免费文献传递   相关文献

Molecular Mechanism of Lactation and Gene Regulation Networks

泌乳分子机制及基因调控网络



全 文 :生物技术通报
·综述与专论· BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2014年第1期
泌乳分子机制及基因调控网络
任洪辉1,2 王永1 江明锋1,2
(1. 动物遗传育种学国家民委 -教育部重点实验室,成都 610041 ;2. 西南民族大学生命科学与技术学院,成都 610041)
摘 要 : 为了提高泌乳家畜的产奶性能,使得进一步理解乳腺的功能及其调控机制变得十分必要。早期的研究倾向于从组
织学和激素层面研究分析乳腺的生理功能,随着近年来分子生物学技术的发展,芯片等高通量技术被应用到乳腺泌乳机制的研究中,
泌乳生物学进入了一个全新的发展时期。综述了近年来国内外关于乳腺泌乳机制方面的研究进展,如乳腺各个泌乳时期的基因调
控网络、乳汁主要成分的合成调控网络、参与乳腺泌乳周期循环的信号传导通路等。
关键词 : 乳腺 泌乳 分子机制 调控网络 信号通路
Molecular Mechanism of Lactation and Gene Regulation Networks
Ren Honghui Wang Yong Jiang Mingfeng
(1. Key Laboratory of Ani l Genetics & Breeding, State Ethnic Aff irs Commi ion and Ministry of Education, Chengdu 610041 ;
2. Life Sci
ma
ence and Technology of Southwest Unive
a
rsity for Nat
ss
ionalities,Chengdu 610041)
Abstract: In order to improve the production performance of animals, that understand better the function and regulation mechanisms
of the mammary gland become very necessory. Early studies tended to analyze the physiological function of mammary gland from histology and
hormone levels. With the development of molecular biology techniques, high-throughput technologies such as gene chip to study mammary
gland and lactation biology has entered a new stage of development. In this review, we presented several aspects in molecular biology of lactation
biology, such as gene networks about each stage were revealed, synthetic regulation network about the main composition of milk, signaling
pathways involved in mammary gland lactation cycle.
Key words:  Mammary gland Lactation Molecular mechanism Regulation networks Signal pathway
提高乳用家畜的乳产量和质量是乳业相关领域 坦奶牛等大家畜泌乳的分子机制进行研究成为热点,
科学家的主要目标。研究者已经从乳用家畜的生理 美国伊利诺伊大学的 Loor[4]和 Bionaz[5]等在乳腺
学、营养学等角度进行了充分的研究。显然, 泌乳 泌乳周期基因调控网络、乳汁各成分合成机制及相
生物学研究的重点应从乳腺自身着手, 研究乳腺的 关参与泌乳调控分子机制等方面的研究处于国际领
泌乳机制、乳汁合成和分泌、影响乳腺生长发育的 先地位。近几年我国在该方向的研究也取得了实质
各种因素。虽然泌乳生物学研究历史很长, 但由于 性的进展, 东北农业大学的李庆章[6]、侯晓明[7]等
大型动物的价格相对高昂且实际操作困难, 很多研 率先开展了奶牛乳腺相关基因表达谱的研究, 为我
究只能从大鼠等试验动物着手。例如, 与泌乳持续 国在该领域的研究起到了带头作用。
性[1]相关的乳腺细胞增殖 - 凋亡机理、通过控制 目前, 信号传导网络是乳腺发育和泌乳分子机
营养条件调节乳汁的生物合成[2]和青春期乳腺的生 制中研究最多的领域, 这些结果大多通过对培养的
长速率[3]等研究结果均通过对大鼠和小鼠等模式动 乳腺细胞和转基因大鼠乳腺组织的研究获得。随着
物的研究得到。近年来, 运用转录组学技术对荷斯 现代分子生物学技术的发展, 泌乳生物学进入了一
收稿日期 :2013-07-30
基金项目 : 国家自然科学基金项目(31172198), 国家科技支撑计划课题(2012BAD13B06), 四川省青年科技基金(09ZQ026-011), 教育部
科学技术研究重点项目(201265), 中央高校科研项目(12ZYXS74)
作者简介 : 任洪辉, 男, 硕士研究生, 研究方向 : 动物遗传育种与繁殖 ;E-mail :337513362@qq.com
通讯作者 : 江明锋, 男, 博士, 教授, 研究方向 : 高原家畜生理基因组、高原生物基因资源的开发与利用 ;
E-mail :mingfengjiang@vip.sina.com
40
1
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第1期
个全新的发展时期。生物信息学、转录组学、蛋白
质组学等技术逐渐应用到泌乳生物学的研究领域,
科学家试图从组学层面阐释泌乳分子机制。本文综
述了国内外泌乳生物学研究进展, 试图从基因调控
网络和信号传导途径等角度对乳腺泌乳的分子机制
进行阐释, 为相关领域的研究提供参考。
转录组学在泌乳生物学中的研究概述
随着芯片等高通量分析技术的发展, 转录组分
析技术和相关生物信息学工具可以很好的应用于复
杂的基因网络[8]。一些生物软件广泛的用于生命科
学( 如 GeneGo,Ingenuity Pathway Analysis), 研 究
者可以手工操作软件中的一些功能( 如分子间的相
互作用、基因与表型之间的相互关系等), 使得对乳
0.8
腺整个泌乳周期分子调控网络的研究成为了可能。
0.6
性变化, 这些基因可能参与整个泌乳周期中乳汁的
合成, 同时这也说明在妊娠后期或分娩前, 乳腺组
织在分子水平上已做好了产奶准备。断奶后, 乳头
失去了必要的刺激, 乳房的生理和生化功能在断奶
后第 2 天开始退化, 乳腺组织恢复到妊娠期的状态。
第二部分的 DEG 在 L9(Lactation L) 和 I2(Involution
I) 时段开始表达,但在妊娠期和泌乳期未发生变化,
因此这部分基因的表达可能与乳腺退化有关。
A 2.0
1.8
1.6
1.4
1.2
1.0





















目前, 对哺乳动物乳腺泌乳分子机制的研究已经从
模式动物过渡到大型哺乳动物。 B
1.1 大鼠乳腺转录组学研究
Rudolph 等[9]对大鼠整个泌乳期进行芯片分析,
大约 4 832 个差异表达基因(Differentially expressed
gene,DEG) 参与泌乳循环, 主要是参与乳汁主要
P1 P3

P7
2
P1
7
P1
9 L1 L2

L9 12P1
2.0
1.8
1.6
1.4
1.2
1.0
成分合成及调控、泌乳周期调节、乳腺生理变化、
0.8
0.6
信号传导等有关泌乳的基因, 各个基因参与不同的
调节机制。根据基因变化的差异性, 将芯片数据中
C
P1 P3

P7
2
P1
7
P1
9 L1 L2

L9 12P1
2.0
变化较明显的基因分成 3 个部分以解析相关基因的 1.8
调控机制[10]( 图 1)。第一部分描述了分析结果中大
约 50% 的基因, 这些基因在妊娠后期开始持续表达
直至泌乳期保持稳定, 最后在退化初期开始快速下
1.6
1.4
1.2
1.0
调。第二个部分和第三个部分代表一些次重要的基 0.8
0.6因, 分别包含 13.6% 和 11.6% 。第二部分的基因在
妊娠期和泌乳期未发生明显变化, 但在退化期开始 P
1 P3

P7
2
P1
7
P1
9 L1 L2

L9 12P1
P : 妊娠期(Pregnancy);L : 泌乳期(Lactation);I : 退化期(Involution)
图 1 DEG 在不同泌乳时期的变化趋势
1.2 奶牛乳腺转录组学研究
Bionaz 等[5]利用芯片技术对荷斯坦奶牛乳腺泌
乳基因调控网络进行了研究, 提出了 DIA(Dynamic
impact approach) 分析技术, 并成功应用至荷斯坦奶
牛泌乳基因调控分析[11]。将 -30 d 、-15 d 、+1 d 、15
d 、30 d 、60 d 、120 d 、240 d 和 300 d 的乳腺样品进
行表达谱分析发现,6 382 个差异性表达基因(DEG)
表达。在第三部分中, 基因在妊娠后期开始表达,
到泌乳期时开始下降, 直至退化期这些基因又开始
持续性高表达。大鼠妊娠期乳腺组织的表皮细胞发
生了很大的生理和生化变化, 乳房的体积逐渐变大,
尤其是在妊娠期第 12 天体积增长最迅速。结合已知
的生理学知识进行分析表明, 表皮细胞在妊娠期的
增殖可能是第三部分妊娠期基因差异性表达的主要
驱动力。通过对第一部分的分析发现, 只有一小部
分基因(n=592) 在整个泌乳周期中发生较大的差异
41 2014年第1期 任洪辉等 : 泌乳分子机制及基因调控网络
参与泌乳循环,并将数据分析以 -30 d 作为参照标准,
比较各个时期差异性表达基因的变化( 图 2)。当提
高差异性阈值( 〉200%) 时, 显现出的数据可以进
一步显示出在调控过程中发挥主要作用的差异性表
达基因。结果表明, 在 60 d 和 120 d 时差异性表达
基因的数量最多, 大约包含 3 500 个。分析整个泌
乳循环周期, 下调基因的数量明显多于上调基因,
与泌乳相关的差异性表达基因在 -15-1 d 和 120-240
d 期间的变化最大, 且在 +1 d 、60-120 d 时 DEG 的
A
数量达到巅峰值。但提高差异性表达基因的阈值时,
上调基因占据一定优势, 且 60 d 和 120 d 时 DEG 的
数量最多, 推测此时的变化可能与泌乳量的增加有
关。比较妊娠期和退化期,-15-1 d 期间下调基因的
数量多于上调基因,120-240 d 期间上调基因占据数
量上的优势。但其中变化较大的差异性表达基因的
情况却与之相反, 即妊娠期变化较大的多为上调基
因, 退化期大多是下调基因。因此, 推断后者的变
化可能与泌乳减少有关。
B
ᰐ䰸
٬䲀
٬
ᰐ䰸
٬䲀
٬
5000 >200%
4000
3000
2000
1000
0
C 5000
4000
3000
2000
1000
0
5000
-15
1
12
0
24
0
30
0 -15
1
12
0
24
0
30
0
4000
3000
2000
1000
0
5000D
ᡰᴹк䈳л䈳
4000
3000
2000
1000
0
>200%
⴨ሩҾ-30dˈᡰᴹᰦ䰤⛩DEGᮠ䟿
਴њ䘎㔝ᰦ䰤⛩ѻ䰤DEGⲴᮠ䟿
15 30

60

15 30

60

⴨ሩҾ࠶ၙⲴ਴њᰦ䰤⛩
A 和 C 分别为相对于妊娠期 -30 d 和相对于各自前一时间点的差异性基因的数量 ;B 和 D 分别代表相对于妊娠期 -30 d 和相对于
各自前一时间点的差异性基因的数量
图 2 以妊娠期 -30 d 和各自前一时间点为对照的差异性表达基因的数量
-15 1 15 30

60

12
0
24
0
30
0 -15 1 15 30

60

12
0
24
0
30
0
2 乳腺发育各时期的转录组学研究
2.1 妊娠期
妊娠期乳腺组织发生了很多变化, 为分娩后的
泌乳做好了组织学上的准备, 其中表皮细胞迅速增
殖是最明显的变化, 乳房体积逐渐从总体积的 10%
增长至分娩前的 90% 。从转录组学的角度分析, 妊
娠期要在泌乳期之前做好与产奶相关的分子水平准
备, 大部分有关乳汁合成和分泌的基因在泌乳前已
开始转录。因此, 一些研究者猜测妊娠期后期的基
因转录是妊娠期向泌乳期过渡的调节开关, 是分娩
后产奶的必要条件。根据基因芯片数据分析的结
果[10], 乳腺组织在该阶段开始大量转录与蛋白质合
成、转运、定位和分泌相关的基因, 同时一些通过
乳腺表皮细胞进入乳汁的离子的转运系统也发生上
42 生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第1期
调, 如铁离子和锌离子 ; 下调的基因主要有 :⑴ 脂
肪酸氧化酶基因在妊娠后期发生下调 ;⑵ 血管生长
有关基因抑制( 但实际上乳腺在这一阶段生长发育,
即血管变大。因此一些 GO 分析的结果可能无法应
用于乳腺发育);⑶ 阴离子转运下调, 尤其是妊娠后
期磷酸盐的下调最严重。
2.2 泌乳期
泌乳期是乳腺发挥功能即分泌乳汁的主要时期,
乳腺在此阶段十分活跃, 乳房会分泌大量的乳汁。
但根据芯片分析结果, 大部分基因在这个过程发生
下调, 只有少数进行上调。合成和组装脂肪酸是乳
腺在泌乳期的主要功能之一, 因此同妊娠期一样,
参与脂肪酸氧化的酶在该阶段被抑制。但意外的是,
参与蛋白质转运和代谢( 合成和分解) 的相关基因
在泌乳期逐渐衰减甚至被抑制, 这也间接证明乳腺
组织在妊娠期已经为泌乳期产奶做好了转录组水平
的准备。例如, 在泌乳期, 乳汁中含有一些有关免
疫的物质, 但分析发现与免疫相关的基因在该时期
也开始下调且进入抑制状态, 这说明免疫相关基因
已经在妊娠后期完成转录。总的来讲, 泌乳期大部
分基因处于下调状态, 与主要功能相关的基因已在
妊娠期完成转录。
2.3 退化期
当乳房进入退化期时, 妊娠期过程中一些活
跃的基因重新启动, 包括蛋白质转运等功能在内的
基因占据主导优势( 大约占 85%), 只有少部分参
与生物合成和新陈代谢的功能基因下调。退化期乳
腺的主要功能是分解代谢, 大部分有关蛋白质分解
代谢的基因逐渐上调, 此过程可以满足氧化应激反
应和保护乳腺细胞或其周围细胞免受外界伤害。随
着蛋白质分解代谢的增强,ATP 合成和水解也逐渐
加快。为满足乳腺组织对 ATP 的需求, 有关质子
转运的相关基因在该时期进行上调。此外, 为了维
持组织内的离子环境, 阳离子的转运功能在泌乳期
过后恢复。以上这些基因的上调将有助于促进乳成
分退化及间隙小分子的转换。同时, 退化期泌乳相
关基因逐渐恢复至妊娠期, 将为下一次泌乳循环做
准备。
3 乳汁主要成分合成的调节网络
3.1 乳蛋白
有 关 乳 蛋 白 合 成 的 研 究 已 取 得 很 大 进 展。
Massiom 等[12]对参与胰岛素信号传导、雷帕霉素靶
蛋白(Mammalian target of rapamycin,mTOR)、腺苷
酸活化蛋白激酶(AMPK)、Jak2-Stat5 信号通路及氨
基酸和葡萄糖转运受体的 44 个基因进行 qPCR 分析。
结果表明, 氨基酸和葡萄糖转运受体、胰岛素信号
传导通路的相关成分及 mTOR 信号通路相关基因在
泌乳期间发生明显上调, 而核糖体组件 RPL22 出现
下调, 其中胰岛素和 mTOR 在调控乳蛋白合成过程
中发挥关键作用。胰岛素在过去被认为是乳蛋白合
成的间接调控者[13], 但 Herbein 等[14]研究发现,
牛血液中胰岛素在分娩后明显减少, 且在泌乳前两
个月一直保持这种低水平。直到最近的研究表明,
胰岛素是牛和鼠乳蛋白合成的关键调控者[15,16]。对
于所有哺乳动物,mTOR 信号通路调控蛋白质合成,
尤其在转录水平[17]。mTOR 通路受支链氨基酸调控,
特别是亮氨酸(Leu)[18]。乳腺组织中氨基酸不仅
可以调控蛋白质编码基因的转录, 其转运效率也是
限制乳汁蛋白质合成的重要影响因素[19]。除了氨基
酸之外, 葡萄糖对调控乳汁其它成分的合成也很重
要[20]。Jak2-Stat5 信号通路是调控啮齿类动物乳蛋
白合成的主要方式[21], 但与啮齿类动物相比, 该通
路对奶牛乳蛋白合成过程中的影响力明显较弱[22]。
AMPK 主要参与乳脂的合成[23], 目前尚无研究表明
其在蛋白质合成过程中的重要性。对参与乳蛋白合
成调控的基因进行分析发现, 蛋白质的合成需要氨
基酸、胰岛素、葡萄糖和 mTOR 通路等相互作用,
形成一个整体的调控网络。
3.2 乳脂
目前, 有关乳脂合成分子机制的研究并不很完
善, 大部分的研究从 mRNA 水平进行分析。乳腺组
织合成乳脂的分子生物学过程及主要相关基因如下:
血液中获取脂肪酸(LPL,CD36)、细胞内脂肪酸交
换(FABP3)、长链(ACSL1) 和短链(ACSS2) 脂
肪酸胞内激活、脂肪酸从头合成(ACACA,FASN)、
去饱和(SCD,FADS1)、三酰甘油合成(AGPAT6,
43 2014年第1期 任洪辉等 : 泌乳分子机制及基因调控网络
GPAM,LPIN1)、 脂 滴 形 成(BTNIA1,XDH)、 酮
体利用(BDH1) 以及转录调控(INSIG1,PPARG,
PPARGCIA), 这些基因交汇在一起, 组成一个庞大
的乳脂合成网络, 过去的研究将 SREBP1 作为大鼠
乳脂合成的核心调控者[24]。但 Massimo 等[25]利用
qPCR 技术分析与奶牛乳脂合成相关基因表达变化情
况, 分析相关基因在泌乳期间的转录调节方式, 并
根据分析的结果建立了一个有关乳脂合成的调控网
络, 描绘了乳脂合成的调控机制, 认为 SREBF1 、
SREBF2 和 PPARG 是奶牛乳脂合成过程的主要调节
基因, 其中 PPARG 在这个网络中扮演多重角色, 例
如协调 PPARGC1A 和 INSIG1 之间的相互作用及控
制 SREBF1 的表达。
3.3 乳糖
乳糖是乳汁的主要组成部分, 其在乳汁中可通
过调节渗透压控制乳的体积。目前有关乳腺组织乳
糖合成调控网络的研究并不是很多, 研究的重点大
多倾向于葡萄糖对乳糖合成的影响。作为乳糖合成
所需的前体物, 葡萄糖的吸收是控制乳糖合成的最
直接的方式[26]。葡萄糖主要通过两种截然不同的方
式穿过磷脂双分子层进入乳腺细胞 : 葡萄糖转运蛋
白(GLUT) 和 Na+/ 葡萄糖泵。目前, 研究者大都从
葡萄糖吸收水平分析乳糖合成调控网络, 有关乳糖
合成的其它调控网络仍需要进一步探索。
4 乳腺泌乳期信号传导网络
很 多 信 号 通 路 参 与 泌 乳 期 分 子 调 控, 其 中
Hedgehog 信号通路、Jak-STAT 信号通路和 TGF-beta
信号通路对整个泌乳周期影响最大, 发挥促进作
用, 即正调控乳腺泌乳 ; 但细胞黏附分子(CAMs)、
mTOR 信号通路和 Notch 信号通路在泌乳期时处于
抑制状态。
Hedgehog 和 TGF-beta 信号通路参与乳腺干细
胞自我更新, 当它们解除控制时会发生乳腺癌[27]。
Hedgehog 信号通路主要参与啮齿类动物泌乳, 产
奶时被激活, 诱导产奶相关基因的表达[28]。有关
TGF-beta 通路在乳腺组织中调控机理的研究并不
完善, 研究者发现该通路在抑制乳腺细胞增殖的同
时, 也可促进细胞凋亡[29]; 除此之外, 科学家猜
测 TGF-beta 通路在乳腺组织中的作用与在人类肠细
胞中的生物学效应相似[30]; 因此,TGF-beta 通路
可能在整个细胞周期循环过程中发挥关键的调控作
用[31]。另外一个正调控乳腺泌乳的通路即 Jak-STAT
通路, 可以直接调控非反刍类产奶动物乳蛋白基因
的表达, 但对于反刍类动物尤其是奶牛, 该通路并
不能直接通过 Jak 或 Stat 基因的变化进行调节, 而
是由其下游的效应器直接调控[12]。
mTOR(Mammalian target of rapamycin 雷帕霉素
靶蛋白) 信号通路参与调控乳蛋白合成, 主要被氨
基酸、胰岛素和生长因子调控激活, 当能量或营养
不足时易被抑制。mTOR 信号通路对细胞生理学的
调控起关键作用[32], 其大量组件参与调控蛋白质的
合成, 如启动子和延伸因子。mTOR 信号通路虽然
在乳蛋白合成过程中发挥重要作用, 但只有很少一
部分基因在转录水平起调控作用, 该通路大部分基
因处于抑制状态。有关 Notch 信号通路的抑制机理
是一个新奇的发现, 其主要参与细胞发育、机体器
官的细胞进入组织、细胞增殖和凋亡[33]。Callahan
等[34]通过人工激活 Notch 信号发现, 该通路也可
以抑制乳腺分支和泌乳, 同时参与乳腺细胞生长。
CAMs 主要参与维持乳腺表皮细胞的结构[2], 其在
泌乳期的抑制现象无法利用 KEGG 分析。但当进一
步放大有关数据时, 该“ 抑制” 会被逐渐展现, 结
果发现其主要由一些与免疫系统相关的细胞黏附分
子引起, 同时有一些紧密连接分子作出感应。
5 小结
有关乳腺泌乳分子生物学方面的研究逐渐增多,
有很大的研究空间和发展潜力, 也取得了很多科研
成果。与此同时, 随着人们生活水平的提高和对奶
制品认识的加强, 奶产品将逐渐作为“ 第二粮食”
进入我们的餐桌 ; 人们对乳制品需求量增加的同时,
也越来越关注它的质量, 这种市场需求为乳腺泌乳
生物学相关科学研究奠定了很好的商业基础。我国
在该领域尚属起步阶段, 过去几十年的研究倾向于
从组织学和激素层面分析乳腺的生理功能, 很少从
分子层面进行解析。因此, 国内的研究者应逐渐将
现代分子生物学、转录组学、蛋白质组学等技术应
用到产奶家畜的研究中, 建立起我国产奶家畜泌乳
相关基因的调控网络, 阐明家畜泌乳调控机理, 从
44 生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2014年第1期
分子层面解读家畜泌乳的分子机制, 为国内产奶家
畜的遗传育种研究奠定分子基础。
参 考 文 献
[1]Capuco AV, Ellis SE, Hale SA, et al. Lactation persistency :insights
from mammary cell proliferation studies[J]. J Anim Sci, 2003, 81
(Suppl. 3):18-31.
[2]Alford D, Taylor-Papadimitriou J. Cell adhesion molecules in the
normal and cancerous mammary gland[J]. Journal of Mammary
Gland Biology and Neoplasia, 1996, 1(2):207-218.
[3]Meyer MJ, Capuco AV, Ross DA, et al. Developmental and
nutritional regulation of the prepubertal bovine mammary gland :
II. Epithelial cell proliferation, parenchymal accretion rate, and all
ometric growth[J]. J Dairy Sci, 2006, 89(11):4298-4304.
[4]Loor JJ, Cohick WS. ASAS centennial paper :Lactation biology for
the twenty-first century[J]. J Anim Sci, 2009, 87(2):813-824.
[5]Bionaz M, Periasamy K, Rodriguez-Zas SL, et al. Old and new
stories :revelations from functional analysis of the bovine mammary
transcriptome during the lactation cycle[J]. PLOS ONE, 2012, 7
(3):e33268.
[6] 李庆章等 . 乳腺发育与泌乳生物学[M]. 北京 : 科学出版社 ,
2009.
[7] 侯晓明 , 李庆章 , 黄田英 . 泌乳期奶牛乳腺基因表达谱研究[J].
中国科学 : 生命科学 , 2010(3):231-238.
[8]Naylor S, Culbertson AW, Valentine SJ. Towards a systems
level analysis of health and nutrition[J]. Current Opinion in
Biotechnology, 2008, 19(2):100-109.
[9]Rudolph MC, McManaman JL, Hunter L, et al. Functional develop-
ment of the mammary gland:use of expression profiling and trajectory
clustering to reveal changes in gene expression during pregnancy,
lactation, and involution[J]. J Mammary Gland Biol Neoplasia,
2003, 8(3):287-307.
[10]Lemay DG, Neville MC, Rudolph MC, et al. Gene regulatory
networks in lactation :identification of global principles using
bioinformatics[J]. BMC Syst Biol, 2007, 1 :56.
[11]Bionaz M, Periasamy K, Rodriguez-Zas SL, et al. A novel
dynamic impact approach(DIA)for functional analysis of time-
course omics studies :validation using the bovine mammary
transcriptome[J]. PloS One, 2012, 7(3):e32455.
[12]Bionaz M, Loor JJ. Gene networks driving bovine mammary protein
synthesis during the lactation cycle[J]. Bioinform Biol Insights,
2011, 5 :83-98.
[13]Neville MC, McFadden TB, Forsyth I. Hormonal regulation of
mammary differentiation and milk secretion[J]. J Mammary
Gland Biol Neoplasia, 2002, 7(1):49-66.
[14]Herbein JH, Aiello RJ, Eckler LI, et al. Glucagon, insulin, growth
hormone, and glucose concentrations in blood plasma of lactating
dairy cows[J]. J Dairy Sci, 1985, 68(2):320-325.
[15]Menzies KK, Lefèvre C, Macmillan KL, et al. Insulin regulates
milk protein synthesis at multiple levels in the bovine mammary
gland[J]. Functional & Integrative Genomics, 2009, 9(2):
197-217.
[16]Menzies KK, Lee HJ, Lefèvre C, et al. Insulin, a key regulator of
hormone responsive milk protein synthesis during lactogenesis
in murine mammary explants[J]. Functional & Integrative
Genomics, 2010, 10(1):87-95.
[17]Wang X, Proud CG. The mTOR pathway in the control of protein
synthesis[J]. Physiology, 2006, 21(5):362-369.
[18]Mo shel Y, R h oads RE, B ara sh I. Rol e of amino a cids in
translational mechanisms governing milk protein synthesis in
murine and ruminant mammary epithelial cells[J]. Journal of
Cellular Biochemistry, 2006, 98(3):685-700.
[19]Kimball SR, Jefferson LS. New functions for amino acids :effects
on gene transcription and translation[J]. The American Journal
of Clinical Nutrition, 2006, 83(2):500S-507S.
[20]Reynolds CK, Harmon DL, Cecava MJ. Absorption and delivery of
nutrients for milk protein synthesis by portal-drained viscera[J].
Journal of Dairy Science, 1994, 77(9):2787-2808.
[21]Wakao H, Gouilleux F, Groner B. Mammary gland factor(MGF)
is a novel member of the cytokine regulated transcription factor
gene family and confers the prolactin response[J]. The EMBO
Journal, 1994, 13(9):2182.
[22]Wh e e ler T T , Br o a dh ur st MK , S a d o w sk i HB, et al . S t a t5
phosphorylation status and DNA-binding activity in the bovine
and murine mammary glands[J]. Molecular and Cellular
Endocrinology, 2001, 176(1):39-48.
[23]McFadden JW, Corl BA. Activation of AMP-activated protein
kinase(AMPK)inhibits fatty acid synthesis in bovine mammary
epithelial cells[J]. Biochemical and Biophysical Research
Communications, 2009, 390(3):388-393.
45 2014年第1期 任洪辉等 : 泌乳分子机制及基因调控网络
[24]Anderson SM, Rudolph MC, McManaman JL, et al. Secretory
activation in the mammary gland :it’s not just about milk protein
synthesis[J]. Breast Cancer Res, 2007, 9 :204-217.
[25]Bionaz M, Loor JJ. Gene networks driving bovine milk fat synthesis
during the lactation cycle[J]. BMC Genomics, 2008, 9(1):
366.
[26]Zhao FQ, Keating AF. Expression and regulation of glucose
transporters in the bovine mammary gland[J]. Journal of Dairy
Science, 2007, 90 :E76-E86.
[27]Woodward WA, Chen MS, Behbod F, et al. On mammary stem
cells[J]. Journal of Cell Science, 2005, 118(16):3585-3594.
[28]Lewis MT, Veltmaat JM. Next stop, the twilight zone :hedgehog
network regulation of mammary gland development[J]. Journal
of Mammary Gland Biology and Neoplasia, 2004, 9(2):165-181.
[29]Zarzynska J, Motyl T. Apoptosis and autophagy in involuting bovine
mammary gland[J]. J Physiol Pharmacol, 2008, 59(Suppl 9):
275-288.
[30]Purup S, Vestergaard M, O Pedersen L, Sejrsen K. Biological
activity of bovine milk on proliferation of human intestinal
cells[J]. J Dairy Res, 2007, 74(1):58-65.
[31]Liu F. Receptor-regulated Smads in TGF-beta signaling[J].
Frontiers in Bioscience :a Journal and Virtual Library, 2003, 8 :
s1280-303.
[32]Wang X, Proud CG. The mTOR pathway in the control of protein
synthesis[J]. Physiology(Bethesda), 2006, 21 :362-369.
[33]Fortini ME. Notch signaling :the core pathway and its posttransla-
tional regulation[J]. Dev Cell, 2009, 16(5):633-647.
[34]Callahan R, Egan SE. Notch signaling in mammary development
and oncogenesis[J]. J Mammary Gland Biol Neoplasia, 2004, 9
(2):145-163.
(责任编辑 狄艳红)