免费文献传递   相关文献

Purification of poly(L-diaminopropionic acid)by ion-exchange and reversed-phase chromatography

离子交换层析结合反向色谱纯化聚二氨基丙酸



全 文 :第 12卷第 6期
2014年 11月
生  物  加  工  过  程
Chinese Journal of Bioprocess Engineering
Vol􀆰 12 No􀆰 6
Nov􀆰 2014
doi:10􀆰 3969 / j􀆰 issn􀆰 1672-3678􀆰 2014􀆰 06􀆰 011
收稿日期:2013-06-26
基金项目:国家自然科学基金(21176123、21006050);国家重点基础研究发展计划(973计划)(2013CB733600);高等学校博士学科点专项科研
基金(20113221130001);长江学者和创新团队发展计划(IRT1066);江苏省普通高校研究生科研创新计划(CXZZ13_0464)
作者简介:夏  军(1986—),男,江苏句容人,博士研究生,研究方向:发酵工程;徐  虹(联系人),教授,E⁃mail:xuh@ njtech􀆰 edu􀆰 cn
离子交换层析结合反向色谱纯化聚二氨基丙酸
夏  军,许召贤,薄芳芳,冯小海,迟  波,徐  虹
(南京工业大学 食品与轻工学院,南京 211800)
摘  要:ε 聚赖氨酸生产菌株 Streptomyces albulus PD 1可合成一种新型非蛋白质氨基酸均聚物聚二氨基丙酸,采
用离子交换层析和反向色谱,对聚二氨基丙酸的分离纯化进行研究。 离子交换层析柱选用 DEAE Sepharose Fast
Flow填料,50 mmol / L 磷酸盐缓冲液(pH 7􀆰 5)平衡上样,含 0􀆰 5 mol / L NaCl的磷酸盐缓冲液(pH 7􀆰 5)洗脱,收集洗
脱液用分子筛 Sephadex G 25 除去磷酸盐缓冲液。 然后用 C18反相色谱进一步纯化,流动相为 V (甲醇) /
V(0􀆰 1%磷酸)= 5 / 95。 经过离子交换层析和反向色谱,纯化得到聚二氨基丙酸纯品,回收率为 39􀆰 8%,样品纯度达
98􀆰 4%,为后续的聚二氨基丙酸的深入研究奠定基础。
关键词:聚二氨基丙酸;纯化;离子交换层析;反向色谱
中图分类号:TQ028􀆰 8        文献标志码:A        文章编号:1672-3678(2014)06-0057-05
Purification of poly (L⁃diaminopropionic acid) by ion⁃exchange and
reversed⁃phase chromatography
XIA Jun,XU Zhaoxian,BO Fangfang,FENG Xiaohai,CHI Bo,XU Hong
(College of Food Science and Light Industry,Nanjing Tech University,Nanjing 211800,China)
Abstract:The ε⁃polylysine producing strain Streptomyces albulus PD⁃1 could synthesize a novel non⁃
proteinic amino acid oligomer: poly ( L⁃diaminopropionic acid) ( PDAP) 􀆰 Ion⁃exchange and reversed⁃
phase chromatography were used to study the purification conditions of PDAP􀆰 In the ion⁃exchange
chromatography purification,DEAE⁃Sepharose Fast Flow was selected,50 mmol / L phosphate buffer was
used as mobile phase and 0􀆰 5 mol / L NaCl in the phosphate buffer acted as elution􀆰 In the reversed⁃phase
chromatography purification,ratio of methanol to 0􀆰 1% phosphoric acid was 5 / 95 (V / V) and was used as
the mobile phase􀆰 Pure PDAP sample was obtained by ion⁃exchange and reversed⁃phase chromatography,
the recovery rate of the purification was 39􀆰 8%,and the purity of the sample was 98􀆰 4%􀆰
Keywords: poly(L⁃diaminopropionic acid); purification; ion⁃exchange chromatography; reversed⁃
phase chromatography
    聚氨基酸是由氨基酸单体的羟基和氨基形成
的酰胺键连接而成的一类聚合物,聚氨基酸的结构
和蛋白质有些相似,但是二者的合成机理是完全不
同的。 生物体内蛋白质的合成是在 DNA 指导下通
过转录、翻译,按照特定的氨基酸顺序(mRNA 上碱
基序列)进行合成的,而聚氨基酸一般是在非核糖
体多肽合成酶催化下,氨基酸单体聚合而成的具有
一定相对分子质量的聚合物[1]。 目前,已发现的微
生物合成均聚氨基酸(包括非蛋白质氨基酸)有 ε
聚赖氨酸、γ 聚谷氨酸、γ 聚二氨基丁酸[2-4],此
外,微生物合成的多聚氨基酸有聚(精氨酸 组氨
酸)、聚 L 精氨酰 聚 ( L 天冬氨酸) (藻青
素) [1,5]。 聚氨基酸一般具有水溶性、电荷密度高、
可生物降解等许多独特的理化和生物学特性,聚氨
基酸及其衍生物在食品、医药、农业、电子等诸多领
域具有十分广阔的应用前景[1]。
聚二氨基丙酸 (poly(L diaminopropionic acid),
PDAP) 是从 ε 聚赖氨酸生产菌 Streptomyces albulus
PD 1发酵液中发现的一种新型非蛋白质氨基酸均
聚物,是由 L 二氨基丙酸单体的羟基和氨基形成的
酰胺键连接而成的,其结构式如图 1所示。 由于侧链
上拥有大量游离氨基,聚二氨基丙酸属于一种带正电
荷的多肽类物质,对细菌、酵母等微生物具有抑制作
用[6]。 放线菌 Streptomyce albulus 是工业生产菌株,
其主产物 ε 聚赖氨酸具有抑菌谱广、安全性高、热稳
定性高以及试用 pH 范围广等特点,目前包括美国、
日本、韩国在内的多个国家已经批准 ε 聚赖氨酸作
为防腐剂在食品中添加使用。 此外,ε 聚赖氨酸衍
生物在医药、农业、电子等领域也有着广泛应用[7]。
PDAP 作为 Streptomyce albulus生产 ε 聚赖氨酸的副
产物,对于 Streptomyce albulus代谢途径解析以及聚氨
基酸联产研究具有重要的研究价值。 本文应用实验
室常用的离子交换层析和反向色谱纯化技术,以预处
理的 Streptomyce albulus PD 1的发酵液为研究对象,
探索 PDAP 的分离纯化工艺。
图 1  聚二氨基丙酸结构式
Fig􀆰 1  Chemical structure of poly (L⁃diaminopropionic acid)
1  材料与方法
1􀆰 1  试剂与仪器
离子交换层析柱填料 DEAE Sepharose Fast
Flow、分子筛 Sephadex G 25,GE Healthcare 公司;
SinoChrom ODS BP 反向色谱柱(20 mm×150 mm,
10 μm),大连依利特公司;AKTA FPLC 蛋白纯化
仪,Amersham Bioscience 公司;K2HPO4、KH2PO4、甲
醇、三氟乙酸及磷酸(分析纯),国药集团化学试剂
有限公司。
1􀆰 2  实验方法
1􀆰 2􀆰 1  Streptomyce albulus PD 1 的发酵液的预
处理
取 Streptomyce albulus PD 1 的发酵液,过滤除
去菌体,滤液中加入 V(甲醇) / V(丙酮)= 3 的混合
有机溶剂至饱和度 0 ~ 40%,形成沉淀,沉淀用去离
子水复溶,然后超滤得到预处理的发酵液。
1􀆰 2􀆰 2  离子交换层析
将填料 DEAE Sepharose Fast Flow 装入柱中,
用 1 mol / L NaOH冲洗 1~2 h,流速 40 cm / h,然后用
去离子水洗涤至 pH近中性,再用 2 ~ 4 个柱体积的
70%(体积分数)乙醇冲洗 1 ~ 2 h,去离子水洗涤至
pH近中性。
取预处理的发酵液,以 50 mmol / L K2 HPO4
KH2PO4缓冲液平衡上样,pH 分别 6􀆰 5、7􀆰 5 和 8􀆰 5,
含 0􀆰 5 mol / L NaCl的 K2HPO4 KH2PO4缓冲液作为
洗脱液,流速 2􀆰 0 mL / min,洗脱液经紫外检测仪,检
测波长 215 nm,选择分离效果最好的 pH 为 7􀆰 5 的
磷酸盐缓冲液作为流动相,根据检测峰收集样品。
收集的含有 PDAP 的洗脱液经过减压旋转蒸
发,以去离子水为流动相,上样分子筛 Sephadex G
25,流速 4 mL / min,洗脱液经紫外检测后收集,检测
波长 215 nm。
1􀆰 2􀆰 3  C18反向色谱
收集分子筛纯化后的洗脱液,加入 C18反向色谱
柱中,分别以 V(甲醇) / V(水) = 5 / 95、V (甲醇) /
V(水)= 15 / 85、V(甲醇) / V(0􀆰 1%三氟乙酸)= 5 / 95
和 V(甲醇) / V(0􀆰 1%磷酸) = 5 / 95 做流动相,选择
分离效果最好的 V(甲醇) / V(0􀆰 1%磷酸)= 5 / 95 作
为流动相,流速 4 mL / min,洗脱液经紫外检测仪,检
测波长 215 nm,根据检测峰收集样品。
1􀆰 3  检测方法
PDAP 的检测采用高效液相色谱(HPLC)法[7],
色谱柱:TSKgel ODS 120T 色谱柱(4􀆰 6 mm× 250
mm,日本 TOSOH公司),流速 0􀆰 4 mL / min,紫外检
测波长为 215 nm。 用 V(0􀆰 05%三氟乙酸) / V(乙
腈)为 95 / 5 的溶液作为初始流动相平衡色谱柱。
洗脱分为两阶段,在第一阶段,进样后以初始流动
相洗脱, 持续 10 min 后进入第二阶段洗脱,
V(0􀆰 05%三氟乙酸) / V(乙腈)的比值,在 5 min 内
85 生  物  加  工  过  程    第 12卷 
由初始的 95 / 5,线性梯度上升至 85 / 15。
2  结果与讨论
2􀆰 1  离子交换层析结果
在 DEAE Sepharose Fast Flow型离子交换层析
纯化 PDAP 的过程中,用不同 pH 的磷酸盐缓冲液
洗上样洗脱,选择分离效果较好的 pH 7􀆰 5磷酸盐缓
冲液作为流动相,收集含有目的组分的洗脱液后,
用分子筛 Sephadex G 25 做进一步纯化,以除去离
子交换层析中引入的小相对分子质量的磷酸盐,纯
化图谱如图 2所示。
以 pH分别为 6􀆰 5、7􀆰 5 和 8􀆰 5 的磷酸盐缓冲液
上样预处理后的发酵液,PDAP 均在穿透峰里被检
测到,提高洗脱液的比例后,陆续有其他杂质峰被
洗脱下来。 由于 PDAP 是由碱性氨基酸聚合而成,
其等电点高于缓冲盐最高 pH 8􀆰 5,在 3 种 pH 的条
件下 PDAP 带正电,而 DEAE Sepharose Fast Flow
离子交换填料属于弱阴型,该填料的正电基团与
PDAP 不能吸附结合,因此 PDAP 存在于穿透峰中。
用 HPLC法分别检测 pH 为 6􀆰 5、7􀆰 5 和 8􀆰 5 条
件下收集的含有 PDAP 的洗脱液,结果显示 pH 7􀆰 5
的条件下收集液中杂质较少些,从图 2 可以看出,
pH 7􀆰 5的条件下穿透液中 PDAP 与其他杂质的分
离度较好,提高离子强度洗脱后除去的杂质比较多
一些,因此选择 pH 7􀆰 5 的磷酸盐缓冲液进行纯化。
考虑到使用 50 mmol / L 磷酸盐缓冲液作为流动相,
收集的纯化液中也含有这些磷酸盐,需要除去,聚
二氨基丙酸相对分子质量与磷酸盐相差较大,根据
相对分子质量差异性,用分子筛 Sephadex G 25 除
去磷酸盐(图 2(d))。
图 2  DEAE Sepharose Fast Flow弱阴离子交换层析和分子筛 Sephadex G 25纯化聚二氨基丙酸的洗脱曲线
Fig􀆰 2  Elution curves of PDAP purification by DEAE⁃Sepharose Fast Flow and Sephadex G⁃25
2􀆰 2  C18反向色谱纯化结果
用 C18反向色谱纯化离子交换层析处理后的发酵
液,首先使用 V (甲醇) / V(水) = 5 / 95、V (甲醇) / V
(水)= 15 / 85的流动相,纯化图谱如图 3所示,分别收
集洗脱峰 1、2、3和 4进行 HPLC检测,如图 4所示。
从图 4可以看出,使用甲醇 /水作为流动相,分
离效果并不好,收集的洗脱峰中除了 PDAP 以外均
含有杂质。 值得注意的是,当流动相中甲醇体积分
数为 5%时,保留时间 10 min以后的杂质被除去了,
当流动相中甲醇体积分数上升至 15%,保留时间 10
min以后杂质又出现了。 由此得出结论:上样前的
料液中,PDAP 的疏水性明显弱于其他杂质,因此,
要想除去这些杂质,首先应该保证流动相中甲醇体
积分数不超过 5%,使疏水性较强的杂质与色谱柱
填料相结合,后期可以通过提高流动相中甲醇的体
积分数将其洗脱除去。 同时,尝试在流动相水相成
95  第 6期 夏  军等:离子交换层析结合反向色谱纯化聚二氨基丙酸
分中加入三氟乙酸或者磷酸,以改善分离效果,结 果见图 5。
图 3  C18反向色谱纯化聚二氨基丙酸的洗脱曲线
Fig􀆰 3  Elution curves of PDAP purification by C18 reversed⁃phase chromatography
图 4  高效液相色谱检测图 3中 C18反向色谱洗脱峰
Fig􀆰 4  HPLC detection of C18 reversed⁃phase chromatography elution peaks in figure 3
图 5  加入三氟乙酸或磷酸后 C18反向色谱纯化聚二氨基丙酸的洗脱曲线
Fig􀆰 5  Elution curves of PDAP purification by C18 reversed⁃phase chromatography with
trifluoroaceticacid and phosphoric acid
06 生  物  加  工  过  程    第 12卷 
    由图 5可以看出:使用 V(甲醇) / V(0􀆰 1%三氟
乙酸)= 5 / 95 的流动相,分离效果没有得到明显改
善,有拖尾现象,而使用 V(甲醇) / V(0􀆰 1% H3PO4)
= 5 / 95的流动相时,分离效果得到明显改善,收集
箭头所指的洗脱峰进行检测,结果洗脱峰内收集到
的是 PDAP 纯品,没有其他杂质,表明使用该流动
相,可以达到分离纯化聚二氨基丙酸的目的,收集
的洗脱液经减压旋转蒸发,以除去洗脱液中的少量
甲醇,然后透析处理除去洗脱液中的少量磷酸后进
行冷冻干燥。 将得到的固体进行结构表征,表征图
谱如图 6所示。 由图 6可知:质谱、核磁共振碳谱和
红外图谱表明纯化得到的 PDAP 结构与图 1 相符,
由于聚合度分布在 6~17之间,PDAP 相对分子质量
分布在 500~1 500 之间,各纯化步骤的收率和样品
纯度如表 1 所示,纯化后的 PDAP 样品纯度
达 98􀆰 4%。
图 6  聚二氨基丙酸纯品表征图谱
Fig􀆰 6  Characterization spectra of PDAP purified sample
表 1  各纯化步骤的得率与样品纯度
Table 1  Recovery rate and sample purity of each
purification procedure
分离步骤 得率 / % 纯度 / %
离子交换层析 72􀆰 4 58􀆰 2
分子筛 59􀆰 2 66􀆰 7
反向色谱 39􀆰 8 98􀆰 4
3  结  论
采用离子交换层析结合 C18反向色谱技术,对菌
株 Streptomyce albulus PD 1 发酵液进行分离纯化,
获得 PDAP 纯品,纯化的回收率为 39􀆰 8%,PDAP 样
品纯度达 98􀆰 4%。 离子交换层析柱选用 DEAE
Sepharose Fast Flow填料,50 mmol / L 磷酸盐缓冲液
(pH 7􀆰 5)平衡上样,含 0􀆰 5 mol / L NaCl的磷酸盐缓
冲液(pH 7􀆰 5)洗脱,洗脱液用分子筛 Sephadex G
25除去磷酸盐缓冲液,然后用 C18反相色谱进一步
纯化,流动相为 V(甲醇) / V(0􀆰 1% H3PO4)= 5 / 95。
PDAP 是聚阳离子物质,相对分子质量分布在 500 ~
1 500之间,亲水性较强。
参考文献:
[ 1 ]   Oppermann⁃Sanio F B,Steinbüchel A.Occurrence,functions and
biosynthesis of polyamides in microorganisms and biotechnological
production[J] .Natur Wissen Schaften,2002,89:11⁃22.
[ 2 ]   Ivánovics G,Erlös L.Ein Beitrag zum Wesen der Kapselsubstanz
des Milzbrandbazillus [ J] . Z Immunitätsforsch Exp Ther,1937,
90:5⁃19.
[ 3 ]   Shima S,Sakai H.Polylysine produced by Streptomyces[ J] .Agric
Biol Chem,1977,41:1807⁃1809.
[ 4 ]   Takehara M, Saimura M, Inaba H, et al. Poly ( γ⁃L⁃
diaminobutanoic acid), a novel poly ( amino acid), coproduced
with poly(ε⁃L⁃lysine) by two strains of Streptomyces celluloflavus
[J] .FEMS Microbiol Lett,2008,286:110⁃117.
[ 5 ]   Nishikawa M,Ogawa K.Antimicrobial activity of a chelatable poly
(arginyl⁃histidine ) produced by the ergot fungus Verticillium
kibiense[J] .Antimicrob Agents Chemother,2004,48:229⁃235.
[ 6 ]   Xia J,Xu H,Feng X H,et al.Poly( L⁃diaminopropionic acid),a
novel non⁃proteinic amino acid oligomer co⁃produced with poly
(ε⁃L⁃lysine) by Streptomyces albulus PD⁃1[ J] . Appl Microbiol
Biotechnol,2013,97(17):7597⁃7605.
[ 7 ]   Yoshida T, Nagasawa T. ε⁃Poly⁃L⁃lysine: microbial production,
biodegradation and application potential[J] . Appl Microbiol
Biotechnol,2003,62:21⁃26.
(责任编辑  荀志金)
16  第 6期 夏  军等:离子交换层析结合反向色谱纯化聚二氨基丙酸