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溪黄草染色体核型分析



全 文 :收稿日期:2011 - 03 - 22
基金项目:粤港关键领域重点突破项目(编号:2009 A 030901011)。
作者简介:黄珊珊(1981 -) ,女,江西宜春人,博士,讲师,研究方向:植
物发育与细胞生物学、药用植物学;E-mail:huangss@ gdyzy.
edu. cn。
溪黄草染色体核型分析
黄珊珊
(广东省中药研究所, 广州 510520)
摘要:采用酶解去壁低渗法对溪黄草的体细胞染色体进行核型分析。结果表明:溪黄草的核型公式为 2 n = 2 X = 24 =
14 m + 6 sm + 4 st,染色体相对长度组成为 2 n = 24 = 13 M 2 + 9 M 1 + 2 S,染色体组型为“2 A”型。这一细胞学结果可作为
溪黄草与其它种的区分依据,同时也为其开发和利用奠定理论基础。
关键词: 溪黄草;染色体;核型分析
中图分类号: Q 949. 95 文献标志码: A 文章编号: 1001 - 4705(2011)07-0017-03
Karyotye Analysis on Melocanna hum ilis Kurz
HUANG Shan-shan
(The Institute of Chinese Medicine of Guangdong Province,Guangzhou 510520,China)
Abstract:The methods of eliminating walls by enzymolysis and low osmosis were used to analyse the cell chro-
mosome karyotype of Isodon serra (Maxim.)Hara. The results as follows:The karyotype formula of Isodon serra
(Maxim. )Hara was 2 n = 2 X =24 = 14 m +6 sm +4 st,the species chromosome complement based on relative
length was 2 n = 24 = 13 M 2 +9 M 1 +2 S,which belonged to“2 A”type. It would be as references for distin-
guishing the Isodon serra (Maxim.)Hara and other species,and as basis of exploitation and utilization for the
Isodon serra (Maxim.)Hara.
Key words: Isodon serra (Maxim.)Hara;chromosome;karyotype
溪黄草[Isodon serra (Maxim. )Hara]为唇形科香
茶菜属(Isodon)植物,其性味苦、甘、寒,归肝、胆经,具
有清热利湿、凉血散瘀、退黄等功效,临床上主要用于
治疗急性黄疸型肝炎、急性胆囊炎、湿热痢疾、肠炎、跌
打瘀肿和养生保健等。现作商品“溪黄草”入药的除
线纹香茶菜外,还有同属植物线纹香茶菜[Isodon loph-
anthoides (Benth,KG-Han. exD 1 Don ) ]、狭基线纹香
茶菜[L. lophanthoides(Buch. -Ham ex D. Don)Hara
var. gerardiana (Benth.)Hara]和纤花香茶菜[L. loph-
anthoides(Buch. -Ham ex D. Don)Hara var. graciliflo-
ra],以上 4 种基源植物极为相似,不易鉴别,极易混
淆[1]。迄今为止,有关香茶菜属染色体数目及核型的
相关报道很少,仅有文献报道过冬凌草[2]和蓝萼香茶
菜[3]的染色体数目及核型分析,但有关溪黄草的染色
体数及核型分析均未报道,因此,本试验首次对溪黄草
进行染色体与核型研究,为研究开发利用溪黄草和为
其进化、遗传育种等提供必要的细胞学资料和依据。
1 材料与方法
1. 1 材 料
供试材料取自广东省中药研究所,利用溪黄草扦
插生出的根系开展染色体研究。
1. 2 方 法
1. 2. 1 制片以及观察方法
待扦插的溪黄草的根长至 1. 0 ~ 1. 5 cm 时,于
09:00时左右取其根尖,用 0. 002 mol /L 8-羟基喹啉于
4 ℃预处理 2 h,后转入新鲜卡诺固定液(甲醇 ∶冰醋酸
= 3∶ 1)固定 4 h以上,然后按 Zhuang et al.[4]所用酶解
方法制片:酶解(纤维素酶 ∶果胶酶 = 4 ∶ 1)1 h 左右,
于35 ~ 37 ℃保温保湿 10 min,低渗后将根尖用镊子夹
取固定液迅速捣碎。制好的片子在酒精灯上微微加热
烘干,最后于 Giemsa染液中染色 20 min。
选取染色体分散良好、着丝点清晰的细胞用
ZEISS STEMI SVII 显微镜摄影,并用 Karyotyping Sys-
tem V 4. 3. 8 软件进行核型分析和染色体配对。最后
取 5 ~ 12 个细胞的平均值作为染色体参数。
1. 2. 2 染色体数目的确定
统计观察 50 个以上可准确计数染色体的根尖有
丝分裂中期细胞,其中 85%以上的细胞具有恒定一致
·71·
研究报告 黄珊珊:溪黄草染色体核型分析
的染色体数,即可认为是该植物的染色体数目。
1. 2. 3 染色体形态和类型的确定
染色体相对长度系数按 Kuo et al.[5]的方法,测量
染色体长臂和短臂,计算染色体相对长度、臂比值、染
色体长度比,并排列染色体,对染色体及其核型进行分
类。其中,染色体相对长度(%)=染色体长度 /染色
体组总长度 × 100%,臂比(R)=长臂(S)/短臂(L) ,
染色体长度比 =最长染色体 /最短染色体。核型分析
参照 Levan et al.[9]和李懋学和陈瑞阳[6,7]报道的方
法、核型分类按 Stebbins[7]的核型分类标准进行染色
体形态和类型进行分析确定。染色体核型参照陈瑞阳
等[8]方法制图表。永久玻片标本存放于广东省中药
研究所实验室。
2 结果分析
2. 1 溪黄草的染色体数目
溪黄草根尖经 0. 002 mol /L 8-羟基喹啉处理,得到
染色体较分散、着丝点较清晰的中期细胞(图 1) ,由多
个细胞染色体统计得出溪黄草的染色体数目为 24 条,
即 2 n = 24。
图 1 溪黄草[Isodon serra (Maxim.)Hara]染色体核型图
(标尺:250 μ m)
2. 2 溪黄草染色体形态及核型公式
经 Karyotyping System V 4. 3. 8 软件分析系统处理
溪黄草中期细胞染色体,得到染色体核型分析和染色
体配对的参数数据(表 1)。参照 Levan et al.[9]命名
标准进行染色体命名,确认染色体形态。
由表 1 可知:溪黄草染色体没有发现非整倍体变
异和多倍现象。在其体细胞的 24 对染色体中,第 4、
7、14、20、21、23 对染色体为近中部着丝粒染色体(sub-
metacentric chromosome,sm) ,第 1、2、19、22 对为亚端
着丝粒染色体(subtelocentric chromosome st) ,其它 14
对全为中部着丝粒染色体(metacentric chromosome,
m)。全组染色体总的相对长度为 100. 002 μm,染色体
平均相对长度为 4. 167 μm。其核型公式为 2 n = 2 X =
24 = 14 m +6 sm +4 st。
按照 Kuo et al.[5]的分类标准,平均长度:当 IRL
< 0. 76 时,为短染色体(S) ;0. 76≤IRL≤1. 00 时,为
中短染色体(M 1) ;当 1. 01≤IRL 1. 25 时,为中长染色
体(M2) ;当 IRL > I 1. 26 时,为长染色体(L)。溪黄草
的 24 对染色体可分为 3 组,第 23、24 对为短染色体,
第 14 ~ 22 对共 9 对为中短染色体,其余 13 队为中长
染色体。因此溪黄草染色体相对长度组成为 2 n = 24
= 13 M 2 +9 M 1 +2 S。
2. 3 溪黄草的染色体类型
核型分类采用 Stebbins 的分类方法[7],根据核型
中染色体的长度比和臂比两项主要特征,用以区分核
型的对称和不对称程度,1 A 为最对称的核型,4 C 为
最不对称的核型。溪黄草最长染色体为 5. 149 μm,最
短染色体为 2. 873 μm,其比值为 1. 79,臂比大于或等
于 2 的染色体有第 1、2、7、19、20、21、22 号共 7 对,仅
占该基因组内染色体总数的 29. 2%,参考 Arano[10]的
方法计算,核型不对称系数为 68. 13%,因此,溪黄草
染色体属于 2 A型,为基本对称染色体核型,属于原始
的类型。
3 讨 论
核型分析是指对生物的染色体数目、大小、形态和
随体等特征进行分析。染色体核型分析对细胞遗传
学、育种学、分类学、起源和进化等学科的研究有着重
要的意义。通过染色体数目、形态和结构差异的分析,
可以从细胞学水平鉴别物种的差异,为研究物种间的
遗传距离、亲缘关系和进化提供客观的依据[12]。本试
验细胞学研究结果显示,溪黄草染色体数目为 24,核
型公式为 2 n = 2 X =24 = 14 m +6 sm +4 st。这一结果
将为溪黄草与其它种的区分提供一个客观细胞学依
据,同时也为其进一步的开发和利用奠定一定的理论
基础。
香茶菜属有 96 种,10 变种,大多数种分布于亚洲
的热带和亚热带[11]。但是有关香茶菜属植物染色体
数目的报道很少,仅有文献报道过冬凌草[2]和蓝萼香
茶菜[3]的染色体数目及核型分析,两者染色体均为 2 n
= 24,这与本试验的溪黄草染色体数一致。因此,证明
溪黄草与前两者为近缘种,可推测香茶菜属植物染色
体数具有一定的规律,很可能为 2 n = 24。
·81·
第 30 卷 第 7 期 2011 年 7 月 种 子 (Seed) Vol. 30 No. 7 Jul. 2011
表 1 染色体核型分析参数
材 料 染色体编号
相对长度(%)
(S + L = T) 相对长度系数
着丝粒指数
(%) 臂比 类型
1 1. 084 + 4. 065 = 5. 149 1. 236 21. 1 3. 75 st
2 0. 976 + 4. 065 = 5. 041 1. 210 19. 4 4. 165 st
3 1. 843 + 3. 035 = 4. 878 1. 171 37. 8 1. 647 m
4 1. 680 + 3. 198 = 4. 878 1. 171 34. 4 1. 904 sm
5 2. 222 + 2. 602 = 4. 824 1. 158 46. 1 1. 171 m
6 2. 114 + 2. 656 = 4. 770 1. 145 44. 3 1. 256 m
7 1. 247 + 3. 414 = 4. 661 1. 119 26. 8 2. 738 sm
8 1. 843 + 2. 710 = 4. 553 1. 093 40. 5 1. 470 m
9 1. 843 + 2. 656 = 4. 499 1. 080 40. 9 1. 441 m
10 2. 060 + 2. 439 = 4. 499 1. 080 31. 7 1. 184 m
溪黄草 11 1. 734 + 2. 710 = 4. 444 1. 067 39. 0 1. 563 m
[Isodon serra (Maxim. )Hara] 12 1. 897 + 2. 439 = 4. 336 1. 041 43. 8 1. 286 m
13 1. 897 + 2. 331 = 4. 228 1. 025 44. 9 1. 229 m
14 1. 463 + 2. 602 = 4. 065 0. 976 40. 0 1. 779 sm
15 1. 843 + 2. 114 = 3. 957 0. 950 46. 6 1. 147 m
16 1. 626 + 2. 222 = 3. 848 0. 924 43. 3 1. 367 m
17 1. 680 + 2. 114 = 3. 794 0. 911 44. 3 1. 258 m
18 1. 789 + 1. 897 = 3. 686 0. 885 48. 5 1. 060 m
19 0. 867 + 2. 764 = 3. 631 0. 872 23. 9 3. 188 st
20 1. 139 + 2. 439 = 3. 578 0. 859 31. 8 2. 143 sm
21 1. 084 + 2. 385 = 3. 469 0. 833 31. 3 2. 20 sm
22 0. 813 + 2. 547 = 3. 360 0. 807 24. 2 3. 133 st
23 1. 030 + 1. 951 = 2. 981 0. 715 34. 6 1. 895 sm
24 1. 247 + 1. 626 = 2. 873 0. 689 43. 4 1. 304 m
注:溪黄草的染色体组总的相对长度是 100. 002 μm,平均长度为 4. 167 μm。
染色体的制备是核型分析实验中最为关键的操作
步骤。实验通过常规的压片法与酶解去壁低渗法比较
发现,酶解去壁低渗法所获得的图像更清晰,没有细胞
壁的干扰。而前者仅适于处理小麦、洋葱等染色体大
的植物,对于染色体偏小的溪黄草则适于用药品处
理[12]。本试验利用 0. 002 mol /L 8-羟基喹啉预处理所
获得的结果比较理想,溪黄草染色体的收缩均匀,边缘
清晰,这样得到的形态特征进行核型分析,可以得到较
准确的数据结果。
有关溪黄草 4 种基元植物区别特征报道较多,但
基本集中在形态外观上[1]。因此,其品种间是否存在
多倍染色体或其它变异现象等,还需进一步利用染色
体核型分析其它各品种。
参考文献:
[1]廖雪珍,廖惠芳,叶木荣,等.线纹香茶菜、狭基线纹香茶菜、
溪黄草水提物抗炎、保肝作用初步研究[J].中药材,1996,
19(7) :363 - 365.
[2]赵侯明,宋发军,覃瑞. 冬凌草的染色体数目及核型分析
[J].中南民族大学学报:自然科学版,2007,26(4) :35 - 37.
[3]金忠民,沙伟.蓝萼香茶菜和益母草的染色体核型研究[J].
广西科学,2004,11(1) :78 - 80.
[4]Zhuang D. H.,Kitajima A.,Ishida M.,et al. Chromosome
numbers of Diospyros kaki cultivars. Journal of the Japanese
Society for Horticultural Science,1990,59(2) :289 - 297.(in
Japanese)
[5]Kuo S. R.,Wang T. T.,and Huang T. C.,. Karyotype analysis
of some formosna gymnosperms. Taiwania,1972,17(1) :66 -
80.
[6]李懋学,陈瑞阳.关于植物核型分析的标准化问题[J].武汉
植物学研究,1985,3(4) :297 - 302.
[7]Stebbins G L.,. Chromosomal evolution in higher plants. Lon-
don:Edward Aranold,1971:87 - 93.
[8]陈瑞阳,宋文芹,李秀兰.中国主要经济植物基因组染色体
图谱[M].北京:科学出版社,2003:13.
[9]Levan A.,Fredga K.,and Sandberg A. . Nomenclature for cen-
tromeric position on chromosomes. Hereditas,1964,62:
201 - 220.
[10]Arano,H. L. Cytological studies in subfamily Carduoideae
(Compositae)of Japan IX,the karyotype analysis and phylo-
genic considerations on Pertya and Ainsliaea (2). Bot. Mag.
Tokyo1963,76:32 - 39.
[11]严铸云,贾敏如.九种香茶菜属药用植物的形态组织学研
究[J].中药与临床,2010,1(1) :13 - 19.
[12]黄珊珊,莫小路,曾庆钱,等.小梨竹核型分析[J].基因组
学与应用生物学,2009,28(4) :751 - 754.
·91·
研究报告 黄珊珊:溪黄草染色体核型分析