免费文献传递   相关文献

素馨花提取物橄榄苦苷在大鼠体内药代动力学研究



全 文 :收稿日期:2013-03-11 接受日期:2013-10-16
基金项目:河北省自然科学基金项目(C2010001354)
* 通讯作者 Tel:86-314-2291908;E-mail:zhaoguiqin1971@ sina. com. cn
天然产物研究与开发 Nat Prod Res Dev 2014,26:24-26,68
文章编号:1001-6880(2014)1-0024-04
素馨花提取物橄榄苦苷在大鼠体内药代动力学研究
郝 婷1,尹营松1,李亚洲1,刘丽艳1,陈四平2,赵桂琴1
1承德医学院中药研究所 /河北省中药研究与开发重点实验室,承德 067000;2 河北师范大学药物研究所,石家庄 050011
摘 要:本文对素馨花中提取纯化所得橄榄苦苷在大鼠体内的药代动力学过程进行研究。将雄性 Wistar 大鼠
随机分为橄榄苦苷 100、200、400 mg /kg剂量组,灌胃(i. g.)给药后不同时间采血,离心,血浆经甲醇-乙腈沉淀蛋
白后,HPLC测定不同时间点大鼠血浆中橄榄苦苷的含量。各给药组平均血药浓度-时间数据应用 3P97 软件进
行药代动力学参数分析,组间药动学参数用 SPSS 17. 0 进行统计分析。结果表明,橄榄苦苷在大鼠体内的药代
动力学过程符合二室模型,低、中、高剂量组的 t1 /2、CL /F、AUC差异具有显著的统计学意义,其中 t1 /2、CL /F随给
药剂量的增大而增大;AUC随剂量的增大,呈先减小后增大的趋势,橄榄苦苷在大鼠体内的药代动力学呈非线
性过程。
关键词:橄榄苦苷;HPLC;药代动力学
中图分类号:R285. 5 文献标识码:A
Study on Pharmacokineics of Oleuropein from
Jasminum officinale L. var. grandiflorum in Rats
HAO Ting1,YIN Ying-song1,LI Ya-zhou1,LIU Li-yan1,CHEN Si-ping2,ZHAO Gui-qin1*
1 Institute of Chinese Mateia Medica,Chengde Medical College / Hebei Key Laboratory of Research and
Development for Traditional Chinese Medicine,Chengde 067000,China;2 Institute
of Medica,Hebei Normal University,Shijiazhuang 050011,China
Abstract:The objective of this study was to study the pharmacokinetics of oleuropein extracted form Jasminum officinale
L. var. grandiflorum in healthy rats. Male Wistar rats were randomly divided into 100,200,400 mg /kg of oleuropein
group,The rats were intragastric administrated (i. g.)at different time. After the drug administration,blood sampling,
centrifugal,plasma protein precipitation with methanol and acetonitrile were carried out. The concentration of oleuropein
in blood serum was determined by high performance liquid chromatography (HPLC)at different time points. The average
blood oleuropein concentration-time data set was used to analyze the pharmacokinetic parameters by 3P97 software. The
pharmacokinetic parameters between different groups were applied to SPSS 17. 0 software for statistical analysis. The re-
sults showed that the pharmacokinetics of oleuropein in rats was fitted with two compartment model. The t1 /2,CL /F,AUC
of low,medium and high dose sample group had significant difference. The t1 /2 and CL /F increased with the increasing of
dose,while the AUC decreased firstly and then increased with increasing of dose. These results proved that the pharma-
cokinetics of oleuropein in rats were a non-linear process.
Key words:oleuropein;HPLC;pharmacokinetics
橄榄苦苷是一种裂环环烯醚萜苷类化合物,作
者从素馨花(Jasminum officinale L. var. grandiflorum)
70%乙醇提取物中分离得到。该物质体内外抗乙型
肝炎病毒(HBV)活性明确,在素馨花药材中含量丰
富(初步估算超过 5%)[1],易于分离纯化,有望成为
新型抗 HBV活性先导化合物。本文建立了测定橄
榄苦苷含量的 HPLC 方法,并应用该方法对橄榄苦
苷在大鼠体内的药代动力学过程进行了研究。
1 材料
1. 1 药品与试剂
甲醇(色谱纯,Dikmapure) ;甲醇(分析纯,天津
赛孚试剂厂) ;甲酸(分析纯,天津市佳兴化工厂) ;
市售纯净水;橄榄苦苷(实验室自制,纯度大于
98%) ;内标物黄芩苷(中国药品生物制品检定所,
批号:110715-201016)。
1. 2 仪器
Agilent 1200 型高效液相色谱仪(HPLC) ;HC-
2062 高速离心机(科大创新股份有限公司中佳分公
司) ;梅特勒-托利多 AG245 型分析天平(瑞士) ;
KQ-100E超声清洗器(昆明市超声仪器有限公司)。
1. 3 实验动物
SPF级雄性 Wistar 大鼠 120 只,体重 180 ~ 200
g,由北京华阜康生物科技股份有限公司提供,合格
证:0237506。
2 实验方法
2. 1 色谱条件
Agilent ZORBAX Eclipse XDB-C18(4. 6 mm × 150
mm,5 μm)色谱柱;流动相:水-甲醇-甲酸(63∶ 37∶ 1);检
测波长:276 nm;流速:1 mL /min;柱温:30 ℃;进样
量:20 μL。
2. 2 给药及样品采集
根据预实验结果,确定大鼠灌胃低、中和高剂量
分别为 100、200 和 400 mg /kg。取 Wistar 大鼠 120
只,随机分成低、中、高剂量组,每组 40 只给药前
12h禁食,自由饮水。将橄榄苦苷配制为相应浓度
的溶液,i. g.给药,给药容积为 10 mL /kg,给药后自
由饮水,分别于 i. g. 后 5、10、15、30、60、120、240、
480 min采用 400 μL 一次性负压采血管(肝素钠抗
凝) ,腹主动脉取血 400 μL(每个时间点 5 只) ,于
2500 rpm离心 15 min,分离血浆,-20 ℃保存。
2. 3 血浆样品预处理[2-5]
精密吸取空白血浆 100 μL,依次加入 1 mol /L
磷酸二氢钾溶液 50 μL 及 5 μL 内标物,涡旋 20 s,
依次加入甲醇 100 μL,乙腈 350 μL,涡旋 5 min,超
声 20 min,3000 rpm 离心,取上清液,40 ℃氮气挥
干,残渣用 500 μL 流动相复溶,14000 rpm 离心,取
上清液,进样 20 μL,HPLC法测定。
2. 4 血浆样品中橄榄苦苷标准曲线的制备
精密吸取空白血浆 100 μL,加入不同浓度橄榄
苦苷系列标准溶液 25 μL 和 0. 12 mg /mL 的内标溶
液 5 μL,配置成橄榄苦苷血浆标准系列,浓度分别
为 5. 25、10. 5、16. 75、21、26. 25、52. 5 μg /mL,每一
浓度平行配置 3 份,按“血浆样品处理”项操作后,
取上清液,进样 20 μL,每个样品进样 3 次,HPLC 测
定,记录峰面积,取平均值。
2. 5 精密度与准确度
制备橄榄苦苷低、中、高 3 个浓度(5. 25、16. 75、
26. 25 μg /mL)为质量控制(QC)样品,每个浓度平
行处理 5 份,按照“血浆样品处理”项操作,每个样
品测定一次,于一个工作日内完成,计算日内精密
度。同样的 QC 样品连续重复 3 d,计算日间精密
度。
2. 6 方法回收率的测定
制备橄榄苦苷低、中、高 3 个浓度(5. 25、16. 75、
26. 25 μg /mL)为质量控制(QC)样品,按“血浆样品
处理”项操作,以提取后的色谱峰面积与内标溶的
峰面积比值带入回归方程,所得浓度与实际浓度的
比值即为方法回收率。
2. 7 稳定性试验
考察橄榄苦苷低、中、高 3 个浓度(5. 25、16. 75、
26. 25 μg /mL)QC 样品的稳定性,以橄榄苦苷的峰
面积为指标,血浆样品处理后,4 ℃放置 3 d,HPLC
检测,记录峰面积。
2. 8 数据分析
灌胃给药后橄榄苦苷的血药浓度-时间数据用
3P97 药代动力学软件分析。组间药动学参数用
SPSS 17. 0 软件进行统计分析。
3 结果
3. 1 血浆样品中橄榄苦苷的标准曲线
以血浆样品中橄榄苦苷浓度为横坐标,待测物
与内标的峰面积比值为纵坐标,求得橄榄苦苷标准
曲线为 y = 0. 0442x-0. 038(R2 = 0. 9991) ,线性范围
5. 25 ~ 52. 5 μg /mL,信噪比 S /N = 3 时定量限为
5. 25 μg /mL。
3. 2 精密度与准确度
血浆中低、中、高浓度的橄榄苦苷的日内、日间
精密度 RSD值均小于 ± 5%,准确度 RE值均小于 ±
10%,其中,血浆中低、中、高浓度的橄榄苦苷的日内
峰面积 RSD分别为 1. 96%、2. 34%、1. 87%;血浆中
低、中、高浓度的橄榄苦苷日间峰面积 RSD 分别为
2. 89%、3. 67%、2. 96%。
3. 3 方法回收率的测定
血浆中低、中、高浓度的橄榄苦苷的提取回收率
分别为 96. 9%、98. 2%、102. 7%。
3. 4 稳定性试验
血浆中橄榄苦苷低、中、高 3 个浓度(5. 25、
16. 75、26. 25 μg /mL)QC 样品的稳定性,以橄榄苦
52Vol. 26 郝 婷等:素馨花提取物橄榄苦苷在大鼠体内药代动力学研究
苷的峰面积为指标,血浆样品处理后,4 ℃放置 3 d,
橄榄苦苷的 RSD分别为 7. 1%、8. 4%、3. 92%。
3. 5 药时曲线及药代动力学参数
大鼠灌胃给予低、中、高 3 个剂量橄榄苦苷后的
平均血药浓度-时间曲线(图 2) ,所得实验数据用
3P97 药代动力学软件进行处理,所得药动学参数见
表 1,经 3P97 软件拟合,体内药代动力学过程符合
二室模型,结果显示半衰期 t1 /2分别为 15. 189、
32. 829、55. 097 min,清除率 CL /F 分别为 0. 0174、
0. 0526、0. 0653 μg /(μL·min) ,随剂量的增大而延
长,药物浓度-时间曲线下面积 AUC 分别为 5759. 51、
3804. 57、6250. 72 μg /(min·μL) ,随剂量的增大先
减小后增大,显示出非线性药代动力学特征
表 1 大鼠灌胃不同剂量橄榄苦苷药动学参数(n = 5,珋x ± s)
Table 1 Main pharmacokinetic parameters of oleuropein after i. g. administration of different dose of oleuropein extract to rats (n = 5,
珋x ± s)
参数
Parameter
单位
Unit
给药剂量 Dose
100 mg /kg 200 mg /kg 400 mg /kg
速率常数 Ka 1 /min 0. 0442 ± 0. 01725 0. 0211 ± 0. 00197 0. 0291 ± 0. 0049
分布半衰期 t1 / 2(α) min 15. 189 ± 3. 908* 32. 829 ± 3. 33 55. 097 ± 4. 845
曲线下面积 AUC μg /(min·μL) 5759. 51 ± 1000* 3804. 57 ± 289. 39 6250. 72 ± 555. 4
清除率 CL /F(s) μg /(μL·min) 0. 0174 ± 0. 0059* 0. 0526 ± 0. 0003 0. 0653 ± 0. 009
出峰时间 T (peak) min 77. 223 ± 6. 93 72. 482 ± 3. 427 69. 765 ± 9. 632
最大血药浓度 C (max) μg /μL 8. 393 ± 1. 22 17. 876 ± 0. 985 23. 382 ± 2. 333
注:与中、高剂量组比较,* P < 0. 05。
Note:Compare with middle,high dose group,* P < 0. 05.
50
40
30
20
10
0
0 200% 400% 600
时间(min)
低剂量组
中剂量组
高剂量组
μ
g/
m
L
图 1 大鼠灌胃不同剂量橄榄苦苷体内的平均药时曲线
Fig. 1 Mean plasma concentration-time curve of oleuropein
after i. g. administration
4 讨论
由于大鼠个体间存在差异可能导致数据偏差,
本实验中的大鼠均采用完全随机法进行分组。取各
组大鼠血药浓度的平均值,用 3P97 药动学软件处理
数据,求出药动学参数,尽可能减少由于大鼠个体差
异所造成的数据偏差。
研究结果表明,大鼠灌胃不同剂量橄榄苦苷时,
橄榄苦苷的 t1 /2随给药剂量增大而显著延长,AUC
先减小后增大,推测橄榄苦苷在大鼠体内为非线性
动力学过程[6]。
实验结果显示,中、高剂量组(200 mg /kg和 400
mg /kg)大鼠血浆的药时曲线出现双峰现象,而低剂
量组(100 mg /kg)未出现双峰现象。药物的吸收出
现多峰现象存在多种原因,如肝肠循环、多部位吸
收、体内再分布等。中、高剂量组的双峰现象可能是
因为橄榄苦苷在大鼠体内的药代动力学存在肝肠循
环,或快速分布至其它脏器后再次吸收入血。相关
研究有待深入进行。
本实验也做了方法专属性考察,结果表明血浆
中内源性杂质不干扰橄榄苦苷的含量测定,内标物与
橄榄苦苷分离完全,峰形良好,该方法适用于本实验。
本研究均按照 2010 版药典的附录 XIX B,即生
物样品分析方法的基本要求,进行操作[7],符合国
内检测标准。
参考文献
1 Zhao GQ(赵桂琴). Studies on the chemical constituents and
anti-HBV activity of Jasminum officinale L. var. grandiflo-
rum. Beijing:Academy of Military Medical Sciences (军事医
学科学院) ,PhD. 2008.
2 Zhao XY(赵绪元) ,Yao JC(姚金成) ,Hu L(胡领) ,et al.
Determination of Baicalin of Yinhuan granules in rat plasma
by HPLC and study on its pharmacokinetics. Nat Prod Res
Dev (天然产物研究与开发) ,2007,19:645-647.
3 Zhang Y(张杨) ,Zhang ZQ(张振秋) ,Sun ZS(孙兆姝) ,et
al. Pharmacokinetic of berberine in combination of Cortex
Phellodendri and Rhizoma atractrylodis in rat. Chin Tradit
Pat Med(中成药) ,2009,31:1351-1354.
( 下转第 68 页)
62 天然产物研究与开发 Vol. 26
由此说明虎耳草乙酸乙酯萃取部位具有潜在的抑菌
作用。其中,化合物 2(琥珀酸)对枯草芽孢杆菌抑
菌圈大小为 8. 87 ± 0. 72,表明此化合物对枯草芽
孢杆菌有潜在的抑制作用。
致谢:核磁共振谱、质谱、抑菌实验数据由贵州
省、中国科学院天然产物化学重点实验室核磁室张
建新老师、质谱室王道平老师,生物活性研究室杨付
梅老师代测,抗癌药理数据由课题组黄志金同学在
贵阳中医学院杨长福博士的指导下完成。
参考文献
1 Drug Administratin of Gui Province(贵州省药品监督管理
局). Chinese Medicinal Materials in Guizhou Province,Na-
tional Quality Standards for Medicines(贵州省中药材、民族
药材质量标准). Guizhou Science and Technology Publish-
er,2003. 235.
2 Jiangsu Medical College(江苏新医学院). Dictionary of tra-
ditional Chinese medicine,the first volume(中药大辞典,上
册). Shanghai science and technology Publisher,2005.
1335.
3 Luo HW(罗厚蔚) ,Wu BJ(吴葆金) ,Chen JA(陈节庵) ,et
al. The effective components of Saxifraga stolonifera (L.)
Meerb. J China Pha Univ(中国药科大学学报) ,1988,19:
1-3.
4 Aoyagi Y,Kasuga A,Vujirma S,et al. Isolation of antioxida-
tive compounds from Saxifraga Stolonifera. Nip Shok Kag
Kog Kai,1995,42:1027-1030.
5 Feng WS(冯卫生) ,Li Z(李 振) ,Zheng XK(郑晓珂) ,et
al. Chemical constituents of Saxifraga stolonifera(L.)Meeb.
Acta Phar Sin(药学学报) ,2010,45:742-746.
6 Ding JX(丁家欣) ,Zhang L S(张立石) ,Zhang L(张 玲) ,
et al. The influence of Saxifraga stolonifera (L.)Meeb to
prostate anceer. Chin J Bas Med Trad Chin Med(中国中医
基础医学杂志) ,2005,11:905-907.
7 Liu SW(刘世旺) ,Xu YX(徐艳霞) ,Shi HW(石宏武).
The influence of Ethanol extract of Saxifraga stolonifera
(L.)Meeb to bacteria growth curve. J Anhui Agri Sci(安徽
农业科学) ,2007,35:943-946.
8 Chen Z,Liu YM,Yang S,et al. Studies on the chemical con-
stituents and anticancer activity of Saxifraga stolonifera (L.)
Meeb. Bio & Med Chem,2008,16:1337-1344.
9 Lv J(吕 洁) ,Kong LY(孔令义). Studies on the Constitu-
ents of Hypericum japonicum Thunb·ex Murray. Mod Chin
Med(中国现代中药) ,2009,(11) :12-14.
10 Xue HQ(薛慧清) ,Yang HP(杨红澎) ,Wang HQ(汪汉
卿) ,et al. Study on triterpenes from of Ligularia xantho-
tricha. China J Chin Mater Med(中国中药杂志) ,2008,33:
272-275.
11 Feng C(冯 超) ,Li XM(李晓明) ,Tian MQ(田敏卿) ,et
a1. Chemical constituents of medicinal mangrove plant Hibis-
cus tilisceus. Mar Sci(海洋科学) ,2008,32(9) :57-60
12 Pendse R,Rama R AV,Venkataraman K. 5,7-Dthydroxy-
chromone from Arachis hypogoea Shells. Phytochemistry,
1973,12:2033-2034.
13 Zhou ZH(周志宏) ,Zhang YJ(张颖君) ,Yang CR(杨崇
仁). Saluenin,a New Flavonol Glycoside from Camellia salu-
enensis. Act Bot Yunnan(云南植物研究) ,2000,22:90-96.
14 Tamura Y,Nakajima K,Nakayasu K,et al. Flavonoid 5-glu-
cosides from the cocoon shell of silkworm,Bombyx Mori Phy-
tochemistry,2002,59:275-278.
15 Yoon JK,Min HY,Eun JL,et al. Phytochemical Studies on
Paeoniae Radix (4)-Cerebrosides and Other Constituents.
Nat Prod Sci,2008,14:161-166.
16 Li HY(李红艳) ,Xia QS(夏启胜) ,Xu M(徐梅) ,et al.
Study of the optimal experiment conditions of MTT,MTS and
WST-1 in cell proliferation assay. Chin J Rehabilitation Med
(中国康复医学杂志) ,2005,20:824-826.
17 Zhang LS(张立石) ,Ding JX(丁家欣) ,Zhang QH(张秋
海) ,et al. The inhibition of the extract of Saxifraga stolonif-
era (L)Meeb to rat fibers cell. Chin J Bas Med Trad Chin
Med(中国中医基础医学杂志) ,2005,11:920,
櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵
922.
( 上接第 26 页)
4 Tian JZ(田景振) ,Wei FH(魏凤环). Study on pharmacoki-
netics of puerarin sustained-release capsules in rabbits after
intravenous administration. J Shandong Univ Tradit Chin
Med (山东中医药大学学报) ,2003,27:4542-4561.
5 Deng XG(邓新国) ,Hu SX(胡世兴) ,Zhang QJ(张清炯) ,
et al. Pharmacokinetic study of puerarin in aqueous humor of
rabbits following intraperitoneal injection. Chin Ophth Res(眼
科研究) ,2003,21:2582-2601.
6 Liu YM(刘亦明) ,Lin AH(林爱华) ,Chen H(陈汇) ,et
al. Study on pharmacokinetics of scutellarin in rabbits. Acta
Pharm Sin(药学学报) ,2003,38:775-778.
7 Chinese Pharmacopoeia Commission (国家药典委员会).
Pharmacopoeia of the People’s Republic of China (中华人
民共和国药典). Beijing:China Medical Science Press,
2010. Appendix XIX B.
86 天然产物研究与开发 Vol. 26