全 文 ：园 艺 学 报 ， （ ）： – 2014 41 11 2281 2390 http: // www. ahs. ac. cn
Acta Horticulturae Sinica E-mail: yuanyixuebao@126.com
收稿日期：2014–06–03；修回日期：2014–09–12
基金项目：浙江省花卉新品种选育重大科技专项重点项目（2012C12909-14）
换锦花LsMYB4 基因的克隆与表达分析
许振渊，高燕会*，周芬静，李国庆，熊 艳，童再康
（浙江农林大学亚热带森林培育国家重点实验室培育基地，浙江临安 311300）
摘 要：以换锦花（Lycoris sprengeri）为材料，采用 RT-PCR 方法和 RACE 技术相结合的方法，从
花瓣中克隆了 MYB 基因的 cDNA 全长序列，命名为 LsMYB4。该序列全长 793 bp，包含 606 bp 完整开放
阅读框，编码 201 个氨基酸，具有明显的 R2R3-MYB 结构域，与中国水仙 NtMYB 相似性达 96%。实时
荧光定量 PCR 分析结果表明，LsMYB4 在换锦花不同组织和不同花期均有表达，其中在花瓣中的相对表
达量比叶中多 9 ~ 10 倍，在盛花期的相对表达量比花苞期多 20 倍。不同花色无性系花瓣中表达量存在差
异，花色较浅的无性系高于其它无性系，推测 LsMYB4 在调控换锦花花色形成的过程中起着负调控作用。
关键词：换锦花；MYB 基因；克隆；表达分析
中图分类号：S 68 文献标志码：A 文章编号：0513-353X（2014）11-2281-10
Cloning and Expression Analysis of LsMYB4 Gene in Lycoris sprengeri
XU Zhen-yuan，GAO Yan-hui*，ZHOU Fen-jing，LI Guo-qing，XIONG Yan，and TONG Zai-kang
（The Nurturing Station for the State Key Laboratory of Subtropical Silviculture，Zhejiang Agriculture and Forestry
University，Lin’an，Zhejiang 311300，China）
Abstract：A MYB gene named LsMYB4 was cloned by RT-PCR and RACE methods from petals of
Lycoris sprengeri. Sequences analysis showed that the full-length MYB cDNA was 793 bp and contained a
ORF of 606 bp encoding 201 amino acids. The LsMYB4 protein had a conserved R2R3-MYB domain and
the amino acids sequence shared up to 96% homelogies with anthycyanin biosynthesis-related R2R3-MYB
transcription factor in Narcissus tazetta. The expression analysis by real time qRT-PCR showed that
LsMYB4 was expressed in different tissues and flowering periods. The expression level in petal was almost
ten times higher than in leaf. And in florescence period the expression of LsMYB4 was twenty times higher
than in early budding period. The LsMYB4 expressed discrepantly in four clones of L. sprengeri，and
results of it implicated that the lighter flower color，the higher expression level. This showed that LsMYB4
played a possibly negative role in anthocyanin biosynthesis of Lycoris sprengeri.
Key words：Lycoris sprengeri；MYB；cloning；expression analysis
石蒜属（Lycoris）植物花形及花色丰富（秦卫华 等，2003），又因为开放在少花的夏末秋初闷
热时节，而被广泛应用于园林绿化等（刘志高 等，2008；黄春红 等，2013）。换锦花（Lycoris sprengeri）
为石蒜属植物的一种，其花为喇叭状，花色多为红色、紫红色（时剑 等，2011），其中花被裂片顶
* 通信作者 Author for correspondence（E-mail：gaoyanhui408@126.com）
网络出版时间：2014-12-09 17:40
网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/11.1924.S.20141209.1740.007.html
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端的蓝紫色非常少有，因此研究换锦花花色形成的分子机理以期能辅助石蒜属植物的分子育种。
研究表明，花青素生物合成的调控作用发生在结构基因的转录水平上，受多种转录因子（MYB、
WD40 和bHLH）的协同作用在不同时空上的组合调控（Ma et al.，2012；刘晓芬等，2013；尚啸 等，
2014）。MYB蛋白家族是植物中最为庞大的转录因子家族之一，该家族主要编码蛋白中含有高度保
守的DNA–结合结构域，即MYB结构域。其中含有 2 个MYB结构域的R2R3，在拟南芥中就有大约
125 个，分为 25 个亚群（Stracke et al.，2001），它们参与调控植物发育、代谢和对生物与非生物胁
迫的反应生理过程（郭弘光和吴繁花，2012）。而R2R3-MYB的作为植物重要的转录因子，在序列
上的保守性很强，尤其是R2R3-MYB DNA结构域。有大量研究表明R2R3-MYB蛋白在调控植物的初
生和次生代谢过程尤其在花色素生物合成途径中起着重要的调控作用（Ralf et al.，2007；吴春霞，
2009；Petroni & Tonelli，2011；Ma et al.，2012；Gatica-Arias et al.，2013；Lai et al.，2013），如
RuMYB10 基因具有MYB转录因子家族结构特征和bHLH因子结合域，在黑莓果实花青素积累高峰期
表达量最高（陈清 等，2009）；茄子SmMYB能够正向调控花青素的合成（邵文婷 等，2013）；
AcMYB在‘红阳’猕猴桃中的表达量与花青素含量呈正相关，在果实转色主要阶段维持较高水平，
金鱼草AmMYB308 基因在烟草中的超表达可以抑制花青素上游结构基因C4H、4CL的表达，而沉默
拟南芥AtMYB4 基因，其上游结构基因C4H表达量上升，因此表明R2R3-MYB转录因子在花青素生物
合成中起着重要作用。
虽然已有研究表明 R2R3-MYB 转录因子在花色素生物合成中起着重要作用，但 R2R3-MYB 转
录因子在石蒜属植物花色素生物合成的研究至今未见相关报道。由于换锦花花色的特殊性，本研究
中以花瓣为材料，设计 R2R3-MYB 简并引物，通过 RT-PCR 和 RACE 技术相结合克隆换锦花
R2R3-MYB 基因的 cDNA 全长序列，并对其进行分子生物信息学及其表达特性分析，旨在为进一步
探讨换锦花花色素生物合成调控机制提供基础。
1 材料与方法
1.1 材料
2012 年将本课题组收集的换锦花（Lycoris sprengeri）种质资源种植于浙江农林大学遗传学科石
蒜属植物种质资源圃，从中筛选出 4 个（A，B，C，D）不同花色的无性系，于 2013 年 8 月分别采
集花苞期、花蕾期、盛花期和谢花期的花瓣，同时于盛花期采集花葶、花瓣、叶片和花丝，取样后
立即用液氮速冻后保存于–80 ℃冰箱中备用。
1.2 方法
1.2.1 换锦花总 RNA的提取及反转录
采用 RNAiso Plus 试剂盒（TaKaRa）提取换锦花总 RNA（参照试剂盒说明书），用紫外分光光
度计（Nano drop 2000）检测其纯度和浓度，用 1.0%琼脂糖凝胶电泳检测完整性，用 PrimeScript 1st
Strand cDNA Synthesis Kit 试剂盒（TaKaRa）对 RNA 进行反转录合成 cDNA 第 1 链。
1.2.2 换锦花 LsMYB4基因 cDNA全长克隆
根据在 GenBank 上已登录的和石蒜属植物亲缘关系较近物种的 R2R3-MYB 基因序列，利用
DNAMAN 进行多序列比对，Premier5.0 选择保守区设计简并引物 MYB-F 和 MYB-R（表 1），以换
锦花 cDNA 第一链为模板扩增 MYB 基因的中间片段，PCR 扩增反应程序为：94 ℃预变性 3 min，
94 ℃变性 5 s，54 ℃退火 30 s，72 ℃延伸 30 s，35 个循环；72 ℃延伸 10 min。PCR 扩增产物经
11 期 许振渊等：换锦花 LsMYB4 基因的克隆与表达分析 2283
表 1 换锦花 LsMYB4 的克隆及表达分析所用的引物
Table 1 Primers used to isolate and analyze the expression of
LsMYB in Lycoris sprengeri
引物名称 Primer name 引物序列（5′–3′）Primer sequence
MYB-F kATGATrrksTsbTCCTCsTsC
MYB-R AArGGbvvrTGGACsmvrGArGA
LsMYB-3′GSP1 ATAGGCTCATTGCTCACATCAGGGC
LsMYB-3′GSP2 TGGGAAGAGTTGCAGGCTTAGATGG
LsMYB-5′GSP1 AAGCCTGCAACTCTTCCCACACCTA
LsMYBRT-F CTCATCATCAAACTCCATAGCCTC
LsMYBRT-R ATCTCGTTGTCTGTTCTACCCG
ACTINRT-F AGACTTTCAATGTGCCCGC
ACTINRT-R CACCATCACCAGAATCCAGC
1%琼脂糖凝胶电泳检测，利用凝胶回收试剂盒
回收预期目标基因片段，连接到 pMD18-T 载体
并转化大肠杆菌 DH5α菌株中，经蓝白斑筛选、
菌液 PCR 鉴定为阳性克隆后送交生工生物工程
（上海）技术服务有限公司测序。根据 LsMYB4
目标片段测序结果，分别设计 LsMYB-3′GSP 和
LsMYB-5′GSP（表 1），并参照 SMARTTM RACE
cDNA Amplification Kit（Clontech）说明书进行
cDNA 末端快速扩增，目的片段回收、检测和测
序同上。
1.2.3 LsMYB4 cDNA全长拼接与 PCR验证
利用 DNAMAN 将已获得 LsMYB4 序列和 RACE 技术获得的末端序列进行拼接，根据拼接得到
的 cDNA 全长序列设计全长引物（表 1），利用反转录的 cDNA 第一链为模板，进行 LsMYB4 基因全
长的PCR扩增。PCR反应体系20 μL，其中cDNA模板50 ng，1 × PCR Buffer（Mg2+ plus），0.2 mmol · L-1
dNTP，引物 0.2 mmol · L-1，高保真 Taq DNA 聚合酶 0.5 U；PCR 扩增的反应程序为：94 ℃ 5 min；
94 ℃ 30 s，72 ℃ 2 min，25 个循环；72 ℃ 10 min。PCR 扩增产物进行凝胶电泳检测及回收目的
片段，连接到 pMD18-T 载体并转化大肠杆菌，经验证后送交生工生物工程（上海）技术服务有限
公司测序，测序结果利用软件 DNAMAN 检验其准确性。
1.2.4 换锦花 LsMYB4基因序列的生物信息学分析
通过NCBI中的Vecscreen工具（http：//www. ncbi. nlm. nih. gov/tools/vecscreen/）对所测序列去除
载体序列，再通过DNAMAN 6.0 进行LsMYB4 cDNA全长序列拼接，用ORF Finder查找开放阅读框并
翻译成氨基酸序列。利用NCBI的BLASTn和BLASTp程序分别从NCBI核苷酸数据库和氨基酸数据库
中检索近缘物种的LsMYB4 序列信息，并进行系统进化分析。通过DNAMAN6.0 和在线软件SMART
（http：//smart. embl-heidelberg. de/）预测蛋白结构，对LsMYB4 全长cDNA序列及其氨基酸序列进行
比对；用DNAMAN软件进行多序列比对，进而通过MEGA5.2 软件构建系统进化树。
1.2.5 LsMYB4的表达分析
用 PrimeScript RT reagent Kit Perfect Real Time（TaKaRa）试剂盒对换锦花花发育过程 4 个时期
的花瓣（花苞期、花蕾期、盛花期和谢花期）和盛花期花葶、花瓣、叶片、花丝，不同花色无性系
的总RNA反转录合成 cDNA备用，按时荧光定量PCR引物设计的原则分别以换锦花Actin和LsMYB4
基因为基础设计内参引物 Actin-F、Actin-R 及特异引物 LsMYBRT-F 和 LsMYBRT-R（表 1）。试验
参照 SYBR® Premix ExTaqTMⅡ（Perfect Real Time）（TaKaRa）试剂盒的说明书，在 CFX96TM Real-Time
System 实时定量 PCR 仪（美国 BIO-RAD）上完成。荧光定量 PCR 扩增的反应体系为 10 µL，用两
步法标准程序：95 ℃预变性 30 s，94 ℃变性 15 s，60 ℃复性 34 s，共 40 个循环；每个循环第 3
步（60 ℃时）采集荧光；最后 95 ℃变性 1 min，退火至 60 ℃，保温 1 min 后以 0.2 ℃ · s-1 的速度
逐渐升温至 95 ℃，在此过程中连续检测其荧光值绘制熔解曲线；每个试验设 3 次重复。数据采用
2-ΔΔCT 方法（Livak & Schmittgen，2001）处理并利用 Excel 进行绘图。
2 结果与分析
2.1 LsMYB4 基因cDNA全长序列克隆
设计简并引物 MYB-F 和 MYB-R（表 1），以换锦花盛花期花瓣 cDNA 为模板，扩增出 1 条约
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250 bp 的预期片段（图 1）。经 BLAST 发现该片段与其他物种的同源性较高，其中与水仙的 MYB
转录因子同源性达 94%，初步确定该片段为换锦花的 MYB 基因一部分。分别采用 5′RACE 和 3′RACE
方法进行扩增，得到长度为 257 bp 的 5′末端和 695 bp、620 bp 的 3′末端。利用 DNAMAN 软件将其
与原有片段拼接成一条长约 793 bp 的序列（图 2），将其基因片段命名为 LsMYB4。
图 1 LsMYB 基因的 PCR 扩增结果
Fig. 1 Agarosegel electrophoresis analysis of LsMYB4 gene fragments
图 2 LsMYB4 的全长 cDNA 序列以及推测的氨基酸序列
黑框表示起始密码子和终止密码子，下划线表示 MYB 结构域，阴影表示保守色氨酸。
Fig. 2 Nucleotide and putative amino acid sequences of the LsMYB4 cDNA full-length
The start codon and stop codon are framed，MYB domains are underlined，and the conservative tryptophan marked in shadow.
2.2 换锦花LsMYB4 基因的序列及同源性分析
LsMYB 通过 DNAMAN 搜索 ORF，最大为 606 bp，编码 201 个氨基酸（aa），预测其蛋白分子
量为 23 126.2，理论等电点 9.59。将序列通过网上在线工具 SMART（http：//smart. Embl-heidelberg.
de/）预测蛋白结构（图 3），表明 LsMYB4 属于 R2R3-MYB，该编码蛋白的 N 端都具有 2 个典型的
MYB- DNA 结合域：R2（13 ~ 63 aa）和 R3（66 ~ 114 aa）。R2 结构域自第 17 个 aa 开始，每间隔
19 个 aa 有 1 个保守的疏水氨基酸色氨酸（W，17 aa，37 aa，57 aa）；R3 结构域中自第 70 个 aa 开
11 期 许振渊等：换锦花 LsMYB4 基因的克隆与表达分析 2285
始，每间隔 18 个 aa 同样重复的存在疏水氨基酸，其中第 1 个 W 被 F 所取代（F，70 aa；W，89 aa，
108 aa），这样规则的间隔各自构成了 1 个螺旋–转角–螺旋（HTH）结构，这和郭晋隆等（2012）
的研究结果一致。而靠近 C 端有个 low complexity 区域（141 ~ 159 aa），19 个氨基酸里面有 6 个 Glu
和 7 个 Ser，其中 Glu 属于酸性氨基酸，一般转录激活功能域富含酸性氨基酸、富含谷氨酰胺等（宿
红艳 等，2010），预测这个区域可能与转录结合区域有关；LsMYB4 的氨基酸序列中具有 1 个与转
录激活抑制有关的氨基酸基序（EAR），推测具有一定的转录抑制功能，或具有较弱的转录激活功能。
图 3 LsMYB4 与其他植物的 MYB 转录因子的多序列比对
NtMYB：水仙 AGO33 166.1；TcMYB：可可树 EOX97 694.1；SmMYB4：丹参 ADG46 002.1；GhMYB9：陆地棉 AF 336 286_1；
MdMYB：苹果 ADL36 756.1；PaMYB：樱桃 ADY15 315.1；PhMYB：矮牵牛 ADX33 331.1；AtMYB4：拟南芥 AY 123 004.1。
Fig. 3 Amino acid alignment of LsMYB4 and other species MYB transcription factors
NtMYB：Narcissus tazetta var. chinensis AGO33 166.1；TcMYB：Theobroma cacao EOX97 694.1；SmMYB4：Salvia miltiorrhiza ADG46 002.1；
GhMYB9：Gossypium hirsutum AF 336 286_1；MdMYB：Malus domestica ADL36 756.1；PaMYB：Prunus avium ADY15 315.1；
PhMYB：Petunia × hybrida ADX33 331.1；AtMYB4：Arabidopsis thaliana AY 123 004.1.
2.3 换锦花LsMYB4 基因的生物信息学及进化分析
将克隆的 LsMYB4 基因氨基酸序列通过 BLASTp 程序检索，发现与它同源的序列全部为 MYB
蛋白，其中与中国水仙 Narcissus tazetta var. chinensis（AGO33166.1）一致性最高，达到 96%；其次
是可可树 Theobroma cacao（EOX 97 694.1）；丹参 Salvia miltiorrhiza（ADG46002.1）；陆地棉 Gossypium
hirsutum（AAK19619.1|AF336286_1）；苹果 Malus × domestica（ADL36756.1）；樱桃 Prunus avium
（ADY15315.1）；矮牵牛 Petunia × hybrida（ADX33331.1）都有 70%以上，且氨基酸序列与其他
MYB 转录调控因子的同源区都集中在 N 端 R2R3 DNA 结合结构域，而在 C 端同源性极低，差异性
很大。通过与拟南芥 Arabidopsis thaliana MYB 家族氨基酸进行同源性比对，发现换锦花 LsMYB4
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与 AtMYB4（NP_195 574.1）同源性最高（69%），此外同 AtMYB7（XM_002886022.1）、AtMYB32
（NM_119665.2），均属于 R2R3 MYB 蛋白的第 4 亚群，该亚群有 1 个保守基序（EAR）pdLNLE/DLxiG/S
（图 3），该结构具有抑制性，赋予融合蛋白的沉默活性（Kazan，2006；Dubos et al.，2010），因
此该将基因命名为 LsMYB4。
LsMYB4 与拟南芥 MYB 转录因子以及其他植物的系统进化树分析表明，换锦花、水仙、水稻、
玉米聚在单子叶植物分支，而与双子叶植物分支的矮牵牛、丹参、可可树、棉花、蔷苹果和樱桃等
的遗传距离相对较远（图 4），总体而言，该分类基本符合植物分类学的规律。拟南芥 MYB 家族
中，AtMYB4、AtMYB6、AtMYB3、AtMYB7、AtMYB32 均归属于拟南芥 MYB 家族第 4 亚群，而
LsMYB4 与 AtMYB4 较为接近，说明 LsMYB4 与拟南芥 MYB 家族第 4 亚群亲缘关系较近，预测
LsMYB4 具有和 AtMYB4 相似的调控功能。
图 4 LsMYB 与拟南芥 MYB 转录因子以及其他植物的系统进化树分析
Fig. 4 Phylogenetic relationships of LsMYB and Arabidopsis MYB transcription factors and other species
2.4 换锦花LsMYB4 基因的表达分析
2.4.1 组织特异性表达
如图 5 所示，LsMYB4 基因在换锦花的叶、
花葶、花瓣和花丝中均有表达，但表达水平
具有明显差异。
在花色素大量积累的花瓣中的表达量最
高，比叶中的表达量高 9 ~ 10 倍，在花葶中的
表达量最低，说明 LsMYB4 主要在花瓣中表
达。
图 5 换锦花 LsMYB4 基因在不同组织器官的表达
Fig. 5 Expression of LsMYB4 in different tissue of L. sprengeri
11 期 许振渊等：换锦花 LsMYB4 基因的克隆与表达分析 2287
2.4.2 不同发育时期花中的表达
根据换锦花花发育过程中花蕾和花瓣的长
度及开放程度，采集 4 个阶段（即花苞期、花
蕾期、盛开期、谢花期）的花瓣，采用实时荧
光定量 qRT-PCR的方法检测 LsMYB4的表达差
异（图 6，图 7）。结果表明在花发育的各个阶
段都能检测到 LsMYB4 基因的表达，而且随着
花蕾的增大，其表达量也增加，到花朵盛开期
表达量最高；之后随着花开始萎蔫，表达量也
开始下降；从相对表达量来看，LsMYB4 在盛
开期花瓣中的表达量为花苞期的 20 倍（图 7）。
图 6 LsMYB4 基因在换锦花不同花发育阶段的表达
Fig. 6 Expression of LsMYB4 in different flower development
periods of L. sprengeri
图 7 换锦花花发育的不同阶段
Fig. 7 Phenotype of different developing stages in L. sprengeri
2.4.3 LsMYB4在不同花色无性系的表达分析
LsMYB4 在换锦花不同花色无性系的花瓣
中的表达有一定差异（图 8 和图 9），其中在颜
色较淡的无性系 D 中的表达量最高，比其他无
性系高出 3 ~ 5 倍，说明在换锦花花色素合成
的过程中，LsMYB4 与花色深浅有关，起着一
定的负调控作用。这与金鱼草 AmMYB308 和拟
南芥 AtMYB4 在抑制花青素途径的上游结构基
因的研究结果是一致的。
图 8 LsMYB4 在换锦花 A，B，C，D 不同花色无性系中的表达
Fig. 8 Four different clone of Lycoris sprengeri and
expression of LsMYB4
图 9 换锦花不同花色无性系
Fig. 9 Different clone of Lycoris sprengeri
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3 讨论
植物的 MYB 蛋白家族虽然在序列上存在一定的保守性，但不同物种、不同个体、甚至同一植
株不同组织器官之间，MYB 蛋白的功能也在在着较大差异（陈俊和王宗阳，2002；陈清 等，2009；
Dubos et al.，2010）。植物 MYB 家族中 R2R3-MYB 类转录因子具有完整的 R2R3 重复结构域，在
植物的次生代谢产物的调控（Li et al.，2012）、抗逆胁迫应答（曹忠慧 等，2013）和调节植物生
物钟（吴春霞，2009）过程中起作用。
本研究中利用 RT-PCR 同源克隆和 RACE 技术相结合的方法，从换锦花的花瓣中克隆得到 MYB
转录因子基因 LsMYB4 cDNA 全长，并对其编码的蛋白质进行生物信息学分析，结果表明 LsMYB4
中存在完整的 R2R3 重复结构域，属于典型的 R2R3-MYB 转录因子基因（宿红艳 等，2010）。系
统进化分析表明，LsMYB4 和石蒜科的中国水仙的亲缘关系较近，而与双子叶植物的棉花、苹果和
樱桃等的亲缘关系较远，表明 LsMYB4 基因的进化具有明显的种属特性。
本研究中对换锦花花发育不同时期的花瓣、不同器官以及不同花色的无性系的 LsMYB4 荧光定
量检测表明，在整个花发育过程中均能检测到 LsMYB4 基因的表达，从花苞期到盛花期表达量逐渐
增加，盛花期时表达量达最高，之后下降的趋势；而在不同花色的无性系花瓣中，以颜色较淡的无
性系 D 的表达量最高，说明 LsMYB4 特异地调节花青素生物合成途径中关键酶基因（CHS、CHI、
F3H、DFR、ANS 等）的表达，可以推测 LsMYB4 在换锦花花色素生物合成的过程中起着一定的负
调控作用。以往的研究表明拟南芥 AtMYB32 在花青素生物合成中起抑制作用（Preston et al.，2004），
AtMYB4 的超表达会使 C4H 基因表达减少，而 AtMYB4 缺失的突变型拟南芥，在 R3 识别螺旋结构
中，突变的色氨酸残基会停止 DNA 结合，从而抑制 C4H 启动子的能力（Jin et al.，2000）。在矮牵
牛中，与 AtMYB4 同源的 PhMYB4 在整个花期和开花阶段处于很高的转录水平（Colquhoun et al.，
2011），证明了 PhMYB4 对花色基因的负调控作用；此外 Colquhoun 等（2011）还证明了 PhMYB4
可以抑制 C4H 基因的表达，能够间接地控制矮牵牛 FVBP（floral volatile benzenoid/phenylpropanoid）
生物合成的平衡。
R2R3-MYB 在花色素的生物合成过程中起着重要的调节作用，可以通过导入外源基因、共抑制、
反义抑制或 RNAi 等技术上调或抑制 LsMYB4 的表达，从而改变花色素苷的含量或成分，引起植物
花色的变化。Takashi 等（2012）将龙胆 GtMYBP3 和 GtMYBP4 转基因烟草的花青素水平下降，结
果得到了白色花，说明导入外源 R2R3 基因可以改变花青素的水平，进而改变植物的颜色。因此本
课题组今后拟通过转基因技术对 LsMYB4 基因进行功能验证，并进一步阐明 LsMYB4 基因在换锦花
花色形成过程中的作用机制，进而为石蒜属植物花色改良提供新的途径。
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信 息 2014 年度华耐园艺科技奖
在中国园艺学会学术年会上隆重颁发
2014 年 10 月 23 日，2014 年度华耐园艺科技奖在中国园艺学会学术年会上（南昌）隆重颁发。
根据 2014 年华耐园艺科技奖管理办法的有关规定，共评选出 7 名获奖成果：1. 梨省力高效现代栽培模式与技
术（河北农业大学、河北天丰农业集团有限公司，张玉星等）；2. 梨优异矮化种质创制与矮化砧木品种培育利用（中
国农科院果树所，姜淑苓等）；3. 东农 712 等系列番茄新品种选育及遗传改良基础研究（东北农业大学、浙江大学，
李景富等）；4. 设施蔬菜栽培生产技术（西北农林科技大学，邹志荣等）；5. 白菜基因组测序和功能研究（中国农
科院蔬菜花卉所，王晓武等）；6. 设施精品哈密瓜新品种选育与示范（新疆维吾尔自治区葡萄瓜果研究所，张瑞等）；
7. 菊花优异种质资源挖掘与新品种选育（南京农业大学，陈发棣等）。
会议号召广大园艺工作者以获奖者为榜样，继续发扬团结奉献，勇于探索，勇于创新的科学精神，坚定不移走
中国特色自主创新道路，为园艺事业做出更大贡献。
华耐园艺科技奖是经科技部批准，中国园艺学会和北京华耐农业发展有限公司联合设立的社会力量科技奖励项
目，奖励在国内园艺科技领域做出突出贡献的科研成果，由中国园艺学会具体承办。该奖每两年评选一次，每次获
奖成果不超过 16 个，其中特等奖不超过 2 个，奖金各 10 万元，科技奖不超过 14 个，奖金各 5 万元。
第四届授奖活动时间为 2016 年，由成果完成单位自愿申请，详情请登录中国园艺学会网站查询。
中国园艺学会
2014 年 10 月