全 文 ：食品与发酵工业 FOODANDFERMENTATIONINDUSTRIES
36 2009 Vol.35No.9(Total261)
云南晒青毛茶 HPLC指纹图谱的研究＊
宁井铭 1 ,张正竹1 ,谷勋刚 1 ,宛晓春 1 ,孙文通2
1(农业部茶及药用植物安全生产重点开放实验室 ,安徽 合肥 , 230036)
2(云南省产品质量监督检验中心 , 云南 昆明 , 650223)
摘 要 采用高效液相色谱(HPLC)技术对云南普洱茶晒青毛茶的主要化学成分的指纹图谱进行了研究。结果
表明:以乙腈-0.03%三氟乙酸为流动相 ,采用梯度洗脱的方法 ,毛茶化合物的各种组分可得到良好的分离;通过
对 18个样品 HPLC图谱的分析 ,共确定了 24个色谱峰作为普洱毛茶的特征指纹峰 ,建立了普洱毛茶的 HPLC指
纹图谱;与绿茶比较 , 二者 HPLC图谱存在较大的差异 , 表明得到的色谱图可以作为云南毛茶专属性的指纹图
谱 ,为普洱毛茶鉴别和质量控制提供了实验依据。
关键词 普洱茶 ,晒青毛茶 , 指纹图谱
第一作者:博士研究生 ,副教授(宛晓春教授为通讯作者)。
＊国家支撑计划项目 “云南特产茶产业化关键技术研究与示范 ”
(2007BAD58B04)
收稿日期:2009-02-27,改回日期:2009-06-19
指纹图谱始于 19世纪末 20世纪初的犯罪学和
法医学 ,是指物质经适当处理后 ,在固定的实验条件
和方法下 ,得到同种物质不同批次样品的能够标示其
化学特征的色谱图或光谱图 [ 1] ,经对比分析 ,得到能
够确定该物质共有峰的图谱信息 ,作为同种物质之共
性以鉴别该物质的品质 ,具有 “整体性”和 “模糊性 ”
的显著特点 。目前已在环境保护 、石油勘测 、食品评
价 、中药质量控制和鉴别 、种子检测和鉴定 、电子技术
和生物化工等许多领域得到广泛的应用 [ 2] 。
普洱茶原产于我国云南西双版纳 、思茅等地 ,是
以云南大叶种 [ Cameliasinensis(Linn)var.assamica
(Masters)Kitamura]晒青毛茶为原料 ,经特殊的后发
酵工艺加工而成的 [ 3] 。普洱茶以其消食除毒 、解除
油腻 、抑菌等显著药效逐渐被人们所喜爱 [ 4-9] ,近年
来普洱茶的产量和种植面积也在不断地增加 ,目前普
洱茶产地已扩大到云南省 11个州(市)、56个县(市 、
区)、639个乡(镇 、街道办事处)。宋冠群等 [ 10]利用
胶束电动色谱法建立了茶叶的指纹图谱并用于分析
10种中国名茶 ,实现了图谱的数据化。成浩等人[ 11]
利用多元化学指纹图谱和逐步判别技术对茶叶进行
判别 ,使不同产地属性的扁形茶得到了有效的分离 ,
样品的判别正确率为 91.7%。云南省地处高原山
区 ,海拔高低相差极大 , 地貌类型多样 ,气候类型复
杂 ,气温垂直落差异常显著 ,因而不同地区所产的晒
青毛茶在品质上差异性很大 ,加上部分茶商急功近
利 ,用老叶或其他地区的炒青绿茶冒充大叶种晒青毛
茶 ,对于普洱茶原料的鉴定和品质的评审目前多依赖
于感官评定 ,缺乏客观的量化依据 ,从而对普洱茶质
量的稳定带来了影响。因此 ,本文采用高效液相色谱
法(HPLC)对云南普洱茶主要产区的原料毛茶指纹
图谱进行了研究 ,为普洱茶原料鉴别和质量控制提供
实验依据 ,为普洱茶加工中保证质量的稳定奠定基
础 。
1 材料与方法
1.1 实验材料
试验采用的毛茶原料为云南普洱茶主要产地临
沧 、大理 、普洱 、保山 、西双版纳等 5个州(市), 11个
县 、乡 ,计 18个样品(表 1),炒青和扁形绿茶产自安
徽 。
表 1 普洱毛茶来源及等级
编号 产地 等级 编号 产地 等级
1 临沧市-沧源县 3 10 临沧市-沧源县 5
2 大理州-南涧县 5 11 临沧市-沧源县 4
3 大理州-南涧县 6 12 勐海县-格朗和乡 5
4 普洱市-景东县 5 13 勐海县-格朗和乡 7
5 普洱市-澜沧县 8 14 保山-昌宁县 5
6 版纳州-勐宋乡 5 15 临沧市-勐库镇 7
7 版纳州-勐宋乡 6 16 勐海县-布朗山 5
8 临沧市-云县 4 17 勐海县-西定乡 6
9 临沧市-云县 5 18 山区 6
1.2 实验方法
1.2.1 样本制备
称取茶粉 1.000 0g,加入 100 mL体积分数 80%
甲醇 , 30 ℃水浴超声提取 20 min,滤纸过滤 ,滤渣洗
涤 3次后合并滤液 ,定容至 200 mL, 0.22μm滤膜过
研究报告
2009年第 35卷第 9期(总第 261期) 37
滤后备用。
1.2.2 色谱条件
岛津高效液相色谱仪(SHIMADZULC-20AD);
岛津可调波长紫外检测器(SPD6AV);液相色谱柱:
美国沃特斯公司生产的碳 18柱(Waters-C18), 5 μm,
4.6mm×250 mm;流动相:A相为 0.03%三氟乙酸 ,
B相为已腈 ,梯度从 10%B到 60%B,流速 1mL/min,
36 min,检测波长 280nm,平衡 15 min。
1.2.3 数据处理
实验数据用 DPS9.15版软件处理 。
2 结果与分析
2.1 HPLC方法学考察
取样品按 1.2.1方法制备供试溶液分别在 0、2、
4、6、8、10、12 h进样 ,研究稳定性;取样品 5份 ,分别
制备供试溶液 ,分别进样 ,研究重复性;取样品溶液连
续 5次进样 ,研究精密度。
结果表明 ,各色谱峰的相对保留值 α(α=tri/trs,
其中 tri为待测峰的绝对保留时间 , trs为参考峰的保
留时间)相对标准偏差 RSD均≤1.38%,各色谱峰的
相对面积相对标准偏差 RSD均≤4.11%。建立的指
纹图谱具有很好的重复性和紧密度 ,在 1 d之内低温
冷藏样品具有很好的稳定性 。
2.2 数字化多元化学指纹图谱建立
普洱茶晒青毛茶在上述试验条件下 ,其色谱峰较
密集且容易辨认。在色谱图上选择一个特定色谱峰 ,
该峰为所有样品所共有 ,且位于色谱图较中心位置和
具有较高的强度 ,将其指定为参考峰 ,在此基础上求
出所有色谱峰的相对保留值 。相对保留值计算公式
为:α=tri/trs。相对峰面积计算公式为:Sr/%=(待
测峰 i的相对面积 /标准样品的总面积)×100。基于
11号样品的色谱峰总面积较大 ,峰数较多且具有代
表性 ,将其指定为标准图谱 ,求出待测峰 i的相对面
积 。将样品中各组分的相对保留值 α按大小排列 ,
并在每个 a值下标出该组分的相对面积 Sr,再将不同
样品中具有相同 a值的 Sr做比较分析如表 2所示 ,
表中无对应的相对面积 Sr时表示该样品不具有该 a
值的色谱峰。
表 2 毛茶数字化色谱指纹图谱分析
峰 a 相对峰面积(Sr)/%
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18
1 0.35 0.11 0.11 0.10 0.12 0.14 0.12 0.12 0.09 0.10
2 0.41 0.10 0.07 0.03 0.05 0.05 0.04 0.03 0.07 0.04
3 0.45 0.29 0.19 0.16 0.20 0.15 0.14 0.13 0.26 0.15
4 0.50 0.47 0.36 0.30 0.35 0.32 0.41 0.42 0.41 0.39
EGC 0.61 0.52 0.51 0.51 0.56 0.58 0.68 0.54 0.72 0.57
6 0.64 0.89 0.81 0.83 0.75 0.41 0.86 0.56 1.56 1.18
Caf 0.71 22.63 21.20 20.83 20.02 16.14 20.76 19.86 24.00 24.22
8 0.76 0.15 0.20 0.18 0.28 0.11 0.05 0.19 0.27 0.49
9 0.78 1.04 1.04 0.99 1.02 1.04 1.02 1.32 1.28 1.44
(+)C 0.81 5.38 4.37 3.64 3.41 1.20 2.78 2.20 5.48 5.68
11 0.83 1.56 1.24 1.07 1.00 1.01 1.28 1.34 1.17 1.38
12 0.86 0.70 0.72 0.76 0.65 0.64 0.68 0.83 0.65 0.96
13 0.89 0.21 0.28 0.27 0.19 0.19 0.22 0.28 0.20 0.40
14 0.90 0.29 0.23 0.21 0.17 0.14 0.49 0.29
15 0.92 0.25 0.34 0.27 0.25 0.24 0.22 0.32 0.15 0.37
16 0.94 0.30 0.38 0.36 0.23 0.32 0.25 0.39 0.20 0.47
EC 0.95 0.13 0.17 0.22 0.26 0.22 0.23 0.31 0.16 0.29
18 0.97 2.47 2.50 2.41 2.39 3.43 2.77 3.05 2.17 3.46
EGCG 1.00 18.54 16.73 16.36 15.73 15.78 14.48 13.33 17.45 18.89
20 1.03 0.02 0.03 0.02 0.01 0.04 0.01 0.01 0.26 0.02
GCG 1.04 3.13 2.71 2.92 2.66 0.98 1.82 1.61 3.37 3.46
22 1.13 1.22 0.95 0.95 0.97 0.57 1.10 1.04 0.74 0.37
23 1.09 0.42 0.33 0.33 0.35 0.12 0.27 0.27 0.23 0.16
24 1.12 0.50 0.26 0.12 0.25 0.07 0.44 0.21 0.26 0.33
25 1.13 0.10 0.33 0.14 0.09 0.18 0.25 0.14
26 1.15 0.67 0.59 0.60 0.87 0.85 0.86 0.81 0.53 0.66
27 1.17 0.15 0.09 0.10 0.10 0.03 0.13 0.10 0.01 0.12
0.11 0.13 0.12 0.14 0.14 0.13 0.40 0.20 0.18
0.06 0.13 0.04 0.04 0.02 0.04 0.12 0.27 0.05
0.20 0.27 0.11 0.20 0.21 0.17 0.48 0.28 0.18
0.42 0.69 0.30 0.38 0.44 0.42 0.44 0.40 3.77
0.53 0.77 0.49 0.52 0.55 0.44 0.74 0.90 0.72
0.72 1.17 0.36 0.44 0.64 0.49 0.36 0.52 0.58
21.50 24.68 17.92 20.22 23.11 20.15 18.94 17.42 22.71
0.14 0.35 0.05 0.09 0.12 0.05 0.18 0.28 0.08
1.21 1.65 1.11 1.26 1.39 1.48 1.35 1.07 1.08
4.70 6.67 1.88 1.95 4.14 3.15 2.15 2.70 1.38
1.34 1.59 0.99 1.35 1.50 1.35 1.68 1.76 1.14
0.40 0.72 0.53 0.76 0.63 0.63 0.87 0.43 0.55
0.06 0.20 0.12 0.21 0.19 0.19 0.25 0.18 0.11
0.01 0.21 0.09 0.18 0.10 0.30 0.15 0.10
0.10 0.24 0.14 0.31 0.17 0.17 0.33 0.22 0.08
0.17 0.28 0.19 0.36 0.20 0.18 0.32 0.29 0.15
0.09 0.28 0.12 0.19 0.05 0.05 0.22 0.18 0.04
2.63 2.96 3.10 3.14 2.62 3.31 3.67 3.50 2.82
14.42 20.58 14.53 17.62 17.31 13.64 16.79 16.57 19.59
0.01 0.02 0.02 0.02 0.01 0.01 0.01 0.01 0.03
1.95 3.62 1.14 1.21 1.39 2.27 0.52 0.83 1.27
0.49 1.38 0.44 0.42 0.26 0.70 0.30 0.27 0.27
0.14 0.45 0.07 0.08 0.07 0.23 0.12 0.18 0.12
0.14 0.59 0.07 0.10 0.11 0.31 0.13 0.10
0.04 0.21 0.04 0.06 0.05 0.21 0.11 0.09 0.29
0.59 0.86 0.69 0.69 0.56 0.90 0.84 0.69 0.67
0.04 0.28 0.03 0.01 0.02 0.14 0.02 0.02 0.02
食品与发酵工业 FOODANDFERMENTATIONINDUSTRIES
38 2009 Vol.35No.9(Total261)
续表 2
峰 a 相对峰面积(Sr)/%
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18
28 1.18 0.35 0.27 0.23 0.11 0.07 0.26 0.15 0.25 0.29
29 1.20 0.31 0.27 0.23 0.28 0.23 0.33 0.31 0.24 0.31
30 1.21 0.54 0.47 0.45 0.54 0.53 0.53 0.45 0.44 0.59
ECG 1.23 18.70 15.73 13.61 13.81 16.50 18.18 15.96 16.42 17.55
32 1.30 0.32 0.34 0.30 0.31 0.24 0.19 0.18 0.36 0.39
33 1.38 0.58 0.65 0.66 0.34 0.24 0.23 0.19 0.71 0.68
Ma 32 33 33 33 33 32 33 31 33
Nb 24 24 24 24 24 24 24 24 24
S 82.6 74.2 70.4 68.4 62.3 71.5 67.2 80.1 85.8
W 80.4 72.4 68.5 66.3 61.1 69.5 64.9 78.7 83.9
Y 98.5 100.0 100.0 100.0 100.0 98.5 100.0 96.9 100.0
0.07 0.57 0.12 0.07 0.05 0.13 0.05 0.03 0.06
0.23 0.56 0.20 0.17 0.17 0.30 0.23 0.21 0.17
0.43 0.81 0.39 0.41 0.36 0.56 0.57 0.53 0.50
16.29 26.13 16.20 17.98 17.44 21.70 14.35 9.77 13.31
0.27 0.28 0.18 0.21 0.31 0.20 0.27 0.30 0.05
0.36 0.67 0.19 0.23 0.24 0.20 0.18 0.17 0.18
33 33 33 33 32 33 33 33 32
24 24 24 24 24 24 24 24 24
69.9 100.0 62.0 71.0 74.5 74.0 67.3 60.5 72.2
68.7 97.1 60.8 69.7 73.5 71.9 65.2 58.8 70.8
100.0 100.0 100.0 100.0 98.5 100.0 100.0 100.0 98.5
注:(1)Ma,总峰数;Nb:共有峰数;S,相对峰面积总和(%);W,特征峰相对面积总和;Y,重叠率。
(2)表没食子儿茶素(EGC), Epigalocatechin;咖啡碱(Caf), Cafeine,儿茶素(+)C, (+)Catechins;表儿茶素(EC), Epicatechin;表没食子儿
茶素没食子酸酯(EGCG), Epigalocatechingalate;没食子儿茶素没食子酸酯(GCG), Ggalocatechingalate;表儿茶素没食子酸酯(ECG), Epicate-
chingalate。
2.3 云南普洱茶晒青毛茶色谱指纹图谱的分析
以各样品的相对保留时间值(a)和相对峰面积
(Sr)构建普洱茶晒青毛茶色谱指纹图谱 , 18个样品
共出峰 588个(表 2)。从表 2可以看出 ,色谱图中面
积较大的峰有 33个 ,且主要集中在 3个区间 ,其 a值
分别为 0.36-0.91, 0.95 -1.12, 1.19 -1.43, 1.00
处有一独立的强峰为主要特征峰。
由表 2可知 ,在峰面积较大的 33个色谱峰中 ,样
品的儿茶素面积占总面积为 30.0% -42.0%,酯型
儿茶素面积均占儿茶素的 78.0%。在所有样品中咖
啡碱峰面积占总面积比均大于 24.68%, 平均为
25.87%。由此可见 ,云南大叶种毛茶儿茶素总量 、酯
型儿茶素及咖啡碱的含量较高 ,远高于其他茶类。
色谱图重叠率计算公式为:重叠率 Y=[ 2×(待
测样品与标准样品共有峰)/(待测样品峰数 +标准
样品峰数)] ×100%。相对面积 S=待测样品总面
积 /标准样品总面积。 11号样品为标准图谱 ,以此求
出其余 17个样品的色谱指纹图谱重叠率。 18个样
品的色谱指纹图谱的重叠率分别是:98.5 、100.0 、
100.0 、100.0 、100.0 、98.5 、100.0 、96.9 、100.0、
100.0 、100.0 、100.0 、100.0 、98.5 、100.0 、100.0 、
100.0 、98.5均在 95%以上 ,但相对峰面积之间存在
着差异 ,这说明云南不同产地和等级的普洱毛茶在化
学成分的含量和品质上存在着差异性(表 2)。
2.4 色谱指纹图谱共有峰及特征性指纹图谱
在样品中 ,具有相同保留值 a的峰 ,且相对峰面
积较大的色谱峰即为共有峰 [ 12] 。从表 2、表 3可知 ,
有 24个峰为晒青毛茶所共有 ,且 24个峰的相对总面
积占总面积的 90%以上。因此晒青毛茶所共有的 24
个色谱峰可以作为判别晒青毛茶的群体特征峰 ,这些
色谱指纹图谱为晒青毛茶样品 100%共有峰 ,是毛茶
化学的基本组成成分 ,是普洱毛茶的特征指纹图谱
(图 1)。
图 1 普洱毛茶 HPLC特征指纹图谱
由表 3可知 ,在普洱毛茶 24特征峰相对保留时
间段 ,炒青绿茶有 20个峰 ,扁形绿茶仅有 19个峰 。
普洱毛茶儿茶素和酯型儿茶素相对峰面积占相对总
面积平均为 35.2%和 29.5%, 而炒青绿茶分别为
20.5%和 18%,扁形绿茶分别为和 27.0%和 23%,均
远小于普洱晒青毛茶。从图 2可以直观看出 ,普洱毛
茶与炒青和扁形绿茶之间的 HPLC指纹图谱存在着
差异 ,特别是 9号 、(+)C、11号 、EC、EGCG、GCG和
ECG等 7个峰差异非常显著。
3 讨论
本文采用 HPLC技术对云南普洱茶主要产区的
18个毛茶进行了检测 ,通过对不同产地和等级样品
的色谱峰保留时间和峰面积百分比的比较和分析 ,对
研究报告
2009年第 35卷第 9期(总第 261期) 39
1-普洱毛茶;2炒青绿茶;3.扁形绿茶
图 2 毛茶与绿茶色谱指纹图谱的比较
共有指纹峰进行了标定 ,并据此建立了云南普洱毛茶
的 HPLC指纹图谱。经与不同产地炒青绿茶和扁形
绿茶的 HPLC图谱的比较 ,结果表明实验获得的色谱
指纹图谱在不同产地毛茶样品中具有极大的相似性 ,
并能据此与其他茶类进行有效的区分;从而可以有效
反映普洱毛茶成分特征的唯一性和同一物种个体间
的相似性 ,可以作为普洱毛茶专属性的指纹图谱 。
云南大叶种毛茶由于多酚类含量远高于绿茶及
其他茶类 ,利用高效液相色谱技术可以将其与其他茶
类区别开来 ,但还不足于用于区别云南省内毛茶的不
同产地。 2008年 《普洱茶国家标准》规定 ,普洱茶必
须是以云南大叶种为原料加工而成的 ,因而在原料产
地鉴定依据成分不完全明确的前提下 ,色谱指纹图谱
技术可以用来作为鉴别毛茶真伪的有效手段 ,使茶叶
审评客观化 、科学化和标准化 ,也为指纹图谱技术在
茶叶品质改善方面的研究提供了理论依据 。
表 3 普洱毛茶的数字化特征指纹图谱
特征峰 保留时间 /min RSD/% 相对保留时间
平均相对
峰面积
RSD
/%
炒青相对
峰面积
扁形绿茶相对
峰面积
3 7.84 0.02 0.45 0.21 0.08 0.02 0.01
4 8.77 0.04 0.50 0.59 0.19 0.05 0.07
EGC 10.61 0.11 0.61 0.60 0.12 0.37 0.42
6 11.16 0.09 0.64 0.73 0.02 0 0.63
Caf 12.47 0.01 0.71 20.91 2.38 16.32 15.81
8 13.27 0.02 0.76 0.18 0.01 0 0
9 13.67 0.14 0.78 1.21 0.19 0.12 0.70
(+)C 14.21 0.04 0.81 3.49 1.61 0.03 0.45
11 14.58 0.06 0.83 1.30 0.22 0.38 0
12 15.00 0.02 0.86 0.67 0.14 0.38 0.72
13 15.47 0.04 0.89 0.21 0.07 0.15 0.45
15 16.13 0.03 0.92 0.23 0.08 0 0
16 16.38 0.14 0.94 0.28 0.09 0 0
EC 16.67 0.11 0.95 0.18 0.08 0.21 0
18 16.96 0.04 0.97 2.91 0.44 1.72 0.45
EGCG 17.47 0.06 1.00 16.57 2.03 13.85 12.06
GCG 18.13 0.10 1.04 2.05 0.99 0.07 1.17
22 19.70 0.03 1.13 0.69 0.36 0.03 0.31
28 20.59 0.07 1.18 0.17 0.04 0.08 0.12
29 20.88 0.02 1.19 0.26 0.09 0.39 0.51
30 21.09 0.05 1.21 0.51 0.1 0.22 0.84
ECG 21.52 0.11 1.23 16.65 3.49 4.84 7.46
32 22.71 0.02 1.30 0.26 0.08 0.10 0.13
33 24.18 0.01 1.38 0.37 0.21 0.16 0.62
注:表 3中 0表示在保留 2位有效数字时为 0。
参 考 文 献
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StudyonHPLCFingerprintofPu-erhCrudeTeainYunnan
NingJingming1 , ZhangZhengzhu1 , GuXungang1 , WanXiaochun1 , SunWentong2
1(KeyLaboratoryofTea＆MedicinalPlantandProductSafetyofMinistryofAgriculture, Hefei230036, China)
2(TheCenterofExamination＆SupervisionofProductofYunnanProvince, Kunming650223, China)
ABSTRACT ThefingerprintofmainchemicalsinPu-ercrudeteacolectedfromYunnanwasinvestigatedby
HPLC.TheresultsshowedthatthecomponentsofPu-ercrudeteacanbewelseparatedbyHPLCusinggradientelu-
tionofacetonitrileand0.03%oftrifluoroaceticacid.BasedontheanalysisofHPLCchromatogramof18teasamples,
itwasconfirmedthat24peaksinchromatogramscanbeselectedascharacterizationpeaks, andthenfingerprintwas
constructed.Comparingwithgreentea, therewasgreatdiferenceinHPLCchromatogramsbetweenPu-erhcrudetea
andgreentea, suggestingthatHPLCchromatogramobtainedcanbedistinguishedasspecialfingerprintforPu-erh
crudetea.Thisinvestigationcanapplyfundamentaldataforidentificationandquality-assessmentofpu-ercrudetea.
Keywords pu-erhtea, crudetea, fingerprint
行业动态
利乐推出 “超高温饮料灭菌系统 ”
全球领先的食品加工和包装解决方案提供商利乐公司已正式推出新一代 “利乐超高温饮料灭菌系统”(Tetra
ThermAsepticDrink)。这是一套性价比高 、灵活性强的全新设备 , 适用于加工多种饮料产品。由于采用了先进的自动化系统 ,
该解决方案拥有一流的运营效率和环保性能。
利乐集团加工系统部总裁山姆·斯特莫斯顿(SamStrmerstén)表示:“希望通过利乐超高温饮料灭菌系统 , 让客户的运营做
到`顺畅无忧 。该系统可以根据客户的具体需求进行定制 , 而且每套系统在出货前都会经过严格的测试。同时 , 它的自动诊
断功能可确保设备运营始终保持良好状态。”
此外 ,这套新一代灭菌系统还拥有其他一系列先进的自动化功能。例如 ,一旦生产过程中设备参数出现偏差 ,系统可以自
动识别 ,从而可以让操作员立刻采取行动 ,确保运行处于优化状态。对于每一项维护要求 ,系统还会自动发出通知 , 以免设备出
现意外停机 , 耗费成本。该解决方案适用于多种产品 ,例如 , 果汁和果肉饮料 、非碳酸饮料 、茶饮料 、功能水 ,也包括最新的含有
高附加值活性成分的健康饮料。
该灭菌系统还与 “利乐工厂管理大师”控制系统(TetraPlantMaster)兼容 ,从而更具智能化 , 例如 , 可实现系统全程追溯 ,可
以监控到系统历史纪录 、产品批次控制 、以及所有以往操作过程。这对于减少人为差错 、确保食品安全有着很重要的意义。
该系统配备的新平衡罐 、热交换器 、脱气系统 , 可以大大降低生产过程中的水和能源消耗 , 同时减少产品损耗。由于采用了
双热水回路系统 , 能量回收功能得到加强 ,从而使总体能耗进一步降低。
全新的 “利乐超高温饮料灭菌系统”是利乐 Vertenso饮料加工解决方案中一个非常出色的单元 , 也代表着利乐有能力利用
自身的专长 , 开发并提供量身定制的组件和生产线 ,满足饮料生产商的需求 ,帮助他们实现出色的运营效率。
除了 “利乐超高温饮料灭菌系统”, 利乐 Vertenso饮料加工解决方案还包含其他许多成熟的饮料加工技术 , 如热处理 、混
料 、混和及其他许多工艺 ,以满足饮料生产厂商在成本和质量控制方面的要求。
山姆·斯特莫斯顿(SamStrmerstén)说 , “通过利乐 Vertenso饮料加工解决方案 ,利乐强化了自己在饮料加工解决方案方面
的实力。利乐的解决方案不仅可以为每个客户的产品量身打造 , 也可以根据他们各自的生产条件进行优化 , 如水气电等公共设
施的成本 、环保立法要求 、市场要求等。” 减少耗水量:脱气系统采用的闭环水冷系统 、真空泵采用的封闭水系统 ,可以使耗水量
最多减少 80%。降低能耗:管式热交换器所采用的双热水回路系统 , 使能量回收功能得以加强 , 并提高热交换器效率 ,最终可减
少 30%的能耗。减少产品损耗:由于容器和阀门设计合理 , 并配有产品回收系统 , 生产流程结束时 ,回流管里的产品可以压回到
平衡罐 ,从而使产品损耗减少 30%。混合流程控制系统的优化 , 使仪表仪器可以检测出产品的变换 ,从而进一步减少产品损
耗。减少对环境的影响:大量减少耗水量 、能耗 、及产品损耗 , 就是减少对环境的影响。