全 文 ：黄山学院学报 2015年 第 3期
生物多样性保护是全球范围内广泛关注的热点
问题，其中如何有效保护濒危植物一直是研究的重
点[1]。 一般认为，濒危植物因种子产量低、种子生活
力和发芽率低，从种子到幼苗转化率较低，导致幼苗
稀少，种群更新存在困难。 因此，促进和提高濒危植
物种子发芽是保护和开发濒危植物种质资源的关键
工作[2]。 通过探讨濒危植物种子的生物学特性与其
萌发影响因素之间的相互作用和相关性，可以为提
高濒危植物种子的发芽率、发芽势、发芽指数和活力
指数等提供科学理论依据。 目前，国内外学者相继
开展了影响濒危植物种子萌发的研究，如不同基质
对种子萌发的影响 [3]、外界生态因子（包括温度、光
照等）和化学物质对种子萌发的影响[4-6]等。
毛红椿 [Toona ciliata var.pubescens] 为楝科
（Meliaceae）香椿属红椿的天然变种植物，又名毛红
楝、红楝子，落叶或近常绿乔木，主要产于我国的四
川、贵州、福建、安徽等地，虽然在我国分布不广，但
其生态幅较宽， 向北分布可至安徽黄山北纬 30°-
40°[7,8]。 近年来由于自然环境变化、过度砍伐以及其
天然更新比较慢等原因， 毛红椿数量和分布区在不
断减少 [9]，零星分布于我国安徽、浙江、江西、湖南、
云南等省，大多数居群内的植株数量不超过 100株[10]，
在 1991年已被列为第一批国家二级保护濒危植物[11]。
自 20世纪 70年代末， 一些学者就开始了毛红椿天
然林群体分布、生物学特性和生长特性以及育苗、引
种栽培技术等方面的研究 [2，7，12-14]，但对毛红椿种子
萌发能力的影响因素方面的研究报道甚少，张丽等
2011 年 [15]对毛红椿种子萌发的影响因素进行了初
探。 结果表明， 毛红椿种子萌发最佳温度为 25-
27℃，光照会抑制毛红椿种子发芽，浸种可以提高毛
红椿种子的发芽势和发芽率，并且 0.3%高锰酸钾溶
液消毒处理能显著促进毛红椿种子萌发。 而培养基
质、 激素等因素对毛红椿种子萌发影响方面未见报
道。 为此，本试验以毛红椿种子为对象，探讨其在光
照和黑暗环境下的不同播种基质上、 不同浓度的赤
霉素（GA3）下、酸胁迫下以及不同浓度的毛红椿果
壳浸提液下对毛红椿种子萌发的影响， 以提高毛红
椿种子发芽率， 为保护珍稀的毛红椿种质资源与促
收稿日期：2014-10-21
基金项目：国家林业局 948 项目（2014-4-64）；安徽省大学生创新创业训练计划项目（AH201310375041）
作者简介：王金厚（1994-），安徽霍邱人，黄山学院生命与环境科学学院林学专业本科生。
摘 要:为有效保护和推广利用珍稀植物毛红椿，采用室内培养法较为系统地研究了培养基质、激素浓
度、酸胁迫和果壳浸提物对毛红椿种子发芽特性的影响。 研究结果表明在有光的条件下，滤纸最适于作为毛
红椿的发芽基质，其次是河沙；黑暗条件下则以河沙适于作为培养基质。 不同浓度的 GA3可以促进毛红椿的
种子发芽，以 1000mg·L-1浓度的促进作用明显。 氮、硫摩尔比不同，酸液对毛红椿种子发芽有影响，但差异不
显著，而不同酸度（pH不同）则对种子发芽影响显著，表现为强酸抑制发芽、弱酸促进发芽的规律。 在研究范
围内，毛红椿果壳浸提液对种子发芽没有抑制作用，在低浓度时（低于 1:10）可以促进种子的发芽。
关键词：毛红椿；不同基质；酸胁迫；浸提液；发芽率；双因素方差分析
中图分类号：S72 文献标识码：A 文章编号：1672-447X（2015）03-0059-06
不同处理对毛红椿种子发芽的影响
王金厚 1，乔春华 2，王立超 1，石 燕 1，王晓东 1
（1.黄山学院 生命与环境科学学院 安徽 黄山 245041；2.南京森林公安学院 江苏 南京 210023）
第 17 卷第 3 期
2015 年 6 月
黄 山 学 院 学 报
Journal of Huangshan University
Vo1.17,NO.3
Jun.2015
黄山学院学报 2015年 第 3期
进种群更新以及在不同土壤地区播种育苗、引种栽
培提供科学理论依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料
毛红椿种子来源于安徽泾县，种子采收时间为
2013 年 10 月 26 日，带回实验室后，在室内自然晾
晒贮藏，待果实开裂获得纯净种子和果壳。 经测定，
种子的千粒重为 6.18g/千粒，优良度为 94%。试验仪
器设备与药品有培养箱（型号为 DHG-9070AS）、人
工气候箱 （型号为 RXZ 智能型、PQX 型）、98%浓硫
酸（H2SO4）、盐酸（HCl）、赤霉素（GA3）、培养皿、滤纸。
1.2 试验方法
1.2.1 不同播种基质对毛红椿种子发芽的影响试验
选择 4 种不同的基质即红壤、黄心土、河沙和
滤纸进行种子发芽试验。 其中红壤取自黄山学院实
习苗圃，属于地带性的红壤。 河沙来源于黄山学院
南区建筑工地， 使用前用土壤筛出小石子和夹杂
物，然后带回实验室。 黄心土取自黄山学院南区第
二教学楼和逸夫综合楼之间的空地，取土时先清除
地表杂草等，挖开表层土壤至心土层，然后用铁铲
取土，装入塑料袋，带回实验室。 将筛选的毛红椿饱
满种子播种在 4 种不同基质（红壤、黄心土、河沙、
滤纸）上，每基质 3 个重复，每重复 50 粒种子（下
同），每基质分别在光照和黑暗 2种环境下培养。 具
体方法为：将试验所需的 4 种基质和规格相同的全
部培养皿放在电热恒温鼓风干燥箱中 105℃高温消
毒 2 小时后取出自然冷却备用，然后将 4 种基质分
别放入 6 个培养皿中， 在每个培养皿中装入红壤、
黄心土和河沙的量为培养皿高度的 2/3 左右， 以滤
纸为发芽基质的培养皿中放入 2 层滤纸，之后在每
个培养皿中均匀的撒播毛红椿种子 50 粒， 并浇透
水，在试验期间保持基质湿润且种子周围不出现水
膜 。 将不同基质的培养皿置于温度 25℃， 光照
（5000lx）24h/d 人工气候箱中和温度 25℃电热恒温
培养箱中培养，即分别为光照培养和黑暗培养。 每
天观察和记录各处理种子的发芽情况， 统计发芽
数。 当胚根与种子等长时，即认为该种子已发芽[16]。
发芽终期（第 10天）记录最终发芽种子数量。
1.2.2 GA3处理对毛红椿种子发芽的影响试验
不同浓度的 GA3溶液的配制：用分析天平称取
1.0000gGA3 于烧杯中加少量 95%酒精再加适量蒸
馏水搅拌溶解后移至 500ml 容量瓶中定容，得浓度
为 2000mg·L-1的 GA3溶液；用量筒量取 2000mg·L-1
的 GA3溶液 250ml 于烧杯中，再移至 500ml 容量瓶
中定容，得浓度为 1000mg·L-1的 GA3溶液；用量筒
量取 1000mg·L-1的 GA3溶液 250ml 于烧杯中，再移
至 500ml 容量瓶中定容， 得浓度为 500mg·L-1 的
GA3溶液；以此类推，分别配置浓度为 2000mg·L-1、
1000mg·L-1、500mg·L-1、100mg·L-1、50mg·L-1、10mg·
L-1的 GA3溶液，共计 6 个水平。 用不同浓度的 GA3
溶液和蒸馏水培养以滤纸为培养基质的毛红椿种
子，每水平 3 个重复。 将播种好的毛红椿种子置于
温度 25℃电热恒温培养箱中培养。 最后观察和记录
种子的萌发情况，统计发芽数。
1.2.3 酸胁迫对毛红椿种子发芽的影响试验
酸溶液的配制：按照 n(H2SO4):n(HCL)=1：1 混合
硫酸和盐酸，即硫酸与盐酸等摩尔比配制成混合溶
液，用蒸馏水将混合溶液稀释至 pH=1、pH=4、pH=5
的酸溶液， 相同方法可以得到 pH=4 时不同摩尔比
的酸溶液， 即 n (H2SO4):n (HCL)=1：2 和 n(H2SO4):n
(HCL)=2：1的酸溶液。酸溶液稀释时用精密 pH试纸
确定稀释后溶液的 pH 值。 将种子均匀撒播在以滤
纸为培养基质的培养皿内， 用不同摩尔比酸溶液、
相同摩尔比不同 pH 值的酸溶液和蒸馏水为培养液
进行萌发，贴好标签，每个处理 3个重复。 将其置于
温度 25℃电热恒温培养箱中培养。 最后观察和记录
种子的萌发情况，统计发芽数。
1.2.4 毛红椿果壳浸提液对毛红椿种子发芽的影响
试验
不同浓度的果壳浸提液的配制：取已去除种子
的毛红椿果壳 80g， 将其浸泡于 400g 蒸馏水中 24
h，获得果壳与水比例为 1：5的果壳浸提液。 取适量
浸提液，将其稀释 1 倍，获得果壳与水比例为 1：10
的果壳浸提液； 以此类推， 可获得 1：5、1：10、1：20
和 1：50 的 4 种比例的果壳浸提液并分别放入各自
的广口瓶中，贴上标签，放入冰箱中低温保存备用。
用不同浓度的果壳浸提液和蒸馏水培养毛红椿种
子，每种浓度 3 个重复，将其置于温度 25℃电热恒
温培养箱中培养。 最后观察和记录种子的萌发情
况，统计发芽数。
1.3 数据处理
根据试验记录的数据，计算毛红椿种子的发芽
率、发芽势、发芽指数和平均发芽速度。 其中种子发
芽指标的计算公式为[17]：
种子发芽率 （GR）=正常发芽种子粒数 ／供测定
种子总数×100%
发芽势（GP）=发芽种子数达到高峰时正常发芽
种子粒数 ／供检种子总数×100%
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黄山学院学报 2015年 第 3期
发芽指数（GI）=
t
t = 1
ΣGtDt
平均发芽速度=
t
t = 1
Σ(GtDt)
t
t = 1
ΣGt
式中：Gt为在第 t 天的种子发芽数；Dt为相应种子发
芽所用的时间。
采用常用的数据处理软件 Microsoft Excel
2003 进行数据的统计和发芽指标的计算 ， 应用
DPS9.50 软件对不同处理下毛红椿种子的发芽率、
发芽势、发芽指数、平均发芽速度作方差分析和多
重比较，其中发芽率和发芽势运用反正弦平方根转
换后计算。
2 结果与分析
2.1 光照条件及播种基质对毛红椿种子发芽的影响
光照条件下不同播种基质对毛红椿种子萌发
的影响及多重比较结果见下表 1。 可见滤纸的发芽
率、发芽势、发芽指数和平均发芽速度在处理间均
是最高的，分别是 91.36%、64.07%、44.03 和 6.55，比
其他处理的平均值分别高出了 10.83%、20.32%、
28.60%和 3.97%； 而以红壤为播种基质的处理的各
项发芽指标最低，其发芽指数与滤纸的发芽指数有
显著差异（p=0.0189<0.05），平均发芽速度与滤纸的
平均发芽速度有极显著差异（p=0.0032<0.01）。 各处
理间的发芽率的大小为滤纸>河沙>黄心土>红壤；
发芽势的大小为滤纸>河沙>红壤>黄心土， 尽管各
处理间的发芽率和发芽势有差异，但其差异性并没
有达到显著性水平。 综合分析发芽各指标数值，毛
红椿种子在光照条件下以滤纸和河沙为播种基质
其发芽情况较理想。
表 1 光对毛红椿种子发芽率、发芽势、发芽指数和平均发芽
速度的影响
注：同列不同小写字母表示处理间差异显著（P<0.05），d 表示
天数，下同。
黑暗条件下不同播种基质对毛红椿种子萌发
的影响及多重比较结果见表 2。 各处理间的发芽率
与滤纸相比均有所提高 ， 其中以河沙最高 ，为
92.32%，比滤纸的发芽率提高了 5.45%，虽然发芽率
均有所提高，但是其差异并不显著。 发芽势方面，各
处理的发芽势均没有滤纸的发芽势数值大，并且以
黄心土为播种基质处理的发芽势最低 ， 只有
46.66%， 与滤纸的发芽势 85.15%有显著差异 （p=
0.0183<0.05）。 以黄心土、河沙为基质的发芽指数比
滤纸的发芽指数 27.51 分别提高了 40.79%和
25.37%，并且其差异极显著（p=0.0002<0.01）。 各处
理间的平均发芽速度较滤纸的平均发芽速度有所
提高，且存在极显著的差异性（p=0.0001<0.01），其
中以黄心土、河沙为播种基质的平均发芽速度比滤
纸的平均发芽速度分别提高了 7.09%和 4.02%。
表 2 黑暗对毛红椿种子发芽率、发芽势、发芽指数和平均发
芽速度的影响
光照和基质对毛红椿种子发芽指标影响的双
因素方差分析结果见表 3。从发芽率来看，不同播种
基质间、光照与黑暗环境间以及二者的交互作用对
毛红椿种子发芽率的影响均表现为差异不显著。 不
同播种基质间对毛红椿种子发芽势的影响有显著
差异（p=0.0282<0.05）；光照与黑暗环境间对其发芽
势的影响亦表现为显著差异（p=0.01<0.05），而不同
播种基质间和光照与黑暗环境间的交互作用对其
发芽势的影响表现为差异不显著（p=0.3717>0.05）。
在发芽指数方面，不同播种基质间对毛红椿种子发
芽指数的影响是有极显著的差异（p=0.0049<0.01）；
光照与黑暗环境间对其发芽指数的影响是没有显
著差异的，然而二者的交互作用对其发芽指数又表
现为显著差异 （p=0.0269<0.05）。 对于平均发芽速
度，不管是不同播种基质间、光照与黑暗环境间，还
是二者的交互作用，均表现对毛红椿种子平均发芽
速度有极显著的差异性。
基质 发芽率 发芽势 发芽指数 平均发芽速度
红壤 68.22±16.33a 54.04±11.29a 24.10±11.53Ab 7.04±0.19Aa
黄心土 88.08±7.06a 47.99±3.04a 36.54±6.68Aab
6.79±
0.15AaBb
河沙 90.99±10.28a 57.72±11.31a 42.07±8.08Aa 6.60±0.12Bb
滤纸 91.36±1.16a 64.07±3.59a 44.03±0.68Aa 6.55±0.05Bb
F 值 1.88 0.66 3.963 8.107
P 值 0.2114 0.6 0.053 0.0083
王金厚：不同处理对毛红椿种子发芽的影响
基质 发芽率 发芽势 发芽指数 平均发芽速度
红壤 87.55±3.85a 79.83±10.17Aa 27.33±2.96Bc 7.24±0.09Aa
黄心土 92.00±0.00a 46.66±1.75Ab 38.73±0.56Aa 6.77±0.02Cc
河沙 92.32±4.38a 78.63±14.68Aa 34.49±1.43Ab 6.97±0.08Bb
滤纸 87.55±3.75a 85.15±5.83Aa 27.51±2.15Bc 7.25±0.05Aa
F 值 1.621 3.97 23.826 34.244
P 值 0.2598 0.0528 0.0002 0.0001
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黄山学院学报 2015年 第 3期
表 3 光照和基质对毛红椿种子发芽指标影响双因素方差分析
注：A 因素代表不同播种基质；B 因素代表光照与否。
从表 3 中还可以看出，以红壤、黄心土和河沙
为播种基质时的发芽率均表现为黑暗环境下处理
高于光照环境下处理的发芽率，且红壤的 2 种环境
下差异最大，相差了 19.33%，而以滤纸为播种基质
时，光照下的发芽率略高于黑暗环境。 除黄心土基
质 2 种环境下发芽势差别不大外，其他基质在 2 种
光照条件环境下发芽势均表现为黑暗环境下高于
光照环境下，且均高出 20.00%。 红壤基质和黄心土
基质的发芽指数在黑暗环境下高于光照环境下；而
河沙基质和滤纸基质的发芽指数表现为光照环境
下高于黑暗环境下。 除黄心土基质的平均发芽速度
在 2 种光照环境下相近外，其他基质的平均发芽速
度均表现为黑暗环境下高于光照环境下，且滤纸基
质相差最大，为 0.7天。说明光照不仅会降低毛红椿
种子的发芽率[14]，而且也会抑制其种子发芽势、发芽
指数和平均发芽速度。
2.2 GA3溶液浓度对毛红椿种子发芽的影响
不同浓度 GA3 溶液处理对毛红椿种子萌发的
影响及多重比较结果见表 4。 综合不同浓度 GA3溶
液对毛红椿种子发芽的影响结果表明，通过不同浓
度的 GA3溶液培养毛红椿种子对提高其发芽率、发
芽指数和平均发芽速度均有一定的促进作用，但对
发芽势的促进作用不明显甚至会有抑制作用。 其
中，以不同浓度 GA3培养的种子的发芽率均高于蒸
馏水处理水平，且发芽率均高于 90%，但差异不显
著（p=0.15>0.05），只有经浓度为 1000mg·L-1的 GA3
溶液培养的种子的发芽率与蒸馏水处理水平的发
芽率有显著差异(p=0.0112<0.05)；经 GA3 溶液培养
后种子的发芽指数也均高于蒸馏水处理水平，其各
值均大于 34， 其平均值比蒸馏水处理水平高
35.73%，并且二者差异极显著（p=0.0001<0.01）；经
GA3溶液处理后的种子的平均发芽速度相对于蒸馏
水处理水平也有明显的提高，并且与蒸馏水处理水
平的多重比较结果为差异极显著（p=0.0001<0.01）。
经过不同浓度的 GA3溶液处理后，毛红椿种子萌发
总体表现为发芽率、发芽势、发芽指数随 GA3 浓度
的升高呈先增大后减小的趋势； 平均发芽速度随
GA3 浓度的升高呈先加快后减慢的趋势。 并且以
GA3浓度为 1000mg·L-1处理后的种子其发芽率、发
芽势、 发芽指数和平均发芽速度分别为 97.38%、
86.16%、40.10、6.79， 均高于其他浓度处理的结果，
相对于蒸馏水处理水平比较，其发芽率、发芽势、发
芽指数和平均发芽速度分别提高了 11.23%、1.19%、
45.77%和 6.77%，说明该浓度的 GA3溶液对毛红椿
种子萌发有明显的促进作用。
表 4 不同赤霉素浓度对毛红椿种子发芽率、发芽势、发芽指
数和平均发芽速度的影响
2.3 酸胁迫对毛红椿种子发芽的影响
酸胁迫对毛红椿种子发芽的影响及多重比较
结果见表 5。 相同摩尔比，pH=1 时， 其种子的发芽
率、发芽势、发芽指数和平均发芽速度均为 0，与蒸
馏水和其他酸胁迫水平间差异极显著 （p 值分别为
0.0000、0.0002、0.0000、0.0000<0.01），表明强酸会使
发芽
指标
变异来源 平方和 自由度 均方 F 值 P 值
发芽率
A 因素间 420.019 3 140.0063 2.375 0.1084
B 因素间 87.1794 1 87.1794 1.479 0.2416
A×B 235.6246 3 78.5415 1.332 0.2988
误差 943.2558 16 58.9535
总变异 1686.0788 23
发芽势
A 因素间 932.323 3 310.7743 3.925 0.0282
B 因素间 675.0485 1 675.0485 8.525 0.01
A×B 265.1901 3 88.3967 1.116 0.3717
误差 1266.8886 16 79.1805
总变异 3139.4503 23
发芽指
数
A 因素间 616.9159 3 205.6386 6.348** 0.0049
B 因素间 130.9543 1 130.9543 4.042 0.0615
A×B 387.1012 3 129.0337 3.983 0.0269
误差 518.3346 16 32.3959
总变异 1653.3059 23
平均发
芽速度
A 因素间 0.5061 3 0.1687 14.743 0.0001
B 因素间 0.5887 1 0.5887 51.439 0
A×B 0.4197 3 0.1399 12.225 0.0002
误差 0.1831 16 0.0114
总变异 1.6976 23
赤霉素
浓度
发芽率 发芽势 发芽指数
平均发
芽速度
2000 93.36±1.30Aab
72.89
±14.14a
37.60
±2.62Aabc
6.86
±0.12Bbcd
1000 97.38±8.44Aa
86.16
±3.34a
40.10
±1.23Aa
6.79
±0.04Bcd
500 91.79±5.22Aab
72.80
±3.90a
35.96
±2.04Aabc
6.88
±0.01Bbcd
100 94.00±0.00Aab
82.68
±0.88a
39.77
±0.50Aab
6.76
±0.02Bd
50 92.08±2.13Aab
69.45
±3.85a
34.81
±1.76Ac
6.96
±0.07Bb
10 93.48±2.82Aab
74.24
±10.03a
35.82
±3.65Abc
6.94
±0.14Bbc
0 87.55±3.75Ab
85.15
±5.83a
27.51
±2.15Bd
7.25
±0.05Aa
1.907 1.286 11.073 12.15
0.15 0.3251 0.0001 0.0001
F 值
P 值
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黄山学院学报 2015年 第 3期
毛红椿种子失活而不能发芽。 其他处理水平下的发
芽率、发芽指数和平均发芽速度较蒸馏水各值均有
所提高， 平均分别提高了 8.02%、46.99%和 7.45%，
且发芽指数和平均发芽速度指标的差异为极显著
水平（p 值均为 0.0000<0.01）。 相同摩尔比时，pH=5
的发芽率、发芽指数和平均发芽速度最高，分别为
96.00%、41.67、6.73，较蒸馏水处理的发芽率、发芽
指数和平均发芽速度分别提高了 9.65%、51.47%和
7.73%，且发芽率的差异显著，不同 pH 值对毛红椿
种子发芽指标影响总体表现为“弱促强抑”的趋势。
相同 pH（pH=4），不同摩尔比的酸胁迫处理，其种子
发芽率大小顺序为 1:2>2:1>1:1；发芽势和发芽指数
大小顺序均为 2:1>1:1>1:2；平均发芽速度的大小顺
序为 1:1>2:1>1:2，但各处理间的差异不显著。 综合
各处理的发芽指标数值 ，当 n(H2SO4):n(HCL)=1:1，
pH=5时，各发芽指标较为理想。
表 5 酸胁迫对毛红椿种子发芽率、发芽势、发芽指数和平均
发芽速度的影响
2.4 不同浓度果壳浸提液对毛红椿种子发芽的影响
以不同浓度的毛红椿果壳浸提液培养毛红椿
种子，对其萌发的影响及多重比较结果见表 6。不同
浓度的果壳浸提液对毛红椿种子发芽的总的趋势
呈低浓度促进高浓度抑制，其中 1:20 是其种子发芽
率最高，为 95.55%，相比于蒸馏水其发芽率提高了
9.14%，1:10时其种子发芽率也达到了 95.38%，其他
浓度处理的发芽率也均高于蒸馏水，但是水平间差
异不显著（p=0.1664>0.05）。 发芽势方面，只有 1:10
时其种子发芽势高于蒸馏水为 89.35%，其他浓度处
理均低于蒸馏水 ；1:20 时的种子发芽势最低 ，为
52.00%，且它与 1:10 浓度处理和蒸馏水的发芽势的
差异显著（p=0.0106<0.05）。 发芽指数和平均发芽速
度方面，表现为低浓度促进、高浓度抑制的趋势。 1:
50-1:10 浓度处理的发芽指数分别为 42.20、42.42
和 40.38，比蒸馏水的发芽指数分别提高了 53.40%、
54.20%和 46.78%； 平均发芽速度分别为 6.64、6.67
和 6.75， 比蒸馏水的平均发芽速度分别提高了
9.19%、8.70%和 7.41%， 且二者与蒸馏水和浓度为
1:5 处理间的对应值均表现为差异极显著（p 值均为
0.0000<0.01），而浓度为 1:5 的果壳浸提液处理较 1:
50-1:10 浓度处理， 其发芽指数和平均发芽速度表
现出“低促高抑”的趋势。 就分析结果总体而言，果
壳浸提液浓度为 1：20时的各项发芽指标较理想。
表 6 果壳浸提液浓度对毛红椿种子发芽率、发芽势、发芽指
数和平均发芽速度的影响
3 结论与讨论
1. 黑暗条件有利于毛红椿种子发芽， 在光照
条件下不同播种基质对毛红椿种子萌发影响是有
差异的。 而且提高毛红椿种子的发芽指标，需要有
通气透水性强的播种基质。
2.从本试验结果中可以看出，不同浓度的 GA3
溶液对毛红椿种子的萌发有一定的影响，影响结果
总体表现为发芽率、发芽势和发芽指数均随 GA3溶
液浓度的升高呈先增大后减小的趋势；平均发芽速
度随 GA3浓度的升高呈先加快后减慢的趋势，且当
GA3浓度为 1000mg·L-1时，毛红椿种子的各项发芽
指标较好，低于该浓度时促进不明显，高于该浓度
时有抑制的现象。
3.在 pH=4 时，不管硫酸与盐酸的摩尔比如何，
其对毛红椿种子萌发均有促进作用，但是不同摩尔
比比例的混合酸溶液对毛红椿种子发芽率的影响
有一定的差异， 其促进作用大小顺序为：1:2>2:1>1:
1， 可能与不同摩尔硫酸根离子和氯离子对毛红椿
种子萌发影响不同有关。
不同摩
尔比
不同
pH
发芽率 发芽势 发芽指数
平均发
芽速度
1:1 pH=1 0±0Bc 0±0Bb 0±0Cc 0±0Cc
1:1 pH=4 93.01±4.48Aab
62.77
±10.88Aa
40.22
±2.71Aa
6.73
±0.04Bb
1:1 pH=5 96.00±0.00Aa
65.59
±11.89Aa
41.67
±2.26Aa
6.73
±0.09Bb
1:2 pH=4 95.00±4.29Aa
59.73
±13.74Aa
39.58
±0.86Aa
6.78
±0.02Bb
2:1 pH=4 94.28±3.98Aa
78.70
±19.15Aa
40.28
±1.96Aa
6.75
±0.04Bb
0 - 87.55±3.75Ab
85.15
±5.83Aa
27.51
±2.15Bb
7.25
±0.05Aa
F值 250.291 12.51 221.269 10449.89
P值 0.0000 0.0002 0.0000 0.0000
浸提液
浓度
发芽率 发芽势 发芽指数
平均发
芽速度
1: 5 87.76±5.37a 69.01±6.98ABbc 33.00±3.80Bb 6.96±0.11Bb
1:10 95.38±1.53a 89.35±1.06Aa 40.83±1.08Aa 6.75±0.07Cc
1:20 95.55±7.00a 52.00±1.15Bc 42.42±1.93Aa 6.67±0.03Cc
1:50 93.30±5.95a 70.22±12.73ABbc 42.20±1.25Aa 6.64±0.07Cc
0 87.55±3.75a 85.16±5.83Aab 27.51±2.15Bc 7.25±0.05Aa
F值 2.027 5.896 26.048 41.049
P 值 0.1664 0.0106 0 0
王金厚：不同处理对毛红椿种子发芽的影响 63· ·
黄山学院学报 2015年 第 3期
4.本试验结果表明，不同浓度的果壳浸提液对
毛红椿种子萌发影响总的趋势呈低浓度促进高浓
度抑制。 在果壳浸提液浓度为 1：20时，毛红椿种子
的发芽率最高，为 95.55%，而高于 1：20 时，其发芽
率开始下降，当果壳浸提液浓度为 1：5 时，与蒸馏
水处理相比，毛红椿种子发芽率和发芽势均低于蒸
馏水处理，表明毛红椿果壳中含有对自身种子起抑
制作用的水溶性化感物质，说明了毛红椿是具有自
毒作用的树种。 因此，在以后的毛红椿人工林的经
营管理和果壳肥料开发及运用方面应有适当的措
施，以克服或减轻毛红椿的自毒作用。 以本试验结
果为依据，可以在日后对毛红椿叶片和枝条里所含
物质的种类、作用以及对自身自毒作用和对其他植
物的他感作用方面做进一步的研究。
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74.
责任编辑：胡德明
The Influence of Different Treatments on the Germination of Toona ciliata var.
pubescens Seeds
Wang Jinhou1, Qiao Chunhua2, Wang Lichao1, Shi Yan1，Wang Xiaodong1
(1.College of Life and Environmental Sciences, Huangshan University, Huangshan 245041, China;
2.Nanjing Forest Police College Nanjing 210023, China)
Abstract: The method of culture in laboratory is used to study the influences of culture substrate,
hormone concentration, acid stress and extract from its shell on Toona ciliate var. pubescens seeds germi-
nation. The results show that filter paper is the most suitable substrate at light condition, followed by river
sand; however, river sand is the most suitable substrate at dark condition. GA3 solution at different concen-
trations can promote seed germination, which is most significant at the concentration of 1000 mg.L-1. Acid
solution at different ratios of N to S (in mol) has no significantly different influences on seed germination
while acid solution at different pHs does, with weak acid inhabiting the germination and strong acid pro-
moting it. In the range of the study, water extract from the shells doesn’t inhabit seed germination, but
promotes it at low concentrations (＜1:10).
Key words: Toona ciliate var. pubecens; different substrate; acid stress; water extract; germination
rate; Two-way ANOVA
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