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芒柄花黄素诱导膀胱癌细胞凋亡作用



全 文 :从而使平衡被打破所引起的,H2O2 氧化损伤作用机
制可能主要是由 SOD和过氧化氢酶的降低所致。
参考文献
[1] Mendez R,Grissom M. Disorders of childhood growth and develop-
ment:childhood obesity[J]. Family Physician Essentials,2013,
410:20 - 24.
[2] Martini AC,Tissera A,Estofán D,et al. Overweight and seminal
quality:a study of 794 patients[J]. Fertility and Sterility,2010,
94(5):1739 - 1743.
[3] Hofstra J,Loves S,van Wageningen B,et al. High prevalence of
hypogonadotropic hypogonadism in men referred for obesity treat-
ment[J]. Netherlands Journal of Medicine,2008,66(3) :103 -
109.
[4] Turner TT,Lysiak JJ. Oxidative stress:a common factor in testicular
dysfunction[J]. Journal of Andrology,2008,29(5):488 -498.
[5] 韩飞,周孟良.过氧化氢诱导 HepG2 细胞产生氧化应激细胞
模型的建立[J].食品科学,2011,32(5) :55 - 57.
[6] 李朝晖,王芬,刘水平,等. 过氧化氢诱导 PCI2 细胞损伤的模
型的建立[J].法医学杂志,2007,23(3) :191 - 192,195.
[7] Ruige JB. Does low testosterone affect adaptive properties of adi-
pose tissue in obese men? [J]. Archives of Physiology and Bio-
chemistry,2011,117(1) :18 - 22.
[8] Zhou L,Beattie MC,Lin CY,et al. Oxidative stress and phthalate-
induced down-regulation of steroidogenesis in MA-10 Leydig cells
[J]. Reproductive Toxicology,2013,42:95 - 101.
[9] 王东,姜丽萍,刘晓芳,等.鞣花酸对 HEK-293 细胞 DNA 损伤
作用[J].中国公共卫生,2013,29(11) :1630 - 1632.
[10] 甄亚平,张倩华,吴惠慧,等.经口摄入全氟辛酸对 SD 大鼠血
清总抗氧化能力的影响[J]. 中国食品卫生杂志,2013,25
(6) :509 - 512.
收稿日期:2013- 09- 15 (解学魁编辑 郭薇校对)
* 基金项目:广西高校科学技术研究项目(YB2014270)
作者单位:1.桂林医学院基础医学院人体解剖学教研室,广西 桂林 541004;2.桂林医学院基础医学院研究所;3.桂林医学院基础医学院生
理学教研室;4.桂林医学院基础医学院病理生理学教研室
作者简介:张幸(1979 -),男,广西桂林人,高级实验师,学士,研究方向:植物雌激素与肿瘤的关系。
通讯作者:辛敏,E-mail:123745733@ qq. com
数字出版日期:2015 - 2 - 15 9:57
数字出版网址:http:/ /www. cnki. net /kcms /detail /21. 1234. R. 20150215. 0957. 003. html
·实验研究·
芒柄花黄素诱导膀胱癌细胞凋亡作用*
张幸1,梁梅花2,黄文君3,郭艳红3,卢慧玲4,辛敏3
摘 要:目的 探讨芒柄花黄素诱导膀胱癌细胞凋亡的作用及机制。方法 采用不同浓度(20、40、80 μmol /L)
芒柄花黄素处理膀胱癌细胞,采用噻唑蓝法观察芒柄花黄素对膀胱癌 T-24和 BIU-87细胞的增殖的抑制作用,使用流
式细胞术及 Hoechst 33258 染色检测 T-24 和 BIU-87 细胞凋亡率,采用 RT-PCR 检测 T-24 细胞 Bcl-2 mRNA 表达;
western blot检测 T-24 细胞 p-p38 蛋白激酶、Bcl-2 蛋白含量变化。结果 与对照组比较,40、80 μmol /L芒柄花黄素
组 T-24 和 BIU-87 细胞增殖率下降、细胞凋亡率明显升高,Hoechst33258 染色显示 T-24 细胞呈凋亡状态;40、
80 μmol /L 芒柄花黄素组 T-24 细胞 Bcl-2 mRNA表达水平[(0. 701 ± 0. 029)、(0. 408 ± 0. 036) ]均低于对照组,差异
均有统计学意义(P < 0. 01) ;与对照组比较,20、40、80 μmol /L 芒柄花黄素组 T-24 细胞 p-p38 蛋白激酶活性水平
[(0. 483 ± 0. 026)、(0. 569 ± 0. 031)、(0. 935 ± 0. 037) ]均升高,Bcl-2 蛋白含量[(0. 998 ± 0. 034)、(0. 591 ± 0. 030)、
(0. 426 ± 0. 027) ]均降低,差异均有统计学意义(P < 0. 01)。结论 芒柄花黄素可诱导膀胱癌 T-24 和 BIU-87 细胞
凋亡、抑制细胞生长,其机制可能与下调 Bcl-2 蛋白表达并活化 p38 蛋白激酶有关。
关键词:芒柄花黄素;膀胱癌细胞;凋亡;p38;Bcl-2
中图分类号:R 181. 2 + 4 文献标志码:A 文章编号:1001-0580(2015)03-0314-04 DOI:10. 11847/zgggws2015-31-03-18
Formononetin-induced apoptosis in bladder cancer cells and its mecha-
nism
ZHANG Xing* ,LIANG Mei-hua,HUANG Wen-jun,et al(* Department of Human Anatomy,College of Basic Medicine,
Guilin Medical University,Guilin,Guangxi Zhuang Autonomous Region 541004,China)
Abstract:Objective To explore the underlying mechanism responsible for formononetin-induced apoptosis of blad-
der cancer cells in vitro. Methods Human bladder cancer cells T-24 and BIU-87 were exposed to different doses of
formononetin(20,40,and 80 μmol /L). Thiazolyl blue tetrazolium bromide(MTT)assay was applied to determine the
effect of formononetin on proliferation of T-24 and BIU-87 cells;the apoptosis was assessed with flow cytometry and
Hoechst 33258 staining. Next,the expression level of Bcl-2 mRNA in T-24 cells was analyzed with real-time reverse tran-
scription polymerase chain reaction(RT-PCR). The expressions of p-p38 and Bcl-2 proteins in T-24 cells were deter-
mined with Western blot. Results Compared with the control group,the formononetin at the doses of 40 and 80 μmol /L
significantly suppressed the proliferation of T-24 and BIU-87 cells,while the apoptotic rate increased significantly. The
Hoechst 33258 staining results showed that T-24 cells exhibited typical apoptotic morphology. Compared with the control
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group,formononetin effectively reduced the expression of Bcl-2 mRNA(0. 701 ± 0. 029 for 40 μmol /L group and 0. 408
± 0. 036 for 80 μmol /L group)in T-24 cells(all P < 0. 01). Compared with the control group,formononetin effectively
increased the expression of P38 protein(0. 483 ± 0. 026 for 20 μmol /L group and 0. 569 ± 0. 031 for 80 μmol /L group)
in T-24 cells(all P < 0. 01). Compared with the control group,formononetin effectively reduced expression of Bcl-2
protein(0. 998 ± 0. 034 for 20 μmol /L group,0. 591 ± 0. 030 for 40 μmol /L group,and 0. 426 ± 0. 027 for 80 μmol /L
group)in T-24 cells(all P < 0. 01). Conclusion Formononetin could inhibit the growth of bladder cancer cells by induc-
tion of apoptosis,which may be related to the inhibition of Bcl-2 expression and activation of P38 protein.
Key words:formononetin;bladder cancer cell;apoptosis;P38;Bcl-2
膀胱癌是泌尿系统中最常见的恶性肿瘤之一,
好发于 40 ~ 60 岁,发病率男性较女性高 3 倍,患者
死亡率高。与膀胱癌有关的因素可能为吸烟、放射、
化学毒物、药物。同时,生长因子、细胞因子以及激
素等生物活性物质以及这些活性物质介导的信号转
导途径发生异常,可引起某些基因的过度扩增,导致
正常细胞接受了异常的增殖、分化和生长信号,最终
促使细胞发生癌变[1 - 2]。植物来源的芒柄花黄素,
分离自红三叶草,为一种生物活性异黄酮,具有明显
的生物功能和抗肿瘤作用[3]。本研究通过观察不
同浓度芒柄花黄素作用于膀胱癌 T-24 和BIU-87细
胞株后细胞增殖、凋亡变化,T-24 细胞 p38 及 Bcl-2
蛋白表达水平变化,探讨芒柄花黄素对膀胱癌细胞
增殖和凋亡的影响及可能机制,结果报告如下。
1 材料与方法
1. 1 主要试剂 膀胱癌 T-24 与 BIU-87 细胞株(上
海细胞生物研究所) ,芒柄花黄素(> 98. 0%)、荧光
染料 Hoechst 33258 和噻唑蓝(thiazolyl blue tetrazo-
lium bromide,MTT) (美国 Sigma 公司) ,V-FITC 凋
亡检测试剂盒(上海碧云天研究所) ,1640 培养基、
胎牛血清(美国 HyClone公司),p-p38 及 Bcl-2 兔抗
人多克隆抗体(美国 SantaCruz 公司)。
1. 2 细胞培养 使用含 10%胎牛血清和 1%青霉
素 /链霉素的 1640 培养基,将膀胱癌 T-24 与BIU-87
细胞在含 5%CO2 的 37 ℃培养箱中常规培养传代。
1. 3 指标与方法
1. 3. 1 T-24 和 BIU-87 细胞增殖活性检测 采用
MTT 法,收集对数生长期细胞,调整细胞悬液浓度,
按 5 × 103 个 /孔密度接种于 96 孔板中,每孔加入
100 μL 细胞悬液;待细胞贴壁后分别加入含芒柄花
黄素的完全培养基,每孔 100 μL,使芒柄花黄素终
浓度分别为 20、40、80 μmol /L,另设对照组(加入等
体积的完全培养基),每组设 3 个副孔;分别培养 24、
48、72 h 后弃上清,每孔加入 20 μL MTT 溶液
(5 mg /mL),37 ℃孵育 4 h,弃培养液,每孔加入
150 μL二甲基亚砜,置摇床上低速振荡 10 min,用酶标
仪测定 490 nm处吸光度(A)值,实验独立重复 3次。
1. 3. 2 T-24与 BIU-87凋亡率检测 采用流式细胞
术,收集消化后细胞,调整细胞浓度,以 1 × 106 个 /孔
接种到 6孔板中;待细胞贴壁后,加入含芒柄花黄素
(20、40、80 μmol /L)的完全培养基,对照组(加入同
体积完全培养基),每组设 3 个副孔,继续培养 48 h
后,收集细胞,用预冷的磷酸盐缓冲液(phosphate
buffered saline,PBS)洗涤 3 次,annexin V-FITC 及碘
化丙啶(50 μg /mL)室温避光染色15 min,用流式细
胞仪检测细胞凋亡率。
1. 3. 3 T-24 细胞凋亡形态学观察 采用 Hoechst
染色法,接种对数生长期细胞至 6 孔板,12 h 贴壁
后,每孔加入不同浓度芒柄花黄素的完全培养基,使
终浓度为 20、40、80 μmol /L,对照组加入完全培养
基,继续孵育 48 h后,吸尽培养液,先后加入固定液
和 Hoechst 33258 染色液;荧光显微镜检测,激发波
长 350 nm,观察细胞核变化。
1. 3. 4 T-24 细胞 Bcl-2 mRNA 表达检测 采用逆
转录聚合酶链式反应(reverse transcription-polymer-
ase chain reaction,RT-PCR),20、40、80 μmol /L 芒
柄花黄素处理 T-24 细胞 48 h,用 trizol提取 T-24 细
胞总 RNA,采用紫外分光光度计测总 RNA 纯度和
含量,将总 RNA 逆转录为 cDNA,加入目的基因引
物进行扩增,扩增产物经 1. 0%琼脂糖凝胶电泳,凝
胶分析系统记录分析;以 β-actin 为内参照,计算
Bcl-2 相对表达量。
1. 3. 5 T-24 细胞 p38 及 Bcl-2 蛋白表达检测 采
用 Western blot法,20、40、80 μmol /L 芒柄花黄素处
理 T-24 细胞 48 h 后,裂解细胞,提取总蛋白,考马
斯亮兰法检测样品蛋白浓度;以 3:1 体积比与上样
缓冲液混合,取 20 μL 上样;浓缩胶电泳电压为
80 V,分离胶为 130 V,电泳 4 h 后用聚偏二氟乙烯
膜半干转,转膜 1. 5 h,然后聚偏二氟乙烯膜用含
5%脱脂奶粉的 PBS 封闭 1 h,然后加入 p-38 抗体
(抗体稀释度 1:500)或 Bcl-2 抗体(抗体稀释度
1:500)4 ℃过夜,Tris 缓冲盐溶液洗膜 10 min × 3
次,辣根过氧化物酶标记山羊抗兔 IgG(稀释度
1:5 000)室温反应 1 h,超敏化学发光法显色,凝胶
分析系统分析记录条带光密度,用图像分析系统分
析,以相应蛋白条带的积分光密度值表示检测蛋白
相对强度。
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1. 4 统计分析 数据以珋x ± s 表示,采用 SPSS 19. 0
软件进行统计分析,各组间比较采用单因素方差分
析与 Dunnet-t检验,P < 0. 05 为差异有统计学意义。
2 结 果
2. 1 芒柄花黄素对 T-24 与 BIU-87 细胞增殖能力
影响(表 1) 与对照组比较,芒柄花黄素处理组
(20 ~ 80 μmol /L)T-24 细胞与 BIU-87 细胞数目显
著减少,细胞增殖能力受到明显抑制(P < 0. 05),其
抑制作用呈剂量依赖性。
表 1 芒柄花黄素对 T-24 与 BIU-87 细胞增殖能力影响(A,珋x ± s,n = 3)
组别(μmol /L)
T-24
24 h 48 h 72 h
BIU-87
24 h 48 h 72 h
对照组 0. 441 ± 0. 023 0. 645 ± 0. 018 0. 852 ± 0. 019 0. 511 ± 0. 024 0. 762 ± 0. 019 0. 903 ± 0. 022
芒柄花黄素组 20 0. 369 ± 0. 025a 0. 474 ± 0. 021a 0. 637 ± 0. 031a 0. 443 ± 0. 021a 0. 573 ± 0. 025a 0. 721 ± 0. 027a
40 0. 354 ± 0. 021a 0. 407 ± 0. 029a 0. 482 ± 0. 033a 0. 382 ± 0. 016a 0. 509 ± 0. 025a 0. 557 ± 0. 023a
80 0. 328 ± 0. 027a 0. 374 ± 0. 021a 0. 362 ± 0. 024a 0. 333 ± 0. 025a 0. 414 ± 0. 021a 0. 486 ± 0. 022a
注:与对照组比较,a P < 0. 05。
2. 2 芒柄花黄素对 T-24 与 BIU-87 细胞凋亡率影
响(图 1、表 2) 结果显示,对照组 T-24 细胞较少出
现细胞核裂解或细胞皱缩,而芒柄花黄素处理的 T-24
细胞中可见细胞核碎裂和细胞皱缩;与对照组比较,
各剂量芒柄花黄素处理的 T-24 与 BIU-87 细胞凋亡
率均明显升高,差异均有统计学意义(P < 0. 01)。
注:A:对照组;B、C、D:20、40、80 μmol /L芒柄花黄素组。
图 1 芒柄花黄素对 T-24 细胞凋亡影响(Hoechst染色,× 200)
表 2 芒柄花黄素对 T-24 与 BIU-87
细胞凋亡率影响(%,珋x ± s,n = 3)
组别(μmol /L) T-24 细胞凋亡率 BIU-87 细胞凋亡率
对照组 1. 85 ± 0. 64 2. 46 ± 1. 42
芒柄花黄素组 20 5. 21 ± 1. 12 2. 99 ± 1. 52a
40 18. 32 ± 1. 87a 15. 75 ± 2. 74a
80 29. 99 ± 2. 56a 20. 47 ± 2. 99a
注:与对照组比较,a P < 0. 01。
2. 3 芒柄花黄素对 T-24细胞 Bcl-2 mRNA表达影响
RT-PCR检测结果表明,经不同浓度芒柄花黄素(0、
20、40、80 μmol /L)处理 T-24细胞 48 小时后,T-24 细
胞 Bcl-2 mRNA 表达水平分别为(0. 873 ±0. 031)、
(0. 856 ±0. 048)、(0. 701 ± 0. 029)、(0. 408 ±0. 036);
与对照组比较,40、80 μmol /L 芒柄花黄素组 T-24 细
胞 Bcl-2 mRNA表达水平降低,差异均有统计学意义
(P <0. 01)。
2. 4 芒柄花黄素对 T-24 细胞 Bcl-2、p-38 表达影
响(图 2) Western blot 结果表明,对照组、20、40、
80 μmol /L芒柄花黄素组 T-24细胞 Bcl-2与 p-p38蛋白
表达水平分别为(1. 203 ± 0. 023)、(0. 998 ± 0. 034)、
(0. 591 ± 0. 030)、(0. 426 ± 0. 027)和(0. 326 ± 0. 027)、
(0. 483 ±0. 026)、(0. 569 ± 0. 031)、(0. 935 ± 0. 037),与
对照组比较,各芒柄花黄素组 T-24 细胞 Bcl-2 蛋白表
达水平下降,p-p38 蛋白表达水平升高,差异均有统计
学意义(P <0. 01)。
3 讨 论
抗凋亡是肿瘤细胞发生机制的重要环节[4]。
在癌变过程中,癌细胞失控生长会逐渐形成恶性癌,
并进一步侵入附近组织[5]。目前,临床应用的化疗
方法疗效有限,且对体内主要器官可产生毒性[6 - 7]。
近年来,人们致力于寻求抑制肿瘤发生和转移的新
天然药物[8]。芒柄花黄素是中药红三叶草的主要
活性成分。研究表明,芒柄花黄素可以防止血管生
成和癌转移,并在临床中已用于转移性结肠癌的治
疗[9]。MTT 是一种比色分析,可反映细胞增殖能
力[10],还可用于评估药物的细胞生长抑制效应[11]。
本研究结果显示,芒柄花黄素作用 72 h,明显著抑制
膀胱癌 T-24与 BIU-87 细胞增殖能力,并可促进T-24
细胞凋亡。B 细胞淋巴瘤 2(B cell lymphana 2,
Bcl-2)是最重要的细胞凋亡调节蛋白之一,它具有
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注:1:对照组;2 ~ 4:20、40、80 μmol /L芒柄花黄素组。
图 2 芒柄花黄素对 T-24 细胞 Bcl-2、p-p38 蛋白表达影响
很强的抗凋亡特性[12]。Bcl-2 蛋白与各种癌变,包
括慢性淋巴细胞性白血病、乳腺癌、肺癌和前列腺癌
有关[13]。本研究结果表明,经芒柄花黄素处理后,
T-24 细胞 Bcl-2 mRNA 水平与 Bcl-2 蛋白表达呈剂
量依赖性下降,提示芒柄花黄素可能通过下调 Bcl-2
蛋白表达而诱导 T-24 细胞凋亡。
丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein
kinase,MAPK)是一组可被多种信号激活的丝 /苏氨
酸激酶,在细胞内经双重磷酸化活化后可调节细胞
的多种生物活性,如促进增殖分化、诱导基因转录、
抑制凋亡、调节周期等。MAPK 信号转导通路非常
保守,在细胞信号转导通路中,MAPK 处于细胞质部
分的终末位置,活化后可以转到核内,调节基因表
达。迄今为止,已发现 p38、ERK5、ERK 以及 JNK4
个亚族[14 - 16]。目前认为,p38 激酶通路在炎症反
应、细胞生长、细胞分化和细胞死亡诸多过程中起关
键作用[17 - 18],p38 蛋白激酶的活化,有助于抑制细
胞增殖和癌变[19]。本研究结果显示,经芒柄花黄素
处理后,T-24 细胞 p38 蛋白激酶表达呈剂量依赖性
增高,提示,诱导 p38 蛋白激酶表达可能是芒柄花黄
素诱导 T-24 细胞凋亡的主要机制之一。
参考文献
[1] Umar A,Dunn BK,Greenwald P. Future directions in cancer pre-
vention[J]. Nat Rev Cancer,2012,12(12) :835 - 848.
[2] Shao H,Huang Q,Liu ZJ. Targeting Notch signaling for cancer ther-
apeutic intervention[J]. Adv Pharmacol,2012,65:191 -234.
[3] Yu J,Zhao P,Niu J,et al. Research on phytoestrogenic effect of
formononetin[J]. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi,2010,35(22) :
3060 - 3064.
[4] Sikora E,Bielak-Zmijewska A,Magalska A,et al. Curcumin in-
duces caspase-3-dependent apoptotic pathway but inhibits DNA
fragmentation factor 40 / caspase-activated DNase endonuclease
in human Jurkat cells[J]. Mol Cancer Ther,2006,5 (4) :
927 - 934.
[5] Friedl P,Alexander S. Cancer invasion and the microenvironment:
plasticity and reciprocity[J]. Cell,2011,147:992 - 1009.
[6] Peters BG. An overview of chemotherapy toxicities[J]. Top Hosp
Pharm Manag,1994,14:59 - 88.
[7] Torrisi JM,Schwartz LH,Gollub MJ,et al. CT findings of chemo-
therapy-induced toxicity:what radiologists need to know about the
clinical and radiologic manifestations of chemotherapy toxicity
[J]. Radiology,2011,258:41 - 56.
[8] El-Bayoumy K,Sinha R. Mechanisms of mammary cancer chemo-
prevention by organoselenium compounds[J]. Mutat Res,2004,
551(1 - 2) :181.
[9] Auyeung KK,Law PC,Ko JK. Novel anti-angiogenic effects of for-
mononetin in human colon cancer cells and tumor xenograft[J].
Oncol Rep,2012,28:2188 - 2194.
[10] Berridge MV,Herst PM,Tan AS. Tetrazolium dyes as tools in cell
biology:new insights into their cellular reduction[J]. Biotechnol
Annu Rev,2005,11:127 - 152.
[11] Van Meerloo J,Kaspers GJ,Cloos J. Cell sensitivity assays:the
MTT assay[J]. Methods Mol Biol,2011,731:237 - 245.
[12] Luo S,Rubinsztein DC. Apoptosis blocks beclin 1-dependent auto-
phagosome synthesis:an effect rescued by Bcl-xL[J]. Cell Death
Differ,2010,17:268 - 277.
[13] Kang MH,Reynolds CP. Bcl-2 inhibitors:targeting mitochondrial ap-
optotic pathways in cancer therapy[J]. Clin Cancer Res,2009,15:
1126 - 1132.
[14] Oeztuerk-Winder F,Ventura JJ. The many faces of p38 mitogen-
activated protein kinase in progenitor / stem cell differentiation
[J]. Biochem J,2012,445(1) :1 - 10.
[15] De Luca A,Maiello MR,DAlessio A,et al. The RAS /RAF /
MEK /ERK and the PI3K /AKT signalling pathways:role in cancer
pathogenesis and implications for therapeutic approaches[J]. Ex-
pert Opin Ther Targets,2012,16 Suppl 2:S17 - 27.
[16] del Barco Barrantes I,Nebreda AR. Roles of p38 MAPKs in inva-
sion and metastasis[J]. Biochem Soc Trans,2012,40 (1) :
79 - 84.
[17] 穆润清,贺安宁,王丽,等. MAPK 和 MPF 对小鼠受精卵有丝
分裂期作用[J].中国公共卫生,2006,22(5) :594 - 595.
[18] 杨学森,龚茜芬,张广斌,等. 电磁辐射对大鼠海马 MAPK 信
号通路的影响[J].中国公共卫生,2005,21(6) :693 - 695.
[19] Wagner EF,Nebreda AR. Signal integration by JNK and p38
MAPK pathways in cancer development[J]. Nat Rev Cancer,
2009,9:537 - 549.
收稿日期:2014- 11- 17 (解学魁编辑 郭薇校对)
·713·中国公共卫生 2015 年 3 月第 31 卷第 3 期 Chin J Public Health,Mar 2015 Vol. 31 No. 3