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生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2016, 32(6):231-237
收稿日期： 2015-10-10
基金项目：海洋公益性行业科研专项项目（201305018-3），海南省科技兴海专项项目（2015XH04），广省海洋渔业科技与产业发展专项项
目（A201501C09）
作者简介：陈程浩，男，硕士研究生，研究方向：微藻生物技术；E-mail ：cch90@126.com
通讯作者：向文洲，男，研究员，博士，研究方向：微藻生物技术；E-mail ：xwz@scsio.ac.cn
八株海洋微藻 Nannochloris sp. 生长及生化性状评价
陈程浩1，2  吴嘉仪3  汤明星1，2  李涛1  吴华莲1  王广华1   
戴世鲲1  向文洲1
（1. 中国科学院南海海洋研究所  中国科学院热带海洋生物资源与生态重点实验室，广州  510301 ；2. 中国科学院大学，北京  100049 ；3. 广
州市海怡康生物科技公司，广州  510301））
摘 要 ： 通过对从南海海域筛选分离纯化的 8 株 Nannochloris sp. 海洋微藻进行生长和生化特性分析，评估该属微藻的生产
应用潜力。采用干重法、索氏提取法、凯氏定氮法、苯酚硫酸法、气相色谱质谱联用分别测定微藻生长以及油脂、蛋白质、多
糖含量及脂肪酸组成。结果表明，8 株微藻的最大生物量干重为 0.39-0.91 g/L，生长最快的为 SCS-761 藻株 ；总脂含量为（19.06-
33.67）%，其中 SCS-249、SCS-589、SCS-655 藻株总脂含量超过 25%，且 SCS-655 藻株油脂产率高达 22.23 ± 0.71 mg /（L·d）；SCS-
249、SCS-325、SCS-355、SCS-640、SCS-769 藻株蛋白质含量超过 30%，其中 SCS-640 藻株蛋白质含量最高（36.70 ± 2.20）%；而
各株藻的多糖含量介于 19.23%-29.34%，其中 SCS-761 最高，SCS-655 最低。另外，脂肪酸组成分析结果显示 8 株微藻的脂肪酸组
成结构相似，主要为 C16 饱和脂肪酸和 C18 系脂肪酸。不饱和脂肪酸以亚油酸相对含量最高，SCS-249、SCS-355、SCS-761 藻株亚
油酸相对含量超过 40%。海洋微藻 Nannochloris 生物活性物质资源丰富，含有较高的脂质、蛋白质和亚油酸含量，应用潜力可观，
应对该属微藻进行更为深入的研究开发，为该属微藻高值化综合性开发奠定基础。
关键词 ： 海洋微藻 ；生长 ；油脂 ；蛋白质 ；多糖 ；脂肪酸
DOI ：10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2016.06.034
Evaluation on Growth and Biochemical Properties of Eight Strains of
Marine Microalgae Nannochloris sp.
CHEN Cheng-hao1，2  WU Jia-yi3  TANG Ming-xing1，2  LI Tao1  WU Hua-lian1  WANG Guang-hua1   
DAI Shi-kun1  XIANG Wen-zhou1
（1. Key Laboratory of Tropical Marine Bio-resources and Ecology，South China Sea Institute of Oceanology，Chinese Academy of Sciences，
Guangzhou 510301 ；2 University of Chinese Academy of Sciences，Beijing 100049 ；3 Guangzhou Haiyikang Bio-tech Company，Guangzhou
510301）
Abstract:  This work is to evaluate the productive potential of Nannochloris sp. by analyzing the growth and biochemical characteristics 
of 8 strains screened from the South China Sea region. Using dry weight determination，soxhlet extraction，kjeldahl nitrogen method，phenol 
sulfuric acid determination combined with gas chromatography-mass spectrometry technology，the microalgal growth，the content of  lipid，
protein and polysaccharide and the composition of fatty acids were analyzed correspondingly. The maximum dry weight of eight strains was 0.39 
- 0.91 g/L and the SCS-761 strain grew the fastest. The total lipid content ranged in 19.06% - 33.67%，and that of SCS-249，SCS-589，and 
SCS-655 was over 25%，and the lipid productivity of SCS-655 strain was as high as 22.23 ± 0.71 mg /（L·d）. The protein contents of SCS-
249，SCS-325，SCS-355，SCS-640，and SCS-769 were over 30%，of which the highest for SCS-640 strain（36.70 ± 2.20）%. Moreover，
the polysaccharide content of each strain was between 19.23% to 29.34%，of which the highest was SCS-761 strain and the least was SCS-655 
strain. In addition，the analysis of fatty acid composition showed that the structures of fatty acid in all microalgae strains were similar，mainly 
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2016,Vol.32,No.6232
当前微藻作为淡水或者海洋水体中一种宝贵的
生物资源，具有极为丰富的应用价值，受到国内外
学者的广泛研究［1］。一方面微藻细胞内富含脂质，
因而可将其提取而转化为生物柴油［2］；另一方面，
由于也富含各类生物活性物质，如蛋白质、生物多
糖、不饱和脂肪酸等，在保健食品、医药健康、美
容养颜方面显示出了巨大的开发利用前景［3］。近
年来，国内外科研单位对优质的微藻已有多方面的
研究和应用开发，如小球藻（Chlorella）［4］、绿球
藻（Chlorococcum）［5］、 栅 藻（Scenedesmus）［6］ 等
富油微藻因细胞内脂质含量丰富而具有生产油脂和
生物柴油的潜力；螺旋藻（spirulina）［7］因富含蛋
白质而在保健品行业中实现大规模培养开发；而拟
微绿球藻（Nannochloropsis）［8］富含二十碳五烯酸
（eicosapentaenoic acid，EPA）也受到了国内外研究
人员的重视。因此在发展微藻相关产业的过程中，
需确定藻种的特性，并根据市场需求，才可实现微
藻的高值化开发。
Nannochloris sp. 为绿藻门（Chlorophyta）、绿藻
纲（Chlorophyceae）、 绿 球 藻 目（Chlorococcales）、
胶球藻科（Coccomyxaceae）［9］。藻细胞壁薄，呈球
形或卵圆形，细胞个体微小，直径 2-4 μm，含有一
个卵圆形或杯状的叶绿体，一个细胞核及几个线粒
体，无淀粉核或淀粉粒。研究表明，该属微藻在生
物柴油［16］、微藻饵料［10］、环境保护［11］、生物医药［12］
等方面具有不同程度的进展，因而对其研究备受国
内外研究人员的关注。目前，国内对该属的研究较少，
尚未见从生物活性物质资源的角度出发，对从我国
海域分离纯化的 Nannochloris sp. 进行综合性的评估
的研究报道。
然而，由于 Nannochloropsis sp.（囊胞藻界、异
鞭藻门、真眼点藻纲）拉丁属名与 Nannochloris 
sp. 相近，而且从形态学上观察，二者大小形状
相似。当前国内所发表的文章中经常性的将这两
个属的藻种弄混，许多研究将 Nannochloris sp. 与
Nannochloropsis sp. 在中文的表达上均通称为微绿球
藻。Nannochloris sp. 在国内应表示为微绿球藻，而
Nannochloropsis sp. 一般表示为微拟球藻或拟微绿球
藻。一般情况下，Nannochloris sp. 不含或者含有较
少的长链不饱和脂肪酸，而 Nannochloropsis sp. 富含
EPA。另外，可以通过分子鉴定直接鉴别两种微藻。
本研究对从南海海域筛选分离纯化的 8 株
Nannochloris sp. 微藻，展开生长及生化特性的评价，
重点关注其细胞内所含的包括油脂、蛋白质、多糖、
脂肪酸等各类生物活性物质，旨在筛选易培养、生
长快、生物活性物质产量丰富的藻株，为该属微藻
高值化综合性开发利用奠定物种资源和应用基础。
1 材料与方法
1.1  材料
1.1.1  藻种  本实验藻种是从中国南海北部、东部、
广西北海、东沙群岛近岸等水域水体中筛选分离纯
化而来的藻株，并以经过 18S rDNA 测序，初步确定
其分类地位，8株微藻均为 Nannochloris sp.，藻种保
存于中国科学院南海海洋研究所微藻课题组藻种库。
1.1.2  培养条件  采用连续光照培养，培养体系为
300 mL，并且每株藻分为 3 个平行同时培养，培养
周期为 12 d，光照强度为（100±5）μmol· m-2·s-1。
培养基采用 f /2 培养液，盐度控制（25±1）‰，使
用前 121℃高压灭菌 20 min。在培养过程中，通过
补充 CO2 控制培养基的 pH 在 7.8-8.8 之间，并且每
天定时摇晃培养体系 6次。
f/2 培养基成分为：0.5 g/L NaHCO3，0.1 g/L Na-
NO3，0.01 g/L NaHPO4·2H2O，4.36 mg/L Na2EDTA，
3.16 mg/L FeCl3.6H2O，0.01 mg/L CuSO4·5H2O，0.023 
mg/L ZnSO4·7H2O，0.012 mg/L CoCl2·6H2O，0.18 
mg/L MnCl·4H2O，0.07 mg/L Na2MoO4·2H2O。采用
南海海域上层海水配制培养基。
composed of C16 saturated fatty acids and C18 series of fatty acids. Linoleic acid was the highest content among unsaturated fatty acids，and 
the linoleic acid contents of SCS-249，SCS-355，and SCS-761 were over 40%. In conclusion，the results  indicates that marine microalgae
Nannochloris sp. has relatively abundant germplasm resources including lipid，protein and linoleic acid，and owns considerable application 
potential ；thus it is necessary to have more in-depth research. 
Key words:  marine microalgae ；growth ；lipid ；protein ；polysaccharide ；fatty acid
2016,32(6) 233陈程浩等 ：八株海洋微藻 Nannochloris sp. 生长及生化性状评价
1.2  方法
1.2.1  生长测定  在微藻的培养周期内，每日使用
光学显微镜镜检，观察微藻形态和生长状况，确保
藻株正常生长其保持单种状态。隔天取藻液进行
A750、pH 及微藻干重（Dry Weight，DW）测定。
微藻干重测定［13］：取 5-20 mL 藻液，用烘干并
已称重的混合纤维滤膜（Φ50 mm，0.45 μm）抽滤，
重复用 0.5 mol/L 碳酸氢氨溶液冲洗藻细胞 3次，再
将带有藻细胞的滤膜置于烘箱中 70℃烘干，直至恒
重。从烘箱取出后放于干燥器中冷却后称重，通过
计算滤膜过滤前后质量的差值得到藻细胞干重，单
位为mg/L。每个处理组各平行 3次。
比生长速率计算公式：μ 1nNt  1nN
Δt
。
式中：μ 为比生长速率（d-1）；Nt 为培养 t 天的
A750 ；N为起始的 A750 ；△ t 表示培养时间间隔。
1.2.2  总脂提取和测定  采用改进的索氏提取法提
取脂质并测定含量［14］。称取 50 mg 左右的干藻粉于
研钵中，加入适量液氮后快速研磨，重复操作 3次，
转移至带有磁力转子的 10 mL 塑料离心管中；加入
2 mL 二甲基亚砜（DMSO）- 甲醇（1∶9 V/V）溶液
后，置于磁力水浴锅中，50℃水浴 1 h，冰水浴 1 h，
5 000 r/min 离心 5 min，上清液转入新的 10 mL 离心
管中；剩余的藻渣中再加入正己烷 -乙醚（1∶1 V/V）
溶液 4 mL，于冰水浴下磁力搅拌抽提 1 h，5 000 r/min
离心 5 min，上清转入上述新离心管中。如此重复
抽提后直至藻渣变白，合并上清液；按照 DMSO-
甲醇∶H2O 为 1∶1 的比例，加入去离子水，并于
3 000 r/min 离心 1 min 加速分层，吸取有机层至离心
管中，使用氮吹仪吹干；最后用少量乙醚再溶转移
至已称重的 1.5 mL 离心管中，使用氮吹仪吹干至恒
重并称量。样品均重复试验 3次。
1.2.3  总蛋白质的测定  采用凯氏定氮法测定总蛋
白含量。 对微藻样品进行消化处理，将有机氮转化
为氨，通过盐酸滴定的方法，检测氨的含量，最后
通过计算，以蛋白质的 F 值为 6.25，得到样品蛋白
质含量。样品均重复试验 3次。
1.2.4  多糖的测定  采用苯酚硫酸法测定多糖含量。
称取 20 mg 左右的干藻粉进行快速研磨后放置在 10 
mL 螺口玻璃离心管，并加入 5 mL 丙酮溶液进行脱
色处理 30 min，离心除去丙酮并晾干。往脱色藻粉
中加入 3 mL 0.5 mol/L 硫酸并摇匀，与 98℃水浴中
搅拌 2 h，5 000 r/min 离心 5 min 后取上清于 50 mL
容量瓶中，用去离子水清洗藻渣并离心收集于容量
瓶中，用水定容至 50 mL 混匀，取 0.2 mL 并加去离
子水补至 2 mL，后加入新配的 6%苯酚溶液 1 mL 及
浓硫酸 5 mL，摇匀冷却至室温，放置 20 min 后于
490 nm 波长下测光密度，并根据葡萄糖标准曲线测
得微藻多糖的含量。样品均重复试验 3次。
1.2.5  脂肪酸提取和测定  称取 25 mg 冻干藻粉，放 
置在 10 mL 螺口玻璃离心管中，再放置一小磁力棒，
加入 2 mL 2% H2SO4 无水甲醇∶甲苯（9∶1 V/V），
充满氮气后，再将玻璃离心管放置于 80℃的水浴加
热搅拌 1.5 h，取出搅拌转子，按顺序分别加入 1 mL
的去离子水和 1 mL 正己烷，震荡后，3 000 r/min 离
心 10 min，将上层有机相转移到另一小玻璃瓶，氮
气吹干，再加入 1 mL 正己烷密封，加入无水硫酸
钠干燥，并用孔径为 0.22 μm 的滤膜过滤，最后利
用气相色谱质谱联用（ Gas chromatography and mass 
select-detector，GC-MS）进行脂肪酸测定［15］。
1.2.6  数据统计和分析  采用 SPSS 13.0 统计软
件进行统计分析，数值变量资料以均数 ± 标准差
（x
-
±s）表示，采用方差分析和 t 检验。检验水平
α=0.05，P<0.05 差异有统计学意义。使用 Origin 8.1
处理数据，并制作图表。
2 结果
2.1  8株微藻的生长特性
在 12 d 的培养周期内，8 株微藻的生长状态
存在明显的差异，平均比生长速率为 0.108-0.178 
d-1。如图 1 生长曲线所示，各株藻经过前 2 d 延滞
期后进入指数生长期，并于培养 4-6 d 后达到最大
生长速率，8 株藻中，以 SCS-655，SCS-761，SCS-
769 三株藻的生长速度较快，其最大比生长速率分
别为 0.283 ± 0.035 d-1、0.308 ± 0.010 d-1、0.349 ± 
0.026 d-1。
在培养期的最后一天，各个培养体系达到最大
生物量，其干重结果如图 2 所示，8 株 Nannochloris
sp. 微藻的最大干重生物量介于 0.39-0.91 g/L，最高
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2016,Vol.32,No.6234
的为 767 号藻株，其生物量已超过 0.9 g/L，而最低
的 SCS-325 藻株仅为 0.39 ± 0.04 g/L。
2.2  微藻总脂测定结果
结合图 3 所示结果，比较 8 株微藻的油脂含量
和油脂产率，可以发现 8 株微藻的油脂含量及油脂
产率差别较大，其中 SCS-655 藻株的油脂含量最高，
为（32.93±1.05）%，而 SCS-640 藻株含量相对最低，
为（18.34±1.02）%。本研究评估的 8 株 Nannochl-
oris 微藻藻株中，油脂含量大于 25% 的有 3 株，分
别为 SCS-249、SCS-589、SCS-655 藻株。为了进一
步评估微藻进行油脂和生物柴油开发的潜力，除了
生物量或油脂含量等指标外，还引入油脂产率作为
8株藻的评估指标。比较图 3中数据可以看出，SCS-
249、SCS-655、SCS-761 相对于其它微藻，油脂产率
较高，超过 15 mg /（L·d），其中 SCS-655 藻株的油
脂产率高达 22.23 ± 0.71 mg /（L·d）。
1.0
0.9
0.8
0.7
0.6
0.5
0.4
0.3
0.2
0.1
0
⭏⢙䟿g·L-1 
0 2 4 ᰦ䰤d6 8 10 12
SCS-249
SCS-325
SCS-355
SCS-589
SCS-640
SCS-655
SCS-761
SCS-769
图 1 8 株微藻的生长曲线
1.0
0.9
0.8
0.7
0.6
0.5
0.4
0.3
0.2
0.1
0
ᴰབྷ⭏⢙䟿g·L-1 
SC
S-2
49
SC
S-3
25 㰫Ṛ㕆ਧSCS-355 SCS-589 SCS-640 SCS-655 SCS-761 SCS-769
图 2 8 株微藻的最大生物量（第 12 天干重）
表 1 8 株微藻的平均比生长速率与最大比生长速率
藻株编号 平均比生长速率 /d-1 最大比生长速率 /d-1
SCS-249 0.171 ± 0.005 0.283 ± 0.035
SCS-325 0.108 ± 0.002 0.146 ± 0.017
SCS-355 0.149 ± 0.002 0.221 ± 0.020
SCS-589 0.141 ± 0.002 0.231 ± 0.016
SCS-640 0.152 ± 0.002 0.251 ± 0.013
SCS-655 0.178 ± 0.001 0.308 ± 0.010
SCS-761 0.177 ± 0.006 0.349 ± 0.026
SCS-769 0.138 ± 0.001  0.268 ± 0.023
40
35
30
25
20
15
10
5
0
⋩㜲ਜ਼䟿% 403530252015
10
5
0
⋩㜲ӗ⦷mg·L-1 d-1 
SC
S-2
49
SC
S-3
25 㰫Ṛ㕆ਧSCS-355 SCS-589 SCS-640 SCS-655 SCS-761 SCS-769⋩㜲ਜ਼䟿⋩㜲ӗ⦷
图 3 8 株微藻的油脂含量与油脂产率
2.3  微藻蛋白质测定结果 
对培养 12 d 后的 8 株微藻的蛋白质含量进行提
取测定（图 4），发现 8株藻的蛋白质含量较高，其
中，SCS-249、SCS-325、SCS-355、SCS-640、SCS-
769 藻株蛋白质含量超过 30%，其中含量最高的是
SCS-640 藻株，蛋白质含量达（36.70±2.20）%。而
含量最低的 SCS-655 藻株也达到（27.60±1.30）%。
2.4  微藻多糖测定结果
图 5 所示为各株藻的多糖含量，各株藻的多糖
含量差异较大，含量介于（19.23-29.34）% 之间，
2016,32(6) 235陈程浩等 ：八株海洋微藻 Nannochloris sp. 生长及生化性状评价
其中，最高的为 SCS-769 藻株，为（29.34±2.01）%，
而最低的 SCS-655 藻株（19.23±0.65）%，前者高
于后者 52.57%。
35.37%（SCS-769）。不饱和脂肪酸以亚油酸居多，
其 中 SCS-249、SCS-355、SCS-761 藻 株 亚 油 酸 含
量超过 40%，分别为（40.75±1.23）%、（42.11± 
1.94）%、（41.54±2.31）%。
3 讨论
Nannochloris sp. 作为海洋单细胞微藻重要的一
属，在工业开发、饲料应用、医疗保健等方面均
有重要的发展潜力和应用价值。有研究发现［11］，
Nannochloris sp. 提取完油脂后的生物质可以作为生
物吸附剂除去铬金属离子，这也表明该属微藻在治
理重金属污染方面有重要作用。而在饲料应用方面，
研究发现［10］将 Nannochloris sp. 作为水产饵料时，
可以提高鱼虾的存活率和产率。另有研究［16］将微
藻 Nannochloris sp. 的培养与厌氧消化协同作用，维
持微藻生物量和沼气生产，实现光合作用所损失的
碳的回收以及从厌氧消化中同化有机副产品，从而
使 C 转化效率提高 6.3%。而最新的一项研究［12］发
现 Nannochloris sp. 在生物医学上具有特殊的功能作
用。在光照条件下，可以与人视网膜色素上皮细胞、
成纤维细胞、角质形成细胞、海拉细胞自发形成共
生体，实现了人体细胞机能的增强。
通过从环境中直接筛选分离纯化藻株，是获
得生物活性物质含量丰富，应用价值高，发展潜力
大的微藻资源的一种便捷方式。本研究对从南海
海域水体中筛选分离的 8 株 Nannochloris sp. 微藻
进行生长及生理生化特性评估而对该属微藻的综
合评价。经过 12 d 周期的培养，8 株藻的最大生物
量为 0.39-0.91 g/L（图 2），这个结果与相关研究
报道的 Nannochloris sp. 微藻在不同培养条件下的
生长速率接近［17，18］，说明本研究中从南海筛选的
Nannochloris sp. 藻株具备良好的生长特性。
微藻细胞中，脂质、蛋白质、多糖是占干重最
多的 3 种主要生化物质，这 3 类物质占微藻干重的
80% 左右，而不同的藻株三者的组成不同。据相关
文献报道［17，19］，一般情况下 Nannochloris sp. 细胞
内油脂含量介于 15%-25%，而利用甘油兼养的条件
下，达到 27.55%［20］。而本研究其中，油脂含量大
于 25% 的有 3 株，其中 SCS-655 藻株油脂含量超过
30% 且油脂产率高达 22.23 ± 0.71 mg /（ L·d），这
40
35
30
25
20
15
10
5
0
㳻ⲭ䍘ਜ਼䟿%
SC
S-2
49
SC
S-3
25 㰫Ṛ㕆ਧSCS-355 SCS-589 SCS-640 SCS-655 SCS-761 SCS-769
图 4 8 株微藻的蛋白质含量
35
30
25
20
15
10
5
0
ཊ㌆ਜ਼䟿%
SC
S-2
49
SC
S-3
25 㰫Ṛ㕆ਧSCS-355 SCS-589 SCS-640 SCS-655 SCS-761 SCS-769
图 5 8 株微藻的多糖含量
2.5  脂肪酸组成分析
对 8 株微藻进行脂肪酸组成分析，结果为各类
脂肪酸占总脂肪酸的百分比比较，如表 2 所示，8
株微藻的脂肪酸组成相似，组成结构较为简单，不
存在 C20 及以上的长链脂肪酸。各株藻的饱和脂肪
酸主要为 C16∶0，并存在少量的 C18∶0。不饱和脂
肪酸均为 C18 系脂肪酸，而各株藻的多不饱和脂肪
酸含量分别为 47.97%（SCS-249），54.35%（SCS-325），
51.49%（SCS-355），43.68%（SCS-589），48.27%
（SCS-640），33.48%（SCS-655），50.99%（SCS-761），
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2016,Vol.32,No.6236
说明所筛选的藻株具有油脂和生物柴油的应用潜力。
其次，8 株微藻多糖含量为 19.23%-29.34%（图 5），
SCS-769 藻株含量最高，为（29.34±2.01）%，研究
表明通过培养基磷浓度的变化可以实现微藻脂质和
多糖之间的转化［21］。而 8 株微藻中蛋白质含量超
过 30% 的有 5 株，蛋白质含量最高的 SCS-640 藻株
达（36.70±2.20）%，Nannochloris sp. 的蛋白质含量
显著高于研究报道的其他属（Amphidinium carterae，
Dunaliella tertiolecta，Hillea sp.，Isochrysis galbana，
Skeletonema costatum）微藻［22］。以这 3 类物质为
基础进行微藻工业开发，在生物能源、微藻饵料、
单细胞蛋白等方面均有巨大的应用潜力。这表明
Nannochloris sp. 微藻富含较高的生物活性物质资源，
值得对该属微藻进行更多的研究和应用发掘。
另外，对微藻的脂肪酸测定结果（表 2）发现，
8 株微藻脂肪酸构成简单，而且均不存在 C20 及以
上的长链脂肪酸，这与国外相关研究存在差异，Bae
等［23］研究中所选的 Nannochloris sp. 藻株 EPA 和
DHA 总量占总脂肪酸的 6.28%。而 8 株藻中饱和脂
肪酸主要以 C16∶0 存在，不饱和脂肪酸中，以亚
油酸（C16∶3）的比例较高，SCS-249、SCS-355、
SCS-761 藻株亚油酸含量超过 40%，亚油酸是人体
的必需脂肪酸，在降低血液胆固醇等方面有重要作
用，具有巨大的营养价值，因此亚油酸可以作为
Nannochloris sp. 的高值化加工产品进行开发。
4 结论
本研究测量并分析了 8 株 Nannochloris sp. 微藻
的生长速度、油脂、蛋白质、多糖含量及脂肪酸的
组成等多个指标，对 8 株微藻进行生物活性物质资
源评估。结果显示，8 株 Nannochloris sp. 微藻含有
丰富的蛋白质、油脂、多糖、亚油酸等多种生物活
性物质资源，其中 SCS-249、SCS-655、SCS-761 藻
株生长速度较快、多种生物活性物质的产率较高，
具有良好的应用开发前景。
参 考 文 献
［1］  Spolaore P, Joannis-Cassan C, Duran E,  Isambert A. Commercial 
applications of microalgae［J］. J Biosci Bioeng, 2006, 101（2）：
87-96. 
［2］  Gong Y,  Jiang M.  Biodiesel  production  with microalgae  as 
feedstock ：from strains to biodiesel［J］. Biotechnol Lett, 2011, 33
（7）：1269-1284. 
［3］  Borowitzka MA. High-value  products  from microalgae—their 
development  and  commercialisation［J］.  Journal  of Applied 
Phycology, 2013, 25（3）：743-756. 
［4］  Hadiyanto HMM. Azimatun Nur, Hartanto GD. Cultivation of Chlor-
ella sp. as biofuel sources in palm oil mill effluent（POME）［J］. 
Int Journal of Renewable Energy Development, 2012, （2）：45-49. 
［5］  Karemore A, Pal R, Sen R. Strategic enhancement of algal biomass 
and lipid in Chlorococcum infusionum as bioenergy feedstock［J］. 
Algal Research, 2013, 2（2）：113-121. 
［6］  Makarevičienė V, Andrulevičiūtė V, Skorupskaitė V, Kasperovič-
ienė J. Cultivation of microalgae Chlorella sp. and Scenedesmus sp. 
as a potentional biofuel  feedstock［J］. Environmental Research, 
2011, 3（57）：21-27. 
［7］  Govindaraju K, Basha SK, Kumar VG, Singaravelu G. Silver, gold 
and bimetallic nanoparticles production using single-cell protein
表 2 8 株微藻的脂肪酸组成
藻株编号
相对含量 /% TFA
C16 ：0 C18 ：0 C18 ：1 C18 ：2 C18 ：3
SCS-249 27.70 ± 0.89 2.33 ± 0.02 22.00 ± 0.71 40.75 ± 1.23 7.22 ± 0.23
SCS-325 23.32 ± 1.12 2.52 ± 0.11 19.81 ± 0.56 39.44 ± 1.76 14.91 ± 0.61
SCS-355 20.44 ± 0.82 3.65 ± 0.06 24.42 ± 1.36 42.11 ± 1.94 9.38 ± 0.26
SCS-589 33.51 ± 1.31 2.14 ± 0.07 20.67 ± 0.77 29.56 ± 1.42 14.12 ± 0.28
SCS-640 27.23 ± 0.99 3.16 ± 0.14 21.34 ± 0.64 34.78 ± 1.94 13.49 ± 0.33
SCS-655 51.64 ± 2.09 1.35 ± 0.04 13.52 ± 0.53 23.47 ± 1.08 10.01 ± 0.41
SCS-761 23.67 ± 1.24 1.78 ± 0.03 23.56 ± 0.95 41.54 ± 2.31 9.45 ± 0.23
SCS-769 45.76 ± 1.62 2.83 ± 0.17 16.04 ± 0.32 14.04 ± 0.62 21.33 ± 0.69
2016,32(6) 237陈程浩等 ：八株海洋微藻 Nannochloris sp. 生长及生化性状评价
（Spirulina platensis）Geitler［J］. Journal of Materials Science, 
2008, 43（15）：5115-5122. 
［8］  Recht L, Zarka A, Boussiba S. Patterns of carbohydrate and fatty acid 
changes under nitrogen starvation in the microalgae Haematococcus
pluvialis and Nannochloropsis sp.［J］. Appl Microbiol Biotechnol, 
2012, 94（6）：1495-1503. 
［9］  Guiry MD, Guiry GM. AlgaeBase. Worldwide electronic publication, 
National University of  Ireland, Galway［Electronic  resource］. 
http://www. algaebase. org, 2013. 
［10］  Witt U, Koske PH, Kuhlmann D, et al. Production of Nannochloris 
spec. （Chlorophyceae）in large-scale outdoor tanks and its use as 
a  food organism in marine aquaculture［J］. Aquaculture, 1981, 
23 ：171-181. 
［11］  Kim EJ, Park S, Hong HJ, et al. Biosorption of chromium（Cr（III）/Cr
（VI））on the residual microalga Nannochloris oculata after  lipid 
extraction for biodiesel production［J］. Bioresour Technol, 2011, 
102（24）：11155-11160. 
［12］  Black CK, Mihai DM, Washington I. The photosynthetic eukaryote 
Nannochloris eukaryotum as an intracellular machine to control and 
expand functionality of human cells［J］. Nano Lett, 2014, 14（5）：
2720-2725. 
［13］  Zhu CJ, Lee YKL, Determination of biomass dry weight of marine 
microalgae［J］. Journal of Applied Phycology, 1997, （9）：189-
194. 
［14］  Yang F, Xiang W, Sun X, et al. A novel  lipid extraction method 
from wet microalga Picochlorum  sp. at  room  temperature［J］. 
Marine Drugs, 2014, 12（3）：1258-1270. 
［15］  何瑞 , 徐宁 , 段舜山 . 九种海洋微藻总脂含量及脂肪酸组成分
析［J］. 生态科学 , 2014, 33（1）：93-98. 
［16］  Vasseur C, Bougaran G, Garnier M,  et  al. Carbon conversion 
efficiency and population dynamics of  a marine algae-bacteria 
consortium growing on simplified synthetic digestate ：first step in a 
bioprocess coupling algal production and anaerobic digestion［J］. 
Bioresour Technol, 2012, 119 ：79-87. 
［17］  Park SJ, Choi YE, Kim EJ, et al. Serial optimization of biomass 
production using microalga Nannochloris oculata and corresponding 
lipid biosynthesis［J］. Bioprocess Biosyst Eng, 2012, （35）：3-9. 
［18］  Yesica IFA, Luis AOC, Ignacio APL, et al. Growth of Chlorella
vulgaris and Nannochloris oculata  in effluents of Tilapia  farming 
for  the production of  fatty acids with potential  in biofuels［J］. 
African Journal of Biotechnology, 2015, 14（20）：1710-1717. 
［19］  Levine RB, Sierra COS, Hockstad R, et al. The use of hydrothermal 
carbonization to recycle nutrients in algal biofuel production［J］. 
Environmental Progress & Sustainable Energy, 2013, 32（4）：
962-975. 
［20］  Andruleviciute V, Makareviciene V, Skorupskaite V, Gumbyte 
M. Biomass and oil content of Chlorella sp.  , Haematococcus sp.  , 
Nannochloris sp. and Scenedesmus sp. under mixotrophic growth 
conditions  in  the presence of  technical glycerol［J］. Journal of 
Applied Phycology, 2013, 26（1）：83-90. 
［21］  Liang K, Zhang Q, Gu M, Cong W. Effect of phosphorus on lipid 
accumulation in freshwater microalga Chlorella sp［J］. Journal of 
Applied Phycology, 2012, 25（1）：311-318. 
［22］  Barbarino  E,  Lourenço  SO.  An  evaluation  of  methods  for 
extraction and quantification of protein  from marine macro- and 
microalgae［J］. Journal of Applied Phycology, 2005, 17（5）：
447-460. 
［23］  Bae  JH, Hur  SB.  Selection  of  Suitable  Species  of Chlorella, 
Nannochloris, and Nannochloropsis in High- and Low-Temperature 
Seasons for Mass Culture of the Rotifer Brachionus plicatilis［J］. 
Fisheries and aquatic sciences, 2011, 14（4）：323-332. 
（责任编辑  李楠）