全 文 :·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2013年第8期
香蕉枯萎病又称黄叶病、巴拿马病,是由尖孢镰
刀菌古巴专化型(Fusarium oxysporium f. sp. cubense)
侵染香蕉植株引起的一种毁灭性土传维管束病害,
近年来在中国香蕉主产区持续爆发,严重制约着我
国香蕉产业的发展[1-3]。其病原菌有 4 个生理小种[4],
其中 4 号生理小种(Fusarium oxysporium f. sp. cube-
nse 4,FOC 4)侵染范围最广,几乎危害所有的香蕉
品种,我国香蕉品种多为巴西蕉,受 FOC 4 威胁最
大,因此防治香蕉枯萎病迫在眉睫。据报道,目前
对该病防治的主要途径包括轮作、选用抗病品种[5]、
化学防治[6]及生物防治等。目前推广的抗病品种属
中抗品种,并不能完全控制枯萎病的发生,且农艺
收稿日期 :2013-02-25
基金项目 :现代农业产业技术体系建设专项资金(CARS-32)
作者简介 :刘小玉,女,硕士研究生,研究方向 :香蕉枯萎病防控 ;E-mail :liuxiaoyu06120210@163.com
通讯作者 :张锡炎,男,博士生导师,研究员,研究方向 :香蕉标准化与产业化 ;E-mail :zxyan1981@163.com.
香蕉枯萎病拮抗放线菌 1-g-59 的筛选与鉴定
刘小玉1,2 周登博1,2 谭昕2 高祝芬2 陈波1,2 黄霄1,2 张锡炎2
(1. 海南大学园艺园林学院,海口 571737 ;2. 中国热带农业科学院生物技术研究所,海口 571101)
摘 要 : 通过对海南美台、南宝蕉园香蕉根际土壤的分离和筛选,获得 5 株对 FOC 4 具有拮抗作用的放线菌,其中以菌株
1-g-59 活性最强。根据进行形态特征、培养特征、生理生化特征、细胞壁化学成分分析、16S rDNA 序列和系统发育分析等研究,
鉴定菌株 1-g-59 为 Streptomyces lunalinharesii。盆栽试验结果表明,菌株 1-g-59 发酵液对香蕉枯萎病具有较强的防治作用,防治效
果达 64.9%。
关键词 : 香蕉枯萎病 拮抗放线菌 筛选 鉴定
Screening and Identification of Antagonistic Actinomyces 1-g-59
Against Fusarium oxysporium f. sp. cubense
Liu Xiaoyu1,2 Zhou Dengbo1,2 Tan Xin2 Gao Zhufen2 Chen Bo1,2 Huang Xiao1,2 Zhang Xiyan2
(1. College of Horticulture and Landscape,Hainan University,Haikou 571737 ;2. Institute of Tropical Bioscience and Biotechnology,
Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences,Haikou 571101)
Abstract: Five antagonistic strains against Fusarium oxysporum f. sp. cubense were isolated and screened from the rhizosphere soil of the
banana garden in Meitai and Nanbao, strain 1-g-59 possessed the most prominent bioactivity. By studying the morphology, cultural, physiological
and biochemical properties, cell wall components analysis, 16S rDNA and phylogenetic tree, the results showed that strain 1-g-59 was identified
as Streptomyces lunalinharesii. Pot experiment showed that control effects of the fermentation filtrate of strain 1-g-59 on banana fusarium wilt
disease was 64.9%.
Key words: Banana Fusarium wilt disease Antagonistic actinomyces Screening Identification
性状不佳,品质较差,如台湾 1 号、GCTCV-215 等;
使用化学药剂,不仅会杀灭土壤中的有益菌类,且
长期使用,对环境污染影响较大。因此生物防治被
认为是目前最安全的防治措施,符合环境保护和有
机食品发展要求。
香蕉枯萎病的生物防治已成为各国的研究热点。
紫黑链霉菌(Streptomyces violaceusniger)[7]、荧光假
单胞菌(Pseudomonas fluorescens)[8]、枯草芽孢杆菌
(Bacillus subtilis)[9]被证明对 FOC 4 具有明显的抑
制作用,Perez-Vicente 等[10]研究报道,抗病品种种
植与生防菌的施用相结合,对香蕉枯萎病的防效达
95% 以上,说明生物防治香蕉枯萎病是完全可行的。
2013年第8期 125刘小玉等 :香蕉枯萎病拮抗放线菌 1-g-59 的筛选与鉴定
本研究是采集香蕉植株根际土壤,分离并筛选出对
FOC 4 有明显抑制作用的拮抗菌株,测定各拮抗菌
株的发酵液对 FOC 4 菌丝生长和孢子萌发的抑制作
用,筛选一株活性最强的拮抗菌株,旨在通过盆栽
试验研究其对香蕉枯萎病的防治效果,并通过形态
特征、培养特征、生理生化特征、细胞壁化学成分
分析和 16S rDNA 序列及其系统发育分析等研究对该
菌株进行鉴定。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 供试病原菌 香蕉枯萎病病原菌(FOC 4):
尖孢镰刀菌古巴专化型 4 号 生 理 小 种(Fusarium
oxysporium f. sp. cubense 4,FOC4),由本实验室保藏。
供试香蕉苗 :巴西蕉,由中国热带农业科学院
种苗组培中心提供。
1.1.2 样品采集 供分离的土样采自海南临高美台、
南宝蕉园,去除大颗粒石块和植物残渣,备用。
1.1.3 主要培养基 分离放线菌采用高氏一号合成
培养基,为抑制细菌与真菌的生长,倒平板前加入
0.005% 的无菌重铬酸钾。
FOC 4 的培养及平板对峙试验采用 PDA 培养基。
拮抗菌的发酵采用黄豆粉液体培养基(可溶性
淀粉 20 g,酵母粉 5 g,氯化钠 4 g,黄豆粉 15 g,
蛋白胨 2 g,碳酸钙 4 g,pH7.2-7.4,1×105 Pa 灭菌
50 min)。
放线菌的形态学观察采用高氏一号琼脂、酵母
膏麦芽汁琼脂、燕麦片琼脂、无机盐淀粉琼脂、葡
萄糖天冬素琼脂、胨酵母膏铁琼脂、酪氨酸琼脂等
7 种培养基。
1.2 方法
1.2.1 放线菌的分离与筛选
1.2.1.1 土壤放线菌的分离 称取土样 10 g,加入
90 mL 无菌水,于 28℃、200 r/min 的摇床中充分震
荡 30 min,取其上清液用无菌水 10 倍逐级稀释,依
次稀释成 10-2、10-3 和 10-4 浓度,各吸取 100 μL 涂
布于加重铬酸钾的高氏一号培养基平板上,于 28℃
恒温培养箱中倒置培养,适时挑取不同形态的菌落
进行划线,纯化后保存。
1.2.1.2 拮抗放线菌的筛选 采用平板对峙法,在
无菌环境下,将培养 5-6 d 的 FOC 4(直径为 6 mm)
靶标菌接种至 PDA 平板中央,并在距离靶标菌边
缘 2.5 cm 处接种待测放线菌,以不接放线菌,只接
FOC 4 的 PDA 平板作为对照(CK),于 28℃恒温培
养箱中倒置培养 5 d 后,测量各抑菌带的大小,初
筛出对 FOC 4 有明显拮抗效果的菌株,连续接种 5
代进行复筛,最终筛选出拮抗效果最好的菌株进行
下一步试验。
1.2.1.3 拮抗放线菌发酵液对 FOC 4 抑制作用的测
定 拮抗菌发酵滤液的制备 :拮抗菌接种于黄豆粉
液体培养基中,28℃、200 r/min 的摇床中振荡培养
7 d,取发酵液 8 000 r/min 离心 15 min,上清液用微
孔滤膜过滤除菌。
FOC 4 孢子悬浮液的制备 :将 FOC 4 接种于
PDA 固体培养基上,28℃恒温培养箱中倒置培养,
待菌丝铺满平板后,用无菌水配制成 1×106 cfu/mL
孢子悬浮液。
拮 抗 放 线 菌 发 酵 液 对 FOC 4 菌 丝 生 长 的 影
响[11]:在熔融态的 PDA 培养基中加入拮抗菌发酵
滤液,摇匀制成平板。将直径为 6 mm 的 FOC 4 靶
标菌接种至平板中央,于 28℃恒温培养箱中倒置培
养 5 d 后,观察 FOC 4 菌丝的生长情况,并用显微
镜观察各处理的 FOC 4 菌丝形态变化,以纯培养的
FOC 4 菌落边缘菌丝为对照,每处理重复 3 次。
拮抗放线菌发酵液对 FOC 4 孢子萌发的影响 :
将拮抗菌发酵滤液与 FOC 4 孢子悬浮液等体积混合
均匀并置于玻片上,于温度为 28℃,湿度为 80% 的
人工气候箱中光照培养 24 h,每一处理设 5 个重复。
取出玻片在显微镜下观察孢子的萌发情况(以孢子
萌发的芽管长度达到或超过孢子直径长度的一半定
为萌发)[12],并计算各处理的孢子萌发率,以无菌
水处理为对照(CK),以 5 次重复的平均值作为测
定结果。
孢子萌发抑制率(%)=[(对照孢子萌发率 -
处理孢子萌发率)/ 对照孢子萌发率]×100%
1.2.2 拮抗放线菌 1-g-59 对香蕉枯萎病的盆栽效果
测定 试验设 3 个处理 :①处理 1,清水 ;②处理 2,
接种病原菌 + 拮抗放线菌 1-g-59 发酵液 ;③处理 3,
接种病原菌。每处理 15 株香蕉苗,重复 3 次。
拮抗菌发酵液与病原菌孢子悬浮液的制备方法
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2013年第8期126
同 1.2.1.3。
采用蘸根浸菌法接种[13]:用针刺伤香蕉组培苗
的根尖,再将根浸没于 1×106 cfu/mL 的孢子悬浮液
中,30 min 后移栽于盆钵中,并将剩余的病原菌孢
子悬浮液浇入栽有香蕉幼苗的土壤中,接种后置于
室温、自然光照条件下培养,常规的水肥管理。接
种病原菌 10 d 后,处理 2 施用拮抗菌发酵液,每株
灌注 100 mL。
病情分级 :0 级为无症状 ;1 级为整株无变黄叶
片 ;2 级为 1-2 片叶萎蔫 ;3 级为全株 1/3-1/2 叶片
萎蔫 ;4 级为全株 1/2-3/4 叶片萎蔫 ;5 级为全株 3/4
以上叶片萎蔫或死亡。
DSI= ∑(病害的级别 × 该级别的植株数)/ 供
试植株数
相对防治效果(%)=[(对照病情指数- 处理
病情指数)/ 对照病情指数]×100%
1.2.3 拮抗菌株的鉴定
1.2.3.1 形态特征 采用平皿插片法[14],将菌株
1-g-59 接种于高氏一号固体培养基上,28℃培养 14 d,
取插片用台式扫描电镜进行菌株形态观察。
1.2.3.2 培养特征 参照《放线菌的分类和鉴定》[15]
和《链霉菌鉴定手册》[16]中的方法。将菌株 1-g-59
和 Streptomyces lunalinharesii RCQ1071T 分别接种于高
氏一号琼脂、酵母膏麦芽汁琼脂、燕麦片琼脂、无
机盐淀粉琼脂、葡萄糖天冬素琼脂、胨酵母膏铁琼
脂、酪氨酸琼脂等 7 种培养基中,28℃下培养 7-10 d,
观察菌丝体的颜色及可溶性色素情况。
1.2.3.3 细胞壁化学成分分析 采用 Hasegawa 等[17]
薄板层析法对菌株 1-g-59 进行全细胞水解液的氨基
酸和糖型分析。
1.2.3.4 生理生化特征 参照《放线菌的分类和鉴
定》和《链霉菌鉴定手册》中的方法观察菌株 1-g-59
和 Streptomyces lunalinharesii RCQ1071T 的生理生化特
性,进行明胶液化、鼠李糖、L-酪氨酸、木糖、棉子糖、
L-阿拉伯糖、精氨酸、蛋氨酸、淀粉酶水解、脲酶、
H2S 的产生等方面的检测。
1.2.3.5 16S rDNA 序列测定及其系统发育分析 基
因组 DNA 提取参照姜淑梅[18]的方法。根据放线
菌 16S rDNA 的结构特点,PCR 扩增选用通用引物
27 F :5-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3,1492 R :
5-GGTTACCTTGTTACGACTT-3。反应体系 50 μL :
1 μL 模板、1 μL 引物 1492 R 、1 μL 引物 27 F、25
μL PCR mastermix、22 μL ddH2O)。PCR 扩增程序 :
94 ℃ 预 变 性 5 min ;94 ℃ 变 性 1 min,55 ℃ 退 火 1
min,72℃延伸 1.5 min,35 个循环 ;72℃终延伸 10
min,4℃保存。取 50 μL PCR 产物用 1% 的琼脂糖
凝胶进行电泳检测,在紫外灯下观察、并拍照保存。
电泳完成后的凝胶,经拍照保存后,对大小约
为 1 500 bp 的条带进行切胶回收。回收片段装入 2
mL 无菌离心管中,用爱思进生物技术有限公司提
供的 AxyPrep DNA 凝胶回收试剂盒进行回收得到
DNA。回收得到的 DNA 用宝生物工程有限公司提供
的 pMD18-T Vector 进行克隆。将样品送至北京六合
华大基因科技股份有限公司进行测序。
经测序获得拮抗放线菌 1-g-59 的 16S rDNA 序
列,将该序列通过 Blast 程序与 GenBank 中核酸数
据进行比对分析(http ://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.
cgi),采用 BioEdit、Mega5.0 等软件对菌株进行系统
发育分析,采用邻接法(Neighbour-joining,NJ 法)
构建系统发育树。
2 结果
2.1 放线菌的分离与筛选
共分离出 117 株放线菌,采用平板对峙法进行
复筛,最终筛选出对 FOC 4 拮抗效果较强的 5 株放
线菌(表 1)。
表 1 五株放线菌的拮抗效果
编号 抑菌圈直径(cm) 拮抗效果
1-g-59 1.53aA ++++
混 -g2-65B 1.43bB ++++
3-M-03B 1.50aA ++++
混 -g2-65 1.28cC ++++
混 -g2-25A 0.90dD +++
抑菌圈直径 0.1-0.4 cm,拮抗效果记为“+”;0.5-0.7 cm 记为“++”;0.8-1.0
cm 记为“+++”;大于 1.0 cm 记为“++++”。同列数据后不同大、小写字母
分别表示 P<0.01 的极显著差异和 P<0.05 水平上的差异显著性,下同
2.2 5株拮抗放线菌发酵液对FOC 4抑制作用的测定
2.2.1 对 FOC 4 菌 丝 生 长 的 影 响 观 察 培 养 5 d
的 FOC 4 菌丝,发现经不同拮抗菌发酵滤液处理,
FOC 4 菌丝生长均受到不同程度的抑制,FOC 4 直
径均 <1.0 cm,混 -g2-65B 发酵滤液使 FOC 4 菌丝变
2013年第8期 127刘小玉等 :香蕉枯萎病拮抗放线菌 1-g-59 的筛选与鉴定
为紫色,3-M-03B 发酵滤液使带靶标菌的培养基块
变黑,而 1-g-59 发酵液处理的 FOC 4 菌丝几乎消失,
靶标菌的培养基块变为黑色,且培养基块底部有浅
黄色黏性分泌物产生。此外,显微镜观察发现 1-g-59
发酵液处理的 FOC 4 菌丝体畸形、分枝增多、菌丝
破裂、消解 ;而对照 FOC 4 菌丝细长、光滑、均匀。
2.2.2 对 FOC 4 孢子萌发抑制作用的测定 结果表
明,对照组(CK)的 FOC 4 孢子萌发率达 92%,经
拮抗菌发酵液处理的 FOC 4 孢子萌发均受到不同程
度的抑制,混 -g2-25A 发酵液处理的 FOC 4 孢子萌
发率达 88%,抑制率为 4.3% ;混 -g2-65、3-M-03B、
混 -g2-65B 这 3 株拮抗菌发酵液处理的 FOC 4 孢子
萌发率均小于 6.25%,抑制率均大于 93.2% ;而 1-g-
59 发酵液处理的 FOC 4 孢子萌发率为 0,抑制率达
100%。图 1 为对照组(CK)和 1-g-59 发酵液处理
的 FOC 4 孢子萌发情况。
基上培养 5 d 后菌落呈灰白色,单菌落成不规则的
圆形,表面干燥、有皱纹。基内菌丝黄褐色,气生
菌丝灰白色,无可溶性色素。通过台式扫描电镜观察,
发现该菌株气生菌丝发达,非轮生,孢子成直或柔
曲的链,气生菌丝形成孢子链,孢子为圆柱状(图 2)。
A B
A :CK(250×);B :1-g-59 发酵液处理(250×)
图 1 1-g-59 发酵液对 FOC 4 孢子萌发的影响
2.2.3 拮抗放线菌 1-g-59 发酵液对香蕉枯萎病的盆
栽效果测定 移栽 14 d 后,处理 3(只接种病原菌)
的植株出现黄叶,28 d 后处理 3 的植株出现假茎开
裂,45 d 后处理 3 的蕉苗发病严重,有的植株枯死,
病情指数为 4.24 ;处理 1(清水)的植株均健康生
长 ;处理 2(病原菌 + 发酵液)病情指数为 1.49,
防治效果为 64.9%(表 2)。结果表明,拮抗放线菌
1-g-59 发酵液对香蕉枯萎病有一定的防治效果。
表 2 1-g-59 发酵液对香蕉枯萎病的盆栽防治效果
处理 香蕉植株数(株) 病情指数 防治效果(%)
处理 1(清水) 45 0cC -
处理 2(病原菌 + 发酵液) 45 1.49bB 64.9
处理 3(病原菌) 45 4..24aA -
2.2.4 拮抗放线菌 1-g-59 的分类鉴定
2.2.4.1 形态学特征 菌株 1-g-59 在高氏一号培养
图 2 菌株 1-g-59 的孢子链照片(6 400×)
2.2.4.2 培养特征 由表 3 可以看出,菌株 1-g-59
在 7 种培养基中均能生长,但在无机盐淀粉琼脂和
甘油天门冬酰胺琼脂培养基上生长得慢,产孢较少;
在不同培养基上,基内菌丝颜色有黄褐色、灰黄色、
灰色 ;气生菌丝有灰色、灰白色、白色 ;在 7 种培
养基中均不产生可溶性色素。
表 3 菌株 1-g-59 在不同培养基上的生长特征
培养基 生长情况 基内菌丝 气生菌丝 可溶色素
高氏一号培养基 生长快,产孢多 黄褐色 灰白色 -
酵母膏麦芽汁琼脂 生长快,产孢多 黄褐色 灰白色 -
燕麦片琼脂 生长快,产孢多 灰色 灰白色 -
无机盐淀粉琼脂 生长慢,产孢少 灰色 灰色 -
甘油天门冬酰胺琼脂 生长慢,产孢少 黄褐色 灰色 -
胨酵母膏铁琼脂 生长快,产孢多 黄褐色 灰白色 -
酪氨酸琼脂 生长快,产孢多 灰黄色 白色 -
- :表示不产生可溶色素
2.2.4.3 细胞壁化学成分 菌株 1-g-59 全细胞水解
液中含有 L,L-DAP 和甘氨酸,细胞壁属于 I 型,无
特征性糖,糖型 C,进一步验证菌株 1-g-59 为链霉
菌属。
2.2.4.4 生理生化特征 由表 4 可以看出,菌株 1-g-
59 能利用 L-酪氨酸木糖、L-阿拉伯糖、鼠李糖、精
氨酸、蛋氨酸 ;不能利用棉子糖 ;水解淀粉能力弱 ;
明胶液化。菌株 1-g-59 与 Streptomyces lunalinharesii
的生理生化特征基本相同。
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2013年第8期128
表 4 菌株与 Streptomyces lunalinharesii 表型特征的比较
特征 菌株 1-g-59 Streptomyces lunalinharesii
明胶液化 + NR
淀粉酶水解 - NR
脲酶 + +
L-酪氨酸 + +
木糖 + -
L-阿拉伯糖 + +
鼠李糖 + +
棉子糖 - -
精氨酸 + +
蛋氨酸 + +
+ :阳性 ;- :阴性 ;NR :没有记录
2.2.4.5 16S rDNA 序列测定及其系统发育分析 将
菌 株 1-g-59 的 16S rDNA 进 行 PCR 扩 增 得 到 一 条
1 500 bp 左右的条带,经序列测定,其大小为 1 576
bp。将其 DNA 序列与 NCBI 数据库中相应的 DNA
序列进行 BLAST 相似性分析,结果表明,与菌株
1-g-59 的 16S rDNA 同源性较高的均为链霉菌,其
中 与 之 同 源 性 最 高 的 是 Streptomyces lunalinharesii
RCQ1071T,相似性达 99.26%。根据序列同源性从高
到低的原则,挑取 11 株菌株的 16S rDNA 序列,运
用 BionEdit、Mega5.0 软件构建系统发育树(图 3),
菌株 1-g-59 与 Streptomyces lunalinharesii RCQ1071T 处
于同一分支,亲缘关系最近。
Streptomyces albulus ISP 5492TAB024440
Streptomyces noursei NBRC 15452TAB184678
Streptomyces yunnanensis YIM 41004TAF346818
1-g-59
Streptomyces lunalinharesii RCQ1071TDQ094838
Streptomyces albospinus NBRC 13846TAB184527
Streptomyces chattanoogensis DSM 40002TAJ621611
Streptomyces lydicus NBRC 13058TAB184281
Streptomyces albofaciens JCM 4342TAB045880
Streptomyces sioyaensis NRRL B-5408TDQ026654
Streptomyces libani subsp. libani NBRC 13452TAB184414
Streptomyces tubercidicus DSM 40261TAJ621612
95
100
99
95
84
87
98
55
51
0.002
3 讨论
近年来土传病害的防治研究在中国发展很快,
尤其是在水稻、小麦和油菜方面,已有防治稻瘟病、
纹枯病、菌核病等病害的生物农药相继问世[19]。但
香蕉枯萎病的生物防治研究起步较晚,目前还没有
成功的商业化产品。本研究从蕉园的根际土壤中分
离出 117 株放线菌,通过筛选获得 5 株对 FOC 4 具
有较强拮抗效果的放线菌,其中菌株 1-g-59 的拮抗
效果最强,对 FOC 4 的菌丝生长和孢子萌发的抑制
作用最大,其发酵液处理的靶标菌培养基块底部有
浅黄色黏性分泌物产生,这有可能是拮抗菌发酵液
产生的具有抑制 FOC 4 菌丝生长的分泌物,其成分
有待进一步研究。菌株 1-g-59 发酵液能使 FOC 4 菌
丝体畸形、分枝增多、菌丝破裂、消解,还能有效
地抑制 FOC 4 孢子萌发,这与文献报道[20,21]生防
菌的作用机制一致 ;且其发酵液对香蕉枯萎病的盆
图 3 依据 16S rDNA 序列构建菌株 1-g-59 与链霉菌属相关种的系统发育树
栽防治效果达 64.9%,说明该菌株可能产生对 FOC
4 有拮抗效果的活性物质,具有较好的开发价值。
菌株 1-g-59 具有典型的链霉菌特征,16S rDNA
序列分析表明菌株1-g-59 与 Streptomyces lunalinharesii
RCQ1071T 序列相似性达 99.26%,在系统发育树上
处于同一分支,亲缘关系最近,且经研究发现二者
的形态特征、培养特征、生理生化特征基本相同[22],
因此鉴定菌株 1-g-59 为 Streptomyces lunalinharesii。
本研究为该菌株今后的应用、香蕉枯萎病的生
防菌制剂的开发奠定了基础,该菌株的抑菌活性成
分以及其抑菌机理还有待进一步的深入研究。
4 结论
通过分离和筛选获得 5 株对 FOC 4 具有拮抗作
用的放线菌,其中以菌株 1-g-59 活性最强。菌株 1-g-
59 发酵液能使 FOC 4 菌丝全部消失,且其对 FOC 4
孢子萌发的抑制率达 100%。菌株 1-g-59 发酵液对香
2013年第8期 129刘小玉等 :香蕉枯萎病拮抗放线菌 1-g-59 的筛选与鉴定
蕉枯萎病的盆栽防治效果达 64.9%。鉴定菌株 1-g-59
为 Streptomyces lunalinharesii。
参 考 文 献
[1] 胡莉莉 , 窦美安 , 谢江辉 , 等 . 香蕉枯萎病抗病性研究进展[J].
广西热带农业 , 2006, 102(1):16-18.
[2] 莫贱友 , 郭堂勋 , 李华 . 广西香蕉枯萎病的发生与病原菌鉴
定[J]. 广西农业科学 , 2008, 39(4):481-484.
[3] 陈琼武 . 乐东县香蕉枯萎病发生状况及防治措施[J]. 安徽农
学通报 , 2008, 14(12):73.
[4] 麦明晓 , 黄惠琴 , 鲍时翔 . 香蕉镰刀菌枯萎病 4 号生理小种研
究进展[J]. 中国生物防治 , 2009, 25(增 1):71-75.
[5] 舒肇苏 . 台湾香蕉病害的防治[J]. 柑橘与亚热带果树信息 ,
2000, 16(20):43-44 .
[6] 林兰稳 , 奚伟鹏 , 黄赛花 . 香蕉镰刀菌枯萎病防治药剂的筛
选[J]. 生态环境 , 2003, 12(2):182-183.
[7] Getha K, Vikineswary S. Antagonistic effects of Streptomyces viola-
ceusniger strain G10 on Fusarium oxysporum f. sp. cubense race 4
[J]. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 2002, 28
(6):303-306.
[8] Thandavelu R, Paaniswami A, Doraiswamy S, et al. The effect of
Pseudomonas fluorescens and Fusarium oxyaporum f. sp. Cubense
on induction of defense enzymes and phenolics in banana[J].
Biologia Plantarum, 2003, 46(1):107-110.
[9] Chen CY, Wang YH. Enhancement of the ant ifungal activity of Bac-
illus subtilis F29-3 by the chit inase encoded by Bacillus circulans
chi A gene[J]. Canadian Journal of Microbiology, 2004, 51(6):
451-455.
[10] Perze VL, Batlle A, Fonseca J, et al. Fusarium oxysporum f. sp. cube-
nse in Cuba[A]. Reaction of cultivars and bio-control method 2nd
international symposium on fusarium wilt on banana[C]. Salva-
dor de Bahia. Brazil, 2003: 22-26.
[11] 孙建波 , 王宇光 , 赵平娟 , 等 . 香蕉枯萎病生防细菌的筛选、
鉴定及其抑菌作用[J]. 中国生物防治 , 2010, 26(3):347-
351 .
[12] 方中达 . 植病研究方法[M]. 北京 :中国农业出版社 , 1996 :
151-154.
[13] 何欣 , 黄启为 , 杨兴明 , 等 . 香蕉枯萎病致病菌筛选及致病菌
浓度对香蕉枯萎病的影响[J]. 中国农业科学 , 2010, 43(18):
3809-3816.
[14] 沈萍 , 范秀容 , 李光武 . 微生物学实验[M]. 北京 :高等教育
出版社 , 2007 :72-73.
[15] 阎逊初 . 放线菌的分类和鉴定[M]. 北京 :科学出版社 ,
1992 :296-1048.
[16] 中 国 科 学 院 微 生 物 研 究 所 放 线 菌 分 类 组 . 链 霉 菌 鉴 定 手
册[M]. 北京 :科学出版社 , 1975 :13-15.
[17] Hasegawa T, Takizawa M, Tanida S. A rapid analysis for chemical
grouping of aerobic actinomycetes[J]. Journal of General Applied
Microbiology, 1983, 29(4):319-322.
[18] 姜淑梅 , 张龙 , 戴世鲲 , 等 . 一种简单、有效的适于 PCR 操作
的放线菌 DNA 提取方法[J]. 生物技术 , 2007, 17(1):39-
41.
[19] Rodrigo F, Rosalie R, Andrew M, et al. Streptomyces lunalinharesii
sp. nov., a chitinolytic streptomycete isolated from cerrado soil in
Brazil[J]. International Journal of Systematic and Evolutionary
Microbiology, 2008, 58 :2774-2778.
[20] 孔建 , 赵白鸽 , 王文夕 . 枯草芽孢杆菌抗菌物质对镰刀菌抑制
的研究[J]. 植物病理学报 , 1998, 28(4):327-340.
[21] 秦涵淳 , 杨腊英 , 李松伟 , 等 . 香蕉镰刀菌枯萎病拮抗放线菌
的分离筛选及其抑制效果的初步评价[J]. 中国生物防治 ,
2010, 26(2):174-180.
[22] 刘邮洲 , 陈志谊 , 刘永锋 , 等 . 南京地区蔬菜枯萎病菌拮抗细
菌的筛选与评价[J]. 江苏农业学报 , 2004, 20(1):18-22.
(责任编辑 马鑫)