苗移
入人工气候箱(HP 1500GS-B)内,保持温度20℃/
15℃(昼温/夜温),光照强度20 000lx,光周期
14h,相对湿度90%~95%。每天浇水1次,每2d
浇1次1/4的 Hoagland营养液。驯化处理7d后,
将温度升至35℃/30℃,开始进行高温处理。保持
其他环境条件不变。高温处理的幼苗每天浇水2
次,以保持基质湿润。每个处理100株,重复4次。
在处理期间每天更换一下苗盘在生长箱中的位置,
以减少其他环境条件可能对幼苗生长产生的影响。
在处理后的0、4、8和12d,分析高温处理对黄
色和绯红渐变2个品种 Fv/Fm、RWC、EL 值、
MDA含量以及抗氧化酶活性的影响。用于 MDA
含量和抗氧化酶活性分析的叶片,取样后液氮快速
冷冻,然后置于-80℃冰箱中保存。
1.2 试验方法
1.2.1 生理指标的测定
Fv/Fm的测定:利用OS1-FL型叶绿素荧光仪
测定可变荧光和最大荧光的比值来表征。选取完全
伸展的叶片,暗适应15min后直接读数,每个处理
测定重复3次,取平均值。
RWC的测定:参照Barrs和 Weatherley描述的方
法[12],取4~5片充分伸展的叶片,立即称重,得到叶片
的鲜重(fresh weight,FW),然后将叶片装入茶包袋中,
浸入含有约15mL去离子水的培养皿中。24h后取
出,用吸水纸将叶片表面的水份擦干后,迅速称重,得
到叶片的饱和鲜重(turgid weight,TW)。叶片RWC的
计算方法为:(FW-DW)/(TW-DW)×100%。
EL值的测定:参照 DaCosta等[13]的方法,将
3~4片重量为0.2g的叶片,去除叶柄后剪成1cm
的长条,放入50mL离心管中,用去离子水润洗3
遍后,加入20mL去离子水,室温下置于200r/min
的摇床上,振荡24h后,用FE30型电导率仪测定初
始电导率(Cinitial);然后121℃高温处理30min后,
置于摇床上再次振荡24h,测定最终电导率(Cmax)。
EL值的计算方法为:Cinitial/Cmax×100%。
1.2.2 丙二醛含量和抗氧化酶活性的测定
酶液的制备:取0.25g低温保存的叶片,液氮
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充分研磨后,分次加入4mL pH7.8的磷酸缓冲液
(含1%的PVP和0.2mmol/L的EDTA),研磨至
匀浆,4℃,12 000r/min离心30min,将上清液分
装,-20℃保存,用于 MDA含量测定和抗氧化酶
活性分析。
MDA含量测定:采用硫代巴比妥酸法,0.5mL
的酶液中加入1mL含20%三氯乙酸、0.5%硫代巴
比妥酸的反应液;混合均匀,95℃加热30min后迅
速冷却至室温,然后 20 ℃,12 000r/min 离心
20min。去除沉淀,使用分光光度计测定上清液在
波长532nm和600nm处的吸光度值。参照Heath
和Packer[14]的方法,计算溶液中 MDA的含量。
CAT活性的测定:参照 Chance和 Maehly[15]
的方法,3mL反应体系中含有1.9mL 50mmol/L
pH 7.4的磷酸缓冲液,1mL 45mmol/L H2O2 和
0.1 mL 酶液。CAT 活性的表示方法 为 波 长
240nm条件下,每分钟吸光度变化0.01为1个酶
活性单位。
SOD 活 性 的 测 定:参 照 Giannopolitis 和
Ries[16]的方法,3mL反应体系中含有100μL 酶
液,50mmol/L pH 7.8的磷酸缓冲液2.2mL,
195mmol/L甲 硫 氨 酸 溶 液 200μL,3 μmol/L
EDTA 溶液100μL,60μmol/L核黄素200μL,
1.125mmol/L的 NBT 200μL。以不加酶液为对
照。将混合液置于光照强度20 000lx左右的荧光
灯下照射约20min,待测试管转为淡红色后将混合
液转入黑暗条件下终止反应,10min后测定混合液
的吸光度值。SOD酶活性的表示方法为,吸光度
560nm条件下,抑制NBT光还原50%为1个酶活
性单位(U)。
CAT和SOD活性的变化以可溶性蛋白为标
准。参照Bradford[17]方法,采用考马斯亮蓝 G250
法测定高温处理不同时间叶片中的蛋白质含量。
1.3 数据统计与分析
实验采用完全区组设计。应用SAS9.1.2软
件,在P=0.05的水平上,采用Fisher’s最小显著
差数法(LSD)对实验结果进行统计分析。文章中的
图表采用SigmaPlot 10.0软件绘制。
2 结果与分析
2.1 高温处理对光化学效率的影响
随着高温处理时间的延长,2个品种的Fv/Fm
值下降。在高温处理的第8天和第12天,与第0天
相比,2个品种的Fv/Fm值均显著下降。分析相同
高温处理条件下,2个品种Fv/Fm值含量的变化,
发现在第0、4和8天,2个品种的Fv/Fm值差异不
显著。在高温处理的第12天,绯红渐变和黄色品种
的Fv/Fm值分别比对照下降26.17%和18.48%,
黄色品种的Fv/Fm值显著高于绯红渐变品种(如
图1)。
图1 高温胁迫对大花三色堇幼苗叶片
光化学效率(Fv/Fm)的影响
注:不同小写字母表示同一处理不同时间在0.05水平下差异显著;
*表示同一时间不同处理在0.05水平下差异显著,下同。
Fig.1 Effects of heat stress on photochemical efficiency
(Fv/Fm)of pansy seedlings
Note:Different lower-case letters indicate significant
difference at the 0.05level between days of treatment for
each cultivar.Columns marked with*represent significant
difference between cultivars under the same treatment duration.
2.2 高温处理对叶片相对含水量的影响
高温处理对2个品种RWC的影响不同(如图
2)。0~12d的高温处理对黄色品种RWC没有显
著影响。高温处理4d时,与0d相比,绯红渐变品
种的RWC没有显著变化。高温处理8d和12d,绯
红渐变品种的RWC显著下降。比较同一高温处理
图2 高温胁迫对大花三色堇幼苗叶片
相对含水量的影响
Fig.2 Effects of heat stress on relative water content
of leaves in pansy seedlings
86
第6期 彭华婷,等:高温胁迫对大花三色堇幼苗相关生理指标的影响
时间对2个品种RWC的影响,发现在0、4和8d,2
个品种的相对含水量差异不显著。在高温胁迫的第
12天,2个品种的RWC出现显著差异。而且,与对
照相 比,绯红 渐变品种的相对含水 量 下 降 了
20.42%,黄色品种的相对含水量仅下降了3.08%。
2.3 高温胁迫对大花三色堇幼苗叶片电解质外渗
和丙二醛含量的影响
细胞膜透性是反映细胞膜受伤害程度的重要指
标。如图3A所示,在高温胁迫4d时,2个品种的
EL值没有显著变化。在高温胁迫第8天和第12
天,与第0天相比,绯红渐变品种的EL值显著增
加。而黄色品种的EL值在第8天没有显著变化,
第12天显著增加。比较同一高温处理时间对2个
品种EL值的影响,我们发现,在短时间高温处理情
况下(4d),2个品种的EL没有显著差异。在高温
胁迫8d以后,两者出现显著差异。在高温处理第
12天,与对照相比,黄色品种的 EL 值增加了
61.31%,而 绯 红 渐 变 品 种 的 EL 值 增 加 了
259.24%。
图3 高温胁迫对大花三色堇幼苗叶片电解质外渗
(A)和丙二醛含量(B)的影响
Fig.3 Effects of heat stress on electrophyte leakage(A)
and MDA contents(B)of leaves in pansy seedlings
  高温胁迫对2个品种 MDA含量的影响与EL
值的变化表现出同样的趋势。如图3B所示,随着
高温胁迫的时间延长,绯红渐变品种的 MDA含量
在第8、12天变化显著;与对照相比,高温处理4、8
和12d,黄色品种的 MDA含量均显著增加。比较
同一高温处理时间对2个品种 MDA含量的影响,
我们发现,在0、8和12d,绯红渐变品种 MDA含量
显著高于黄色品种。在高温胁迫12d,与对照相比,
前者 MDA 含量增加了 220.48%,后者增加了
166.97%。
2.4 高温胁迫对大花三色堇幼苗叶片抗氧化酶活
性的影响
如图4A,经过4、8和12d的高温胁迫,绯红渐
变品种的CAT活性均显著下降。4和8d的高温
胁迫对黄色品种CAT活性没有显著影响,而在高
温胁迫12d后,黄色品种的CAT活性显著下降。
在0~12d的高温胁迫下,2个品种的CAT活性之
间均没有显著差异。
高温处理使2个品种的SOD酶活性显著增加。
随着高温胁迫时间增加,绯红渐变品种SOD酶活性
显著增加。黄色品种SOD酶活性在4和12d显著
高于对照,在8d时和对照差异不显著。在高温处
理过程中,同一处理时间,黄色品种的SOD酶活性
均显著高于绯红渐变品种(如图4B)。
图4 高温胁迫对大花三色堇幼苗叶片过氧化氢酶(A)
和超氧化物歧化酶(B)活性的影响
Fig.4 Effects of heat stress on CAT(A)and SOD(B)
activities of leaves in pansy seedlings
3 讨论
高温会对植物造成不同程度的直接或间接伤
害,如膜脂流动性加强,膜完整性丧失,膜的透性增
加,电解质外渗,电导率增加等。Fv/Fm是最大光
化学量子产量,高温影响光系统II的光化学反应,
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导致光化学效率下降[18]。许多研究发现,高温胁迫
下依据Fv/Fm的变化幅度,可以很好地比较植物
的耐热性[7,19]。同不抗高温的品种相比,高温胁迫
下,抗高温品种的光合系统损伤较少,可以较长时间
保持相对较强的光合能力[20]。本研究的结果也表
明,与不抗高温的绯红渐变品种相比,在12d高温
胁迫后,抗高温的黄色品种保持相对较高的Fv/
Fm。这与Du[4]等对高温胁迫下草坪草叶片的研究
结果一致。
Levitt指出,不同环境胁迫作用于植物时,都可
能对植物造成水分胁迫,使植物出现脱水现象。高
温可以通过加快植物的蒸腾作用使植物因缺水而受
到伤害。RWC是反应植物水分状况的重要参数。
逆境中的植物叶片RWC的大小,可以部分反映植
物的抗热性[21]。不同植物品种的耐热性与细胞的
RWC成正相关[22]。RWC是细胞持水能力高低的
一个重要指标,耐热性高的品种细胞持水能力更强。
在本实验中,0~12d的高温胁迫对黄色品种的
RWC没有显著影响,而8~12d的高温胁迫显著降
低了绯红渐变品种的RWC。叶片相对较强的持水
能力可能是黄色品种抗高温的重要原因。这与徐
胜[23]等对高温胁迫后高羊茅叶片的研究结果一致。
在高温条件下,保持细胞膜的相对完整性是植
物抗高温的重要原因。活性氧的积累会增加细胞膜
的过氧化程度,改变细胞膜的半透性[24]。MDA是
膜脂过氧化的主要产物。MDA含量和EL值一般
作为衡量细胞膜过氧化程度和细胞膜透性的重要指
标。大花三色堇幼苗在高温胁迫下叶片中 MDA积
累,这与袁媛[25]等在小苍兰和刘奕清[26]等在巨尾
桉上的研究结果相似。EL值的显著上升也证实了
高温胁迫对大花三色堇幼苗叶片细胞膜结构的损
害。李敏[27]等对菠菜叶片研究结果表明,高温胁迫
对不抗高温品种膜稳定性的破坏程度大于抗高温品
种。随着高温胁迫时间增加,黄色品种电解质外渗
受高温的影响显著小于绯红渐变品种,叶片中
MDA含量也比绯红渐变品种低。这表明,保持相
对较高的细胞膜完整性可能是黄色品种抗高温的重
要原因。
CAT和SOD是植物抗氧化防御系统中的关键
酶。SOD是植物过氧化胁迫防御体系中的第一道
防线,主要参与清除超氧阴离子(O-2),产生 H2O2,
提高植物组织的抗氧化能力。在高温胁迫条件下,2
个品种的SOD活性均显著增加,这可能是植物自身
的防御机制在发生作用,以清除氧化能力极强的
O-2。而且与不抗高温的绯红渐变品种相比,抗高温
的黄色品种SOD活性的增加更显著。这与高温胁
迫下田治国[28]等对孔雀草和万寿菊、李敏[29]等对
水稻开花期SOD活性变化的研究结果一致。CAT
参与细胞中过氧化氢的清除,使其保持在一个较低
的水平,从而保护膜的结构。本实验中,在0~12d
的高温胁迫下,2个品种幼苗叶片中的CAT活性均
呈下降趋势,从而影响了细胞中 H2O2 的清除,使细
胞膜受到破坏。
4 结论
综上所述,高温胁迫破坏了大花三色堇的光合
作用系统,影响了叶片的相对持水力。高温胁迫也
影响了大花三色堇的抗氧化保护系统。在高温胁迫
条件下,抗热和热敏感品种的SOD活性增强,但是
CAT活性显著下降,细胞的过氧化程度加剧,MDA
积累,细胞膜的结构被破坏,细胞膜透性增强,电解
质外渗。而且同抗高温的品种相比,高温对热敏感
品种的影响更显著。在本研究中,一些重要的生理
指标,如 MDA含量、EL值、CAT和SOD酶活性的
变化与大花三色堇品种的抗热性呈显著相关,可能
可以作为大花三色堇抗热性评价的指标,进行进一
步验证,用于大花三色堇抗热品种的筛选。
参考文献:
[1] Wahid A,Gelani S,Ashraf M,et al.Heat tolerance in
plants:An overview [J].Environmental and Experi-
mental Botany,2007,61(3):199-223.
[2] Long S P,Ort D R.More than taking the heat:crops
and global change[J].Current Opinion in Plant Biolo-
gy,2010,13(3):240-247.
[3] 胡永红,蒋昌华,秦俊,等.高温对月季部分形态、生理
指标的影响研究[J].种子,2007,26(10):71-73.
[4] Du H M,Wang Z L,Huang B R.Differential respon-
ses of warm-season and cool-season turfgrass species
to heat stress associated with antioxidant enzyme ac-
tivity[J].Journal of the American Society for Horti-
cultural Science,2009,134(4):417-422.
[5] 朱华芳,胡永红,蒋昌华.高温对萱草园艺品种部分生
理指标的影响[J].中国农学通报,2007,23(6):
422-427.
[6] 曲复宁,王云山,张敏,等.高温胁迫对仙客来根系活
力和叶片生化指标的影响[J].华北农学报,2002,17
(1):127-131.
07
第6期 彭华婷,等:高温胁迫对大花三色堇幼苗相关生理指标的影响
[7] 马晓娣,彭惠茹,汪矛,等.作物耐热性的评价[J].植
物学通报,2004,21(4):411-418.
[8] 莫健彬,陈必胜,黄梅,等.高温对玉簪品种部分生理
指标的影响研究[J].种子,2007,26(5):48-51.
[9] 邱勇波,罗凤霞,白瑞琴,等.热胁迫下矮牵牛幼苗的
形态和生理变化[J].河北农业大学学报,2008,31
(1):88-92.
[10] 孔令芳,蒋燕,阳韶昆.高温对三色堇幼苗几项生理指
标的影响[C].中国园艺学会观赏园艺专业委员会年
会论文集,2007:482-485.
[11] Arnon D I.Copper enzymes in isolated chloroplasts.
Polyphenoloxidase in Beta vulgaris[J].Plant Physi-
ology,1949,24(1):1-15.
[12] Barrs H,Weatherley P.A re-examination of the rela-
tive turgidity technique for estimating water deficits in
leaves[J].Australian Journal of Biological Sciences,
1962,15(3):413-428.
[13] DaCosta M,Wang Z L,Huang B R.Physiological ad-
aptation of Kentucky bluegrass to localized soil drying
[J].Crop Science,2004,44(4):1307-1314.
[14] Heath R L,Packer L.Photoperoxidation in isolated
chloroplasts:I.Kinetics and stoichiometry of fatty
acid peroxidation[J].Archives of Biochemistry and Bi-
ophysics,1968,125(1):189-198.
[15] Machly A,Chance B.The assay of catalase and perox-
idase[J].Methods of Biochemical Analysis,1959(1):
357-425.
[16] Giannopolitis C N,Ries S K.Superoxide dismutases:
I.Occurrence in higher plants[J].Plant Physiology,
1977,59(2):309-314.
[17] Bradford M M.A rapid and sensitive method for the
quantitation of microgram quantities of protein utili-
zing the principle of protein-dye binding[J].Analyti-
cal biochemistry,1976,72(1-2):248-254.
[18] Shah N,Paulsen G.Interaction of drought and high
temperature on photosynthesis and grain-filing of
wheat[J].Plant and Soil,2003,257(1):219-226.
[19] Yamada M,Hidaka T,Fukamachi H.Heat tolerance
in leaves of tropical fruit crops as measured by chloro-
phyl fluorescence[J].Scientia horticulturae,1996,67
(1-2):39-48.
[20] Du H M,Wang Z L,Huang B.Differential responses
of tal fescue and zoysiagrass to heat and drought
stress[J].Acta Horticulturae,2008,783:207-213.
[21] Levitt J.Responses of plants to environmental stres-
ses.Volume II.Water,radiation,salt,and other stres-
ses[M].Academic Press,1980.
[22] 胡永红,蒋昌华,秦俊.植物耐热常规生理指标的研究
进展[J].安徽农业科学,2006,34(1):192-195.
[23] 徐胜,何兴元,陈玮,等.高羊茅对高温的生理生态响
应[J].应用生态学报,2007,18(10):2219-2226.
[24] 李柏林,梅慧生.燕麦叶片衰老与活性氧代谢的关系
[J].植物生理与分子生物学学报,1989,15(1):6-12.
[25] 袁媛,唐东芹,史益敏.小苍兰幼苗对高温胁迫的生理
响应[J].上海交通大学学报(农业科学版),2011,29
(5):30-36.
[26] 刘奕清,陈泽雄,杨婉晴.高温和干旱胁迫对尾巨桉幼
苗生理特性的影响[J].园艺学报,2008,35(5):
761-764.
[27] 李敏,王维华,王然,等.高温胁迫对菠菜叶片保护酶
活性和膜透性的影响[J].园艺学报,2004,31(1):
99-100.
[28] 田治国,王飞,张文娥,等.高温胁迫对孔雀草和万寿
菊不同品种生长和生理的影响[J].园艺学报,2011,
38(10):1947-1954.
[29] 李敏,马均,王贺正,等.水稻开花期高温胁迫条件下
生理生化特性的变化及其与品种耐热性的关系[J].
杂交水稻,2008,22(6):
櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅櫅
62-66.
(上接第65页)
[3] 王伟,黄卫昌,金荷仙,等.大苞鞘石斛的离体培养与
快速繁殖[J].植物生理学通讯,2008,44(5):959-960.
[4] 黄卫昌,殷丽青,胡永红,等.流苏石斛的离体快速繁
殖[J].上海交通大学学报(农业科学版),2008,26
(6):584-587.
[5] 张莹,王雁,李振坚.报春石斛的组织培养与快速繁殖
[J].植物生理学通讯,2007,43(4):64.
[6] 张新平,朱根发,王飞.不同日本春石斛兰品种组培繁
殖系数的差异[J].西北农林科技大学学报(自然科学
版),2008,36(9):1l8-122.
[7] 刘瑞驹,蒙爱东,邓锡青.铁皮石斛试管苗快速繁殖的
研究[J].药学学报,1988,23(18):636.
[8] 何宏贤.石斛属四种植物的组织培养[C].华东地区中
药资源和质量鉴定讨论会文集,1985:18.
[9] 叶秀粦.石斛兰组织培养与细胞学观察[J].园艺学
报,1995,22(1):83-87.
[10] 曾宋君,程式君,张京丽,等.五种石斛兰的胚培养及
其快速繁殖研究[J].园艺学报,1998,25(1):75-80.
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