免费文献传递   相关文献

花器官大小调控机制的研究进展



全 文 :植物生理学报 Plant Physiology Journal 2014, 50 (6): 691~697  doi: 10.13592/j.cnki.ppj.2014.0019 691
收稿 2014-01-22  修定 2014-05-16
资助 浙江省自然科学基金项目(Y3100273和Y14C020013)、国
家自然科学基金项目(31100203)。
* 通讯作者(E-mail: wang_208@163.com; Tel: 0571-
28865329)。
花器官大小调控机制的研究进展
张栩佳, 胡灵芝, 陈哲皓, 李颖, 王利琳*
杭州师范大学生命与环境科学学院, 杭州310036
摘要: 自然界中植物花的大小受到遗传因素和环境因素的双重调节。传粉者、天敌和逆境胁迫等多种因素相互制约, 作为
选择压力共同影响花器官形态和繁殖能力, 通过选择适合的基因型, 推动花器官大小的进化。近年来, 对花器官大小调控机
制的研究又有新的进展, 已在模式植物拟南芥中分离出大量参与花器官大小调控的基因, 并证实它们主要在细胞水平影响
花器官的增殖和生长。本文介绍花器官大小的进化及其生物学意义, 并综述了拟南芥花器官大小调控机制的研究进展。
关键词: 花器官大小; 基因; 调控机制; 细胞增殖; 细胞生长
Research Progress in Regulation Mechanism of Floral Organ Size
ZHANG Xu-Jia, HU Ling-Zhi, CHEN Zhe-Hao, LI Ying, WANG Li-Lin*
College of Life and Environmental Sciences, Hangzhou Normal University, Hangzhou 310036, China
Abstract: The size of flower is determined by both genetic and environmental factors in nature. The combined
selective pressure from pollinators, predators and stress affects the floral organ morphology and its reproductive
capacity, which promotes the evolution of floral organ size by genotype selection. Recently, progress has been
made on the mechanism research of floral organ size regulation. Several genes which affect the cell prolifera-
tion and cell expansion have been isolated and proved to be involved in floral organ size regulation at the cellu-
lar level in Arabidopsis thaliana. In this review, we focus on the evolution of floral organ size, its biological
significance, and summarize the research progress of its regulation mechanism in A. thaliana.
Key words: floral organ size; gene; regulation mechanism; cell proliferation; cell expansion
植物中存在保留分生能力的特定细胞群, 一
些器官如根和茎能够持续生长, 而一些特定器官
如花和叶却只能发育至一定的规模。包括花在内
的器官能够发育到一个特定尺寸, 这是植物在生
存环境中长期进化的结果(Mojica和Kelly 2010)。
花作为植物生殖器官, 其起源被达尔文喻为“恼人
之谜” (Crepet 2000)。自然界中不同植物之间花器
官尺寸不一, 同一植物之间花器官的大小也存在
差异(Andersson 2012; Hermann和Kuhlemeier 2011;
Delph等2010)。环境信号能影响植物发育过程中
花器官的大小, 但是这种影响却受制于个体本身
的遗传信息, 比如处于最佳生长条件下雏菊的花
器官尺寸依然不会大于向日葵的花器官尺寸(Pow-
ell和Lenhard 2012)。因此, 学术界普遍认为植物花
器官的大小受遗传因素和环境信号的双重调节
(Johnson和Lenhard 2011)。
花器官大小与花的形态和功能密切相关, 而
且关乎物种生存能力、繁殖能力等特性(Horiguchi
等2006)。植物花器官的发育分为3个过程: 成花诱
导、花原基形成、花器官形成和发育。花发育初
期, 细胞数目因增殖而增多, 但花器官体积仅略微
增大; 随后细胞增殖在特定区域被逐渐抑制, 细胞
停止分裂开始体积增大, 因此, 花器官尺寸的增加
极大程度依赖于细胞生长时液泡体积的增大
(Krizek和Anderson 2013)。目前在模式植物拟南
芥中, 已分离鉴定到多个通过影响细胞增殖和生
长过程从而参与调控花器官尺寸的基因。研究植
物花器官大小不仅有助于进一步揭示调控器官大
小的基因网络, 而且对植物的品质遗传有重要指
导意义, 在生产实践中有广泛的应用前景。本文
总结了花器官发育过程以及器官大小的进化学意
义, 综述了植物花器官大小调控基因的最新研究
进展。
植物生理学报692
1 植物花器官的发育过程
植物花器官的发育过程已有大量文献进行了
详细论述, 该过程受到复杂调控网络的精确调控
(O’Maoileidigh等2013)。在花器官发育的3个过程
中, 成花诱导阶段是指植物由营养生长向生殖生
长转变的过程, 在此阶段, 温度、光周期、土壤养
分等环境信号协同植物自身遗传因子共同促使植
物顶端分生组织(SAM)转变为花序分生组织(IM);
花原基形成阶段, 即IM区域内生长素通过极性运
输得以不断积累, 形成花分生组织(FM)即花器官
原基; 花器官形成和发育阶段, 即随着花分生组织
特征基因的激活, 花器官原基形成为成熟的花器
官(Siriwardana和Lamb 2012; Liu等2009a; Wellmer
等2006; Reinhardt等2000), 其调控机制已有“ABC
模型”、“ABCDE模型”进行了阐述(Ferrario等
2004; Coen和Meyerowitz 1991)。
2 植物花器官大小的进化及其意义
花器官的大小是影响植物交配系统进化和保
障繁殖的关键生态学参数(Goodwillie等2010; Sar-
gent等2007)。适应传粉要求、确保繁殖率是花器
官进化的根本因素(Armbruster 2001)。花器官的
大小往往与传粉者造访传粉的概率密切相关(Fen-
ster等2004)。通常情况下, 自主性自花授粉植物花
器官尺寸比依赖传粉者的自花授粉或异花授粉植
物更小(Goodwillie等2010)。在传粉者稀少的生存
环境下, 具备自主性自花授粉能力的植物更具生
殖优势(Elle和Carney 2003), 这会在一定程度上减
少遗传多样性, 但更好地确保了繁殖成功率, 丰富
了自然界中植物交配系统的特征多样性(Kalisz等
2004)。相反地, 异花授粉植物为吸引更多传粉者
到访, 通常会在花器官形态展示上花费更多精力
(Goodwillie等2010)。相比小花型植物, 大花型植
物一般具有更为醒目的花器官, 而且拥有更多花
蜜(Fenster等2004; Blarer等2002)。在不同植物以
及同一植物的不同花型中, 传粉者更倾向于造访
尺寸更大、更醒目者, 这种偏好给异花传粉植物
的花器官进化设置了选择方向(Dudash等2011;
Mojica和Kelly 2010; Venail等2010)。可以预见, 植
物花器官的尺寸、颜色、气味、花蜜数量等特征
通常也是与传粉者共同进化的(Dudash等2011; Ve-
nail等2010; Kalisz等2004; Blarer等2002)。
花器官的进化并不只依赖于传粉者的选择,
还依赖于环境因素对植物生存能力(基因型)的选
择(Johnson和Lenhard 2011)。相对干旱的生存环境
下, 大花基因型植株更易受到环境胁迫影响而难
于生存(Galen和Cuba 2001), 例如, 拥有大花基因型
的猴面花植株尽管确保了繁殖优势, 但是相比拥
有小花基因型的植株, 它们开花前死亡率更高, 因
此逆境环境更倾向于选择小花型植株品种(Mojica
和Kelly 2010; Armbruster 2001)。
Specht和Bartlett (2009)的研究表明, 种子猎食
者对花型的偏好性也可能是花器官尺寸进化的驱
动力之一, 它们通常猎食经由传粉活动产生的植
物种子, 所以对花型的偏好性与传粉者类似。种
子猎食者的行为降低了植物的繁殖率, 从而部分
抵消了传粉者对于花型定向选择的力度, 影响植
物花器官大小的进化(Navarro和Medel 2009;
Parachnowitsch和Caruso 2008)。也有研究认为种
子猎食者的行为活动并不是花器官尺寸进化的重
要因素, 花器官大小进化的关键因素是自然环境
对植物生存能力(基因型)的选择和传粉者的选择,
两者相互约束共同促进(Parachnowitsch和Kessler
2010)。
3 植物花器官大小的调控机制
花发育过程中最终决定花器官大小的是细胞
增殖和细胞生长这两个细胞水平的生理生化过程
(Horiguchi等2006)。Powell和Lenhard (2012)的研
究表明, 植物对花器官大小的调控主要通过以下4
种方式进行: (1)对细胞增殖或生长持续时间的调
控; (2)对细胞增殖或生长比率的调控; (3)对发育的
花器官中细胞增殖区域大小的调控; (4)对形成初
始花器官原基细胞数目的调控。在模式植物拟南
芥中, 以前2种调控方式为主, 目前已有一系列调
控细胞增殖和细胞生长的基因被陆续分离并鉴定
(图1), 为深入研究花器官大小的调控机制和调控
网络奠定了分子基础。
3.1 细胞增殖调控对花器官大小的影响
拟南芥中参与细胞增殖调控的基因包括正调
控基因和负调控基因两大类(表1)。正向调控基因
中, ANT (AINTEGUMENTA)基因编码一系列AP2/
ERF (ethylene response factor subfamily of AP2)家
族转录因子, ANT基因可以通过延长细胞增殖的持
张栩佳等: 花器官大小调控机制的研究进展 693
续时间来调控花器官大小。ANT基因的稳定表达
能使植株花器官和叶片保持细胞增殖能力, 增强
或削弱该基因的表达分别能够增大或减少花器官
尺寸(Mizukami和Fischer 2000)。ARGOS (AUX-
IN-REGULATED GENE INVOLVED IN ORGAN
SIZE)基因受到生长素信号诱导, 可以通过促进下
游ANT基因的表达来促进器官生长(Krizek和Eaddy
2012)。上调或下调ARGOS基因的表达水平, 相对
应地会产生较大尺寸或较小尺寸的花器官(Hu等
2003)。
OSR1 (ORGAN SIZE RELATED1)也是一个植
物激素应答基因, 受到乙烯正调节以及脱落酸和
油菜素甾醇负调节。在正在发育的侧生器官中,
OSR1通过维持其下游ANT基因的表达来影响细胞
增殖, 促进器官生长。拟南芥中过量表达OSR1基
因 , 能够形成比野生型更大的花器官 (Feng等
2011)。
AIL/PLT (AINTEGUMENTA-LIKE/PLETHO-
RA)基因家族成员编码与ANT蛋白功能冗余的转
录因子, 共同参与调控花器官生长。ant/ail6双突
变体由于过早地抑制了细胞增殖, 使得每朵花上
表1 拟南芥中调控细胞增殖的相关基因
Table 1 Genes involved in the regulation of cell proliferation in A. thaliana
基因名称 作用方式 基因表达与相应表型 参考文献
ANT 促进细胞增殖 上调或下调该基因表达, 花器官相应增大或减小 Krizek和Eaddy 2012; Hu等2003;
Mizukami和Fischer 2000
ARGOS 促进细胞增殖 上调或下调该基因表达, 花器官相应增大或减小 Krizek和Eaddy 2012; Hu等2003;
Mizukami和Fischer 2000
OSR1 促进细胞增殖 过量表达该基因, 花器官增大 Feng等2011
AIL5/AIL6 促进细胞增殖 过量表达AIL5或AIL6, 花器官均增大 Krizek 2009; Nole-Wilson等2005
KLUH 促进细胞增殖 klu突变体花瓣和萼片较小; 过量表达该基因, 花器官增大 Anastasiou等2007
GRF1/GRF2/GRF3/ 促进细胞增殖 下调这些基因的表达, 植株花器官发育异常, 尺寸减小 Lee等2009; Kim和Kende 2004;
GRF4/GRF7/GRF8/ Kim等2003
GRF9
GIF1/GIF2/GIF3 促进细胞增殖 gif1/gif2/gif3三突变体花器官较小; gif1遗传背景下分别过 Lee等2009
量表达GIF1、GIF2和GIF3, 花器官大小均与野生型无殊
SWP 促进细胞增殖 swp突变体花瓣尺寸较小 Autran等2002
BB 抑制细胞增殖 bb突变体花器官较大; 上调该基因表达, 花器官减小 Disch等2006
DA1和DAR1 抑制细胞增殖 基因功能缺失或者过量表达, 花器官相应增大或减小 Nath等2003
TCP4 抑制细胞增殖 过量表达该基因, 花器官减小, 萼片发育异常 Nag等2009
MED25 抑制细胞增殖 该基因功能缺失或者过量表达, 花器官相应增大或减小 Xu和Li 2011
BPEp 抑制细胞增殖 bpep突变体花瓣较大 Varaud等2011
ARF8 抑制细胞增殖 arf8突变体花瓣较大 Varaud等2011
的花器官数目显著减少, 尺寸变小(Krizek 2009);
而过量表达AIL5和AIL6基因的植株, 则产生了相
对较大的花器官(Nole-Wilson等2005)。
拟南芥KLUH (KLU/CYP78A5)基因编码细胞
色素P450单加氧酶, 在拟南芥花器官发育过程中
通过解除增殖抑制、延长细胞增殖时间, 促进花
器官生长(Anastasiou等2007)。klu突变体植株的叶
片、花瓣和萼片尺寸均比野生型小; 而过量表达
KLU基因的植株则因促进细胞增殖继而形成比野
图1 拟南芥中涉及调控花器官大小的因子
Fig.1 Genetic factors involved in the regulation of floral
organ size in A. thaliana
根据Krizek和Anderson (2013)文献修改。↘表示促进; ┨表示抑制。
植物生理学报694
生型更大的花器官(Anastasiou等2007)。GRFs
(GROWTH-REGULATING FACTORS)和GIFs
(GRF-INTERACTING FACTORs)基因分别编码一
类转录因子和一类转录共激活因子, 两者共同作
用促进细胞增殖, 进而调控花器官的大小(Kim和
Kende 2004; Kim等2003)。研究发现, gif1、gif2、
gif3突变体植株具有较小尺寸的侧生器官(花和
叶), 因而推测GIF基因家族通过调控细胞增殖的
持续时间和比率, 调控器官大小, 表型弥补实验证
实了这一推测, 而GRF基因家族也有类似的作用机
制(Lee等2009; Kim等2003)。
其他细胞增殖过程正向调控因子还有SWP
(STRUWELPETER), 研究发现拟南芥swp功能缺失
突变体细胞数量减少, 因而产生尺寸较小的花器
官(Autran等2002)。
在拟南芥花器官发育过程中, 也有许多负向
调控细胞增殖进而参与花器官大小调控的基因已
经被陆续分离和鉴定。其中 , 拟南芥MICROR-
NA396基因家族编码产生miR396, 能与GRF基因家
族成员的mRNA发生碱基互补配对, 推测其通过转
录后的沉默抑制方式负向调控GRF的功能(Liu等
2009b)。实验结果显示 , 在拟南芥中过量表达
miR396, 显著地降低了GRF基因的表达水平, 间接
导致植株花器官发育异常、叶片变小(Rodriguez
等2010; Liu等2009b)。
BB (BIG BROTHER)基因编码一个E3泛素连
接酶, 该基因缺失突变体形成较大的花器官; 而上
调BB基因的表达水平则会引起花瓣和萼片减小,
产生较小的花器官(Disch等2006), 被认为是拟南
芥花器官发育中一个重要的细胞增殖过程负调控
因子, 它可能通过泛素依赖的蛋白降解途径降解
生长促进因子来发挥作用(Disch等2006)。
DA1和DAR1 (DA1-related)基因编码泛素受体
基因, 这两个基因的缺失或者过量表达, 能使植株
分别产生尺寸较大或较小的花器官, 通过抑制细
胞增殖负向调控花器官大小(Li等2008)。TCP (TE-
OSINTE BRANCHED/CYCLOIDEA/PCF)转录因
子家族成员调控植物器官的发育过程, 在拟南芥
叶发育过程中, 缺失II类TCP基因的突变体由于叶
片边缘细胞分裂加快, 叶片呈波浪状, 并伴随有尺
寸的显著增大(Schommer等2008; Nath等2003)。研
究表明, TCP4基因过量表达, 使植株产生较小的花
器官, 同时影响萼片的正常发育(Nag等2009)。也
有研究表明, 拟南芥miR319a靶向作用于TCP家族
中的5个成员(TCP2、TCP3、TCP4、TCP10、
TCP24), 其中TCP4是其关键性调节目标, 因而拟
南芥miR319a功能缺失突变体也表现出类似TCP4
基因过表达植株的花器官大小特征(Rodriguez等
2010; Nag等2009)。
3.2 细胞生长调控对花器官大小的影响
研究发现, 前文提到的OSR1基因既能促进细
胞增殖又能刺激细胞生长(Feng等2011), 随研究工
作不断深入, 拟南芥中调控细胞生长的其他因子
也正被逐渐了解(表2)。
油菜素甾醇(brassinosteroid, BR)诱导的ARL
(ARGOS-LIKE)基因是ARGOS的同源基因 , 与
ARGOS功能不同, ARL主要通过促进细胞生长进而
调节器官生长, 因而增强或削弱该基因表达会导
致植株形成较大或较小的侧生器官, 如子叶节和
叶片(Hu等2006)。
MED8 (MEDIATOR COMPLEX SUBUNIT 8)
基因编码一个中介复合物亚基, 中介复合物是转
录因子与RNA聚合酶II之间传递信息的中介, 是细
胞生长的正调控因子, 可以促进花器官增大(Xu和
表2 拟南芥中调控细胞生长的相关基因
Table 2 Genes involved in the regulation of cell expansion in A. thaliana
基因名称 作用方式 基因表达与相应表型 参考文献
OSR1 促进细胞生长 过量表达该基因, 花器官增大 Feng等2011
ARL 促进细胞生长 上调或下调该基因表达量, 花器官相应增大或减小 Hu等2006
MED8 促进细胞生长 med8突变体花器官较小 Xu和Li 2012
MED25 抑制细胞生长 该基因功能缺失或者过量表达, 花器官相应增大或减小 Xu和Li 2011
BPEp 抑制细胞生长 bpep突变体花瓣较大 Varaud等2011
ARF8 抑制细胞生长 arf8突变体花瓣较大 Varaud等2011
张栩佳等: 花器官大小调控机制的研究进展 695
Li 2012, 2011)。MED8的功能缺失拟南芥植株, 其
细胞生长的程度被减弱, 因而表现出较小尺寸的
花器官(Xu和Li 2012)。
负向调控细胞生长进而参与花器官大小调控
的基因也已经被陆续证实。例如, 拟南芥中MED25
(MEDIATOR COMPLEX SUBUNIT 25)基因也编码
一个中介复合物亚基MED25, 却与MED8作用相
反, 不仅能限制细胞的持续生长, 还能在一定程度
上抑制细胞增殖, 从而参与花器官大小调控。降
低或者提高MED25基因表达量的拟南芥植株, 相
对应地表现出尺寸较大或较小的花器官(Xu和Li
2011)。
拟南芥BPE (BIGPETAL)基因编码一个bHLH
(basic helix-loop-helix)转录因子, 在特定花器官中
参与调控。该基因通过不同剪接形成BPEub和
BPEp两种转录产物, 前者在植物体内广泛表达, 后
者只在花瓣(petal)中表达(Szecsi等2006)。BPEp表
达产物通过限制细胞生长调控器官大小, 因而该
基因功能缺失突变体表现出明显增大的花瓣尺寸
(Szecsi等2006)。
ARF8 (AUXIN RESPONSE FACTOR 8)转录
因子处于生长素信号通路下游, 研究显示它能与
BPEp蛋白C-端区域相互作用, arf8突变体由于细胞
数目增加和细胞尺寸增大, 呈现出比野生型植株
更大的花瓣(Varaud等2011)。对bpe/arf8双突变体
的研究表明, 在花瓣发育早期, ARF8和BPEp以协
同方式抑制细胞增殖; 而在后期, 两者又可通过相
互作用来限制细胞生长, 以此方式调控花瓣最终的
大小(Varaud等2011)。
3.3 弥补机制
研究发现, 许多突变体植株细胞增殖持续时间
改变, 直接引起花器官大小发生相应改变, 但这一
现象并不对所有细胞增殖调控突变体适用, 部分突
变体最终形成的花器官大小与正常植株无显著性
差异(Tsukaya 2008; Tsukaya和Beemster 2006)。这
些研究认为细胞的生长调控能在一定程度上弥补
细胞数目变化引发的器官缺陷, 该机制称为弥补
机制(Tsukaya 2008; Tsukaya和Beemster 2006)。如
缺失整个CYCLIN D3基因家族的拟南芥植株, 细胞
增殖被过早抑制, 产生的花器官细胞数量较少, 但
最终形成的器官大小无异于野生型植株(Dewitte
等2007); FZR2 (FIZZY-RELATED2)基因编码一个
正调节因子, 该基因功能缺失突变体也因弥补机
制的存在, 最终产生的花器官大小与野生型一致
(Larson-Rabin等2009)。进一步的研究还发现, 弥
补机制并不能在所有遗传背景下发挥作用, 仅当
细胞数目减少到特定阈值才会启动, 此机制有待
更深入、更全面的探索(Fujikura等2009)。
4 展望
植物花器官的生长发育是一个涉及多遗传途
径和多调控因子的复杂网络调控过程, 花器官大
小的进化是由遗传、传粉者、天敌、自然环境等
多方面因素共同作用而推动的。近年来, 伴随研
究手段和研究方法的不断创新, 人们发现拟南芥
中很多涉及细胞增殖和细胞生长过程的基因主导
了花器官大小的调控(Krizek和Anderson 2013), 也
有证据表明植物激素信号通路和弥补机制在该调
控网络中起到整合和协调的作用(Feng等2011; Fu-
jikura等2009; Hu等2006, 2003), 但是仍然存在许多
关键性问题亟待研究和阐明。比如: 多种遗传途
径所携带的共同参与调控花器官大小的信号如何
在植物体内精确整合? 花器官的发育过程和大小
决定机制如何在空间和时间上合理协调? 这一复
杂基因调控网络如何精确调控花器官生长至特定
尺寸? 相信随着科学技术的发展和相关研究的深
入, 花器官大小的基因调控网络会越来越清晰, 其
调控机制也会越来越明朗。
参考文献
Anastasiou E, Kenz S, Gerstung M, MacLean D, Timmer J, Fleck
C, Lenhard M (2007). Control of plant organ size by KLUH/
CYP78A5-dependent intercellular signaling. Dev Cell, 13 (6):
843~856
Andersson S (2012). Does inbreeding promote evolutionary reduction
of flower size? Experimental evidence from Crepis tectorum
(Asteraceae). Am J Bot, 99 (8): 1388~1398
Armbruster WS (2001). Evolution of floral form: electrostatic forces,
pollination, and adaptive compromise. New Phytol, 152 (2):
181~186
Autran D, Jonak C, Belcram K, Beemster GTS, Kronenberger J,
Grandjean O, Inze D, Troas J (2002). Cell numbers and leaf
development in Arabidopsis: a functional analysis of the STRU-
WWELPETER gene. EMBO J, 21 (22): 6036~6049
Blarer A, Keasar T, Shmida A (2002). Possible mechanisms for the
formation of flower size preferences by foraging bumblebees.
Ethology, 108 (4): 341~351
Coen ES, Meyerowitz EM (1991). The war of the whorls: genetic
植物生理学报696
interactions controlling flower development. Nature, 353 (5):
31~37
Crepet WL (2000). Progress in understanding angiosperm history,
success, and relationships: Darwin’s abominably “perplexing
phenomenon”. Proc Natl Acad Sci USA, 97 (24): 12939~12941
Delph LF, Arntz AM, Scotti-Saintagne C, Scotti I (2010). The ge-
nomic architecture of sexual dimorphism in the dioecious plant
Silene latifolia. Evolution, 64 (10): 2873~2886
Dewitte W, Scofield S, Alcasabas AA, Maughan SC, Menges M,
Braun N, Collins C, Nieuwland J, Prinsen E, Sundaresan V et al
(2007). Arabidopsis CYCD3 D-type cyclins link cell prolifera-
tion and endocycles and are rate-limiting for cytokinin respons-
es. Proc Natl Acad Sci USA, 104 (36): 14537~14542
Disch S, Anastasiou E, Sharma VK, Laux T, Fletcher JC, Lenhard M
(2006). The E3 ubiquitin ligase BIG BROTHER controls Arabi-
dopsis organ size in a dosage-dependent manner. Curr Biol, 16
(3): 272~279
Dudash MR, Hassler C, Stevens PM, Fenster CB (2011). Experimen-
tal floral and inflorescence trait manipulations affect pollinator
preference and function in a hummingbird-pollinated plant. Am
J Bot, 98 (2): 275~282
Elle E, Carney R (2003). Reproductive assurance varies with flower
size in Collinsia parviflora (Scrophulariaceae). Am J Bot, 90 (6):
888~896
Feng GP, Qin ZX, Yan JZ, Zhang XR, Hu YX (2011). Arabidopsis
ORGAN SIZE RELATED1 regulates organ growth and final
organ size in orchestration with ARGOS and ARL. New Phytol,
191 (3): 635~646
Fenster CB, Armbruster WS, Wilson P, Dudash MR, Thomson JD
(2004). Pollination syndromes and floral specialization. Annu
Rev Ecol Evol Syst, 35: 375~403
Ferrario S, Immink RGH, Angenent GC (2004). Conservation and
diversity in flower land. Curr Opin Plant Biol, 7 (1): 84~91
Fujikura U, Horiguchi G, Ponce MR, Micol JL, Tsukaya H (2009).
Coordination of cell proliferation and cell expansion mediated
by ribosome-related processes in the leaves of Arabidopsis thali-
ana. Plant J, 59 (3): 499~508
Galen C, Cuba J (2001). Down the tube: pollinators, predators, and
the evolution of flower shape in the alpine skypilot, Polemonium
viscosum. Evolution, 55 (10): 1963~1971
Goodwillie C, Sargent RD, Eckert CG, Elle E, Geber MA, Johnston
MO, Kalisz S, Moeller DA, Ree RH, Vallejo-Marin M et al
(2010). Correlated evolution of mating system and floral display
traits in flowering plants and its implications for the distribution
of mating system variation. New Phytol, 185 (1): 311~321
Hermann K, Kuhlemeier C (2011). The genetic architecture of natural
variation in flower morphology. Curr Opin Plant Biol, 14 (1):
60~65
Horiguchi G, Ferjani A, Fujikura U, Tsukaya H (2006). Coordination
of cell proliferation and cell expansion in the control of leaf size
in Arabidopsis thaliana. J Plant Res, 119 (1): 37~42
Hu YX, Poh HM, Chua NH (2006). The Arabidopsis ARGOS-LIKE gene
regulates cell expansion during organ growth. Plant J, 47 (1): 1~9
Hu YX, Xie Q, Chua NH (2003). The Arabidopsis auxin-inducible
gene ARGOS controls lateral organ size. Plant Cell, 15 (9):
1951~1961
Johnson K, Lenhard M (2011). Genetic control of plant organ growth.
New Phytol, 191 (2): 319~333
Kalisz S, Vogler DW, Hanley KM (2004). Context-dependent autono-
mous self-fertilization yields reproductive assurance and mixed
mating. Nature, 430: 884~887
Kim JH, Choi D, Kende H (2003). The AtGRF family of putative
transcription factors is involved in leaf and cotyledon growth in
Arabidopsis. Plant J, 36 (1): 94~104
Kim JH, Kende H (2004). A transcriptional coactivator, AtGIF1, is in-
volved in regulating leaf growth and morphology in Arabidopsis.
Proc Natl Acad Sci USA, 101 (36): 13374~13379
Krizek BA (2009). AINTEGUMENTA and AINTEGUMENTA-LIKE6
act redundantly to regulate Arabidopsis floral growth and pat-
terning. Plant Physiol, 150 (4): 1916~1929
Krizek BA, Anderson JT (2013). Control of flower size. J Exp Bot, 64
(6): 1427~1437
Krizek BA, Eaddy M (2012). AINTEGUMENTA-LIKE6 regulates cel-
lular differentiation in flowers. Plant Mol Biol, 78 (3): 199~209
Larson-Rabin Z, Li ZY, Masson PH, Day CD (2009). FZR2/CCS52A1
expression is a determinant of endoreduplication and cell expan-
sion in Arabidopsis. Plant Physiol, 149 (2): 874~884
Lee BH, Ko JH, Lee S, Lee Y, Pak JH, Kim JH (2009). The Arabi-
dopsis GRF-INTERACTING FACTOR gene family performs an
overlapping function in determining organ size as well as multi-
ple developmental properties. Plant Physiol, 151 (2): 655~668
Li YH, Zheng LY, Corke F, Smith C, Bevan MW (2008). Control of
final seed and organ size by the DA1 gene family in Arabidopsis
thaliana. Genes Dev, 22: 1331~1336
Liu C, Thong ZH, Yu H (2009a). Coming into bloom: the specifica-
tion of floral meristems. Development, 136: 3379~3391
Liu DM, Song Y, Chen ZX, Yu DQ (2009b). Ectopic expression of
miR396 suppresses GRF target gene expression and alters leaf
growth in Arabidopsis. Physiol Plant, 136 (2): 223~236
Mizukami Y, Fischer RL (2000). Plant organ size control: AINTEGU-
MENTA regulates growth and cell numbers during organogene-
sis. Proc Natl Acad Sci USA, 97 (2): 942~947
Mojica JP, Kelly JK (2010). Viability selection prior to trait expres-
sion is an essential component of natural selection. Proc R Soc B,
277 (1696): 2945~2950
Nag A, King S, Jack T (2009). miR319a targeting of TCP4 is critical
for petal growth and development in Arabidopsis. Proc Natl
Acad Sci USA, 106 (52): 22534~22539
Nath U, Crawford BCW, Carpenter R, Coen E (2003). Genetic control
of surface curvature. Science, 299 (5611): 1404~1407
Navarro L, Medel R (2009). Relationship between floral tube length
and nectar robbing in Duranta erecta L. (Verbenaceae). Biol J
Linn Soc, 96 (2): 392~398
Nole-Wilson S, Tranby TL, Krizek BA (2005). AINTEGUMENTA-like
(AIL) genes are expressed in young tissues and may specify mer-
istematic or division-competent states. Plant Mol Biol, 57 (5):
613~628
O’Maoileidigh DS, Graciet E, Wellmer F (2013). Gene networks con-
trolling Arabidopsis thaliana flower development. New Phytol,
201 (1): 16~30
张栩佳等: 花器官大小调控机制的研究进展 697
Parachnowitsch AL, Caruso CM (2008). Predispersal seed herbivores,
not pollinators, exert selection on floral traits via female fitness.
Ecology, 89 (7): 1802~1810
Parachnowitsch AL, Kessler A (2010). Pollinators exert natural se-
lection on flower size and floral display in Penstemon digitalis.
New Phytol, 188 (2): 393~402
Powell AE, Lenhard M (2012). Control of organ size in plants. Curr
Biol, 22 (9): R360~R367
Reinhardt D, Mandel T, Kuhlemeier C (2000). Auxin regulates the
initiation and radial position of plant lateral organs. Plant Cell,
12 (4): 507~518
Rodriguez RE, Mecchia MA, Debernardi JM, Schommer C, Weigel D,
Palatnik JF (2010). Control of cell proliferation in Arabidopsis
thaliana by microRNA miR396. Development, 137: 103~112
Sargent RD, Goodwillie C, Kalisz S, Ree RH (2007). Phylogenetic
evidence for a flower size and number trade-off. Am J Bot, 94
(12): 2059~2062
Schommer C, Palatnik JF, Aggarwal P, Chetelat A, Cubas P, Farmer
EE, Nath U, Weigel D (2008). Control of jasmonate biosynthesis
and senescence by miR319 targets. PLoS Biol, 6 (9): 1991~2001
Siriwardana NS, Lamb RS (2012). The poetry of reproduction: the
role of LEAFY in Arabidopsis thaliana flower formation. Int J
Dev Biol, 56: 207~221
Specht CD, Bartlett ME (2009). Flower evolution: the origin and sub-
sequent diversification of the angiosperm flower. Annu Rev Ecol
Evol Syst, 40: 217~243
Szecsi J, Joly C, Bordji K, Varaud E, Cock JM, Dumas C,
Bendahmane M (2006). BIGPETALp, a bHLH transcription fac-
tor is involved in the control of Arabidopsis petal size. EMBO J,
25 (16): 3912~3920
Tsukaya H (2008). Controlling size in multicellular organs: focus on
the leaf. PLoS Biol, 6 (7): 1373~1376
Tsukaya H, Beemster GTS (2006). Genetics, cell cycle and cell ex-
pansion in organogenesis in plants. J Plant Res, 119 (1): 1~4
Varaud E, Brioudes F, Szecsi J, Leroux J, Brown S, Perrot-Rechen-
mann C, Bendahmane M (2011). AUXIN RESPONSE FAC-
TOR8 regulates Arabidopsis petal growth by interacting with
the bHLH transcription factor BIGPETALp. Plant Cell, 23 (3):
973~983
Venail J, Dell’Olivo A, Kuhlemeier C (2010). Speciation genes in the
genus Petunia. Phil Trans R Soc B, 365 (1539): 461~468
Wellmer F, Alves-Ferreira M, Dubois A, Riechmann JL, Meyerowitz
EM (2006). Genome-wide analysis of gene expression during
early Arabidopsis flower development. PLoS Genetics, 2 (7):
1012~1024
Xu R, Li YH (2011). Control of final organ size by Mediator com-
plex subunit 25 in Arabidopsis thaliana. Development, 138:
4545~4554
Xu R, Li YH (2012). The Mediator complex subunit 8 regulates organ
size in Arabidopsis thaliana. Plant Signal Behav, 7 (2): 182~183