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A Multiplex PCR for Rapid Detection of Genetically Modified Ingredient in Flue-cured Tobacco

多重PCR技术快速检测烤后烟叶转基因成分



全 文 :·技术与方法·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2015, 31(7):64-68
烟草制品作为特殊消费品,公众对转基因烟草
比其他转基因作物更加敏感,烟草作为转基因研究
的模式植物,国内外很多科研单位已成功培育抗虫、
抗病等多种表现优异的转基因烟草[1],这些实验材
料一旦发生不规范释放和利用,将对消费者利益和
我国烟草制品的国际形象造成重大影响。
国际上对烟草转基因检测的遗传元件主要为
35S 启 动 子( 烟 草 花 叶 病 毒 CaMV 35S 启 动 子 )、
NOS 终止子(农杆菌的胭脂碱合成酶基因终止子)、
NPT II 筛选标记基因(来自大肠杆菌,编码新霉素
磷酸转移酶,卡那霉素抗性的标记基因)[1,2],我
们在对烟草转基因研究中常用遗传元件的筛查中[1],
统计出这 3 种元件在烟草转基因研究中的使用频
率为 90%,属于高频使用外源基因元件,在我国,
GB/T24310-2009 《烟草及烟草制品 转基因检测方
法》[3]将这 3 种遗传元件作为转基因烟草检测中共
收稿日期 :2014-10-30
基金项目 :贵州省科技支撑计划农业攻关[黔科合 NY(2013)3020 号]
作者简介 :余婧,女,硕士,农艺师,研究方向 :烟草转基因检测及烟草生物技术 ;E-mail :yujingbio@126.com
通讯作者 :赵杰宏,男,博士,副研究员,研究方向 :烟草生物技术 ;E-mail :zhaojiehong@126.com
多重 PCR 技术快速检测烤后烟叶转基因成分
余婧1,2  郭玉双1  林世锋1  余世洲1 赵杰宏1
(1. 贵州省烟草科学研究院 烟草行业烟草分子遗传重点实验室,贵阳 550081 ;2. 贵州烟叶复烤有限责任公司铜仁复烤厂,铜仁 554300)
摘 要 : 为提高烟叶转基因成分检测效率,建立了烤后烟叶中 3 种外源基因成分的多重 PCR 检测技术体系,通过优化该反
应体系中的 Mg2+、dNTP、rTaq 酶、引物浓度及退火温度等参数,实验最适条件为将 4 对相等摩尔浓度引物预先按 1∶1∶1∶1(V/V)
混合,在 Mg2+ 为 1.5 mmol/L、dNTP 为 125 μmol/L、rTaq 酶 1 U、混合引物 1 μmol/L,DNA 100 ng,退火温度 65℃,循环数 35 个的
反应条件下,在一次 PCR 反应中便可同时检测烟草内源基因 NR,外源基因 35S 启动子、NOS 终止子、NPT II 筛选标记基因。优
化后的反应体系能够有效地检测出转基因烤后烟叶百分比含量为 0.9%(V/V)的转基因成分。
关键词 : 多重 PCR ;烤后烟叶 ;转基因成分
DOI :10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2015.07.010
A Multiplex PCR for Rapid Detection of Genetically Modified
Ingredient in Flue-cured Tobacco
Yu Jing1,2 Guo Yushuang1 Lin Shifeng1 Yu Shizhou1 Zhao Jiehong1
(1. Tobacco Molecular Genetics Key Laboratory of China Tobacco,Guizhou Academy of Tobacco Science of CNTC,Guiyang 550081 ;
2. Tongren Factory of Guizhou Tobacco Leaf Redrying Co.,Ltd,Tongren 554300)
Abstract: In order to improve the efficiency of detecting genetically modified ingredient(GMI), we established a multiplex PCR
detecting 3 exogenous gene ingredients in flue-cured tobacco. By optimizing the concentrations of Mg2+, dNTP, rTaq, and primer as well as
annealing temperature in the multiplex PCR system, the result showed that the optimal conditions for the experiment were :4 pairs of primers
pre-mixed in ratio of 1∶1∶1∶1(V/V), Mg2+ 1. 5 mmol/L, dNTP 125 μmol/L, rTaq polymerase 1 U, mixed primers 1 μmol/L, DNA 100 ng
annealing temperature 65℃, and 35 reaction cycles ;under the above conditions, the system detected 1 tobacco endogenous gene NR, exogenous
gene 35S promoter, NOS terminator and selectable marker NPT II gene by 1 PCR reaction. In this study, the optimized multiplex PCR could
efficiently detect the GMI of 0.9%(V/V)in transgenic flue-cured tobacco.
Key words: multiplex PCR ;flue-cured tobacco ;GMO ingredient
2015,31(7) 65余婧等 :多重 PCR 技术快速检测烤后烟叶转基因成分
有序列标志。因此,在检测烟叶中是否含有转基因
成分时,可先行检测 35S、NOS、NPT II 基因是否存
在来确定烟叶中是否含转基因成分。而 NR 基因为
烟草内源基因硝酸还原酶,在 PCR 检测中用以评价
DNA 提取质量的可用性[4]。
在转基因检测方法中,PCR 方法以其灵敏度高
而得到广泛认可,定性 PCR 技术是转基因检测中最
成熟的技术之一,并且多数国家将该方法制定为标
准检验方法,但是,大多数定性 PCR 检测采用单
一 PCR 技术,需分别对每个靶标进行检测,花费时
间较多[5]。多重 PCR 方法是单一 PCR 方法的改进,
该技术在一次 PCR 反应中同时加入多对引物,只需
一次 PCR 反应便能同时检测两种以上靶标序列,较
单一 PCR 更为快捷和经济[6],在病毒检测、细菌检测、
转基因检测中得到广泛应用[7]。高玉龙等[8]曾提
出用于转基因烟草检测的多重 PCR 方法,但该方法
是将 35S 与 NR,NPT II 与 NOS 分别进行二重 PCR
检测,并未在同一反应内同时实现 4 种基因成分的
检测。本实验以烤后烟叶为供试材料,旨在建立通
过一个 PCR 反应内便能同时检测烟草内源基因 NR、
外源基因 35S 启动子、NOS 终止子及 NPT II 筛选标
记基因的多重 PCR 方法。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 供试材料 转基因阳性烤后烟叶,非转基因
烤后烟叶由本实验室研制提供,其中转基因阳性烟
叶为 T3 代 Southern 检测单拷贝阳性植株,含 NPT
II、35S、NOS 三种已知转基因成分。烤后烟叶 DNA
提取参照 GB/T 24310-2009 《烟草及烟草制品 转基因
检测方法》[3],DNA 浓度统一调至 100 ng/μL 后,转
基因烟叶 DNA 与非转基因烟叶 DNA 按 1∶99(V/V)
比例混合,制成转基因含量为 1% 的供试 DNA。
1.1.2 试剂 rTaqTM(货号 R001A,内含 A 试剂:dN-
TP mixture,浓度为各 2.5 mmol/L,B 试剂 :10×PCR
buffer,Mg2+ 浓 度 为 15 mmol/L,C 试 剂 :rTaq 酶,
5 U/μL)、100 bp DNA Ladder Marker、6×Loading
Buffer 为 TaKaRa 公 司 产 品, 核 酸 染 料 GelRedTM
10 000×in water 为 BIOTIUM 公司产品。
1.2 方法
1.2.1 引物设计 参照国标[3]引物在 NCBI 中检索
基因原序列,通过 Primer Premier V5.0 设计引物,用
软件中的 Multiplex/Nested Primers 功能,筛选出引物
间干扰最小的引物组合,再利用 Olige 6.0 对设计引
物 Tm 值进行评估,确定最终引物序列,引物由上
海捷瑞生物工程有限公司合成。
表 1 引物序列及扩增产物
扩增基因 引物序列(5-3) Tm 值 /℃ 产物大小
NPT II
TCACTGAAGCGGGAAGGGACTG 73.3
490
GCGATACCGTAAAGCACGAGGAA 72.9
35S
CTACCCGAGCAATAATCTCCAGG 69.5
345
TGCTCCACCATGTTGACGAAG 68.7
NOS
CCGGTCTTGCGATGATTATCAT 68.9
199
AGTAACATAGATGACACCGCGC 66.9
NR
CGCTGATAACTGGATTGAACGC 69.7
137
GGTTACGAACGTAATGAAGTGGGAC 70.7
1.2.2 单 一 PCR 检 测 单 一 PCR 反 应 体 系 为 :
10×PCR buffer 2 μL(Mg2+ 终 浓 度 1.50 mmol/L),
dNTP 1 μL(dNTP 终浓度 125 μmol/L),上下游引物
各 1 μmol/L,DNA 模板 1 μL,rTaq 酶 0.2 μL,ddH2O
补足 20 μL。PCR 反应条件为 :94℃预变性 5 min ;
94℃变性 30,65℃退火 45 s,72℃延伸 45 s,35 个
循环 ;72℃延伸 5 min。PCR 产物加 5 μL 6×Loading
Buffer,取 8 μL 经 2% 琼脂糖凝胶电泳检测。
1.2.3 多重 PCR 体系反应体系建立及优化 以上
述单一 PCR 体系为初始反应体系,将 4 对引物稀
释成相等摩尔浓度后预先按 1∶1∶1∶1(V/V)混
合,对 Mg2+、dNTP、rTaq 酶和混合引物浓度进行
优 化,Mg2+ 浓 度 :0.75、1.50、2.25、3.00、3.75 和
4.50 mmol/L;dNTP 浓度:100、125、150、175、200、
225、250 和 275 μmol/L;rTaq 酶浓度:1.0、1.5、2.0、
2.5 和 3.0 U;混合引物浓度:0.50、0.75、1.00、1.25、
1.50、1.75 和 2.00 μmol/L。 反 应 体 系 均 为 20 μL。
PCR 产 物 加 5 μL 6×Loading Buffer, 取 8 μL 经 2%
琼脂糖凝胶电泳检测。
1.2.4 多重 PCR 反应条件优化 根据 1.2.3 优化的
反应体系,分别对退火温度和循环数进行优化。退
火温度梯度 :57.5、60.0、62.5、65.0 和 67.5℃ ;循
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.766
环数 :27、29、31、33 和 35 个循环。反应体系均
为 20 μL。PCR 产 物 加 5 μL 6×Loading Buffer, 取
8 μL 经 2% 琼脂糖凝胶电泳检测。
1.2.5 多重 PCR 检测限确定 根据 1.2.3 及 1.2.4 优
化后的多重 PCR 反应体系及条件,按 1.1.1 将转基
因烟叶 DNA 及非转基因烟叶 DNA 混合为转基因成
分含量分别为 0.9%、0.7%、0.5%、0.3% 和 0.1% 的
DNA 样品,确定多重 PCR 的检测限。
2 结果
2.1 单一PCR及引物特异性验证
对转基因及非转基因烟叶内源基因 NR 的扩增
结果(图 1)显示,在 137 bp 处有明显的特异性扩
增条带,说明提取的烟叶 DNA 模板可用于 PCR 检测。
对外源基因 NPT II、35S、NOS 的扩增结果可知,转
基因烟叶分别在约 490 bp、345 bp 和 199 bp 处出现
明显的特异性扩增条带,而非转基因烟叶未见扩增
条带,且空白对照均无条带,说明本实验设计的引
物具有较好的特异性,符合 PCR 检测需要,可用于
下步的多重 PCR 检测试验。
带非常很弱,基本不可见,而其他泳道中不同 Mg2+
浓度的扩增效果均没有泳道 2 理想,说明 10×PCR
buffer 中 Mg2+ 对多重 PCR 反应影响显著,在 Mg2+ 浓
度为 1.5 mmol/L 时扩增效果最佳。图 3 结果所示,
在泳道 1-7 中,不同 dNTP 浓度的扩增条带亮度均
较为一致,无显著的非特异性扩增条带,但是,当
dNTP 浓 度 达 到 275 μmol/L 时,NPT II 及 NR 基 因
特异扩增条带可见,但 35S 及 NOS 反应条带亮度明
显很弱。图 4 及图 5 中,rTaq 酶浓度及混合引物浓
度在一定范围内的变化并未对结果有显著影响,但
rTaq 酶浓度偏高时,在约 600 bp 处有非特异性扩增
条带出现。
M:100 bp Ladder DNA Marker;1-6:Mg2+ 浓度分别为 0.75、1.50、2.25、3.00、
3.75 和 4.50 mmol/L
图 2 多重 PCR 中不同 Mg2+ 浓度扩增结果
M :100 bp Ladder DNA Marker ;1-8 :dNTP 浓 度 分 别 为 100、125、150、
175、200、225、250 和 275 μmol/L
图 3 多重 PCR 中不同 dNTP 浓度扩增结果
bp
M 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
600
1500
500
400
300
200
100
M :100 bp Ladder DNA Marker,;1-3、4-6、7-9、10-12 分别为 NPT II 筛选
标记基因、35S 启动子、NOS 终止子、NR 基因的单一 PCR 产物,其中 1、4、
7、10 为转基因含量 1% 烤后烟叶 DNA,2、5、8、11 为非转基因烤后烟叶
DNA 对照,3、6、9、12 为空白对照
图 1 单一 PCR 扩增结果
2.2 反应体系各组分对多重PCR的影响
在加入不同浓度的 Mg2+ 后,转基因烟叶多重
PCR 反 应 扩 增 结 果( 图 2) 显 示, 泳 道 2 中, 在
Mg2+ 浓 度 为 1.5 mmol/L 时,4 个 基 因 的 扩 增 条 件
亮度较为一致且清晰可见,而泳道 1 及泳道 6 中,
Mg2+ 分 别 为 0.75 mmol/L 及 4.5 mmol/L 时, 反 应 条
bp
M 1 2 3 4 5 6
600
1500
500
400
300
200
100
bp
M 1 2 3 4 5 6 7 8
600
1500
500
400
300
200
100
综合以上因素、实验成本及单一 PCR 扩增结果,
优化后的反应体系为 4 对引物预先稀释成相等摩尔
浓度后按 1∶1∶1∶1(V/V)混合,在反应中加入
Mg2+ 1.5 μmol/L、dNTP 125 mol/L、rTaq 1 U、混合引
2015,31(7) 67余婧等 :多重 PCR 技术快速检测烤后烟叶转基因成分
物 1 μmol/L。
2.3 不同反应条件对多重PCR的影响
图 6 中,退火温度为 65℃时扩增效果最佳,而
65℃以下退火温度的扩增效果均不理想,部分条带
不清晰,而退火温度为 67.5℃时,35S 及 NOS 的特
异性扩增条件不可见,这是由于在较高退火温度条
件下这两对引物的 Tm 值较低所致。图 7 中,35 个
循环的反应条件为最佳循环数。
M :100 bp Ladder DNA Marker ;1-5 :循环数分别为 27、29、31、33 和 35
个循环
图 7 多重 PCR 中不同循环数扩增结果
M :100 bp Ladder DNA Marker ;1-5 :退 火 温 度 分 别 为 57.5、60.0、62.5、
65.0 和 67.5℃
图 6 多重 PCR 中不同退火温度扩增结果
M :100 bp Ladder DNA Marker ;1-5 :rTaq 酶浓度分别为 1.0、1.5、
2.0、2.5 和 3.0 U
图 4 多重 PCR 中不同 rTaq 酶浓度扩增结果
M :100 bp Ladder DNA Marker ;1-7 :混合引物浓度分别为 0.50、0.75、1.00、
1.25、1.50、1.75 和 2.00 μmol/L
图 5 多重 PCR 中不同混合引物浓度扩增结果
bp
M 1 2 3 4 5
600
1500
500
400
300
200
100
bp
M 1 2 3 4 5 6 7
600
1500
500
400
300
200
100
bp
M 1 2 3 4 5
600
1500
500
400
300
200
100
bp
M 1 2 3 4 5
600
1500
500
400
300
200
100
2.4 多重PCR检测限的确定
根 据 2.2 及 2.3 的 多 重 PCR 优 化 结 果, 最 终
确 定 该 反 应 的 最 优 条 件 为 :体 系 中 加 入 Mg2+ 1.5
mmol/L、dNTP 125 μmol/L、rTaq 酶 1 U、混合引物
1 μmol/L,DNA 100 ng。反应条件为 :退火温度为
65℃,循环数 35 个。为确定本体系的检测限,设置
了转基因含量分别为 0.9%、0.7%、0.5%、0.3% 和
0.1% 的多重 PCR 检测,图 8 中结果所示,在转基因
烟叶含量为 0.9% 的反应体系中,烟草内源基因 NR
及 3 个外源基因均得到有效扩增,但在 0.7% 含量以
下时,外源基因目的条带并不明显。因此,该多重
PCR 反应体系检测限为 0.9%。在本体系中,若内
源基因 NR 得不到有效扩增,则表明所提取的烤后
bp
M 1 2 3 4 5 6
600
1500
500
400
300
200
100
M:100 bp Ladder DNA Marker;1-5:烟叶转基因成分含量分别为 0.9%、0.7%、
0.5%、0.3% 和 0.1% ;6 :非转基因烟叶
图 8 多重 PCR 中转基因含量检测限扩增结果
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.768
烟叶 DNA 可能含有 PCR 反应抑制物,即外源基因
无特异扩增条带时也不能说明该样品便是转基因阴
性的。
3 讨论
多重 PCR 是在同一体系中加入多对引物进行
扩增,不同引物浓度及比例、Mg2+、dNTP 等都会对
PCR 结果造成不同程序的影响,因此设计引物时要
充分考虑各引物扩增片段大小、相互干扰、退火退
度等,在选择引物时需用分子生物学软件进行筛选,
同时需要对反应体系及条件进行优化[9],由于烤后
烟叶 DNA 降解严重,DNA 提取质量是 PCR 检测的
关键[10],否则会得到假阴性结果,因此用多重 PCR
检测烤后烟叶转基因成分时,有必要对内源基因同
时进行 PCR 扩增,我们选择了烟草内源硝酸还原酶
基因 NR 作为内源参照基因[3],以判断所提取 DNA
是否适于 PCR 反应。
本实验所建立的多重 PCR 体系为定性检测,在
烤后烟叶转基因检测中具有较好的复重性和稳定性,
检测极限为 0.9%,而在有关多重定性 PCR 检测转
基因作物的报道中[11,12],仅对所测靶标进行定性检
测,并未明确提出其检测限,在提到检测限的文献中,
邱良焱等[5]所建立的多重 PCR 体系检测限为 0.9%,
Guo 等[13]检测限为 80 个拷贝,烟草的基因组约 10
pg DNA[14],按此推算,本实验检测灵敏度为 90 个
拷贝,与其他学者的检测极限基本相符。
值得指出的是,使用不同的阳性对照材料对检
测极限会有不同极限值,本实验中所使用的转基因
阳性烟叶为 T3 代,Southern 检测为单拷贝的材料,
但在严格的外源转基因检测中,用于定量的阳性植
物材料应是拷贝数单一且稳定,不显示等位基因变
化的 DNA 序列来作为阳性对照[15],因此,在目前
尚未有烤后烟叶转基因 PCR 检测标准物质的情况下,
本实验中的检测极限还需多家单位进行协同实验。
4 结论
以烤后烟叶为材料,建立了在一个 PCR 反应
管内便能同时检测烟草内源基因 NR、外源基因 35S
启动子、NOS 终止子及 NPT II 筛选标记基因的多重
PCR 方法,初步建立的体系检测限为 0.9%(V/V),
为烤后烟叶转基因成分筛查提供了技术支撑。
参 考 文 献
[1]余婧 , 张孝廉 , 赵丹等 . 烟草转基因研究常用遗传元件筛查策
略[J]. 中国烟草学报 , 2014, 20(1):78-83.
[2]Bindler G, Dorlhac de Borne F, Gadani F, et al. Report of the task
force genetically modified tobacco :detection methods[R].
Paris, France :CORESTA Bulletin 1999-4, Cooperation Centre for
Scientific Research Relative to Tobacco, 1999.
[3]中国国家标准化管理委员会 . GB/T 24310-2009 烟草及烟草制
品转基因检测方法[S]. 北京 :中国标准出版社 , 2009.
[4]万秀清 , 颜培强 , 李丽杰 , 等 . 转基因烟草定性检测方法的研
究[J]. 中国烟草学报 , 2005, 11(2):24-27.
[5]邱良焱 , 肖有玉 , 刘佳 , 等 . 多重 PCR 法检测转 Bar、Bt 基因
双抗稻米[J]. 食品科学 , 2013, 34(6):139-142.
[6]魏霜 , 陈贞 , 芦春斌 , 等 . 多重 PCR 检测转基因水稻的转基因
成分[J]. 食品科学 , 2012, 33(12):159-162.
[7]陈浩东 , 刘方 , 王为 , 等 . 棉花多重 PCR 技术及其对杂交棉纯
度鉴定的初步研究[J]. 棉花学报 , 2011, 23(1):22-27.
[8]高玉龙 , 焦芳婵 , 徐照丽 , 等 . 多重 PCR 在烟草转基因检测中
的应用[J]. 生物技术通 , 2008(2):140-142.
[9]Yang L, Wang CC, Wang LH, et al. An efficient multiplex PCR assay
for early detection of Agrobacterium tumefaciens in transgenic plant
materials[J]. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 2013,
37 :157-162.
[10]郭兆奎 , 万秀清 , 魏继承 , 等 . 适于 PCR 分析的烤后烟叶 DNA
提取方法的研究[J]. 中国烟草科学 , 1999, 4 :5-8.
[11]陈贞 , 芦春斌 , 杨梦婕 , 等 . 多重 PCR 检测转基因菜籽粕中的
转基因成分[J]. 植物检疫 , 2011, 25(3):35-38.
[12]魏霜 , 陈贞 , 芦春斌 , 等 . 多重 PCR 检测转基因水稻的转基因
成分[J]. 食品科学 , 2012, 33(12):159-162.
[13]Guo J, Chen L, Liu X, et al. A multiplex degenerate PCR analytical
approach targeting to eight genes for screening GMOs[J]. Food
Chemistry, 2012, 132(3):1566-1573.
[14]郭兆奎 , 魏继承 , 于颜华 , 等 . 烟草转基因检测标准及 PCR 反
应体系的研究[J]. 中国烟草学报 , 2000, 6(3):18-22.
[15]余笑波 , 崔海峰 , 俞晓平 , 等 . 水稻淀粉分支酶基因(RBE4)
作为转基因水稻基体标准物质的内标准基因的研究[J]. 农
业生物技术学报 , 2012, 20(11):1234-1243.
(责任编辑 狄艳红)