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Efficient Induction of Callus and Plant Regeneration From Paeonia suffruticosa Andr

江南牡丹茎段愈伤组织诱导与植株再生


为探讨不同培养基、不同植物生长调节剂对江南牡丹茎段愈伤组织诱导及植株再生的影响,本研究以江南牡丹凤丹幼嫩茎段为材料,通过愈伤组织途径建立了植株再生体系。结果表明:改良MS培养基为牡丹茎段愈伤组织诱导的最佳培养基,愈伤组织最高诱导率为93.3%,最佳的培养基组合为改良MS+2,4-D0.2mg·L-1+6-BA2.0 mg·L-1+NAA0.3 mg·L-1。在愈伤组织分化过程中,加入KT0.2 mg·L-1效果最好,有机物也能促进愈伤组织分化,其中加入水解酪蛋白300 mg·L-1效果最佳。牡丹茎段愈伤组织分化培养基为改良MS+KT0.2 mg·L-1+6-BA0.3 mg·L-1+NAA0.1 mg·L-1,分化率为37.8%,牡丹愈伤组织不定芽在1/2MS+IBA0.2 mg·L-1条件下能够诱导生根,诱导率为最高的13.3%。本研究结果将为进一步开展江南牡丹的高效再生体系和转基因育种等研究提供技术支持和理论依据。


全 文 :核 农 学 报  2015,29(1):0056 ~ 0062
Journal of Nuclear Agricultural Sciences
收稿日期:2013⁃12⁃15  接受日期:2014⁃09⁃17
基金项目:国家“863”计划(2011AA10020701),浙江省教育厅项目(Y201223938),浙江农林大学博士科研启动基金项目(2011FR017),浙江农林
大学天目学院大学生科技创新活动计划项目(TMKC1308)
作者简介:朱向涛,男,主要从事园林植物应用研究. E⁃mail:zxt8202@ 163. com
通讯作者:王雁,女,研究员,主要从事园林植物遗传育种研究。 E⁃mail:wangyan@ caf. ac. cn
文章编号:1000⁃8551(2015)01⁃0056⁃07
江南牡丹茎段愈伤组织诱导与植株再生
朱向涛1   王  雁2   吴  倩1   张婧蕾1   竺柯叶1
( 1 浙江农林大学天目学院,浙江 临安  311300;2 中国林业科学研究院林业研究所 /
国家林业局林木培育重点实验室,北京  100091)
摘  要:为探讨不同培养基、不同植物生长调节剂对江南牡丹茎段愈伤组织诱导及植株再生的影响,本研
究以江南牡丹凤丹幼嫩茎段为材料,通过愈伤组织途径建立了植株再生体系。 结果表明:改良 MS 培养
基为牡丹茎段愈伤组织诱导的最佳培养基,愈伤组织最高诱导率为 93􀆰 3% ,最佳的培养基组合为改良
MS +2,4⁃D0􀆰 2mg·L - 1 + 6⁃BA2􀆰 0 mg·L - 1 + NAA0􀆰 3 mg·L - 1。 在愈伤组织分化过程中,加入 KT0􀆰 2
mg·L - 1效果最好,有机物也能促进愈伤组织分化,其中加入水解酪蛋白 300 mg·L - 1效果最佳。 牡丹
茎段愈伤组织分化培养基为改良 MS + KT0􀆰 2 mg·L - 1 + 6⁃BA0􀆰 3 mg·L - 1 + NAA0􀆰 1 mg·L - 1,分化率
为 37􀆰 8% ,牡丹愈伤组织不定芽在 1 / 2MS + IBA0􀆰 2 mg·L - 1条件下能够诱导生根,诱导率为最高的
13􀆰 3% 。 本研究结果将为进一步开展江南牡丹的高效再生体系和转基因育种等研究提供技术支持和理
论依据。
关键词:牡丹;凤丹;茎段;愈伤组织;植株再生
DOI:10􀆰 11869 / j. issn. 100⁃8551􀆰 2015􀆰 01. 0056
    牡丹(Paeonia suffruticosa Andr. )为芍药科芍药属
落叶亚灌木,我国特产花卉,中国十大名花之一[1 - 2]。
牡丹作为一种新型油用植物,市场前景广阔。 江南牡
丹作为中国四大牡丹品种群之一,主要分布在上海、江
苏南部、浙江杭州以及安徽宁国、铜陵等地[3],但由于
繁殖率低、繁殖速度慢的问题,目前仅存 20 余个品种,
有些品种正濒临灭绝。 转基因技术能够提高育种效
率,而稳定高效的植株再生体系是利用基因工程培育
新品种的基础,目前已有多个成功克隆牡丹基因的报
道[5 - 6],但牡丹完善的再生体系尚未建立[4],转基因技
术无法成功应用于牡丹育种。 因此建立完善的牡丹组
织培养体系进而开展遗传转化研究迫在眉睫。
利用牡丹不同外植体如叶片[7]、叶柄[8]、花药[9]、
花瓣[10]等进行愈伤组织诱导的研究已经取得了一定
进展,但愈伤组织分化率低,生长状况不佳的问题突
出,完善的组织培养体系尚未建立。 本研究首次以江
南牡丹凤丹幼嫩茎段为材料,探讨不同培养基、不同植
物生长调节剂对其愈伤组织诱导及其分化的影响,获
得了牡丹茎段愈伤组织诱导、分化及生根的最佳培养
基组合,建立了高效茎段愈伤组织再生体系,为研究遗
传转化体系提供了良好的材料。
1  材料与方法
1􀆰 1  材料
以江南牡丹(引种自安徽宁国)凤丹 3 ~ 4 月幼嫩
茎段为外植体,试验在浙江农林大学智能实验楼组培
室进行,样品采于浙江农林大学牡丹种植基地。
1􀆰 2  方法
1􀆰 2􀆰 1  外植体处理  晴天上午,取生长状况良好的牡
丹新生幼嫩茎段,装入样品袋,带回实验室。 用软刷刷
去表面污垢,洗涤剂浸泡 5min,流水冲洗 2h,然后置于
超净工作台内,用 70%酒精消毒 20s后,用无菌水冲洗
3 ~ 5 遍,之后用 2% NaClO 消毒 20min,无菌水冲洗 3
65
  1 期 江南牡丹茎段愈伤组织诱导与植株再生
~ 5 遍,用无菌滤纸吸干表面水分,在超净工作台切成
0􀆰 5 ~ 1cm小段待用。
1􀆰 2􀆰 2  不同培养基茎段愈伤组织诱导的影响  分别
以 MS、WPM、1 / 2MS、改良 MS(大量元素改为 WPM 大
量元素) 等为培养基,均加入 2, 4⁃D 0􀆰 2 mg·L - 1、
NAA0􀆰 2 mg·L - 1进行愈伤组织诱导,筛选合适的培养
基。
1􀆰 2􀆰 3  不同生长调节剂对茎段愈伤组织诱导的影响
  以改良 MS为基本培养基,生长素选择 NAA、2,4⁃D,
其浓度均为 0􀆰 1、0􀆰 2 和 0􀆰 3 mg·L - 1,细胞分裂素选
择 6⁃BA,其浓度均为 1􀆰 0、2􀆰 0 和 3􀆰 0 mg·L - 1,正交试
验获得愈伤组织诱导最佳培养基。 以空白作为对照。
1􀆰 2􀆰 4  不同细胞分裂素类型对茎段愈伤组织分化的
影响  以改良 MS 为基本培养基,细胞分裂素选择 6⁃
BA、 KT、 ZT 3 种, 浓 度 分 别 为 0􀆰 1、 0􀆰 2 和 0􀆰 3
mg·L - 1,生长素选择 NAA0􀆰 2 mg·L - 1,以空白作对
照。
1􀆰 2􀆰 5  不同有机物对茎段愈伤组织分化的影响  以
改良 MS为基本培养基,加入 KT 0􀆰 2 mg·L - 1和 NAA
0􀆰 2 mg·L - 1,培养基中分别加入椰乳( coconut milk,
CM)、水解酪蛋白( casein hydrolyzate,CH)、酵母提取
物(yeast extract,YE)等有机物,浓度分别设定为 200、
300、400 mg·L - 1,以空白作对照。
1􀆰 2􀆰 6  茎段愈伤组织分化最佳培养基筛选  以改良
MS为基本培养基,加入 KT、6⁃BA、NAA 3 种生长调节
剂,浓度分别为 0􀆰 1、0􀆰 2 和 0􀆰 3 mg·L - 1,进行正交试
验设计,以空白作对照。
1􀆰 2􀆰 7  生根培养基的筛选   当丛生芽长到 1 ~ 3 cm
时,将其转移到生根培养基上。 生根培养基以 1 / 2MS
为基本培养基,加入 IBA和 IAA 浓度分别为 0􀆰 1、0􀆰 2、
0􀆰 3 mg·L - 1,同时蔗糖浓度为 15 g·L - 1进行生根诱
导。
1􀆰 3  培养条件
所有培养基均加蔗糖 30 g·L - 1, 琼脂 7 g·L - 1,
pH 值 5􀆰 7 ~ 5􀆰 8。 培养温度均为 23℃, 光照强度为 35
~ 40 μmol·m - 2s - 1, 相对湿度为 40% ~70% ,愈伤组
织诱导阶段进行暗培养 15d 后转入光照条件下,光照
时间 8h · d - 1,愈伤组织分化阶段光照时间 10
h·d - 1。生根诱导阶段转入暗培养条件下。 以上每个
处理 10 瓶,每瓶 3 个外植体,重复 3 次。
1􀆰 4  数据采集与处理
先后培养 30d 后统计可见愈伤组织数,计算愈伤
组织的诱导率,将诱导出的愈伤组织转接到培养基上
培养 30d后统计分化出芽的愈伤组织数量并计算愈伤
组织的分化率,将分化出的芽团进行切割并转移到生
根培养基中,培养 30d 后观察芽底部生根的个数并计
算生根率。 利用 SPSS17􀆰 0 统计软件和 Excel 进行数
据统计分析。
诱导率 = 诱导出愈伤组织的个数 /接种个数 ×
100%
分化率 =分化出芽的愈伤组织个数 /接种个数 ×
100%
生根率 =生根的个数 /接种个数 × 100%
2  结果与分析
2􀆰 1  不同培养基茎段愈伤组织诱导的影响
图 1 显示,不同的培养基条件下均能诱导出茎段
愈伤组织,但诱导率不同,4 种培养基中,诱导率最高
的是改良 MS 培养基,诱导率为 77􀆰 8% ,最低的是
1 / 2MS 培养基,诱导率为 53􀆰 3% ,总体上来看,改良
MS培养基是诱导牡丹茎段愈伤组织最佳培养基。
图 1  不同培养基对牡丹愈伤组织诱导的影响
Fig. 1  Effect of different medium to callus induction
2􀆰 2  不同生长调节剂对茎段愈伤组织诱导的影响
在培养基不添加任何植物生长调节剂的情况下,
不能诱导出愈伤组织(表 1)。 培养基上添加植物生长
调节剂的均能诱导出愈伤组织。 诱导率最低的为
66􀆰 7% ,最高诱导率为 93􀆰 3% ,因此最佳的培养基组
合为改良 MS + 2,4⁃D 0􀆰 2 mg·L - 1 + 6⁃BA2􀆰 0 mg·
L - 1 + NAA0􀆰 3 mg·L - 1。 1 ~ 3 号诱导出的愈伤组织
均为白色,4 ~ 6 号培养基诱导出的愈伤组织为淡黄
色,7 ~ 9 号培养基诱导出的愈伤组织为淡黄色,愈伤
组织的形状有团状、颗粒状,有的致密,有的松软。 统
计分析发现,5 号培养基的诱导率与其他组合有明显
差异。
75
核  农  学  报 29 卷
表 1  不同植物生长调节剂水平对茎段愈伤组织诱导的影响
Table 1  Effects of different levels of hormones on stem callus induction
编号
Sequence
2,4⁃D /
(mg·L - 1)
6⁃BA /
(mg·L - 1)
NAA /
(mg·L - 1)
愈伤诱导率
Percentage of callus / %
愈伤组织特征
The characteristics of callus
1 0􀆰 1 1􀆰 0 0􀆰 1 66􀆰 7F 白色,致密、颗粒状
White,compact granular
2 0􀆰 1 2􀆰 0 0􀆰 2 73􀆰 3E 白色、致密、颗粒状
White,compact granular
3 0􀆰 1 3􀆰 0 0􀆰 3 70􀆰 0F 白色、松软、团状
White,compact Agglomerate
4 0􀆰 2 1􀆰 0 0􀆰 2 80􀆰 0D 淡黄色、疏松、颗粒状
Light⁃yellow loose granular
5 0􀆰 2 2􀆰 0 0􀆰 3 93􀆰 3A 淡黄色、疏松、颗粒状
Light⁃yellow loose granular
6 0􀆰 2 3􀆰 0 0􀆰 1 83􀆰 3C 淡黄色、疏松、颗粒状
Light⁃yellow loose granular
7 0􀆰 3 1􀆰 0 0􀆰 3 86􀆰 7B 黄色、致密、颗粒状
Yellow compact granular
8 0􀆰 3 2􀆰 0 0􀆰 1 76􀆰 7E 黄色、致密、颗粒状
Yellow compact grannular
9 0􀆰 3 3􀆰 0 0􀆰 2 80􀆰 0D 黄色、松软、团状
Yellow loose Agglomerate
ck 0 0 0 0G
    注:不同字母代表 0􀆰 01 水平差异极显著。 下同。
Note:Lecters mean significant difference at 0􀆰 01 level. The same as following.
2􀆰 3  不同细胞分裂素类型对茎段愈伤组织分化的影

由图 2 可知,3 种细胞分裂素均能诱导茎段愈伤
组织分化,分化率有所差异,当 6⁃BA、KT 浓度为 0􀆰 2
mg·L - 1时,愈伤组织分化率最高,ZT 浓度为 0􀆰 3 mg
·L - 1时,愈伤组织分化率最高。 总体上来看,KT的诱
导分化率最高,其次是 6⁃BA,诱导分化率最低的是
ZT,对照不加任何激素的诱导分化率为 0,总体上来
看,在 NAA为 0􀆰 2 mg·L - 1的情况下,添加 3 种细胞分
裂素均能诱导茎段愈伤组织分化,且分化率均在 20%
以上。 最佳的组合是改良 MS + KT0􀆰 2 mg·L - 1 +
NAA0􀆰 2 mg·L - 1,愈伤组织分化率达到 37􀆰 8% 。
2􀆰 4  不同有机物对茎段愈伤组织分化的影响
不同的有机物对茎段愈伤组织的分化具有一定作
用,3 种有机物添加后茎段愈伤组织分化率均有不同
程度的提高(图 3),相比较而言,添加椰乳和水解酪蛋
白时,随着浓度的增加,愈伤组织分化率先增加后降
低,椰乳浓度 300 mg·L - 1时,分化率为 41􀆰 1% ,水解
酪蛋白浓度为 300 mg·L - 1时,分化率为 42􀆰 2% 。 酵
母提取物随着添加浓度的增加,愈伤组织分化率逐渐
提高,浓度为 400 mg·L - 1时,分化率达到 38􀆰 9% 。 三
者在最佳浓度时均比不加有机物愈伤组织分化率高。
2􀆰 5  不同处理组合对茎段愈伤组织分化的影响
在不添加植物生长调节剂的组合里面,愈伤组织
的分化率为 0(表 2)。 在几种组合中,牡丹茎段愈伤
组织分化率均在 25%以上,但是总体分化率不高,均
在 40%以下。 正交试验可以看出,组合 6 愈伤组织分
化率最高,为 37􀆰 8% ,组合 9 愈伤组织分化率最低,为
25􀆰 6% ,方差分析发现,组合 6 与其他组合差异显著,
因此最佳培养基组合为改良 MS + KT0􀆰 2 mg·L - 1 + 6⁃
BA0􀆰 3 mg·L - 1 + NAA0􀆰 1 mg·L - 1。
2􀆰 6  不同激素浓度对愈伤不定芽生根诱导的影响
不同的生长素类型诱导生根率有所区别(表 3)。
相对来说,IBA 比 IAA 效果更好,在浓度为 0􀆰 2 mg·
L - 1时,诱导率为 13􀆰 3%达到最大值,随着浓度的不断
增高,生根率呈现先升高后降低的变化趋势,当 IAA
浓度为 0􀆰 1 mg·L - 1时,没有不定芽生根,而浓度为
0􀆰 2 mg·L - 1时,诱导率为 10􀆰 0% 。
85
  1 期 江南牡丹茎段愈伤组织诱导与植株再生
表 2  不同组合对茎段愈伤组织分化的影响
Table 2  Effects of different levels of hormones on stem callus differentiation
编号
Sequence
KT /
(mg·L - 1)
6⁃BA /
(mg·L - 1)
NAA /
(mg·L - 1)
愈伤分化率
Differentiation rate / %
1 0􀆰 1 0􀆰 1 0􀆰 1 28􀆰 9E
2 0􀆰 1 0􀆰 2 0􀆰 2 31􀆰 1D
3 0􀆰 1 0􀆰 3 0􀆰 3 32􀆰 2C
4 0􀆰 2 0􀆰 1 0􀆰 2 28􀆰 9E
5 0􀆰 2 0􀆰 2 0􀆰 3 36􀆰 7B
6 0􀆰 2 0􀆰 3 0􀆰 1 37􀆰 8A
7 0􀆰 3 0􀆰 1 0􀆰 3 35􀆰 6B
8 0􀆰 3 0􀆰 2 0􀆰 1 33􀆰 3C
9 0􀆰 3 0􀆰 3 0􀆰 2 25􀆰 6F
ck 0 0 0 0G
图 2  不同细胞分裂素及浓度对愈伤组织分化的影响
Fig. 2  Effect of different CTK
concentration to callus differentiation
表 3  不同组合对茎段愈伤不定芽生根的影响
Table 3  Effects of different levels of hormones on rooting
IBA /
(mg·L - 1)
生根率
Rooting rate / %
IAA /
(mg·L - 1)
生根率
Rooting rate / %
0􀆰 1 6􀆰 7 0􀆰 1 0􀆰 0
0􀆰 2 13􀆰 3 0􀆰 2 10􀆰 0
0􀆰 3 10􀆰 0 0􀆰 3 6􀆰 7
3  讨论
牡丹作为中国候选国花和十大名花之一,具有较
高的观赏价值和商业价值。 但其再生体系尚未建立,
图 3  不同有机物类型及浓度对愈伤组织分化的影响
Fig. 3  Effect of different style and concentration
of organs to callus differentiation
主要是愈伤组织分化困难和生根困难两个方面。 外植
体类型能够影响到愈伤组织诱导与植株再生,本试验
以幼嫩茎段作为外植体,总体来说,愈伤组织诱导率较
高,而愈伤组织分化率和生根率相对较低,其原因为植
物愈伤组织诱导和植株再生除了与外植体类型相
关[11 - 14]外可能与外植体的生理状态有很大关系,幼嫩
茎段属于新生组织,分化能力比较强,因此愈伤组织诱
导率比较高,后期愈伤组织分化和生根率较低主要可
能与诱导过程中培养基和植物激素相关,具体原因有
待进一步研究。
暗培养处理对不定芽再生的影响在其他植物中也
有报道[15],其原因可能是在暗培养条件下,生长素的
降解过程较慢,有助于调节外植体内生长素和细胞分
裂素之间的比例,从而有助于愈伤组织的器官形成,本
研究在愈伤组织诱导阶段和生根阶段均采用暗处理,
95
核  农  学  报 29 卷
注:1.幼嫩茎段,2 ~ 4 茎段诱导愈伤组织,5 愈伤组织增殖,6 ~ 7 愈伤组织分化,8 分化苗生长,9 诱导生根。
Note:1. Young stem, 2 to 4 callus induction of stem ,5 callus proliferation, 6 to 7 callus differentiation 8 seeding growth, 9 rooting.
图 4  牡丹茎段愈伤组织诱导及植株再生
Fig. 4  Plate Induction of Callus and Plant Regeneration from Paeonia suffruticosa Andr
获得较好效果,这与林颖等[16]研究结果保持一致。
培养基类型是影响愈伤组织诱导和分化的重要因
素。 Arruda 等[17]发现适当提高培养基中钙的浓度,可
使桉树愈伤组织的总蛋白和糖含量增加,从而明显提
高器官再生效果。 本试验中,利用 WPM 的大量元素
取代了 MS的大量元素,NH4NO3 的量在 MS 的基础上
有所增加,试验结果来看,牡丹茎段愈伤组织诱导率有
所提高,因此,改良 MS培养基是较合适的培养基。 这
与 Kalpana等[18]试验结果保持一致。
有机物具有促进细胞分裂的作用,本试验选用了
3 种有机物加入牡丹茎段愈伤组织分化培养基中,试
验结果显示,水解酪蛋白对愈伤组织分化促进作用更
加明显,研究认为,水解酪蛋白在促进体细胞胚形成和
提高体细胞胚质量方面具有重要作用[22 - 23]。 加入有
机物后,愈伤组织的质量明显提高,合适的有机物浓度
能提高愈伤组织的分化率,这与前人在其他研究中的
结果相一致[ 19 - 21]。
试验结果表明,愈伤组织不定芽生根率较低,最高
仅为 13􀆰 3% ,这可能与前期愈伤组织的质量、愈伤组
织诱导不定芽的质量密切相关,具体原因有待进一步
研究。 前人也曾用愈伤组织不定芽进行诱导生根试
验,最高的生根率仅为 9􀆰 6% [29],本试验生根率要更
高。 牡丹在组织培养过程中生根率较低也是制约牡丹
再生体系建立的一个重要因素,可能与牡丹品种、培养
条件、外植体类型均有密切关系,本试验中在生根阶段
采用了暗培养的方式进行培养,试图创造生根需要的
暗环境,有一定作用,不定芽生根困难的机理有待于进
一步研究。
近年来,牡丹各个品种再生体系建立研究较多,刘
会超等[24 - 25]利用腋芽作为外植体,研究了各因素对魏
紫牡丹侧芽污染、不定芽发生、增殖与生根的影响,获
得了侧芽不定芽发生的最佳培养基和较高的生根率。
06
  1 期 江南牡丹茎段愈伤组织诱导与植株再生
张改娜等[26 - 27]利用凤丹不定芽和子叶诱导植株并促
进幼苗生根。 毛红俊等[28]利用日本牡丹子叶诱导愈
伤组织并获得了植株再生,但存在愈伤组织分化率和
苗生根率较低的问题。 利用牡丹幼嫩茎段再生植株尚
未见报道,因此,研究幼嫩茎段的愈伤组织再生体系具
有重要意义。 通过本研究,获得了茎段愈伤组织诱导、
分化和生根的最佳培养基及分化过程中合适有机物的
种类和浓度,初步建立了茎段愈伤组织再生体系,为遗
传转化体系提供了良好的材料。
4  结论
本试验结果显示,江南牡丹凤丹茎段愈伤组织诱
导的最佳的培养基为改良 MS +2,4⁃D 0􀆰 2 mg·L - 1 +
6⁃BA 2􀆰 0 mg·L - 1 + NAA 0􀆰 3 mg·L - 1,诱导率达到
93􀆰 3% ,KT在诱导愈伤组织方面效果较好,添加有机
物能促进牡丹愈伤组织的分化,愈伤组织分化最佳组
合为改良MS + KT0􀆰 2 mg·L - 1 + 6⁃BA 0􀆰 3 mg·L - 1 +
NAA 0􀆰 1 mg·L - 1,不定芽生根的最佳组合为 1 / 2MS
+ IBA 0􀆰 2 mg·L - 1,生根率为 13􀆰 3% 。 愈伤组织分化
与愈伤组织的质量、牡丹的品种类型、外植体基因型密
切相关,相关研究还有待进一步探索。
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Journal of Nuclear Agricultural Sciences
2015,29(1):0056 ~ 0062
Efficient Induction of Callus and Plant Regeneration From
Paeonia suffruticosa Andr.
ZHU Xiangtao1   WANG Yan2   WU Qian1   ZHANG Jinglei1   ZHU Keye1
( 1 Tianmu College of Zhejiang Agricultural and Forestry University,Lin’an,Zhejiang  311300;
2 Research Institute of Forestry,Key Laboratory of Tree Breeding and Cultivation /
Chinese Academy of Forestry,State Forestry Administration,Beijing  100091)
Abstract:In order to study the effect of different medium and different plant hormone on callus induct and plant
regeneration, in this study, young stems of the cultivar fengdan were used as explants to induce callus and its
regeneration system was successfully established via callus pathway. The results showed that the best medium was
modified MS, the induction rate of callus was 93􀆰 3% , the optimum medium of callus induction were the modified MS +
2,4⁃D0􀆰 2 mg·L - 1 + 6⁃BA2􀆰 0 mg·L - 1 + NAA0􀆰 3 mg·L - 1 . KT 0􀆰 2 mg·L - 1 and hydrolyzed Casein 300 mg·L - 1
was an optimum concentration for callus differentiation. The best medium of callus differentiation were modified MS +
KT0􀆰 2 mg·L - 1 + 6⁃BA0􀆰 3 mg·L - 1 + NAA0􀆰 1 mg·L - 1, the differentiation rate was 37􀆰 8% . The roots were induced
after shoots were transferred to 1 / 2 MS medium containing 0􀆰 2 mg·L - 1 IBA. The induction rate was 13􀆰 3% . Our
research results will provide theoretical basis and technology for further research on efficient regeneration system and
transgenic breeding of peony.
Keywords:Paeonia suffruticosa Andr. ‘fengdan’, stem, callus, plant regeneration
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