全 文 :植物学报Chinese Bulletin of Botany 2009, 44 (1): 52-58, w w w .chinbullbotany.com
收稿日期: 2008-06-22; 接受日期: 2008-06-26
基金项目: 国家自然科学基金(No. 30625002和No. 30628012)
†共同第一作者。
* 通讯作者。E-mail: qulj@pku.edu.cn
.研究论文.
拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析
侯仙慧 1 †, 丁茂予 1 †, 刘赛男 1 , 李林川 1 , 瞿礼嘉 1, 2 *
1北京大学生命科学学院, 北京大学 -耶鲁大学植物分子遗传和农业生物技术联合研究中心, 蛋白质工程和植物基因工程国家重点实验
室, 北京 100871; 2国家植物基因研究中心(北京) , 北京 100101
摘要 生长素是最重要的植物激素之一, 参与了植物生长发育的各个方面。植物体内游离的IAA是生长素的主要活性形式,
在IAA甲基转移酶1(IAMT1)的作用下, IAA可以转变为IAA甲酯 (MeIAA)。MeIAA本身没有活性, 在植物体内的MeIAA酯解酶作
用下可以重新转变为IAA。 MeIAA是非极性分子, 能够在植物体内自由扩散。利用MeIAA的这种特殊性质筛选突变体, 可以分
离到MeIAA代谢途径或者IAA途径中新的成分。我们对拟南芥种子进行EMS诱变, 通过观察黑暗下下胚轴的生长情况, 筛选
MeIAA的抗性突变体。我们成功分离到了8株可能的抗性突变体, 并对其中的一个Methyl -IAA resistant 1 (mir1) 突变体进行
了深入分析。MeIAA抗性突变体的筛选将为进一步了解MeIAA的代谢、IAA稳态调控和响应机理提供新的材料。
关键词 生长素, 图位克隆, MeIAA, 抗性突变体
侯仙慧 , 丁茂予 , 刘赛男 , 李林川 , 瞿礼嘉 (2009). 拟南芥 MeIA A抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析. 植物学报 44, 52-58.
生长素(auxin)是由荷兰科学家 F. W. Went通过燕
麦胚芽鞘弯曲实验法 (Avena curvature test) 首次分离
出来的(Went, 1926)。随后人们提取并鉴定得到了第 1
种生长素—— 吲哚 -3-乙酸(IAA)。大量的实验表明 IAA
在高等植物中广泛存在 , 是植物体内主要的生长素
(Teale et al., 2006)。IAA 调控植物体内生长发育的许
多过程, 如促进侧根形成、维管组织分化、胚胎发育、
顶端优势及植物向性反应等(Woodward and Bartel,
2005a)。 生长素在体内主要通过色氨酸依赖途径进行生
物合成, 可以与糖、氨基酸、肽以及醇形成缀合物进
行贮存或运输, 也可以通过氧化失去激素活性 (Ljung et
al., 2001)。 生长素是一种极性分子, 是目前发现的唯一
需要极性运输的激素, PIN蛋白家族是主要的生长素输
出载体, 而 AUX1蛋白是生长素输入载体, PIN和AUX1
蛋白在细胞膜上具有不对称分布, 受到囊泡运输的调控
(Leyser, 2003; Hobbie, 2006)。 生长素信号转导主要
是由 SCFTI R1 介导的蛋白泛素降解途径, 高浓度的 IAA
促进其受体 TIR1和转录抑制因子 AUX/IAA家族蛋白的
结合而使AUX/IAA家族蛋白泛素化降解, 从而解除了对
转录因子ARF家族蛋白的转录抑制, 进而激活或者抑制
下游基因的表达 (Woodward and Bartel, 2005b; Tan
et al. , 2007)。
本实验室发现拟南芥 IAA carboxyl methylt ran-
sferase1(IAMT1)基因的一个功能获得性突变体iamt1-D
具有叶片上卷表型 (Qin et al. , 2005)。 当通过RNAi降
低 I A M T 1 的表达时, 转基因植株叶片下卷。而且,
IAMT1的表达在叶片发育过程中受到严格的时空调控。
叶片卷曲程度和 IAMT1表达水平相关表明, 生长素的稳
态调控对于扁平叶片的形成起重要作用 (Qi n et a l. ,
2005)。 在体外, IAMT1蛋白能够把 IAA转化为 IAA甲
酯 (MeIAA)。Li 等通过研究 auxin resistant 1 (aux1)
突变体对MeIAA、IAA和NAA的不同响应, 发现MeIAA
与其它 IAA 缀合物一样, 也是没有活性的。但是由于
MeIAA 是非极性的, 所以其进入细胞同NAA 一样不需
要载体协助 (Li et al. , 2008a)。MeIAA 的运动性暗示
它与 IAA糖、氨基酸缀合物不同, 不是作为贮存或者降
53侯仙慧等: 拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析
解的形式, 而是通过微调 IAA的分布, 从而影响植物发
育过程, 如叶片的形态等 (Li et al. , 2008a)。Yang等
研究表明MeIAA进入细胞后, 通过细胞内的一个或几个
可能的酯解酶酯解后重新转变为 IAA 起作用(Yang et
al., 2008)。他们鉴定了拟南芥AtMES17基因, 其编码
一个MeIAA酯解酶, 在体外该蛋白能够将MeIAA 转变
为 IAA。AtMES17的缺失突变体表现出对MeIAA的显
著抗性, 而过量表达 A t ME S 1 7 的转基因植株则对
MeIAA具有更强的敏感性, 同时这两种株系对 IAA的响
应正常 (Yang et al. , 2008)。
利用激素突变体来研究激素代谢及其分子机制已有
不少成功的范例, 突变体分析不仅可以对某一复杂生物
学过程提出合理的假设, 而且可更进一步精确找出研究
生理和发育问题的新方法。由于在黑暗下M eIA A 比
IAA具有更强的下胚轴抑制能力, 利用MeIAA筛选生长
素抗性突变体将更加简单易行。本实验通过筛选经
EMS诱变产生的拟南芥突变体种子, 外源施加一定浓度
的MeIAA, 在黑暗下观察下胚轴生长, 筛选对MeIAA具
有抗性的突变体, 并做进一步的遗传和基因定位分析, 为
深入了解 IAA的甲基化过程在 IAA信号转导和稳态调控
中的作用提供新的方法。
1 材料与方法
1.1 植物材料和培养条件
本研究中所用的拟南芥(Arabidopsis thaliana)除用于图
位克隆的为Landsberg (Ler) 野生型外, 其余的都为Co-
lumbia (Col-0) 背景。处理方法和培养条件见 Li 等论
文 (Li et al., 2008b)。
1.2 EM S诱变
将 2.5 g拟南芥种子均分在 2个 50 mL的 Falcon试管
中, 加入 40 mL去离子水室温过夜。向每个试管中加
入 120 mL EMS (Sigma), 使 EMS终浓度为 0.3%。在
通风橱内翻转摇匀 15个小时。再用 40 mL去离子水漂
洗种子6次以上, 最后将种子用0.1% 琼脂均匀悬浮, 铺
在约 20个培养箱中。单箱收获得到 M2代种子, 编号,
室温保存。
1.3 M eIAA抗性突变体的筛选
将表面消毒后的种子点播在含有 2.5 mmol.L-1 MeIAA
(Sigma)的MS 培养基上, 用锡箔纸包裹避光。4°C春
化 2天, 然后放入22°C培养箱中培养 4天, 挑取下胚轴
长度远远超过平均值的小苗(图1), 转移到MS培养基上,
恢复培养 5天, 再转移到土中。一个月后单收种子, 在
MeIAA 培养基上鉴定该抗性是否可以遗传。
1.4 突变体温度转移实验
将种子表面消毒后, 铺在MS 培养基上, 4°C春化 2天,
然后转到 22°C, 水平萌发 3天。转移大约 20棵小苗到
新的MS 平板上, 共转移 2块。将其中一块仍然放在
22°C条件下, 另一块转至 29°C, 垂直培养 3天。比较
2个生长条件下的植株下胚轴长度, 并统计。
1.5 图位克隆
图位克隆(map-based cloning)参考 Lukowitz 等(2000)
描述的方法。实验中所用Mark er 均来自拟南芥网站
(www.arabidopsis .org)。
2 结果与分析
2.1 Me IAA抗性突变体筛选条件的确定
在进行大规模突变体筛选之前, 我们首先比较了 IAA和
MeIAA对黑暗下生长的拟南芥幼苗的下胚轴抑制程度。
在 0.1-25 mmol.L-1浓度范围内, 随着激素浓度的升高,
IAA和MeIAA对下胚轴的抑制程度都增强, 但是MeIAA
的抑制能力更强, 两者在 2.5-10 mmol.L-1范围内差异
最为显著(图 1A)。在 2.5 mmol.L-1 MeIAA 浓度下, 拟
南芥幼苗下胚轴长约为 MS 培养基上的 10%。在大于
2.5 mmol.L-1的浓度下, MeIAA对下胚轴的抑制程度随
浓度变化很小(图 1A )。综合上述两种现象, 我们选取
2.5 mmol.L-1的MeIAA处理经EMS诱变的M1代种子
进行筛选。
野生型幼苗在 2.5 mmol.L-1 MeIAA 培养基上暗培
54 植物学报 44(1) 2009
养3天后, 下胚轴和主根生长几乎完全被抑制, 顶端钩消
失(图 1B )。将下胚轴长至少为野生型 2倍以上的幼苗
定义为候选MeIAA 抗性突变体(candidate MeIAA re-
s is tant mutants)。通过这种方法, 总共得到了约 150
个候选突变体单株。然后将候选突变体转移到培养箱
中, 单株收种子后, 重新在 2.5 mmol.L-1 MeIAA培养基
上暗处理 3天, 验证其对 MeIAA 抗性表型是否可以遗
传。最终共得到 8株MeIAA 抗性突变体, 其中mir1、
mir2、mir3和mir4如图 1B 所示。mir1、mir2和mir3
的下胚轴和主根对MeIAA具有很强的抗性, 而mir4仅
在下胚轴对MeIAA 具有中度抗性(图 1B)。
2.2 部分Me IAA抗性突变体对IAA也具有抗性
由于MeIAA是 IAA的非活性形式, 需要在体内的酯解酶
作用下重新转变为 IAA起作用 (Li et al., 2008a; Yang
et al., 2008)。那么, MeIAA 抗性突变体绝大部分都应
表现出对 IAA 的抗性。和预期相一致, mir1、mir2和
m i r 3 等在光下对 I A A 也表现出了一定程度的抗性
(图 2A)。有趣的是, mir4在光下并没有显示出对 IAA的
抗性(数据未显示), 推测它与 mir1、mir2及mir3等具
有不同的抗性机制。
拟南芥幼苗从正常温度(22°C)转移到高温下(29°C)
生长时, 下胚轴会比正常条件下显著伸长 (Gray et al.,
1998)。进一步研究发现该现象主要是由于下胚轴中生
长素的含量提高造成的, 而且该现象是生长素特异的反
应。当突变体生长素稳态调控或信号通路出现缺陷时,
其下胚轴不能伸长 (Gray et al. , 1998)。 将野生型拟南
芥和MeIAA抗性突变体同时在22°C和29°C下培养, 在
29°C下, WT的下胚轴长度是 22°C下的 2倍左右, 而
mir1、mir2和mir3的下胚轴没有明显的伸长(图2B), 暗
示其体内生长素途径出现缺陷。然而, mir4的下胚轴能
够正常响应高温变化, 进一步暗示其抗性机制和其它突
变体不同。
2.3 mir1突变体的表型和遗传学分析
挑取mir1突变体作进一步表型分析。在 2.5 mmol.L-1
图 1 MeIA A抗性突变体的获得
(A) 黑暗下 IA A和MeIA A对拟南芥幼苗下胚轴抑制曲线; (B) MeIA A抗性突变体
Figur e 1 Isolation of candidate MeIAA res istant mutants
(A) Inhibitory curvature of hypocotyls by IA A and MeIAA in the dark; (B) MeIA A resistant mutants, mir1, mir2, mir3 and mi r4
55侯仙慧等: 拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析
图 2 MeIA A抗性突变体生长素相关表型分析
(A) MeIA A抗性突变体同样具有对 IA A的抗性; (B) MeIA A突变体下胚轴在不同温度下的伸长情况
Figur e 2 Aux in related phenotypes of MeIAA res istant mutants
(A) MeIAA res is tant mutants also show res is tance to IAA ; (B) Hypocotyl elongation of MeIAA res is tant mutants at diff erent
temperatures
MeIAA培养基上黑暗下处理 3天后, mir1突变体的下胚
轴和主根表现出显著的抗性(图 3A)。有趣的是, mir1突
变体在MS 培养基上黑暗下培养 3天后, 下胚轴比野生
型短, 顶端钩消失(图 3B)。在光下, mir1突变体的子叶
稍微上卷(图 3C) , 侧根数目显著少于野生型(图 3D)。
mir1突变体成株表现出叶柄短, 叶片上卷(图 3E), 而且
植株矮化, 分枝数多于野生型, 但花和角果正常(图 3F)。
为了研究mir1突变的分子本质, 我们对mir1突变体
进行了深入的遗传学分析。首先将mir1和 Col-0进行
回交, F1代幼苗在MeIAA培养基上出现了抗性和感性的
分离, 而且分离比例约为 1:1 (表 1), 暗示该突变是由一
个显性单基因控制的。同样的结果也出现在mir1和Ler
杂交的 F1代中(表 1)。单收mir1和 Ler杂交的 F1代种
子, 点播后观察 F2代的分离比, 发现抗性和感性植株的
分离比约为 3:1(表1), 进一步暗示mir1突变是由显性单
基因突变所致。
2.4 mir1突变体的初步图位克隆
我们利用图位克隆方法对mir1突变进行基因定位。提
取突变体和Ler杂交F2代中的野生型表型苗的DNA, 利
用 TAIR网站上的引物(marker)信息, 进行初定位(first -
pass cloning)。经过初定位, 发现mir1突变与第 1条
染色体上端Marker nga63具有明显连锁, 重组率约为
15%; 在 nga63两端分别设计引物进一步定位, 发现突
变位点可能处于更靠近染色体顶端的 2 个 M a r k e r
NF21B7和 NT1G11之间。这一位置具有已知的 4个
表 1 mir1突变体遗传学分析
Table 1 Genetic segregation of MeIA A resistance in mi r1
No. of plants
Cross Resis tant Sensitive Total X20. 95
mir1 × Col-0 (F1) 22 26 48 -
mir1 × Ler (F1) 32 30 62 -
mir1 × Ler (F2) 278 98 376 0.23 (3:1)
56 植物学报 44(1) 2009
图 3 mir1表型分析
(A) 黑暗下在含有 2.5 mmol.L-1 MeIA A的培养基上生长 3天的野
生型和mir1的表型;
(B) 黑暗下在MS培养基上生长 3天的野生型和mir1的表型;
(C) 光下在MS培养基上生长 7天的野生型和mir1的表型;
(D) 2周大小的野生型和mi r1的侧根表型;
(E) 4周大小的野生型和mi r1的叶片表型;
(F) 6周大小的野生型和mi r1的整体植株表型
Bar = 5 mm
Figur e 3 Phenotypes of mi r1
(A) WT and mi r1 grew on 2.5 mmol.L-1 MeIA A for 3 d in the
dark;
(B) WT and mir1 grew on MS for 3 d in the dark;
(C) WT and mir1 grew on MS for 7 d in the light;
(D) Lateral root phenotypes of WT and mir1 of tw o w eeks old;
(E) Leaf phenotypes of WT and mi r1 of four w eeks old;
(F) Whole plant phenotypes of WT and mi r1 of six w eeks old
Bar = 5 mm
图 4 mir1在第 1条染色体上端的初定位信息
图中由上至下依次标明所用Marker的名称, 染色体序号, 各Marker距该染色体最上端的物理距离, 各Marker 对应位置发生重组的植株
数目及相应所检测染色体的数目, 最下方线段表示推测的突变位点所在位置。
Figur e 4 Primary mapping for mir1 on Chromosome I
The supposed mapping posit ion of mir1 is based on the recombinant No. of each marker on the Chromosome I.
57侯仙慧等: 拟南芥 MeIAA抗性突变体的筛选和初步图位克隆分析
Aux/ IA A 基因, 分别是 I AA 3、I AA 10、I AA 12 和
I A A 17。我们将通过进一步精细定位和测序确定突
变位点。
3 讨论
对于大规模的筛选工作, 筛选方法是突变体筛选成败的
关键。越是专一的筛选条件, 就越有机会直接获得所期
待的突变体。常用的方法有正筛选和负筛选。正筛选
是设计一定的培养基或培养条件, 使得野生型不可以生
长但突变体能生长; 而负筛选是野生型可以生长但突变
体不能生长。正筛选通常得到的是抗性突变体, 而负筛
选通常得到超敏感突变体。本研究中我们通过正筛选
方法成功得到了MeIAA 抗性突变体。该方法的 2个关
键点是M eIA A 的浓度和筛选指标的确定。通过绘制
MeIAA和 IAA 黑暗下对野生型幼苗下胚轴的抑制曲线,
我们确定了 2.5 mmol.L-1是MeIAA和 IAA 在区分度和
对下胚轴的抑制程度上最佳的选择浓度。下胚轴长短
这一筛选指标, 简单易行, 为我们大规模筛选突变体带来
很大方便, 能够满足饱和筛选的条件。
MeIAA是在 IAA羧甲基转移酶1 (IAMT1)的作用下
由 IAA甲酯化生成(Qin et al., 2005), 是非极性的 IAA
缀合物, 能够在体内自由扩散。同时, MeIAA是一种非
活性的 IAA形式, 需要通过体内1个或多个MeIAA酯解
酶的作用重新转变为 IAA (Yang et al. , 2008)。这两
个性质导致MeIAA 具有不同于 IAA 以及 IAA 的其它缀
合物的化学特性(Li et al., 2008a), 所以用MeIAA来筛
选抗性突变体具有比 IAA更大的优势。首先, MeIAA可
以自由扩散, 所以筛选中能够排除部分生长素极性运输
的影响, 得到的突变体可能仅与生长素的信号相关。另
一方面, 在黑暗下, Me IAA 对下胚轴的抑制程度强于
IAA, 在 IAA筛选中的弱抗性突变体可能在MeIAA上表
型更加明显, 所以通过MeIAA筛选能够得到原来很难分
离到的生长素信号突变体。此外, Me IAA 代谢相关基
因的突变也有可能通过这种方法得到。
在分离到的 8个突变体中, mir1、mir2和mir3对
MeIAA和 IAA都表现出抗性, 暗示这3个突变体应该是
普通的生长素抗性突变体。mir1突变体具有明显的生
长素相关发育缺陷, 如顶端钩消失、侧根少、叶片上
卷表型。图位克隆分析表明, mir1突变定位在第 1条染
色体上端的NT1G11 Marker附近。而在这个Marker
附近集中了 IAA3、IAA10、IAA12和 IAA 17 4个典
型的Aux/IAA基因 (Leyser et al., 1996; Tian and Reed,
1999; Hamann et al., 2002)。 根据mir1的叶片表型
和这些基因的已有报道相比较, 推测mir1可能是 IAA3
的突变。进一步的测序和遗传学鉴定工作正在进行
中。而mir4突变体具有对MeIAA 特异抗性, 而且这种
抗性只特异地出现在下胚轴, 暗示该突变可能是MeIAA
特异突变, 为我们揭示MeIAA代谢和活性调控提供了良
好的材料。
参考文献
Gray WM, Ostin A, Sandberg G, Romano CP, Estelle M (1998).
High temperature promotes aux in-mediated hypocotyl elonga-
tion in Arabidopsis. Proc Natl Acad Sc i USA 95, 7197-7202.
Hamann T, Benkova E, Baurle I, Kientz M, Jurgens G (2002).
The A rabidops is BODENLOS gene encodes an aux in re-
sponse protein inhibiting MONOPTEROS-mediated embryo
patterning. Genes Dev 16, 1610-1615.
Hobbie LJ (2006). Auxin and cell polarity: the emergence of
AXR4. Trends Plant Sci 11, 517-518.
Leyse r HM, Pickett FB, Dharmasiri S, Estelle M (1996). Mu-
tations in the AXR3 gene of Arabidopsis result in altered auxin
response inc luding ec topic express ion f rom the SAUR-AC1
promoter. Plant J 10, 403-413.
Leyse r O (2003). Regulation of shoot branching by auxin. Trends
Plant Sci 8, 541-545.
Li L, Hou X, Tsuge T, Ding M, Aoyama T, Oka A, Gu H, Zhao
Y, Qu LJ (2008a). The possible action mechanisms of indole-
3-acetic acid methyl ester in A rabidops is. Plant Cell Rep 27,
575-584.
Li LC, Qin GJ, Tsuge T, Hou XH, Ding MY, Aoyama T, Oka A,
Chen Z, Gu H, Zhao Y, Qu LJ (2008b). SPOROCYTELESS
modulates YUCCA expression to regulate the development of
lateral organs in Arabidopsis. New Phytol (in press)
Ljung K, Bhalerao RP, Sandber g G (2001). Sites and homeo-
static control of auxin biosynthesis in Arabidopsis dur ing veg-
58 植物学报 44(1) 2009
Isolation and Positional Cloning of Methyl-Indole-3-Acetic
Acid Resistant Mutants in Arabidopsis
Xianhui Hou1†, Maoyu Ding1†, Sainan Liu1, Linchuan Li1, Lijia Qu1, 2*
1Na tio nal Lab ora tory for P rotein En gin eeri ng and Pl ant Gen eti c Engi nee ring , Peki ng-Yal e Jo int Re sea rch Cen ter fo r P lan t Mo lecu-
la r Genet ics an d AgroB iotech nol ogy, Co lle ge of L ife Scien ces, Pe kin g Unive rsi ty, Be ijin g 1 008 71, Chi na; 2Th e Na tio nal Pla nt
Ge ne Rese arch Center (Bei jin g), Bei jin g 1 001 01, Chi na
Abs tr act A uxin is one of the most impor tant plant hormones in that it regulates almos t all aspects of plant grow th and
development. In plants , f ree indole-3-acetic acid ( IAA) is the major ac tive auxin and can be converted to methyl-IAA (MeIAA) w ith
the activity of an IAA carboxyl methyltransferase 1 (IAMT1). How ever , MeIAA is also an inactive form of IAA and can be conver ted
to IA A catalyzed by several es terases. MeIA A is a non-polar IAA form and can dif fuse betw een cells, so MeIAA is suitable f or
sc reening new components in MeIA A metabolism or IAA biology . Here, w e screened ethyl-methane-sulphonate (EMS)-mutagens is
seedlings on MeIAA medium in the dark, w ith longer hypocoty ls used as a criterion. We isolated 8 putative MeIAA -res istant mutants
and car ried out further exper iments on one mutant, mi r1. These new mutants w ill help shed light on MeIA A metabolism and the
ac tion mechanism of IA A.
Ke y words au xin , ma p-b ase d clon ing, Me IAA , resi stan t m uta nt
Hou XH, Ding M Y, Liu SN, Li LC, Qu LJ (200 9). Isola ti on and po sit ion al clo nin g o f m ethyl -in dol e-3 -aceti c aci d resi stant mu tan ts in
Arabi dopsis. Ch in Bull Bo t 44 , 5 2-58 .
† These authors contr ibuted equally in this paper.
* Author for correspondence. E-mail: qulj@pku.edu.cn
(责任编辑: 刘慧君)
etative grow th. Plant J 28, 465-474.
Lukowitz W, Gillmor CS, Scheible WR (2000). Positional clon-
ing in Arabidopsis. Why it feels good to have a genome initia-
tive w orking for you. Plant Physiol 123, 795-805.
Qin G, Gu H, Zhao Y, Ma Z, Shi G, Yang Y, Pichers ky E, Chen
H, Liu M , Che n Z, Qu LJ (2005). An indole-3-acetic ac id
carboxyl methy ltransf erase regulates Arabidopsis leaf
development. Plant Cell 17, 2693-2704.
Tan X, Calderon-Villalobos LI, Sharon M, Zheng C, Robinson
CV, Estelle M, Zheng N (2007). Mechanism of auxin percep-
tion by the TIR1 ubiquitin ligase. Nature 446, 640-645.
Teale WD, Paponov IA, Palme K (2006) . Auxin in ac tion:
s ignaling, transpor t and the control of plant grow th and
development. Nat Rev Mol Cell Biol 7, 847-859.
Tian Q, Reed JW (1999). Control of auxin-regulated root devel-
opment by the Arabidopsis thal iana SHY2/IAA3 gene. Devel-
opment 126, 711-721.
Went F (1926). On grow th accelerating substance in the coleoptile of
Avena sativa. Proc K Akad Wetensch Amsterdam 30, 10-19.
Woodward AW, Bartel B (2005a). Auxin: regulation, action, and
interac tion. Ann Bot (Lond) 95, 707-735.
Woodward AW, Barte l B (2005b). A receptor for auxin. Plant
Cell 17, 2425-2429.
Yang Y, Xu R, Ma CJ, Vlot AC, Klessig DF, Pichersky E (2008).
Inac tive methyl indole-3-acetic acid ester can be hydrolyzed
and activated by several esterases belonging to the AtMES
es terase family of Arabidops is thal iana. Pl ant Phys iol (in
press)