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Analysis of genetic diversity in wild populations of Phellodendron amurense Rupr. in Jilin Province using inter-simple sequence repeat

吉林省天然黄檗种群遗传多样性ISSR分析



全 文 :第 36 卷第 13 期
2016年 7月
生 态 学 报
ACTA ECOLOGICA SINICA
Vol.36,No.13
Jul.,2016
http: / / www.ecologica.cn
基金项目:国家“十二五”科技支撑计划项目资助(2012BAD22B04)
收稿日期:2014⁃11⁃14;     网络出版日期:2015⁃10⁃30
∗通讯作者 Corresponding author.E⁃mail: lkylfm@ 126.com
DOI: 10.5846 / stxb201411142255
李绍臣, 李凤明, 张立民, 任军, 林玉梅.吉林省天然黄檗种群遗传多样性 ISSR分析.生态学报,2016,36(13):4006⁃4012.
Li S C, Li F M, Zhang L M, Ren J, Lin Y M.Analysis of genetic diversity in wild populations of Phellodendron amurense Rupr. in Jilin Province using
inter⁃simple sequence repeat.Acta Ecologica Sinica,2016,36(13):4006⁃4012.
吉林省天然黄檗种群遗传多样性 ISSR分析
李绍臣, 李凤明∗, 张立民, 任  军, 林玉梅
吉林省林业科学研究院, 长春  130033
摘要:黄檗(Phellodendron amurense Rupr.)是吉林省长白山林区珍贵用材树种和主要建群树种,由于过度采伐和利用,其资源数
量和质量明显下降。 依据其资源自然分布现状,选择了 10个具有代表性的天然黄檗分布种群,应用 ISSR标记技术对其进行了
遗传多样性的分析,以期为黄檗种群资源的收集、保存和保护提供依据和支持。 研究结果表明:从 60 条 ISSR 引物中筛选出扩
增 99条带,多态性条带数为 54条,多态性比率为 54.5%。 10个种群的多态位点比率分布在 18.52%—37.96%范围内,其中珲春
种群的多态位点比率最高,为 37.96%,吉林省露水河种群的多态位点比率最低为 18.52%,种群的平均多态位点百分比为
26.02%。 利用 Shannon 指数与 Nei 指数可较好的估算黄檗种群间的遗传变异,Shannon 指数的变化范围在 0.1103—0.1949 之
间,Shannon指数总体平均值为 0.1522。 Nei指数的变化范围在 0.0759—0.1327 之间, 平均为 0.1043。 根据 Nei 法计算黄檗 10
个种群遗传多样性是 Dst= 0.1586,分化指数 Gst= 0.6183,基因流系数 Nm为 0.3086,总的遗传变异中有 61.83%的变异存在于群
体间,群体内的变异只占 38.17%,种群间存在明显分化。 黄檗的 10个种群可分为两个大群,即:①松江河、露水河、湾沟、集安、
辉南②白石山、汪清、安图、延吉、珲春。 根据黄檗的遗传结构提出了保护措施:适度引导营造药用或用材林;开展本地黄檗资源
的本底调查并进行资源汇总(包括林班、小班,每株的树龄、树高、胸径、枝下高和冠幅等数据),筛选本地的优势群体进行原地
保存;迁地保护策略中要增加样本的数量,白山地区迁地保护的种源应选择松江河、露水河种源,通化地区迁地保护的种源应选
择集安种源,而延边地区应选择白石山和汪清种源;人工促进黄檗的天然林更新改造,逐步恢复黄檗种群规模,并且进行人工更
新的资源登记。
关键词:黄檗;遗传多样性;ISSR
Analysis of genetic diversity in wild populations of Phellodendron amurense Rupr.
in Jilin Province using inter⁃simple sequence repeat
LI Shaochen, LI Fengming∗, ZHANG Limin, REN Jun, LIN Yumei
Jilin Academy of Forestry Science, Changchun 130033, China
Abstract: Phellodendron amurense Rupr. is a valuable timber species and a key species in the plant communities of
Changbai Mountain in Jilin province; however, due to over-harvesting and utilization, its quantity and quality have clearly
declined.. Therefore, based on its distribution on Changbai Mountain in Jilin province, 10 representative populations of P.
amurense were selected, and their genetic diversity was investigated using the Inter⁃Simple Sequence Repeat ( ISSR)
technique. Using the ISSR data, the Nei and Shannon indices were determined to estimate the genetic variation of the 10
populations. This study aims to provide foundational data for preservation and protection of P. amurense. Using 60 ISSR
primers to screen the 10 representative populations of P. amurense, 99 bands were amplified; 54 bands were polymorphic
(54.5%). The polymorphism of the 10 populations ranged from 18.52% to 37.96%; the Hunchun population showed the
greatest polymorphism, at 37.96%, the Lushuihe population showed the least, at 18.52%, and the average was 26.02%.
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The Shannon index ranged from 0.1103 to 0.1949, with an average of 0.1522. The Nei index ranged from 0.0759 to 0.1327,
with an average of 0.1043. According to Nei′s method calculation of Phellodendron amurense 10 population genetic diversity
is the DST = 0.1586, the differentiation index (GST = 0.6183, gene flow coefficient nm is 0.3086... The total genetic
variation of 61.83% of the variation existed among populations, and the variation within population was only 38.17%..A
cluster map of the unweighted pair⁃group method with arithmetic means ( UPGMA) relationships, using the ISSRs as
molecular markers, was constructed. The 10 populations could be divided into two groups: 1) Songjianghe, Lushuihe,
Wangou, Ji⁃an, and Huinan provinces, and 2) Baishi Shan, Wangqing, Antu, Yanji, and Hunchun provinces. Based on
the genetic structure of P. amurense, protection measures were put forward, including guidance to create a medicinal or
timber forestry. The local plant resources background investigation and summary of resources ( including compartments, sub⁃
compartments, each plant′s age, height, diameter, height under crown and crown). To select the local dominant groups to
carry on in situ conservation. Ex situ conservation strategies should be used to increase the number of individuals; in the
Baishan area, the Songjianghe, Lushuihe provinces should be selected, in the Tonghua Area,the Ji⁃an provinces should be
selected,in the Yanbian area, the Wangqing and Baishi Shan provinces should be selected. Artificial propagation of P.
amurense should be used to promote the gradual recovery of populations, and resource manual registration should be
established.
Key Words: P. amurense; genetic diversity; ISSRs (Inter⁃Simple Sequence Repeats)
黄檗(黄柏,黄菠萝 Phellodendron amurense Rupr.),属芸香科黄檗属落叶阔叶乔木,是东北地区地带性植
被顶级群落———阔叶红松林的主要伴生树种、主要的用材树种和药用植物[1]。 由于过度的利用,目前已成为
国家级重点保护植物。 黄檗在吉林省主要分布在东部山区,包括延边、白山、通化、吉林等,目前对黄檗的研究
多集中于育种造林[2⁃4]、植物化学[5⁃6]等方面, 有关遗传多样性方面的工作较少[7⁃8],闫志峰仅对吉林省的 3 个
种群进行了 AFLP 分析。 迄今对其遗传多样性和遗传结构知之甚少, 以至于无法提出有针对性的保护策略。
ISSR(Inter⁃Simple Sequence Repeat)技术[9⁃10]是由 Zietkiewicz等于 1994年创建的一种简单序列重复区间
扩增多态性分子标记,近年来,已被广泛应用于遗传多样性和群体遗传结构的研究[11⁃14]。 本研究采用先进的
ISSR技术,运用群体遗传学原理,从 DNA水平对黄檗天然种群的遗传多样性进行研究,揭示不同地区黄檗天
然种群的遗传关系,探讨黄檗天然种群的遗传分化机制,为黄檗遗传资源的有效保护和合理利用提供理论
依据。
1  材料与方法
1.1  材料
黄檗在吉林省主要分布在东部山区,根据地理位置和吉林省森林资源调查文献以及种群分布的具体情况
确定了 10个有代表性的天然种群,采样时间是 2013年 3月在各采样点进行采样,每个地点采 25 个样本。 为
了使样本具有代表性,各个样本间相互距离要在 100m以上,林分选择要求立地较好的近熟林分,采无病虫害
的枝条拿回实验室水培,待叶子长出后采摘叶片提取 DNA。 10个天然种群的基本情况见表 1。
1.2  总 DNA的提取
利用 Universal genomic DNA extraction kit(Ver.3.0,TaKaRa, 大连)提取黄檗叶片总 DNA。
1.3  ISSR引物筛选
根据 University of British Columbia(UBC)提供的 ISSR引物序列,在上海生工公司合成 60个 2核苷酸重复
的引物。 每个种群随机选择 1个 DNA模板进行扩增筛选,从 60 个 ISSR 引物中筛选出 10 个能产生多态、清
晰且可重复条带的引物,用于全部 10个种群样本分析。 各引物序号及序列见表 2。
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表 1  10个种群黄檗的地理气候因子
Table 1  Factors of geographical and climatic of 10 Provenance of P. amurense Rupr.
种群
Provenance
北纬
North latitude
东经
Longitude
年均温 / ℃
Average
temperature
≥10℃年积
温 / (℃ / a)
Accumulated
年降水量 /
(mm / a)
Precipitation
相对湿度 / %
Relative humidity
日照时数 / (h·d)
Sunshine hours
安图 42.32 128.15 2.20 2592.3 669.70 73 2374.60
白石山 43.22 128.12 2.60 2184.7 621.40 70 2477.30
珲春 42.54 130.17 5.60 2585.2 606.80 67 2322.40
集安 42.10 129.00 0.40 2690.4 630.80 80 2375.20
汪清 43.20 129.46 3.90 2456.0 547.20 67 2357.50
松江河 42.27 126.30 0.12 2255.3 491.37 69 2517.88
露水河 42.80 131.00 2.80 2127.4 566.00 70 2422.80
延吉 42.53 129.28 5.00 2678.4 504.00 66 2535.70
湾沟 42.90 124.00 6.10 2879.1 929.70 69 2393.90
辉南 42.39 126.04 4.10 2729.8 686.00 74 2550.00
表 2  ISSR引物序号与序列
Table 2  Primer sequence number and sequence
引物
Primer
引物序列(5′⁃3′)
Sequence
扩增带数
No.of amplified bands
多态性条带数
No.of polymorphic bangs
多态性比率 / %
Percentage of polymorphic bands
834 (AG)8YT 11 6 54.5
836 (AG)8YA 9 5 55.6
815 (CT)8G 12 7 58.3
835 (AG)8YC 8 4 50.0
814 (CT)8A 9 5 55.6
812 (GA)8A 7 4 57.1
818 (CA)8G 12 7 58.3
845 (AT)8T 9 5 55.6
813 (CT)8T 10 6 60.0
844 (CT)8RG 12 5 41.7
总计 99 54
平均 9.9 5.4 54.5
    R=A / T,Y=G / C
1.4  ISSR⁃PCR扩增及扩增产物的电泳检测
用筛选出的 10个引物,对 10个种群的 250个 DNA样本进行 ISSR⁃PCR扩增,扩增产物用 1×TAE电泳缓
冲液(pH 8.0)在 1.0%的琼脂糖凝胶中(含 EB0.5μg / ml)电泳 2h,电压为 5V / cm,以分离扩增产物。 DL2000
(宝生物公司生产)作为分子量标准,电泳结果用 Gene Genius公司的 Bio Imaging System凝胶成像系统照相,
记录结果。
1.5  ISSR数据的统计分析
ISSR⁃PCR产物经电泳分离后,对扩增结果进行记录。 具体的谱带记录方法目前无明确的标准,本研究参
考邹喻平等的方法[15],以 Marker产生带亮度为标准,亮的记为 1,弱的、无带的记为 0;建立 0 / 1数据矩阵。 为
尽量减少误差,谱带结果的记录始终由试验者一人进行。 得到的 ISSR数据矩阵用于以下分析:1)将 ISSR 标
记视为表征性状, 应用 POPGENE软件(Version 1.3.1)计算多态位点百分率(PPL)和 Shannon 信息多样性指
数(I);2)将 ISSR标记视作同一基因座位上的 2 个等位基因,基于 Hardy.Weinberg 平衡,删除基因频率小于
3 / N(N为样本数,N= 192)的条带后[16],分别计算 Nei′s基因多样度指数(HE)、种群总基因多样度(H′)、种群
内基因多样度(Hs)、基因分化系数(Gst)和 Nei′s遗传距离(D);3)基于 POPGENE软件对种群间 Nei′s(1978)
无偏遗传距离(unbiased genetic distance)的估算,用 Mega2(molecular evolutionary genetics analysis)软件中的
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UPGMA聚类法以遗传距离对种群进行聚类分析。 4)用 AMOVA.PREP 软件计算个体间欧氏距离所得的输出
文件(距离文件、组文件、群体文件)作为输入文件,用 WINAMOVA软件进行分子方差分析,并以种群为单位,
采用 Mantel检验分析 10个种群间遗传距离和地理距离的相关性。
2  结果与分析
2.1  黄檗地理种群的遗传多样性
2.1.1  黄檗扩增产物的多态性
从 60条 ISSR引物中筛选出扩增条带清晰、重复性高的引物 10 条(表 2)。 ISSR 扩增的条带在 500bp—
2500bp之间,图 1为 813 扩增结果。 10 条引物共扩增出 99 条带,多态性条带数为 54 条,多态性比率为
54.5%。
图 1  引物 813对部分材料进行扩增
Fig.1  813 primers for amplification part material
M为标准分子量 DL2000M is a standard molecular weight DL2000;1—20为部分个体 1—20 for part of the individual
由表 3可以看出,10个种群的多态位点比率分布在 18.52%—37.96%范围内,其中珲春种群的多态位点
比率最高,为 34.26%,吉林省露水河种群的多态位点比率最低为 18.52%,种群的平均多态位点百分比为
26.02%。 可见,种群间的多态位点百分比差距较大,珲春种群的多态位点百分比是露水河种群的 2 倍左右,
说明珲春种群遗传基础较宽,具有较好的适应性。
表 3  黄檗 10个种群的多态性及遗传差异统计
Table 3  The polymorphic loci and genetic diversity in 10 provenance of P. amurense Rupr.
种群
Provenance
样本个数
Number of Sample
多态位点比率
percent of
polymaorphic loci
有效等位基因数
Ne∗
Shannon指数
I∗
Nei指数
H∗
安图 25 29.63 1.2038 0.1685 0.1148
白石山 25 24.07 1.1646 0.1373 0.0934
辉南 25 27.78 1.2043 0.1650 0.1136
露水河 25 18.52 1.1357 0.1103 0.0759
湾沟 25 26.85 1.2282 0.1726 0.1215
集安 25 20.37 1.1431 0.1177 0.0805
汪清 25 25.93 1.1793 0.1487 0.1014
延吉 25 26.85 1.1871 0.1558 0.1063
珲春 25 34.26 1.2350 0.1949 0.1327
松江河 25 25.93 1.1831 0.1508 0.1031
平均 25 26.02 1.1864 0.1522 0.1043
    Ne:有效等位基因数 Effective number of alleles [Kimura and Crow (1964)];I:Shannon指数 Shannon′s Information index [Lewontin (1972)];H:
Nei指数 Nei′s (1973) gene diversity
2.1.2  黄檗种群的 Shannon信息指数分析和 Nei遗传多样性指数分析
利用 PopGen 1.32软件对黄檗种群进行遗传多样性分析,获得了黄檗总体的 Shannon 信息指数以及每个
种群的 Shannon信息指数。
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由表 3看出,黄檗总体的 Shannon指数为 0.1949,各个种群的 Shannon多态性信息指数中,珲春种群最大,
达到 0.1949,露水河种群最小,为 0.1103。 Shannon指数总体平均值为 0.1522。
所研究的黄檗每个种群的 Nei指数分布在 0.1327—0.0759范围内,平均为 0.1043。 所有种群根据 Nei指
数排列的顺序与根据 Shannon指数排列的顺序基本一致。 与按多态位点百分比排列的顺序有些差距,这主要
是由于多态位点百分比居中的几个种群间百分比差距不大的原因。
2.1.3  黄檗各种群间的遗传分化分析
根据总的遗传多样性(Ht)和群体内遗传多样性(Hs)计算不同群体间的遗传多样性(Dst,Dst =Ht-Hs)和
遗传分化水平(Gst,Gst=Dst / Ht)。 10个黄檗种群间的遗传多样性是 Dst = 0.1586,分化指数 Gst = 0.6183,基因
流系数 Nm为 0.3086(表 4)。
表 4  不同种群间的遗传分化分析
Table 4  Analysis of genetic differentiation among provenances
所有种群
All provenances
Nei总基因多样性
Ht∗
Nei′s种群内
基因多样性
Hs∗
Nei′s种群间
基因多样性
Dst∗
Nei′s基因
分化系数
Gst∗
基因流
Nm∗
平均数 Mean 0.2565 0.0979 0.1586 0.6183 0.3086
标准差 Standard deviation 0.0270 0.0108
    Ht:Nei总基因多样性 total gene diversity;Hs:Nei′s 种群内基因多样性 gene diversity within provenances;Dst:Nei′s 种群间基因多样性 gene
diversity among provenances; Gst:Nei′s基因分化系数 the coefficient of gene differentiation;Nm:基因流 estimate of gene flow from Gst
由结果可见,总的遗传变异中有 61.83%的变异存在于群体间,群体内的变异只占 38.17%,种群间的遗传
变异占相当大的比重;基因流系数也远小于 1,说明种群间存在明显的分化,因此黄檗种群的利用潜力很大。
2.2  黄檗种群的聚类分析
为了进一步分析群体之间的遗传分化程度,计算了 Nei′s的遗传距离(D)。 遗传距离常用来衡量群体间
的亲缘关系,遗传距离越大,说明群体间的亲缘关系越远;反之,遗传距离越小,群体间的亲缘关系越近。
图 2  黄檗种群间遗传关系 UPGMA聚类图
  Fig. 2   The genetic relationship between Huang Bo provenance
UPGMA clustering figure
根据 Nei′s遗传距离利用 MEGA 软件构建的群体
遗传关系 UPGMA 聚类图见图 2。 聚类图中将黄檗的
10个种群分为两个大群,即:①松江河、露水河、湾沟、
集安、辉南②白石山、汪清、安图、延吉、珲春。 其中,在
群①中,又可分为 2个小群,其中松江河、露水河和集安
种群间的遗传距离较小,较早的聚为一支,湾沟和辉南
种群间的遗传距离较小,较早的聚为一支;在群②中,又
可分为 2个小群,其中延吉、安图和珲春种群间的遗传
距离较小,较早的聚为一支,白石山和汪清种群间的遗
传距离较小,较早的聚为一支。
3  讨论
3.1  黄檗遗传多样性的 ISSR分析
遗传多样性是指存在于生物个体内、单个物种内以及物种之间的基因多样性。 一个物种的遗传多样性说
明了该物种在特定的环境因子作用下,其基因的丰富程度,而这是物种适应和进化的遗传基础。 本文所检测
到的 108条多态位点的平均有效等位基因数目为 1.1864,Shannon指数为 0.1522,Nei指数为 0.1043,低于闫志
峰的 1.2487,0.1524,0.2374[7]。 遗传参数略低的原因是本文所用的种群都是来源于吉林省境内。 单就这 3个
指标来说,黄檗的遗传多样度是中等的。 但从多态位点百分率来看, 10 个种群的多态位点比率分布在
18.52%—37.96%范围内,其中珲春种群的多态位点比率最高,为 34.26%,吉林省露水河种群的多态位点比率
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最低为 18.52%,种群的平均多态位点百分比为 26.90%。 可见,种群内的多态位点比率相对总的多态位点比
率小很多,但种群间的多态位点百分比差距较大,珲春种群的多态位点百分比是露水河种群的 2倍左右,可以
据此选择环境适应性强的种群。 遗传变异在物种或是群体的分布形式及其时间上是以非随机方式变化的。
遗传变异受突变、基因流、选择和遗传漂变的共同作用,同时还和物种的进化史和生物学特性有关[17⁃18]。 本
试验利用多态性位点分析来度量遗传变异水平的高低,而用 Nei 法求出基因多样性,反映种群的多态性;利用
Nei指数来估测实验获得的 shomnon 指数的变化范围来估测黄檗种群间及种群内的遗传分化。 Nei 指数
(H∗)和 Shannon指数( I∗)估算所得的 10个黄檗种群的遗传变异结果基本是一致的,数据都表明在这 10 个
种群中,遗传变异最高的是珲春种群,其次是湾沟种群,遗传变异最低的是露水河种群。 遗传变异最高和最低
的种群地理距离很远,遗传距离也较远。 Nei基因分化系数为 61.83%,Nei种群间基因多样性为 15.86%,说明
黄檗种群遗传差异较大,具有丰富的遗传基础。 在本文中,应用 ISSR 分子标记技术,通过研究黄檗种群之间
的遗传距离和聚类树形图,根据 Nei′s 遗传距离利用 MEGA 软件构建的群体遗传关系 UPGMA 聚类图。 在
0.20的遗传距离上将黄檗的 10个种群分为两个大群,地理种群近的都很 好的聚在了一起,种群间遗传距离越
小,说明这几个种群在遗传组成上越相似,亲缘较近。
3.2  黄檗种群的保护策略
黄檗为名贵中药材和优质木材,其应用范围较广。 黄檗的优势群体主要分布在河谷两侧的含腐殖质丰富
的中性或微酸性冲积土,因此,其分布区较为狭窄,加之长期的认为干扰,造成生境的间隔化和种群数量变小,
相互隔离的小种群使黄檗的遗传基础越来越窄, 而且本研究也证实了不同种群间的亲缘关系较近。 根据黄
檗的生存现状及遗传结构特点,提出保护策略:(1)结合禁止采伐的同时,应加强宣传教育力度, 严禁盗伐黄
檗林木的行为,此外,可以适度引导营造药用或用材林,满足其供应和需求。 (2)开展本地黄檗资源的本底调
查并进行资源汇总(包括林班、小班号,每株的树高、胸径、枝下高和冠幅等数据),筛选本地的优势群体进行
原地保存,既重视保护黄檗的高水平遗传多样性种群, 又兼顾低水平地区稀有基因的存在,保护黄檗种群的
完整性。 (3)加强迁地保护,在迁地收集时应结合自然林和人工林的特殊群落特征,既保护其资源,又能丰富
其遗传多样性,同时建立种质资源收集圃, 根据遗传结构进行合理取样,丰富现有种质资源。 在迁地保护策
略中要增加样本的数量,而且吉林省白山和通化地区迁地保护的种源应选择松江河、露水河和集安种源,而延
边地区应选择白石山和汪清种源。 (4)为防止该物种的遗传退化, 应积极创造适宜条件促进黄檗种子的原地
萌发, 人工促进天然更新,逐步恢复黄檗种群规模,并且进行人工更新的资源登记。
参考文献(References):
[ 1 ]  任宪威. 树木学. 北京: 中国林业出版社, 1997: 437⁃438.
[ 2 ]   沙广义, 兰士波, 苏明炎, 李朝毅. 黄菠萝母树林改建技术及经营效果分析. 林业科技开发, 2007, 21(4): 54⁃57.
[ 3 ]   鲁长虎, 常家传, 许青. 黄檗的更新特点及食果实鸟类对其种子的传播. 生态学杂志, 2004, 23(1): 24⁃29.
[ 4 ]   刘军. 黄檗药用林栽培技术研究. 吉林林业科技, 2007, 36(1): 45⁃47.
[ 5 ]   李霞, 王洋, 阎秀峰. 光强对黄檗幼苗三种生物碱含量的影响. 生态学报, 2009, 29(4): 1655⁃1660.
[ 6 ]   张煊, 崔征, 周海燕, 董娥. 高效液相色谱法测定关黄柏不同采收期及黄檗不同部位的小檗碱、巴马汀含量. 沈阳药科大学学报, 2003,
20(3): 194⁃197.
[ 7 ]   闫志峰, 张本刚, 张昭, 于俊林. 珍稀濒危药用植物黄檗野生种群遗传多样性的 AFLP 分析. 生物多样性, 2006, 14(6): 488⁃497.
[ 8 ]   闫志峰, 张本刚, 张昭. 迁地保护黄檗群体的遗传多样性评价. 中国中药杂志, 2008, 33(10): 1121⁃1125.
[ 9 ]   Ewa Zietkiewicz, Antoni Rafalski, Damian Labuda. Genome fingerprinting by simple sequence repeat (SSR)⁃anchored polymerase chain reaction
amplification. Genomics, 1994, 20(2): 176⁃183.
[10]   Wolfe A D, Liston A. Contributions of PCR⁃based methods to plant systematics and evolutionary biology / / Soltis D E, Soltis P S, Doyle J J, eds.
Molecular Systematics of Plants II: DNA Sequencing. New York: Kluwer Academic Publishers, 1998: 43⁃86.
[11]   Harris S A. RAPDs in systematics———a useful methodology? / / Hollingsworth P M, Bateman R M, Gornall R J, eds. Molecular Systematics and
1104  13期       李绍臣  等:吉林省天然黄檗种群遗传多样性 ISSR分析  
http: / / www.ecologica.cn
Plant Evolution. London: Taylor and Francis, 1999: 221⁃228.
[12]   Tsumura Y, Ohba K, Strauss S H. Diversity and inheritance of inter⁃simple sequence repeat polymorphisms in Douglas⁃fir (Pseudotsuga menziesii)
and sugi (Cryptomeria japonica) . Theoretical and Applied Genetics, 1996, 92(1): 40⁃45.
[13]   Martins M, Tenreiro R, Oliveira M M. Genetic relatedness of Portuguese almond cultivars assessed by RAPD and ISSR markers. Plant Cell
Reports, 2003, 22(1): 71⁃78.
[14]   Panda S, Martin J, Aguinagalde I. Chloroplast and nuclear DNA studies in a few members of the Brassica oleracea L. group using PCR⁃RFLP and
ISSB⁃PCR markers: a population genetic analysis. Theoretical and Applied Genetics, 2003, 106(6): 1122⁃1128.
[15]   邹喻苹, 葛颂, 王晓东. 系统与进化植物学中的分子标记. 北京: 科学出版社, 2001.
[16]   Lynch M,Miligan B G. Analysis of population genetic structure with RAPD markers.Molecular Ecology,1994,3:91⁃99.
[17]   张杰, 吴迪, 汪春蕾, 屈红军, 邹学忠, 杨传平. 应用 ISSR⁃PCR分析蒙古栎种群的遗传多样性. 生物多样性, 2007, 15(3): 292⁃299.
[18]   祁建民, 周东新, 吴为人, 林荔辉, 吴建梅, 方平平. 用 ISSR标记检测黄麻野生种与栽培种遗传多样性. 应用生态学报, 2003, 14(9):
1473⁃1477.
2104   生  态  学  报      36卷