全 文 :第 11 卷第 6 期
2013 年 11 月
生 物 加 工 过 程
Chinese Journal of Bioprocess Engineering
Vol. 11 No. 6
Nov. 2013
doi:10. 3969 / j. issn. 1672 - 3678. 2013. 06. 007
收稿日期:2012 - 09 - 18
基金项目:大学生创新创业计划项目(201210376007);六安市定向委托皖西学院市级研究项目(2012LW001)
作者简介:陈 瑞(1985—),男,安徽六安人,硕士,研究方向:微生物学,E⁃mail:umeyama@ 163. com
乙醛脱氢酶 2 基因在毕赤酵母中的表达和分离纯化
陈 瑞1,2,方 剑1,王静涵1
(1. 皖西学院 生物与制药工程学院,六安 237012;
2. 皖西学院 安徽省植物生物技术实验实训中心,六安 237012)
摘 要:将乙醛脱氢酶 2(ALDH2)基因整合到质粒 pPIC9K上,构建重组表达载体 pPIC9K⁃coALDH2,用电转导将
表达质粒 pPIC9K⁃coALDH2 转化至毕赤酵母 GS115 中,在毕赤酵母中表达经密码子改造的 ALDH2。 结果表明:
重组基因工程菌 GS115 ( pPIC9K⁃coALDH2)发酵液中蛋白质量浓度为 8 40 mg / L,1 mL 发酵液中酶活为
11 35 mU。
关键词:乙醛脱氢酶;GS115;表达
中图分类号:Q78 文献标志码:A 文章编号:1672 - 3678(2013)06 - 0034 - 04
Expression of acetaldehyde dehydrogenase 2 gene in Pichia pastoris
CHEN Rui1,2,FANG Jian1,WANG Jinghan1
(1. College of Biology and Pharmaceutical Engineering,West Anhui University,Lu′an 237012,China;
2. Experiment and Training Center of Plant Biotechnology of Anhui Province,West Anhui University,Lu′an 237012,China)
Abstract:To obtain acetaldehyde dehydrogenase 2 (ALDH2),the pPIC9K⁃ALDH2 was linearized and
transformed by electroporation into Pichia pastoris GS115, and the new engineering bacteria GS115
(pPIC9K⁃co1ALDH) for overexpressing ALDH2 was obtained. The results showed that the content of
target protein was 8 40 mg / L and the enzymatic activities in culture recombinant Pichia strains reached
11 35 mU / mL,and it was higher than that in extracellular expression.
Key words:acetaldehyde dehydrogenase;GS115;express
乙醛脱氢酶 2[1] ( aldehydehyde dehydrogenase,
ALDH2)是一种主要分布在动物肝、胃等器官中的
氧化还原酶,它能催化乙醛与乙酸之间的转化反
应,是人体代谢乙醇的关键酶[2]。 Ge等[3]的研究表
明:ALDH2 能够减轻缺氧而导致的心肌细胞凋零;
对神经细胞、内皮细胞也有减轻缺氧损伤的作用。
叶红伟等[4]用离体大鼠心脏,结扎冠状动脉左前降
支 30 min 模拟局部心肌缺血,松开结扎线恢复灌流
120 min复制心肌缺血,再灌注(I / R)模型。 结果表
明与 I / R组比,法舒地尔组明显促进了左室发展压、
左心室内压最大上升和下降速率、左心室做功的恢
复,降低复灌期冠脉流出液中 LDH 的释放,ALDH2
mRNA表达增加,Bcl⁃2 / Bax比值增高。
关于乙醛脱氢酶的研究有很多,其分离纯化、
诱导、激活均有所报道。 还有通过基因工程在原
核生物和植物体内对该酶基因进行表达的研究,
鞠建松等[5]从嗜碱芽胞杆菌中获得乙醇脱氢酶和
乙醛脱氢酶的基因,构建载体,通过原核表达,获
得乙醇脱氢酶和乙醛脱氢酶,但存在表达量低,失
活严重等问题。 笔者通过研究乙醛脱氢酶基因在
毕赤酵母中的诱导表达,得到具有活性的 ALDH2,
为开发能够预防和缓解乙醇对身体伤害的药物奠
定基础。
1 材料与方法
1. 1 材料
1. 1. 1 菌种与质粒
菌株大肠杆菌(Escherichia coli) DH5α,毕赤酵
母( Pichia pastoris ) GS115 ( Mut + , his4 ) 和质粒
pPIC9K为安徽省植物生物技术实验实训中心保藏。
1. 1. 2 试剂
Tris、SDS、限制性内切酶 SacI、BamI、EcoRⅠ以
及 T4 连接酶、Taq 酶,宝生物工程有限公司;葡萄
糖、异丙醇、乙醇等均为市售国产分析纯。
1. 1. 3 实验仪器
TGRADIEN PCR 仪 (德国 Biometra 公司 ),
DYY 10C型电泳仪(北京六一仪器厂),G:BOX 高
级凝胶成像系统(美国 Syngene 公司),722S 可见光
分光光度计 (上海精密科学仪器有限公司 ),
UNIVERSAL32R台式冷冻离心机(德国 Hettich 公
司),THZ D型台式振荡恒温培养箱(太仓市实验
设备厂)。
1. 2 方法
1. 2. 1 酵母菌表达载体的构建[6]
将质粒 pPIC9K 和含有目的序列的 pUC57⁃
coALDH2 分别用 EcoRⅠ和 BamⅠ双酶切,再电泳
并回收目的序列和酶切后的 pPIC9K。 用 T4 连接酶
将目的序列插入至 pPIC9K的 EcoRⅠ和 BamⅠ双酶
切缺口,得到 pPIC9K⁃coALDH2 并转化至大肠杆菌
DH5α中[7],挑取单菌落进行菌落 PCR验证。
1. 2. 2 基因工程菌株的构建[8]
构建的质粒 pPIC9K⁃coALDH2 转化至P. pastoris
GS115,电转参数为 1 500 V,5 ms。 首先用 SacⅠ线
性化质粒并回收,再使用电转化仪转化至毕赤酵母
感受态细胞,转化后毕赤酵母涂于选择平板筛选阳
性转化子。
1. 2. 3 诱导表达
将 PCR 验证为阳性[9]的菌株在酵母膏葡萄糖
YPD 培养基中培养 1 d,培养条件为 30 ℃、150
r / min。 按 1%接种量接种于毕赤酵母表达用培养
基 BMGY培养基中,25 ℃、250 r / min振荡培养 2 ~ 3
d,期间每 24 h补加质量分数为 1%的甲醇。 诱导结
束的发酵液 8 000 r / min 离心 10 min,收集上清液,
用 SDS⁃PAGE电泳检测。
1. 2. 4 目标蛋白含量的测定
蛋白质含量采用考马斯亮蓝法(CBB) [10],首先
配制标准小牛血清白蛋白(BSA)溶液 100 μg / mL,
然后进行标准溶液的配制,在 595 nm 处检测吸
光度。
1. 2. 5 酶活检测[11]
酶活体系:1 mol / L Tris⁃HCl buffer ( pH 8 0)
300 μL,20 mmol / L β 烟酰胺腺嘌呤二核苷酸
(β⁃NAD) 300 μL,100 mmol / L乙醛 200 μL,3 mol / L
KCl 100 μL,1 mol / L β 巯基乙醇 30 μL,酶液 1 mL
及水 1 07 mL。
用紫外分光光度计检测酶活体系在 340 nm 处
吸光度的变化值,反应温度为 37 ℃,计算 ALDH 活
性。 为了讨论方便,定义每分钟波长 340 nm处吸光
度变化 0 01 为 1 个活力单位(U)。
2 结果与讨论
2. 1 表达载体的构建
图 1 为目的基因 PCR 结果及酶切鉴定的电泳
鉴定图。 由图 1 可以看出:第 1、2 泳道为 pUC57⁃
coALDH2 双酶切回收的 1 500 bp 目的片段,第 3 泳
道为质粒 pPIC9K双酶切后回收片段,大小为 9 300
bp,与理论值相符。
图 1 酶切回收目的片段的电泳
Fig. 1 Results of restriction and extraction
2. 2 基因工程菌的筛选鉴定
用 GeneTools分析各回收片段浓度的比例。 按
插入片段和质粒摩尔比 2∶ 1混合回收的片段,用 T4
连接酶连接 pPIC9K 和 coALDH2,并转化到 E. coli
DH5α中。 挑取筛选平板上的单菌落进行菌落 PCR
验证,验证后质粒电转至 P. pastoris GS115,得到重
组菌 P. pastoris GS115(pPIC9K⁃coALDH2)。 提酵母
总 DNA后进行 PCR检验,结果见图 2。
53 第 6 期 陈 瑞等:乙醛脱氢酶 2 基因在毕赤酵母中的表达和分离纯化
图 2 以毕赤酵母基因组为模板的 PCR扩增结果
Fig. 2 Results of P. pastoris genome PCR amplification
由图 2 可知:第 1、2、5 泳道为 5′AOX1 和 3′
ALDH 为引物,PCR 的扩增结果(理论长度 1 867
bp);第 3、4、6 泳道为 a⁃factor 和 3′ALDH 为引物,
PCR的扩增结果(理论长度 1 570 bp)。 结果发现,
第 1、2、3、4 泳道为 GS115(pPIC9K⁃coALDH2),结果
为阳性;5、6 号泳道为对照(GS115),结果为阴性。
说明基因工程菌株构建成功。
2. 3 目标蛋白的 SDS⁃PAGE检测
图 3 为重组菌与对照菌发酵液的上清液的
SDS⁃PAGE电泳分析结果。 由图 3 可以发现,目的
蛋白的大小约为 46 000,与乙醛脱氢酶的理论值
相符[12]。
对照—GS115(pPIC9K)发酵液的上清液;
1—GS115(pPIC9K⁃coALDH)发酵上清液;
2 —稀释后 GS115(pPIC9K⁃coALDH)发酵上清液;
M —标准蛋白
图 3 SDS⁃PAGE电泳检测目的蛋白
Fig. 3 SDS⁃PAGE analysis of target protein
2. 4 目标蛋白含量的测定
利用考马斯亮蓝法测定目的蛋白,BSA 蛋白含
量的标准曲线结果见图 4。 由图 4 可以看出,试样
中蛋白含量 m = 0 27 919A - 0 22 956, R2 =
0 99 514。
由此计算出 250 μL试样中目的蛋白含量为 2 10
μg,发酵液中目的蛋白质量浓度为 8 40 mg / L。
图 4 蛋白含量标准曲线
Fig. 4 Standard curve of protein content
2. 5 酶活检测
发酵液中某些物质在 340 nm处吸光度较大,可
以推测出该物质主要是酵母的代谢产物。 用 PEG
沉淀能较好地将目的蛋白与干扰物质分开,且 PEG
对酶有一定的保护作用,处理后酶活损失较少,结
果比较稳定,能基本反映发酵液中酶活的总量。
取 1 mL发酵液处理上清后,加入酶活体系测得
乙醛脱氢酶的酶活为 11 35 mU,比活力为 1 35
U / mg。
3 结 论
以质粒 pPIC9K 为载体,毕赤酵母 P. pastoris
GS115 为宿主菌,构建得到重组基因工程菌 GS115
( pPIC9K⁃coALDH ), 经 摇 瓶 发 酵 发 现 GS115
(pPIC9K⁃coALDH)的蛋白表达量为 8 40 mg / L,比
酶活为 11 35 mU / mL。 通过研究乙醛脱氢酶基因
在毕赤酵母中的诱导表达,得到纯度较高、活性较
高的 ALDH2,在此基础上进一步研究乙醛脱氢酶的
其他生理学作用,为开发能够预防和缓解乙醇对身
体伤害的药物奠定基础。
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(生物工程学会)
73 第 6 期 陈 瑞等:乙醛脱氢酶 2 基因在毕赤酵母中的表达和分离纯化