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ｄｏｉ：１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１６７２－３６７８．２０１２．０１．０１０
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ｍｕｌｔｉｍｅｒｉｃｐｒｏｔｅｉｎｓｏｎｓｏｌｉｄｌｉｑｕｉｄｉｎｔｅｒｆａｃｅ
ＤＵＸｉａｏｎａｎ１，２，ＬＩＹａｎ１，ＳＵＮＬｉｊｉｎｇ１，ＺＨＡＮＧＹａｎ１，ＭＡＧｕａｎｇｈｕｉ１，ＳＵＺｈｉｇｕｏ１，ＧＡＯＦｅｉ１
（１．ＴｈｅＮａｔｉｏｎａｌＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＢｉｏｃｈｅｍｉｃａｌＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，ＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＰｒｏｃｅｓｓＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，
ＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓ，Ｂｅｉｊｉｎｇ１００１９０，Ｃｈｉｎａ；
２．ＴｈｅＧｒａｄｕａｔｅＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＣｈｉｎｅｓｅＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓ，Ｂｅｉｊｉｎｇ１０００４９，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｕｓｉｎｇｔｗｏｍｕｌｔｉｍｅｒｉｃｐｒｏｔｅｉｎｓ，ｉ．ｅ．，ｈｅｍｏｇｌｏｂｉｎａｎｄｈｅｐａｔｉｔｉｓＢｓｕｒｆａｃｅａｎｔｉｇｅｎ（ＨＢｓＡｇ），ａｓ
ｍｏｄｅｌｐｒｏｔｅｉｎｓ，ｔｈｅａｄｓｏｒｐｔｉｏｎｂｅｈａｖｉｏｒｓｏｎｓｏｌｉｄｌｉｑｕｉｄｉｎｔｅｒｆａｃｅｗｅｒｅａｎａｌｙｚｅｄｂｙｄｕａｌｐｏｌａｒｉｚａｔｉｏｎｉｎｔｅｒ
ｆｅｒｏｍｅｔｒｙ（ＤＰＩ）ａｎｄａｔｏｍｉｃｆｏｒｃｅｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ．Ｉｔｗａｓｓｈｏｗｎｔｈａｔｔｈｅａｖｅｒａｇｅｔｈｉｃｋｎｅｓｓｏｆｈｅｍｏｇｌｏｂｉｎａｔ
ｔａｃｈｅｄｔｏｕｎｍｏｄｉｆｉｅｄＤＰＩｓｅｎｓｏｒｃｈｉｐｗａｓ３５４ｎｍａｎｄｔｈｅｄｉａｍｅｔｅｒｓｏｆｐｒｏｔｅｉｎｐａｒｔｉｃｌｅｓｗｅｒｅ６０ｎｍｔｏ
１５０ｎｍａｔ１０８ｍｇ／ｍＬ，ａｎｄｉｔｗａｓｆａｒｌａｒｇｅｒｔｈａｎｔｈｅｓｉｚｅｏｆｓｉｎｇｌｅｈｅｍｏｇｌｏｂｉｎｍｏｌｅｃｕｌａｒ，ｔｈｕｓｉｎｄｉｃａ
ｔｉｎｇｔｈａｔｈｅｍｏｇｌｏｂｉｎｗａｓａｇｇｌｏｍｅｒａｔｅｄｏｎＳｉ—ＯＨｓｕｒｆａｃｅ．Ｕｎｄｅｒｔｈｅｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｏｆ０６７ｍｇ／ｍＬ，ｔｈｅ
ｌａｙｅｒｔｈｉｃｋｎｅｓｓｅｓｏｆａｄｓｏｒｂｅｄＨＢｓＡｇｗａｓ１０４ｎｍａｎｄ２３６９ｎｍｏｎｕｎｍｏｄｉｆｉｅｄｓｕｒｆａｃｅａｎｄＤＥＡＥａｇａｒ
ｏｓｅｓｕｒｆａｃｅｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ，ａｎｄｔｈｅｃｏｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇｄｉａｍｅｔｅｒｓｗｅｒｅ２８８ｎｍｔｏ４０１ｎｍａｎｄ５２０ｎｍｔｏ９７１
ｎｍ，ｉｔｗａｓ１３１－４４１ｆｏｌｄｏｆｓｉｎｇｌｅＨＢｓＡｇｍｏｌｅｃｕｌｅ．Ｔｈｅｒｅｓｕｌｔｓｈｏｗｅｄｔｈａｔｂｉｇａｇｇｌｏｍｅｒａｔｅｓｗｅｒｅ
ｆｏｒｍｅｄｏｎｂｏｔｈｓｕｒｆａｃｅｓ．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：ａｔｏｍｉｃｆｏｒｃｅｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅ；ｄｕａｌｐｏｌａｒｉｚａｔｉｏｎｉｎｔｅｒｆｅｒｏｍｅｔｒｙ；ｈｅｍｏｇｌｏｂｉｎ；ｈｅｐａｔｉｔｉｓＢ
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ＴＥｐｈａｓｅｃｈａｎｇｅｓ，（ｂ）ｔｈｅｒｅｓｏｌｖｅｄｌａｙｅｒ
ｔｈｉｃｋｎｅｓｓ，ｄｅｎｓｉｔｙａｎｄｍａｓｓｌｏａｄｉｎｇａｆｔｅｒ
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ｐｈａｓｅｃｈａｎｇｅｓ，（ｂ）ｔｈｅｒｅｓｏｌｖｅｄｌａｙｅｒ
ｔｈｉｃｋｎｅｓｓ，ｄｅｎｓｉｔｙａｎｄｍａｓｓｌｏａｄｉｎｇ
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ＤＥＡＥａｇａｒｏｓｅｓｕｒｆａｃｅ（ｓｃａｎｎｅｄａｒｅａ１５μｍ）
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［１］　ＳｕＴＪ，ＧｒｅｅｎＲＪ，ＷａｎｇＹ，ｅｔａｌ．Ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎｏｆｌｙｓｏｚｙｍｅｏｎｔｏｔｈｅ
ｓｉｌｉｃｏｎｏｘｉｄｅｓｕｒｆａｃｅｃｈｅｍｉｃａｌｙｇｒａｆｔｅｄｗｉｔｈａｍｏｎｏｌａｙｅｒｏｆｐｅｎｔａ
ｄｅｃｙｌ１ｏｌ［Ｊ］．Ｌａｎｇｍｕｉｒ，２０００，１６（１１）：４９９９５００７．
［２］　ＬｕＪＲ，ＳｗａｎｎＭＪ，ＰｅｅｌＬＬ，ｅｔａｌ．Ｌｙｓｏｚｙｍｅａｄｓｏｒｐｔｉｏｎｓｔｕｄｉｅｓ
ａｔｔｈｅｓｉｌｉｃａ／ｗａｔｅｒｉｎｔｅｒｆａｃｅｕｓｉｎｇｄｕａｌｐｏｌａｒｉｚａｔｉｏｎｉｎｔｅｒｆｅｒｏｍｅｔｒｙ
［Ｊ］．Ｌａｎｇｍｕｉｒ，２００４，２０（５）：１８２７１８３２．
［３］　ＢｉｅｓｈｅｕｖｅｌＰＭ，ＷｉｔｅｍａｎｎＡ．Ａｍｏｄｉｆｉｅｄｂｏｘｍｏｄｅｌｉｎｃｌｕｄｉｎｇ
ｃｈａｒｇｅｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｆｏｒｐｒｏｔｅｉｎａｄｓｏｒｐｔｉｏｎｉｎａｓｐｈｅｒｉｃａｌｐｏｌｙｅｌｅｃｔｒｏ
ｌｙｔｅｂｒｕｓｈ［Ｊ］．ＪＰｈｙｓＣｈｅｍＢ，２００５，１０９（９）：４２０９４２１４．
［４］　ＳｏｎｅｓｓｏｎＡＷ，ＣａｌｉｓｅｎＴＨ，ＢｒｉｓｍａｒＨ，ｅｔａｌ．Ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎａｎｄａｃ
ｔｉｖｉｔｙｏｆＴｈｅｒｍｏｍｙｃｅｓｌａｎｕｇｉｎｏｓｕｓｌｉｐａｓｅｏｎｈｙｄｒｏｐｈｏｂｉｃａｎｄｈｙ
ｄｒｏｐｈｉｌｉｃｓｕｒｆａｃｅｓｍｅａｓｕｒｅｄｗｉｔｈｄｕａｌｐｏｌａｒｉｚａｔｉｏｎｉｎｔｅｒｆｅｒｏｍｅｔｒｙ
（ＤＰＩ）ａｎｄｃｏｎｆｏｃａｌｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ［Ｊ］．ＣｏｌｏｉｄＳｕｒｆａｃｅＢ，２００８，６１
（２）：２０８２１５．
［５］　ＢｒｕｓｓＶ，ＧｅｒｈａｒｄｔＥ，ＶｉｅｌｕｆＫ，ｅｔａｌ．Ｆｕｎｃｔｉｏｎｓｏｆｔｈｅｌａｒｇｅｈｅｐａ
ｔｉｔｉｓＢｖｉｒｕｓｓｕｒｆａｃｅｐｒｏｔｅｉｎｉｎｖｉｒａｌｐａｒｔｉｃｌｅｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｓｉｓ［Ｊ］．
Ｉｎｔｅｒｖｉｒｏｌｏｇｙ，１９９６，３９（１／２）：２３３１．
［６］　ＨｅｉｔｚＦ，ＶａｎＭａｕＮ．Ｐｒｏｔｅｉｎｓｔｒｕｃｔｕｒａｌｃｈａｎｇｅｓｉｎｄｕｃｅｄｂｙｔｈｅｉｒｕｐ
ｔａｋｅａｔｉｎｔｅｒｆａｃｅｓ［Ｊ］．ＢｉｏｃｈｉｍＢｉｏｐｈｙｓＡｃｔａ，２００２，１５９７（１）：１１１．
［７］　ＣｏｏｐｅｒＭ Ａ．Ｂｉｏｓｅｎｓｏｒｐｒｏｆｉｌｉｎｇｏｆｍｏｌｅｃｕｌａｒｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓｉｎ
ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ［Ｊ］．ＣｕｒＯｐｉｎＰｈａｒｍａｃｏｌ，２００３，３（５）：５５７５６２．
［８］　ＰａｎｃｅｒａＳＭ，ＧｌｉｅｍａｎｎＨ，ＳｃｈｉｍｍｅｌＴ，ｅｔａｌ．ＥｆｅｃｔｏｆｐＨｏｎｔｈｅ
ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎａｎｄａｃｔｉｖｉｔｙｏｆｃｒｅａｔｉｎｅｐｈｏｓｐｈｏｋｉｎａｓｅ［Ｊ］．ＪＰｈｙｓ
ＣｈｅｍＢ，２００６，１１０（６）：２６７４２６８０．
［９］　ＺｈｏｕＷＢ，ＢｉＪＸ，ＪａｎｓｏＪＣ，ｅｔａｌ．Ｉｏｎｅｘｃｈａｎｇｅｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ
ｏｆｈｅｐａｔｉｔｉｓＢｖｉｒｕｓｓｕｒｆａｃｅａｎｔｉｇｅｎｆｒｏｍａｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＣｈｉｎｅｓｅ
ｈａｍｓｔｅｒｏｖａｒｙｃｅｌｌｉｎｅ［Ｊ］．ＪＣｈｒｏｍａｔｏｇｒＡ，２００５，１０９５（１／２）：
１１９１２５．
［１０］　ＨｕａｎｇＹＤ，ＢｉＪＸ，ＺｈｏｕＷＢ，ｅｔａｌ．Ｉｍｐｒｏｖｉｎｇｒｅｃｏｖｅｒｙｏｆｒｅ
ｃｏｍｂｉｎａｎｔｈｅｐａｔｉｔｉｓＢｖｉｒｕｓｓｕｒｆａｃｅａｎｔｉｇｅｎｂｙｉｏｎｅｘｃｈａｎｇｅｃｈｒｏ
ｍａｔｏｇｒａｐｈｉｃｓｕｐｐｏｒｔｓｗｉｔｈｌｏｗｌｉｇａｎｄｄｅｎｓｉｔｙ［Ｊ］．ＰｒｏｃｅｓｓＢｉｏ
ｃｈｅｍ，２００６，４１（１１）：２３２０２３２６．
［１１］　ＸｕＹ，ＴａｋａｉＭ，ＩｓｈｉｈａｒａＫ．Ｐｒｏｔｅｉｎａｄｓｏｒｐｔｉｏｎａｎｄｃｅｌａｄｈｅｓｉｏｎ
ｏｎｃａｔｉｏｎｉｃ，ｎｅｕｔｒａｌ，ａｎｄａｎｉｏｎｉｃ２ｍｅｔｈａｃｒｙｌｏｙｌｏｘｙｅｔｈｙｌｐｈｏｓｐｈｏ
ｒｙｌｃｈｏｌｉｎｅｃｏｐｏｌｙｍｅｒｓｕｒｆａｃｅｓ［Ｊ］．Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ，２００９，３０（２８）：
４９３０４９３８．
［１２］　ＳｗａｎｎＭＪ，ＰｅｅｌＬＬ，ＣａｒｉｎｇｔｏｎＳ，ｅｔａｌ．Ｄｕａｌｐｏｌａｒｉｚａｔｉｏｎｉｎｔｅｒ
ｆｅｒｏｍｅｔｒｙ：ａｎａｎａｌｙｔｉｃａｌｔｅｃｈｎｉｑｕｅｔｏｍｅａｓｕｒｅｃｈａｎｇｅｓｉｎｐｒｏｔｅｉｎ
ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｉｎｒｅａｌｔｉｍｅ，ｔｏｄｅｔｅｒｍｉｎｅｔｈｅｓｔｏｉｃｈｉｏｍｅｔｒｙｏｆｂｉｎｄｉｎｇｅ
ｖｅｎｔｓ，ａｎｄｔｏｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｅｂｅｔｗｅｅｎｓｐｅｃｉｆｉｃａｎｄｎｏｎｓｐｅｃｉｆｉｃｉｎｔｅｒ
ａｃｔｉｏｎｓ［Ｊ］．ＡｎａｌＢｉｏｃｈｅｍ，２００４，３２９（２）：１９０１９８．
［１３］　ＬｉｎＳＭ，ＬｅｅＣＫ，ＨｓｕＳＭ，ｅｔａｌ．Ｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔｏｆｄｉｍｅｎｓｉｏｎｓｏｆ
ｐｅｎｔａｇｏｎａｌｄｏｕｇｈｎｕｔｓｈａｐｅｄＣｒｅａｃｔｉｖｅｐｒｏｔｅｉｎｕｓｉｎｇａｎａｔｏｍｉｃ
ｆｏｒｃｅｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅａｎｄａｄｕａｌｐｏｌａｒｉｓａｔｉｏｎｉｎｔｅｒｆｅｒｏｍｅｔｒｉｃｂｉｏｓｅｎｓｏｒ
［Ｊ］．ＢｉｏｓｅｎｓＢｉｏｅｌｅｃｔｒｏｎ，２００６，２２（２）：３２３３２７．
［１４］　ＨｕＴ，ＳｕＺＧ．Ｂｏｖｉｎｅｓｅｒｕｍａｌｂｕｍｉｎｂｏｖｉｎｅｈｅｍｏｇｌｏｂｉｎｃｏｎｊｕ
ｇａｔｅａｓａｃａｎｄｉｄａｔｅｂｌｏｏｄｓｕｂｓｔｉｔｕｔｅ［Ｊ］．ＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌＬｅｔ，２００２，２４
（４）：２７５２７８．
［１５］　
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