全 文 ：收稿日期： 2013-09-22； 修回日期： 2013-11-18
基金项目： 国家林业公益性行业科研专项 （201204308）； 西北农林科技大学基本科研业务费资助项目
（QN2013079）
作者简介： 高艳， 从事园林植物类黄酮次生代谢产物的调控研究。 E-mail： gaoyanyan.gy@163.com。 通信作者：
李厚华 ， 副教授 ， 博士 ， 从事植物分子生物学与转基因技术 、 植物花色调控等研究 。 E-mail:
lihouhua73@163.com
浙 江 农 林 大 学 学 报， 2014， 31（3）： 481 - 487
Journal of Zhejiang A＆ F University
doi:10.11833/j.issn.2095-0756.2014.03.023
紫叶李叶片色素成分分析
高 艳， 李厚华， 李 玲， 王亚杰， 徐 曼
（西北农林科技大学 林学院， 陕西 杨凌 712100）
摘要： 紫叶李 Prunus cerasifera 是常见的园林绿化观叶树种， 其叶片在整个生长季节均为紫红色。 以紫叶李叶片为
试验材料， 利用高效液相色谱仪-二极管阵列检测器、 紫外-可见分光光度计、 薄层色谱分析法对紫叶李叶片的色素
种类及含量进行了定性和定量分析。 结果表明： 紫叶李叶片内含有类胡萝卜素、 叶绿素（叶绿素 a 为主）、 矢车菊
素、 矮牵牛素、 矢车菊素半乳糖苷、 天竺葵素及其他单体酚（槲皮素、 芦丁、 二氢杨梅酮等）。 其中， 矢车菊素半乳
糖苷、 矢车菊素和叶绿素的共存互作是其叶片呈现紫红色的主要原因， 类胡萝卜素、 槲皮素、 芦丁等辅助色素也
起到了辅助成色的作用。 图 6表 2参 24
关键词： 植物学； 紫叶李； 色素； 成色机制； 矢车菊素半乳糖苷
中图分类号： S718.43； S687.9 文献标志码： A 文章编号： 2095-0756（2014）03-0481-07
Chromogenic pigments in Prunus cerasifera leaves
GAO Yan, LI Houhua, LI Ling, WANG Yajie, XU Man
（College of Forestry, Northwest A ＆ F University, Yangling 712100, Shannxi, China）
Abstract: Prunus cerasifera, the most common foliage tree on the landscape, have purple leaves throughout
their growing season. To provide a theoretical basis for cultivar improvement and to determine their role in
breeding, pigments of P. cerasifera leaves were qualitatively identified using high performance liquid
chromatography （HPLC）, thin layer chromatography, and UV photo-spectrometer; and then quantitatively
analyzed with HPLC-Diode array detector （DAD）. Results demonstrated that the main chromogenic pigments in
P. cerasifera leaves were carotenoids, chlorophyll （mainly chlorophyll a）, cyanidin, petunidin, cyanidin-
galactoside, pelargonidin, and other monomeric phenols （quercetin, rutin, and dihydromyricetin）. Accumulation
of cyanidin-galactoside and cyanidin caused the red coloration; and chlorophyll, carotenoids, quercetin, and
rutin played an important role as co-pigments. Pigments and the coloring mechanism of leaves could provide a
theoretical basis for cultivar improvement and could play an important role in P. cerasifera breeding. ［Ch, 6 fig.
2 tab. 24 ref. ］
Key words: botany; Prunus cerasifera; pigment; coloring mechanism; cyanidin-galactoside
紫叶李 Prunus cerasifera 为蔷薇科 Rosaceae 李属 Prunus 落叶小乔木， 其叶片色彩独特、 树姿婀娜，
较其他红色叶树种具长势迅速、 树型优良、 观赏期长等特点， 通常被应用于园林绿地及观赏树种， 效果
甚佳。 近年来， 随着经济的不断发展， 人们对园林绿化的重视程度不断提高， 国内外出现越来越多关于
观赏树种花、 叶等器官的成色机制与环境影响因素相关性的研究成果。 Deal［1］的研究表明红叶鸡爪槭
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Acer palmatum 会因昼夜温差变大而出现叶色褪失的现象； 彩叶秋海棠 Begonia purpureofolia 和紫叶矮樱
Prunus cistena ‘Pissardii’会在较强光照下呈现深紫色， 若光照减弱， 叶片中花青苷合成量减少， 导致叶
色偏绿影响最佳观赏效果［2］； 万寿菊 Tagetes erecta 叶片中花青苷的合成与低温、 高辐射和高光强等诸多
环境因素有关［3］； 紫叶李、 金叶接骨木 Sambucus racemosa 的日照时间超过 12 h 时， 叶片颜色会更加鲜
艳［4］。 到目前为止， 对紫叶李叶色的研究多集中于内外环境与花青苷的相关性分析 ［5－6］， 对其叶片各类色
素的提取与成分的定性、 定量分析未有报道。 本研究从紫叶李叶片中提取相关色素， 并运用紫外-可见
分光光度计、 薄层层析色谱法和高效液相色谱仪对提取的色素进行定性与定量分析， 确定了其叶片成色
的主要色素成分， 以期为紫叶李品种改良、 利用基因工程等手段调控叶片成色机制研究奠定理论基础。
1 材料与方法
1.1 试验材料
采集生长于西北农林科技大学南校区内的紫叶李向阳面紫红色叶片为试材， 采集时间为 2012年 6
月。 将采集的叶片表面用流水冲洗干净， 轻柔吸干表面水珠后置于－80 ℃冰箱内保存待用。
1.2 试剂与主要仪器
试剂中色谱级甲醇、 乙腈购自 Spectrum 公司； 类黄酮标准样品根皮素、 对香豆酸和芦丁购自天津
一方科技有限公司； 表儿茶素、 槲皮素和儿茶素购自天津金测分析技术有限公司； 其余标品均购自
Sigma公司。 仪器为高效液相色谱-二极管阵列检测仪（日立 L-2000）、 紫外-可见分光光度计（岛津-2450）。
1.3 试验方法
1.3.1 材料的预处理 取保存于－80 ℃冰箱中的紫叶李叶片， 真空冷冻干燥 72 h后研磨成粉待用。
1.3.2 色素萃取 叶绿素与类胡萝卜素萃取参考高俊凤［7］的方法并改进。 在叶绿素萃取方法中， 先称取
0.50 g粉末， 再用体积分数为 90%丙酮溶液［V（丙酮）∶V（乙醇）＝9∶1］萃取并定容至 20.0 mL， 然后放置于
4 ℃冰箱冷藏室萃取 48 h。 类胡萝卜素萃取， 称取 0.50 g 粉末， 用 V（丙酮）∶V（石油醚）＝1∶1 提取， 定容
至 20.0 mL， 提取条件同叶绿素萃取。 花青苷的萃取参照 Li ［8］的方法， 称取 1.00 g 粉末， 用体积分数为
1%的甲醇盐酸（97.0 mL 甲醇+ 3.0 mL 体积分数为 36%的盐酸）萃取， 定容至 25.0 mL， 完全遮光后放置
在 4 ℃冰箱冷藏室中萃取 24 h， 将上清转入新的容器中 4 ℃遮光保存， 再向残渣中加入 25.0 mL 甲醇盐
酸， 相同条件下萃取 12 h， 重复该操作 2次， 将 3 次萃取液的上清合并， 旋转蒸发仪浓缩后用甲醇盐酸
定容至 25.0 mL。 花青苷萃取液的水解参照辛转霞［9］的方法并加以改进， 吸取 600.0 μL 甲醇盐酸萃取液
与 750.0 μL的 2.0 mol·L－1盐酸混匀， 恒温（95 ℃）加热 45 min。 加热后迅速冰上冷却， 加入 370.0 μL 异
戊醇剧烈震荡混匀， 4 ℃下 6 000 r min－1离心 5 min ， 待混合液分层后， 将上相移至新的离心管中用于
检测。 其他类黄酮的萃取参照 Li ［8］的方法， 称取 1.00 g 粉末， 用 25.0 mL 甲醇溶液超声提取 3 次， 合并
萃取液， 旋转蒸发浓缩后并定容至 25.0 mL。
1.3.3 紫外分光光度计检测 用紫外可见分光光度计分别检测上述萃取液的吸收峰及吸光度， 波长范围
为 200～700 nm。 叶绿素和类胡萝卜素的含量测定以文献 ［4］中的方法作为参考； 总黄酮的含量测定采用中
国药典 ［10］所记载的方法： 用芦丁（rutin）为样品， 制备梯度标准液， 510 nm 波长下测定吸光度值， 得到
质量浓度（c）与吸光度 D（λ）的标准曲线， 然后以紫叶李甲醇萃取液为样相同条件重复测定 3 次。 紫叶李
叶片总黄酮质量分数（mg·g－1）测定的公式为 M＝10×c×V1 /（m×0.2 ）。 c 为上述方法求得的总黄酮质量浓度
（g·L－1）； m为样品干质量（g）； V1为样品定容体积（mL）； 0.2 为待测萃取液的所用量（mL）； 10 为测定液
终定容体积（mL）［11］。 花青苷水解液的检测， 还需向萃取液中加入 200.0 μL 体积分数为 5% 氯化铝甲醇
溶液后再次检测吸收峰［12］。
1.3.4 薄层层析色谱法（TLC）鉴定色素色素分离 用玻璃毛细管虹吸待测萃取液和色素标样， 点滴到纤
维素层析板上， 放入层析槽用不同的流动相进行色谱分离。 该试验所用流动相为以下 5 种： Forestal 溶
液［V（浓盐酸）∶V（冰乙酸）∶V（水）＝3∶30∶10］； BAW 溶液［V（正丁醇）∶ V（冰乙酸）∶V（水）＝6∶1∶2］； 30%
HoAc溶液［V（冰乙酸）∶V（水）＝3∶7］； Formic 溶液［V（浓盐酸）∶V（甲酸）∶V（水）＝2∶5∶3］； BuHCL 溶液［V（正
丁醇）∶V（2 mol·L-1盐酸）＝1∶1］。 萃取液各成分分离后， 测定显色色斑在色谱上的 Rf值， 即色斑中心距原
点的距离与溶剂展开前沿距原点距离的比值 ［13－14］。 色素鉴定： 多种类黄酮呈无色或淡黄色， 很难用肉眼
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第 31 卷第 3 期
观察到。 在本试验中， 首先在正常光照条件下， 测量显色色斑的 Rf值， 通过与标样对照确定化合物种
类， 然后将层析后的纤维素板用紫外光照射， 观察类黄酮的颜色变化， 通过对比标样并参考李玲等［15］的
方法进行鉴定。 将检测到的显色斑点用刀片轻轻刮下， 用 1.0 mL 体积分数为 1%的甲醇盐酸溶液萃取，
静置 6 h后于 14 000 r·min－1下离心 1 min， 将上清液用 0.22 μm的滤膜过滤， 置于 4 ℃冰箱保存待用［8］。
1.3.5 高效液相色谱-二极管阵列检测法（HPLC-DAD）检测 本研究所用高效液相色谱仪（L-2000）选用 L-
2455 型二极管阵列检测器进行检测。 仪器参数： C18 柱， 柱温 40 ℃， 进样量 10.0 μL， 流速 0.50 mL·
min－1， 检测波长为 280 nm， 520 nm， 535 nm， 540 nm。 流动相参数： A 为体积分数为 0.05%的甲酸水
溶液， B 为色谱级乙腈。 梯度洗脱程序为： 0～40 min， A 95%～0， B 5%～100%； 40~60 min， A 0， B
100%［9］。 检测结束后绘制标准曲线， 并计算叶片中各单体酚的质量分数（mg·kg－1）。
1.3.6 pH值测定 参照并改进周文彬等［16］的方法对紫叶李叶片细胞液的 pH值进行测定， 重复 3次。
2 结果与分析
2.1 紫外可见分光光度计检测
类胡萝卜素的吸收峰位于 400～500 nm［8］。 紫外分光光度计检测结果表明， 紫叶李叶片的类胡萝卜素
萃取液在这个区间内有 2 个吸收峰（图 1A， 峰 1 和峰 2）， 表明叶片中含有类胡萝卜素（图 1A， 峰 2），
根据类胡萝卜素定量方法计算得到类胡萝卜为 0.76 mg·g－1。 叶绿素的吸收峰区间为 600～700 nm［7］。 紫叶
图 1 紫叶李叶片类黄酮萃取液紫外图谱
Figure 1 UV spectrum of the pigment extracts of Prunus cerasifera leaves
高 艳等： 紫叶李叶片色素成分分析 483
浙 江 农 林 大 学 学 报 2014 年 6 月 20 日
a: BAW; b: BuHCL; c: Forestal; d: 30% HoAc; e: Formic
图 2 不同流动相中花青苷萃取液薄层层析色谱图
Figure 2 Thin layer chromatogram in the five different mobiles phase
李叶片的叶绿素萃取液在 662 nm 处检测到吸收峰（图 1B， 峰 3）， 这与叶绿素 a 的特征吸收峰（663 nm）
相符， 表明紫叶李叶片中有叶绿素的存在， 且叶绿素 a 较多。 根据叶绿素定量方法计算得到叶绿素 a 为
1.69 mg·g－1， 叶绿素 b 为 1.06 mg·g－1， 叶绿素总为 2.74 mg·g－1。 花青苷萃取液的紫外分光光度计检测结
果表明： 在 283 nm（图 1D， 峰 7）和 533 nm（图 1D， 峰 8）处有 2 个特征吸收峰， 这 2 个峰均位于类黄酮
化合物的特征吸收峰区间内（280 nm 附近和 500～550 nm）， 说明紫叶李叶片内含有黄酮类化合物［17］。 将
紫叶李叶片水解液也进行紫外分光光度计检测。 结果显示： 紫叶李叶片水解液在 283 nm（图 1E，峰 9）和
536 nm（图 1E， 峰 10）处有吸收高峰， 说明可能存在花青素类的矢车菊素和飞燕草素 ［18］。 向上述水解液
中加入体积分数为 5% 氯化铝后， 可见光区的最大吸收峰波长由 533 nm 移动到 535 nm， 说明紫叶李叶
片中所含花青苷可能是矢车菊素、 矮牵牛素和飞燕草素中的一种或多种 ［12］。 类黄酮化合物除了花青苷/
素之外， 还包括黄酮、 黄酮醇、 二氢黄酮醇等 ［19］。 对甲醇萃取液在 200~600 nm 范围内进行紫外光谱扫
描， 结果显示： 在 270 nm（图 1C， 峰 4）， 290 nm（图 1C， 峰 5）和 369 nm（图 1C， 峰 6）处有吸收峰， 说
明紫叶李叶片中可能含有二氢黄酮醇、 黄酮醇和黄烷酮类物质［20］。 根据总黄酮测定方法， 得到标准品芦
丁的吸光度 D（λ）与标准液质量浓度（c）的标准曲
线方程： c ＝0.537 8 D（λ）－0.008， R2=0.999 9， 计
算得到紫叶李叶片甲醇萃取液中总黄酮的质量分
数为 38.68 mg·g－1。 据此初步推测， 紫叶李叶片
呈现红色的主要原因可能是花青素大量积累的结
果， 同时也伴有其他黄酮类化合物的存在。
2.2 薄层层析色谱检测
将紫叶李水解萃取液在 5 种流动相中展开，
观察到薄层板上均有 1 个红色斑点（图 2）， 其对
应 Rf 值如表 1 所示。 与矢车菊素和矢车菊素半
乳糖苷标准品的 Rf 值对比发现， 紫叶李叶片中
主要的花青素种类可能为矢车菊素半乳糖苷及其
他矢车菊素衍生物。
表 1 紫叶李叶片花青苷萃取液在 5种流动相中的 Rf值
Table 1 Rf values of anthocyanin extracts of Prunus cerasifera leaves in five mobile phase
流动相 体积比
Rf值
花青素萃取液 矢车菊素半乳糖苷 矢车菊素
30% HoAc V（冰乙酸）∶V（水）＝3∶7 0.64 0.57 0.38
Formic V（浓盐酸）∶V（甲酸）∶V（水）＝2∶5∶3 0.63 0.57 0.22
Forestal V（浓盐酸）∶V（冰乙酸）∶V（水）＝3∶30∶10 0.73 0.6 0.44
BAW V（正丁醇）∶V（冰乙酸）∶V（水）=6∶1∶2 0.44 0.34 0.88
BuHCL V（正丁醇）∶V（2 mol·L－1盐酸）＝1∶1 0.27 0.28 0.85
2.3 高效液相色谱检测
将经薄层层析分析后刮板并重复萃取的紫叶李叶片花青苷水解液用 HPLC-DAD 进行检测， 在
22.09， 24.38， 25.05 min 处检测到 3 个吸收峰， 这与标准品矢车菊素、 矮牵牛素、 天竺葵素的出峰时间
基本一致， 推断萃取液中有矢车菊素、 矮牵牛素和天竺葵素（图 3，峰 1~3）的存在。 确定母体色素后， 进
而检测其自然状态下花青苷的组成， 在 18.50， 19.30， 19.72 min 处检测到吸收峰， 与标准品矢车菊素半
乳糖苷、 芸香苷、 阿拉伯糖苷的出峰时间基本一致， 推断为矢车菊素半乳糖苷、 芸香苷、 阿拉伯糖苷
（图 4， 峰 4~6）， 其中大部分是矢车菊素的衍生物， 还有少量糖苷和矮牵牛素及天竺葵素结合成花青苷。
除花青苷外， 还有其他类黄酮化合物在紫叶李叶片成色过程中起辅助作用， 甲醇萃取液检测到 10 种我
们已鉴定出的类黄酮（图 5， 峰 7~16）， 其保留时间依次为 26.89， 30.90， 31.62， 32.01， 33.53，
34.44， 38.02， 39.32， 44.97， 46.55 min， 与标准品表儿茶素、 二氢杨梅酮、 芦丁、 对香豆酸、 香豆酸、
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第 31 卷第 3 期
二氢槲皮素、 根皮苷、 杨梅素、 槲皮素、 芹菜素的保留时间是相同的， 推断萃取液中存在这 10 种化合
物。 根据所得标准曲线方程对这些化合物进行定量分析， 结果如表 2 所示。 图 5 中出现的 s1 和 s2 等 2
个吸收峰尚未鉴定出其对应的化合物种类， 还需后续试验进行进一步的鉴定分析。 单体酚标准样品液相
图谱见图 6。
图 3 紫叶李叶片水解萃取液液相图谱
Figure 3 HPLC chromatogram of Prunus cerasifera
leaves hydrolysis extracts
图 4 紫叶李叶片薄层层析萃取液液相图谱
Figure 4 HPLC chromatogram of TLC about Prunus cerasifera
leaves anthocyanin extracts
图 6 单体酚标准样品液相图谱
Figure 6 HPLC chromatogram of monomeric phenols
standard samples
图 5 紫叶李甲醇萃取液液相图谱
Figure 5 HPLC chromatogram of Prunus cerasifera
leaves flavonoids extracts
3 结论与讨论
紫叶李初春芽为红色， 展叶后颜色逐渐加深， 盛夏满株娇艳紫红， 是园林绿化树种中红色叶保持时
间最为持久的树种之一。 植物叶片所含主要成色色素有叶绿素、 类胡萝卜素、 类黄酮和甜菜碱色素等［21］。
到目前为止， 甜菜碱色素只在少数几种植物中分离得到， 并且尚未发现其与花青苷同时存在于同一植物
细胞组织中。 在对紫叶李叶片的不同萃取液进行分析时， 均未检测到甜菜碱色素的特征吸收峰， 据此推
断， 紫叶李叶片中不存在有甜菜碱类色素。 通过高效液相色谱仪-二极管阵列检测器对紫叶李叶片的甲
醇盐酸萃取液及水解液进行分析， 检测到矢车菊素与矢车菊素半乳糖苷同时存在于萃取液中， 数据显
示， 矢车菊素半乳糖苷的质量分数（4 600.00 ± 11.50 mg·kg－1）远远高于矢车菊素质量分数（168.00 ± 0.34
mg·kg－1）， 而薄层层析分析中只观察到 1 个斑点（矢车菊素半乳糖苷）， 可能是因为紫叶李中花青苷多以
矢车菊素衍生物的形式存在， 而矢车菊素太少导致无法在层析板上观察到。 此外， 除含有矢车菊素半乳
糖苷和矢车菊素外， 紫叶李叶片中还含有少量的矮牵牛素和天竺葵素。 花青苷类色素是红色叶植物成色
的主要色素， 但其他黄色或无色色素也起着重要作用， 在它们的辅助下， 植物叶片才呈现出饱满的色彩［22］。
在植物中， 花青苷和叶绿素的质量分数比会影响其所在器官颜色的呈现［23］， 因此， 紫叶李中两者的存在
及相对含量对其叶片颜色的加深有很大影响。 经检测， 紫叶李叶片细胞液的 pH 5.20， 通常来说， 偏酸
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编号 中文名称 英文名称 保留时间 t /min 标准曲线方程 质量分数/（mg·kg－1）
1 矢车菊素 cyanidin 22.09 y＝7E-08x＋0.001 2， R2＝0.999 3 168.00 ± 0.34
2 矮牵牛素 petunidin 24.38 y＝3E-07x＋0.005 2， R2＝0.999 3 156.00 ± 0.23
3 天竺葵素 pelargonidin 25.05 y＝3E-08x＋0.000 3， R2＝0.999 6 67.65 ± 0.37
4 矢车菊素半乳糖苷 cyanidin-galactoside 18.50 y＝7E-08x＋0.000 9， R2＝0.999 8 4 600.00 ± 11.50
5 矢车菊素云香苷 cyanidin-rutin 19.30 y＝7E-08x＋0.000 9， R2＝0.999 8 100.25 ± 0.19
6 阿拉伯糖苷 arabinopyranoside 19.72 y＝7E-08x＋0.000 9， R2＝0.999 0 165.50 ± 0.34
7 表儿茶素 epicaetchin 26.89 y＝2E-07x－0.014 1， R2＝0.999 9 2 294.00 ± 9.80
8 二氢杨梅酮 dihydromyricetin 30.93 y＝3E-08x－0.000 3， R2＝0.999 6 650.30 ± 1.20
9 芦丁 rutin 31.62 y＝8E-07x－0.032 6， R2＝0.999 2 6 500.00 ± 13.55
10 香豆酸 coumalic acid 32.01 y＝1E-07x－0.001 5， R2＝0.999 9 460.00 ± 0.66
11 对香豆酸 ρ-coumaric acid 33.53 y＝1E-07x－0.001 8， R2＝0.999 7 2 336.00 ± 10.56
12 二氢槲皮素 dihydroquercetin 34.44 y＝6E-08x＋0.003 3， R2＝0.999 3 540.00 ± 0.97
13 根皮苷 phlorizin 38.02 y＝2E-08x＋0.002 6， R2＝0.999 2 487.38 ± 2.00
14 杨梅素 myricetin 39.32 y＝6E-08x＋0.000 9， R2＝0.999 5 369.00 ± 0.65
15 槲皮素 ouecetin 44.97 y＝2E-08x＋0.000 4， R2＝0.999 7 5 700.00 ± 15.17
16 芹菜素 apigenin 46.55 y＝2E-08x＋0.003 5， R2＝0.999 6 489.60 ± 0.69
表 2 紫叶李叶片内各单体酚质量分数
Table 2 The monomeric phenol contents in Prunus cerasifera leaves
性（pH 5.00~5.50）环境下矢车菊素半乳糖苷的颜色为亮红色［24］， 而紫叶李成熟叶片的颜色为紫红色， 导
致这种现象的原因可能是叶绿素（2 744.00 mg·kg－1）与矢车菊素半乳糖苷（4 600.00 mg·kg－1）的共同存在与
相互作用。 紫叶李叶片中还含有槲皮素、 杨梅素、 芦丁、 芹菜素、 二氢杨梅素、 二氢槲皮素、 表儿茶
素、 根皮苷、 类胡萝卜素等物质， 它们作为辅助色素对紫叶李叶色的形成也起着一定的作用。
参考文献：
［1］ DEAL D L. Leaf color retention, dark respiration, and growth of red-leafed Japanese maples under high night tempera-
ture ［J］. Hort Sci, 1990, 115（1）: 135 － 140.
［2］ 王庆菊. 李属红叶树种叶片花色苷合成规律及影响因素研究［D］. 泰安： 山东农业大学， 2007.
WANG Qingju. The Rule of Anthocyanin Synthesis and Influence Factors in the Leaves of Red-leaf Tree Species in
Prunus ［D］. Taian: Shandong Agricultural University, 2007.
［3］ ARMITAGE A M, CARLSON W H. The effect of quantum flux density, day and night temperature and phosphorus and
potassium status on anthocyanin and chlorophyll content in Marigold leaves［J］. J Am Soc Hort Sci, 1981, 106（5）: 639
－ 642.
［4］ 崔培强 ， 姜卫兵 ， 翁忙玲 ， 等 . 遮阳对紫叶李幼苗叶片色素含量及光合速率的影响 ［J］. 西北植物学报 ，
2010， 30（11）： 2286 － 2292.
CUI Peiqiang, JIANG Weibing, WENG Mangling, et al. Pigment contents and net photosynthetic rates of leaves in
purple-leaf plum seedling under shading ［J］. Acta Bot Boreal-Occident Sin, 2010, 30（11）: 2286 － 2292.
［5］ 郑永春， 邵梦茹， 薛晓丽.紫叶李叶中花青素含量动态变化研究［J］. 湖北农业科学， 2012， 51（8）： 1675 － 1677.
ZHENG Yongchun, SHAO Mengru, XUE Xiaoli. Dynamic analysis of anthocyanidin in leaves of Prunus cerasifera
［J］. Hubei Agric Sci, 2012, 51（8）: 1675 － 1677.
［6］ 齐艳玲， 樊明寿， 潘青华 . 紫叶李在高温高湿条件下色素含量及光合速率的研究［J］. 内蒙古农业大学学报，
2008， 29（2）： 27 － 30.
QI Yanling, FAN Mingshou, PAN Qinghua. Impacts of high temperature and humidity on photo synthetic rate and pig -
ments contents of purple-leaf plum leaves ［J］. J Inner Mongolia Agric Univ, 2008, 29（2）: 27 － 30.
［7］ 高俊凤. 植物生理学实验技术［M］. 西安： 世界图书出版公司， 2000： 99 － 103.
［8］ LI Houhua, FLACHOWSKY H, FISCHER T C. Maize Lc transcription factor enhances biosynthesis of anthocyanins,
distinct proanthocyanidins and phenylpropanoids in apple （Malus domestica Borkh.） ［J］. Planta, 2007, 226（5）: 1243
－ 1254.
486
第 31 卷第 3 期
［9］ 辛转霞， 李厚华， 李玲， 等. 夏堇花成色色素分析［J］. 西北林学院学报， 2011， 26（6）: 107 － 109.
XIN Zhuanxia, LI Houhua, LI Ling, et al. Flower pigment analysis of Torenia fournieri flowers ［J］. J Northwest For U-
niv, 2011, 26（6）: 107 － 109.
［10］ 国家药典委员会. 中华人民共和国药典： 2005 年版一部［S］. 北京： 化学工业出版社， 2005： 39.
［11］ 李娟， 张鲁刚， 张昱. 橙色大白菜球叶总黄酮提取与测定方法的研究［J］. 园艺学报， 2007， 34（4）： 923 － 928.
LI Juan, ZHANG Lugang, ZHANG Yu. A study on extraction and determination of total flavonoids in orange color
Chinese cabbages ［J］. Acta Hortic Sin, 2007, 34（4）: 923 － 928.
［12］ 王爱晶， 刘晓东， 刘香环， 等. 芍药花红色素的分离与初步鉴定［J］. 东北林业大学学报， 2009， 37（5）： 74 －
76.
WANG Aijing, LIU Xiaodong, LIU Xianghuan, et al. Purification and identification of red pigment in Chinese herba-
ceous peony flowers ［J］. J Northeast For Univ, 2009, 37（5）: 74 － 76.
［13］ HARBORNE J B. Classes and Functions of Secondary Products from Plants ［M］. London: Imperial College Press,
1999: 1 － 25.
［14］ HARBORNE J B, WILLIAMS C A. Advances in flavonoid research since 1992［J］. Phytochemistry, 2000, 55（6）: 481
－ 504.
［15］ 李玲， 李厚华， 王亚杰， 等. 紫叶小檗叶片色素成分分析［J］. 东北林业大学学报， 2013， 41（7）： 58 － 62.
LI Ling, LI Houhua, WANG Yajie, et al. Pigments analysis of Berberis thunbergii ‘Atropurpurea’ leaves ［J］. J
Northeast For Univ, 2013, 41（7）: 58 － 62.
［16］ 周文彬， 邱保胜. 植物细胞内 pH值的测定［J］. 植物生理学通讯， 2004， 40（6）： 724 － 728.
ZHOU Wenbing, QIU Baosheng. Measurement of intracellular pH in plants ［J］. Plant Physiol Commun, 2004, 40（6）:
724 － 728.
［17］ HARBORNE J B, BAXTER H. The Handbook of Natural Flavonoids ［M］. New York: Wiley Press, 1999.
［18］ HARBORNE J B. Spectral methods of characterizing anthocyanins ［J］. Biochem J, 1958, 70（1）: 22 － 28.
［19］ 李义龙， 肇涛澜， 陈立超， 等. 花色素苷生物合成及花色的调控［J］. 生命科学， 2008， 20（1）： 147 － 152.
LI Yilong, ZHAO Taolan, CHEN Lichao, et al. Regulation in pigment biosynthesis and color variation of flowers ［J］.
Chin Bull Life Sci, 2008, 20（1）: 147 － 152.
［20］ WINKEL-SHIRLEY B. Flavonoid biosynthesis: a colorful model for genetics, biochemistry, cell biology, and biotech-
nology ［J］. Plant Physiol, 2001, 126（2）: 485 － 493.
［21］ 徐渊金， 杜琪珍. 花色苷分离鉴定方法及其生物活性［J］. 食品与发酵工业， 2006， 32（3）： 67 － 72.
XU Yuanjin, DU Qizhen. Review on isolation, identification and bioactivities of anthocyanins ［J］. Food Ferment Ind,
2006, 32（3）: 67 － 72.
［22］ 于晓南， 张启翔. 彩叶植物多彩形成的研究进展［J］. 园艺学报， 2000， 27（1）： 533 － 538.
YU Xiaonan, ZHANG Qixiang. Review of researches on leaf color changing of color-leafed plants ［J］. Acta Hor-
tic Sin, 2000, 27（1）: 533 － 538.
［23］ MANETAS Y. Why some leaves are anthocyanic and why most anthocyanic leaves are red ［J］. Flora-Morphol Distrib
Funct Ecol Plants, 2006, 201（3）: 163 － 177.
［24］ CHALKER-SCOTT L. Environment significance of anthocyanin in plant stress response ［J］. Photochem Photobiol,
1999, 70（1）: 1 － 9.
高 艳等： 紫叶李叶片色素成分分析 487