免费文献传递   相关文献

水稻的促分裂原激活蛋白激酶及其功能



全 文 :植物生理学通讯 第42卷 第4期,2006年8月 795
水稻的促分裂原激活蛋白激酶及其功能
谌江华 宋凤鸣* 郑重
浙江大学生物技术研究所,水稻生物学国家重点实验室,杭州 310029
The Mitogen-activated Protein Kinase Cascades and Their Functions in Rice
CHEN Jiang-Hua, SONG Feng-Ming*, ZHENG Zhong
State Key Laboratory of Rice Biology, Institute of Biotechnolgy, Zhejiang University, Hangzhou 310029, China
提要 简要概述水稻 MAPK 级链组分的克隆、鉴定及其在水稻生长发育以及逆境胁迫反应调控中功能的研究进展。
关键词 水稻;MAP 激酶;MAPK 级链;防卫 / 逆境反应
收稿 2006-04-17 修定  2006-05-23
资助  国家自然科学基金(30170598)和教育部新世纪人才计划
项目。
*通讯作者(E-mail: fmsong@zju.edu.cn, Tel: 0571-
86971207)。
促分裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated pro-
tein kinase, MAPK)是一类存在于所有真核生物中、
从酵母单细胞到动植物等复杂生物体的进化过程中
高度保守的丝氨酸 / 苏氨酸(Ser/Thr)蛋白激酶
(Bogre等2000;Ligterink和Hirt 2001;Jonak等
2002;Zhang和 Klessig 2001)。MAPK级链(MAPK
cascade)在生物细胞感受外界刺激信号并传导到胞
内下游应答分子的过程中起作用(Bogre等 2000;
Ligterink和Hirt 2001;Jonak等2002;Zhang和
Klessig 2001)。研究结果表明,MAPK 级链参与
植物对各种生物及非生物因子的胁迫反应、激素
应答、细胞分化和发育调控等生命过程。近年
来,水稻(Oryza sativa L.)已成为研究单子叶植物
生长发育以及抗逆反应机制的模式植物,水稻中
的 MAPK 级链及其功能的研究进展很快。本文专
就水稻 MAPKs 的研究进展作简要介绍。
1 MAPK 级链的基本组成
真核生物中的MAPK级链由3个 Ser/Thr蛋白
激酶,即 MAPKKK (MAP3K)、MAPKK (MAP2K)
和 MAPK 组成,构成一个最小的功能模块。其作
用的机制包括:胞外刺激信号通过膜受体传递并
磷酸化 M A P K 级链中的 M A P K K K ,活化的
MAPKKK 通过磷酸化激活下游的相应 MAPKK,活
化的 MAPKK 进一步通过磷酸化激活下游 MAPK,
最终由活化的 MAPK 磷酸化下游目标底物,从而
将信号传递下去(Ligterink和Hirt 2001;Jonak等
2002)。
M A P K s 是 M A P K 级链中最下游的激酶,它
们的蛋白结构非常相似,都具有11个 Ser/Thr次
级结构域(subdomain),其中,在第7和 8个次级
结构域之间有1个 T-loop 的活化环(activation
loop),包含1个结构非常保守的由苏氨酸(T)、酪
氨酸(Y)和 X 氨基酸(X 可以是谷氨酸、脯氨酸或
甘氨酸等)组成的TXY 三肽模体(motif)。模体两
端的Thr/Tyr磷酸化后,即得到激活并将信号传递
至下游。参照 MAPK Group (2002)对植物 MAPK
的分类命名原则,根据 MAPKs 氨基酸序列中 TXY
模体的不同和Ser/Thr保守结构域的特点,MAPKs
可分为 TEY 和 TDY 2 个亚类和 A、B、C、D 4
个组,其中 TEY 亚类包含 A、B、C 3 个组,而
TDY 亚类只有 D 组。在结构上,A、B、C 3 个
组的 MAP K s 在 C 端有 1 个 CD 结构域(co m m o n
docking domain, CD domain),而 D组 MAPKs的
C 端没有 CD 结构域,但有 1 个延伸的 C 端区域。
MAPKK 蛋白中有1个保守的S/T-X3~5-S/T (S
为丝氨酸,T 为苏氨酸,X 为任意氨基酸)模体。
这个模体上的 2 个丝 / 苏氨酸残基可以被上游的
MA P K K K 磷酸化,从而活化 MA P K K。在酵母和
哺乳动物中,S/T-X3~5-S/T 模体中 X 为 3,而在
植物生理与分子生物学 Plant Physiology and Molecular Biology
植物生理学通讯 第42卷 第4期,2006年8月796
植物中为 5。植物 MAPKKs 的 N 端末端延伸区域
拥有保守的MAPKs 锚定区域,其特征序列为K/R-
K/R-K/R-X1~6-L-X-L/V/I,类似于动物MAPKKs 的
N 端氨基酸结构。根据 MAPKKs 的氨基酸序列结
构特征,同样可分为 A ~ D 组。
MAPKKKs 是所有 MAPK 蛋白激酶中成员最多
的一类,各自序列组成和结构域特征均差异较
大。根据氨基酸序列和激酶催化结构域特征,可
以将MAPKKKs 粗略分为 MEKK1 (STE11/BCK1)和
RAF 类似激酶两大类(MAPK Gr ou p 2 00 2)。
MEKK1 类 MAPKKKs 含有与 MEKK1/STE11/BCK1
等典型 MAPKKK 相似的激酶结构域,可以进一步
分为5个亚组,其中A1亚组成员在N端序列中有
一些共同的模体,但是这些模体的组成有差异,
A 3 亚组成员的 C 端有一个调控区域。R A F 类
MA P K K K s 的序列与 MEK K 1 类 MA P K K K s 不同,
且差异比较大,可分为2类:一类有延伸的N端,
存在一些特定的结构域;另一类则没有延伸的 N
端,但有些成员在 N 端序列中含有特定的结构
域。
2 水稻 MAPK 级链组分
第1个被克隆鉴定的水稻MAPK基因是受稻瘟
菌侵染和创伤强烈诱导表达的 OsBWMK1 (He 等
1999)。已经报道的水稻MAPK 基因有十多个,但
根据序列分析,其中有些报道中的所谓不同的
MAPK 实际上属于同一个基因。目前已克隆鉴定
了 8 个水稻 MAPK 基因,它们是:OsBWMK1 (He
等 1999;Cheong 等 2003)、OsBIMK1 (又称
OsMAPK5、OsMSRMK2、OsMAP1、OsMAPK2)
(Song 和 Goodman 2002;Agrawal 等 2002;Wen
等 2002;Huang 等 2002;Xiong 和 Yang 2003)、
OsBIMK2 (Song 等 2006)、OsMAPK3 (Yeh 等
2004)、OsMSRMK3 (Agrawal等 2003a)、OsMAPK4
(Fu 等 2002)、OsWJUMK1 (Agrawal 等 2003a)、
OsMAPK6 (Lieberherr等2005)等。参照植物MAPK
蛋白激酶的分类命名原则(MAPK Group 2002),根
据已克隆的水稻 MA P K 的氨基酸序列结构特征,
水稻 MAPK 分布在 A、C 和 D 3 个组,B 组尚未
被发现。这就是:(1) A1 亚组:包括OsMAPK2、
OsMS RM K2、OsMA P1、OsBI MK 1 和 OsMA PK 5
(Song 和 Goodman 2002;Agrawal 等 2002;Wen
等 2002;Huang 等 2002;Xiong 和 Yang 2003),
其磷酸化三肽模体为 TEY;(2) B 组:OsMPK4,
其磷酸化三肽模体为TEY;(3) C2亚组:OsMAPK4、
OsMSRMK3 和 OsMAPK3 (Fu 等 2002;Agrawal 等
2003a;Yeh 等 2004),其磷酸化三肽模体也为
TEY;(4) D1 亚组:OsBW M K1、OsW J U MK 1、
OsBIMK2 和 OsMAPK6 (He 等 1999;Cheong 等
2003;Agrawal 等 2003a;Lieberherr 等 2005;
Song 等 2006),它们的磷酸化激活三肽模体为
T D Y ,在氨基酸序列中有个较长的 C 端,其中
OsBWMK1 氨基序列 C端有 1 个醇脱氢酶(alcohol
dehydrogenase, ADH)结构域和 1个酪氨酸激酶
(tyrosine kinase, TK)磷酸化位点(KEPEDDY),而
在其它 3 个中则没有(He 等 1999;Che o ng 等
2003)。Cheong 等(2003)进一步研究发现,重组
的 OsBW MK1 蛋白具有自我磷酸化和磷酸化 MBP
底物的活性,OsBW M K 1 定位在细胞核中,而且
其 C 端序列是激酶活性以及细胞核定位所必需
的。
已有的研究主要集中在MAPKs 上,而对水稻
MAPKK s 和 MAPKKK s 的研究则较少。目前只克
隆鉴定了 OsMEK1 和 OsEDR1 两个基因,分别编
码 MAPK K 和 MAPK KK ( We n 等 200 2;Kim 等
2003 )。因此,对于水稻 MAPKK s 和 MAPK KK s
的了解非常少。
3 水稻 MAPK 的功能
双子叶植物 MAPK s 的研究表明,病原菌侵
染、抗病性诱导信号分子、创伤、高 / 低温、干
旱、盐害、重金属、紫外线照射等生物与非生
物因子,均能激活 MAPK 信号途径并通过活化的
MAPK激活各种细胞反应(Bogre等2000 ;Ligterink
和 Hirt 2001;Jonak等 2002;Zhang和 Klessig
2001;MAPK Group 2002)。已有的研究表明,
MAPK参与水稻对病原菌侵染和非生物逆境反应以
及水稻自身的生长发育等,不同的是,MAPK 在
对各种环境刺激反应中的作用不尽相同。
3.1 在抗病反应中的作用 D1亚组中的OsBWMK1、
OsWJUMK1、OsBIMK2 和 OsMAPK6 的磷酸化三
肽模体为 TDY,且均有一个较长的 C 端部分(He
植物生理学通讯 第42卷 第4期,2006年8月 797
等 1999;Cheong 等 2003;Agrawal 等 2003a;
Lieberherr等 2005;Song等 2006)。在三至四周
龄水稻幼苗中,OsBW M K 1 基因的表达受稻瘟菌
侵染的诱导,也受抗病信号分子水杨酸(salicylic
acid, SA)和茉莉酸(jasmonic acid, JA)等处理所诱导
表达(He 等 1999;Cheong 等 2003)。OsWJUMK1
基因有较高的本底表达,但 SA 和 JA 处理可以诱
导其表达(Agrawal等 2003a)。过量表达OsBWMK1
的转基因烟草植株叶片上形成自发性的过敏性坏死
病斑,防卫反应基因表达水平显著提高,而且表
现出对黑茎病和野火病的抗病性( C h e o n g 等
2003 )。这些结果表明,OsBW MK 1 参与水稻抗
病反应的调控。O s B I M K 2 基因在苯并噻二唑
(benzothiadiazole, BTH,一种诱导抗病反应的化学
诱导剂)处理后激活表达,而且其表达在BTH诱发
的诱导抗病性反应以及水稻与稻瘟菌间的非亲和性
互作早期就为稻瘟菌侵染所激活,重组的
OsBIMK2 蛋白在体外具有自我磷酸化活性,过量
表达OsBIMK2 的转基因烟草植株表现出的是其对
病毒病和真菌病害的抗性增强,显示 OsBIMK2 在
水稻抗病反应中的作用很大(Song 等 2006)。
已报道的 OsBIMK1、OsMAPK5、OsMAP1、
O s M S R M K 2、O s M A P K 2 实质上是同一个基因,
编码的 MAPK 归属于 A1 亚组。OsBIMK1 基因是
一个受多个诱导因子激活表达的水稻 M A P K 基
因。水稻幼苗经 B T H 、S A 、J A 、茉莉酸甲酯
(methyl jasmonate, MeJA)等抗病信号分子、非寄
主病原菌处理后,OsBI M K 1 基因即很快得到激
活,同时,在水稻 - 稻瘟菌非亲和互作反应中的
早期也可受到诱导表达(Song 和 Goodman 2002;
Agrawal等 2002)。说明水稻OsBIMK1基因介导的
是一条能有效识别或感受抗病性化学诱导剂的
MAPK信号途径或参与诱发水稻对稻瘟菌的早期抗
性。另有研究发现,OsMA P K 5 基因是一单拷贝
基因,但产生 2 个不同的剪接转录本。OsMAPK5
基因表达和激酶活性均可为病菌侵染所诱导(Xiong
和Yang 2003)。RNA干扰(RNA interference, RNAi)
抑制 OsMAPK5 表达的转基因水稻植株表现出组成
型的防卫反应基因表达,而且其对真菌和细菌病
害的抗性也显著增强(Xiong和Yang 2003)。这表
明,OsMAPK5 参与负调控防卫反应基因表达和水
稻抗病性。过量表达钙离子通道基因 OsTPC1 的
水稻细胞,对来自真菌的激发子更加敏感,诱发
氧化迸发,活化 OsMA P K 2,并引起过敏性细胞
死亡;而 OsTPC1 基因的 Tos17 插入突变体中,
由该真菌激发子诱发的 MAPK 活化和细胞过敏性
死亡等防卫反应明显受抑(Kurusu等2005)。因此
认为,OsMAPK2 与钙离子是一起参与调控由真菌
激发子诱发的细胞过敏性死亡的。
在水稻悬浮培养细胞中,鞘磷脂激发子在翻
译后水平上活化 OsMAPK6。RNAi 抑制 OsMAPK6
基因表达的转基因植株中病菌诱导的苯丙氨酸解氨
酶(phenylalanine ammonialyase, PAL)基因表达水平
显著下降,而 OsMAPK5a 的表达明显上调。进一
步研究还发现,小GTPase酶基因 OsRac1 经 RNAi
沉默或丧失功能突变后,由鞘磷脂激发子诱发的
OsMAPK6 蛋白含量和激酶活性显著下降。免疫共
沉淀实验结果证实,OsMAPK6 与活性态 OsRac1
紧密结合在一起,而与非活性态 O s R a c 1 无关
(Lieberherr等 2005)。这些结果证明,OsMAPK6
参与水稻防卫基因表达的调控,而且其活性在蛋
白水平上受 G 蛋白调节。
3.2 在非生物逆境反应中的作用 除了受病菌侵染
和抗病信号分子处理所诱导外,O s B W M K 1 和
OsWJUMK1还受脱落酸(abscisic acid, ABA)、高
盐、干旱、高温(37℃)或重金属等多种非生物因
子的诱导表达(Agrawal等2003a, b),但低温(12℃)
和紫外线不影响OsBWMK1的表达水平(Agrawal等
2003b),而高温(37℃)和紫外线照射后则会降低
OsWJUMK1 本底水平(Agrawal 等 2003a)。
OsMAPK2 基因在水稻所有组织中均存在组成
型的表达。当水稻悬浮培养细胞经从 26℃到 4℃
的降温处理或在糖分饥饿时,OsMAPK2 基因的表
达水平显著上升,但 42℃高温处理时,其 mRNA
水平则快速下降(Huang 等 2002)。水稻悬浮培养
细胞中,用重金属镉处理可激活 OsMAPK2 基因
表达,但不能诱导 OsMA P K 3 和 OsM A P K 4 表达
(Yeh 等 2004)。OsMAP1 基因在水稻花期以 12℃
处理或幼苗期以12℃处理后均能被转录激活(Wen
等 2002)。这表明,OsMAP1 基因可能参与水稻
植物生理学通讯 第42卷 第4期,2006年8月798
对中度低温逆境的抗逆反应和花的发育调控。
OsMAPK5 和 OsMSRMK2 的表达还受创伤、ABA、
乙烯(ethylene, ET)、NaCl、臭氧、高温、干旱、
重金属和紫外线照射等非生物因子的诱导(Agrawal
等 2002;Xiong 和 Yang 2003),RNAi 抑制
OsMAPK5 表达的转基因水稻植株的抗旱、抗盐和
抗低温能力显著降低,而过量表达 OsMAPK5 的
转基因植株则表现出抗旱、抗盐和抗低温能力的
增强(Xiong和 Yang 2003)。这些结果表明,水稻
O s B I M K 1 、O s M A P K 5 、O s M S R M K 2 、
O s M A P 1、O s M A P K 2 参与激素、逆境、抗病和
其他多种环境的刺激反应。
C 2 亚组中的 O s M S R M K 3 、O s M A P K 4 和
OsM A P K 3 基因也参与高 / 低温、干旱、盐害等
非生物因子的逆境反应。OsMSRMK3 基因在水稻
植株组织中呈组成型表达,重金属和创伤可诱导
其表达,但干旱、高/低温(37/12℃)以及紫外线
(UV-C)却抑制其表达(Agrawal等2003a)。水稻悬
浮细胞经糖分饥饿和高盐(300 mmol·L-1)处理或水
稻幼苗以 4℃低温处理后,均能上调 OsMAPK4 基
因的表达(Fu 等 2002)。OsMAPK3 基因在水稻悬
浮细胞受到重金属 C u 2+ 处理后得到激活而表达
(Yeh 等 2003)。这些研究表明,C2 亚组的 MAPKs
与 A1 和 D1 亚组 MAPK 不同,可能主要参与非生
物逆境反应。
另外,锌也可以激活2个分子量分别为40和
42 kDa 的 MAPK 活性,而且用活性氧清除剂预处
理后,锌诱导的这2个 MAPK活性即明显受抑(Lin
等 2005)。由此看来,活性氧可能参与由锌所调
控的 M A P K 级链活性。
3.3 在生长发育中的作用 随着研究的深入,发现
M A P K 在真核生物的生长发育过程中也起作用。
水稻MAPKs 在不同组织器官中的差异表达有力地
说明 MAPKs 参与水稻的不同生长发育过程(Wen
等 2002;Huang 等 2002;Fu 等 2002;Agrawal
等 2003a)。OsMAPK2 基因在水稻幼苗所有组织中
均有表达,但生长后期仅在花器官中表达,而且
表达能力随着花的成熟进程而逐渐增强,说明
O s M A P K 2 基因参与花的发育过程,这也说明
OsMA P K 2 基因是受水稻发育调节的(Hua n g 等
2002)。OsMAP1 基因在水稻花药、幼苗的根和
芽中的表达均能检测到,说明也是受发育调节的
(Wen 等 2002)。另外,OsMAPK4、OsWJUMK1
和 OsMSRMK3 在水稻营养与生殖生长期间不同器
官中的差异表达均有所报道(Fu等 2002;Agrawal
等 2003a),显示一些MAPKs可能参与水稻的生长
发育过程,但迄今尚缺乏直接的分子生物学证
据。
4 水稻 MAPK 级链及其下游组分
植物中第1条完整的MAPK级链是拟南芥中细
菌激发子鞭毛蛋白(flagellin)与受体蛋白FLS2结合
后的 AtMEKK1-AtMEK4/5-AtMPK3/6 级链,信号
经这条MAPK 级链传递后激活AtWRKY22/29l 转录
因子,启动防卫基因的表达,从而最终抑制丁香
假单胞菌和灰霉菌的侵染(Asai等2002)。但迄今
为止,尚未解析出一条完整的水稻 MA P K 级链。
水稻中克隆鉴定的第1个 MAPKK是受 12℃低
温诱导表达的 O s M E K 1 基因( W e n 等 2 0 0 2 )。
OsMEK1蛋白含有11个保守的Ser/Thr蛋白激酶催
化亚结构域。在VII和 VIII亚结构域之间有一个
为植物 MAPKKs 所特有的 S/TXXXXXS/T 模体,
它与动物和酵母中 MEKs 的 S/TXXXS/T 模体不
同。Wen 等(2002)发现,水稻花期以12℃的温度
处理或幼苗的根和芽以 1 2 ℃的温度处理后,
OsMEK1 基因都能诱导表达。酵母双杂交的实验
证明,OsMEK1 能与下游的 OsMAP1 发生特异性
的直接物理互作(Wen 等 2002)。这些结果表明,
由 OsMEK1 和 OsMAP1 介导的 MAPK 级链可能参
与水稻对低温的抗逆反应。
水稻中克隆鉴定的第 1 个 MAPKKK 基因是拟
南芥中 EDR1 的同源基因OsEDR1 (Kim 等 2003)。
拟南芥 EDR1 参与抗病基因介导的信号途径,并
负调控抗病反应(Frye 等 2001)。OsEDR1 基因表
达受 J A 、S A 、H 2O 2、干旱、盐害、重金属等
多种因子的诱导,而且在营养和生殖器官组织中
也存在差异表达(Kim等 2003)。这表明OsEDR1基
因是在水稻防卫/逆境信号途径和生长发育过程中
起作用的。但 OsEDR1 介导的 MAPK 级链尚不清
楚。
最近,Cheong 等(2003)用酵母双杂交技术,
植物生理学通讯 第42卷 第4期,2006年8月 799
以 OsBWM K1 为诱饵,从水稻 cDNA 文库中分离
鉴定到一个下游的互作因子基因 O s E R E B P 1 。
OsEREBP1 基因编码 EREBP 类转录因子,能与一
些防卫反应基因启动子中的顺式作用元件 GCC 盒
结合,从而调控防卫反应基因的表达。在酵母双
杂交中,OsBWMK1 和 OsEREBP1 能发生特异性
相互作用,而且重组的 OsBWMK1 蛋白也能磷酸
化 OsEREBP1 蛋白,从而增强 OsEREBP1 蛋白与
GCC 盒的结合能力。在拟南芥原生质体中同时瞬
间表达的 OsBWMK1 和 OsEREBP1 可以引起由 GCC
盒所驱动的 G U S 报道基因的表达( C h e o n g 等
2003)。这些结果证明 OsBWMK1 是通过磷酸化
OsEREBP1 来调控防卫基因表达和抗病反应的。
5 结语
MAPK 级链在植物信号转导途径中组成相互
交错的复杂的传递网络,但与动物和酵母中
MAPK 研究相比,对植物 MAPK 链的了解还很有
限。近年来,水稻 MAPK s 及其功能的研究结果
丰富了对植物 M A P K 蛋白激酶领域的认识,例
如,一些水稻 MAPK 基因受 JA 的调控表达,水
稻 MAPK 对多种逆境反应的不同应答等。已知的
水稻MAPKs 中大多是受水稻自身发育调控的,说
明它们除在水稻自身防卫机制中起作用外,还参
与水稻的生长发育过程。
目前,有关水稻 MAPK 级链的研究主要集中
在其功能方面,但对 MAPK 及其级链的激活机制
却不是很清楚。在酵母和哺乳动物中,MAPKs 主
要通过翻译后磷酸化得到激活,而在植物中发现
既有翻译后磷酸化激活,也有转录水平的调节。
已有的研究表明,已知的水稻 MAPK 基因都可以
在转录水平上激活,但它们在翻译蛋白水平上是
如何调节激活的,还有待于进一步研究。另外,
水稻 MAPK 级链在整个信号网络中地位的认识也
很有限。虽然已克隆并鉴定多个水稻 MAPKs,但
其级链上游的 MAPKK 和 MAP K KK 还不清楚,尚
未鉴定出一条完整的 M A P K 级链。
结合生物化学、遗传学、基因组学和生物信
息学等技术方法,可以促进水稻 MAPK 及其级链
功能的研究。首先,利用生物信息学技术全面挖
掘水稻基因组中编码 MAPK、MAPKK 和 MAPKKK
的基因,分析基因结构和蛋白特性。其次,构
建已鉴定的或新挖掘的水稻 MAPK 基因的 RNAi 基
因沉默、过量表达突变体或从已有水稻突变体库
中筛选相应 MAPK 基因的 T-DNA 插入突变体,研
究这些突变体的表型,从而明确特定 MAPK 的生
物学功能。第三,采用酵母双杂交等技术分离
MAPK 级链中的组分,研究级链组分间的相互作
用及其激活机理;同时,鉴定 MAPK 级链下游的
磷酸化底物因子及其功能,从而阐明 MAPK 级链
调控生物学功能的机制。这些研究无疑将有助于
深入了解 MAPK 蛋白激酶在水稻生长发育以及抗
逆反应中的作用,并进一步丰富 MAPK 级链在植
物信号转导网络中生物学功能的认识。
参考文献
Agrawal GK, Agrawal SK, Shibato J, Iwahashi H, Rakwal R (2003a).
Novel rice MAP kinases OsMSRMK3 and OsWJUMK1 in-
volved in encountering diverse environmental stresses and
developmental regulation. Biochem Biophys Res Comm, 300:
775~783
Agrawal GK, Rakwal R, Iwahashi H (2002). Isolation of novel
rice (Oryza sativa L.) multiple stress responsive MAP kinase
gene, OsMSRMK2, whose mRNA accumulates rapidly in
response to environmental cues. Biochem Biophys Res
Comm, 294: 1009~1016
Agrawal GK, Tamogami S, Iwahashi H, Agrawal VP, Rakwal R
(2003b). Transient regulation of jasmonic acid-inducible rice
MAP kinase gene (OsBWMK1) by diverse biotic and abiotic
stresses. Plant Physiol Biochem, 41: 353~361
Asai T, Tena G, Plotnikova J, Willmann MR, Chiu W-L, Gomez-
Gomez L, Boller T, Ausubel FM, Sheen J (2002). MAP ki-
nase signalling cascade in Arabidopsis innate immunity.
Nature, 415: 977~983
Bogre L, Meskiene I, Heberle-Bors E, Hirt H (2000). Stressing
the role of the MAP kinase in mitogenic stimulation. Plant
Mol Biol, 43: 705~718
Cheong YH, Moon BC, Kim JK, Kim CY, Kim MC, Kim IH, Park
CY, Kim JC, Park BO, Koo SC et al (2003). BWMK1, a rice
mitogen-activated protein kinase, locates in the nucleus and
mediates pathogenesis-related gene expression by activa-
tion of a transcription factor. Plant Physiol, 132: 1961~1972
Frye CA, Tang D, Innes RW (2001). Negative regulation of de-
fense responses in plants by a conserved MAPKK kinase.
Proc Natl Acad Sci USA, 98: 373~378
Fu SF, Chou WC, Huang DD, Huang HJ (2002). Transcriptional
regulation of a rice mitogen-activated protein kinase gene,
OsMAPK4, in response to environmental stresses. Plant Cell
植物生理学通讯 第42卷 第4期,2006年8月800
Physiol, 43: 958~963
He C, Fong SHT, Yang D, Wang G-L (1999). BWMK1, a novel
MAP kinase induced by fungal infection and mechanical
wounding in rice. Mol Plant-Microbe Interact, 12: 1064~
1073
Huang HJ, Fu SF, Tai YH, Chou WC, Huang DD (2002). Expres-
sion of Oryza sativa MAP kinase gene is developmentally
regulated and stress-responsive. Physiol Plant, 114: 572~580
Jonak C, Ökresz L, Bögre L, Hirt H (2002). Complexity, cross talk
and integration of plant MAP kinase signalling. Curr Opin
Plant Biol, 5: 415~424
Kim JA, Agrawal GK, Rakwal R, Han KS, Kim KN, Yun CH, Heu
S, Park SY, Lee YH, Jwa NS (2003). Molecular cloning and
mRNA expression analysis of a novel rice (Oryza sativa L.)
MAPK kinase kinase, OsEDR1, an ortholog of Arabidopsis
AtEDR1, reveal its role in defense/stress signalling pathways
and development. Biochem Biophys Res Commun, 300:
868~876
Kurusu T, Yagala T, Miyao A, Hirochika H, Kuchitsu K (2005).
Identification of a putative voltage-gated Ca2+ channel as a
key regulator of elicitor-induced hypersensitive cell death
and mitogen-activated protein kinase activation in rice.
Plant J, 42: 798~809
Lieberherr D, Thao NP, Nakashima A, Umemura K, Kawasaki T,
Shimamoto K (2005). A sphingolipid elicitor-inducible mi-
togen-activated protein kinase is regulated by the small
GTPase OsRac1 and heterotrimeric G-protein in rice. Plant
Physiol, 138: 1644~1652
Ligterink W, Hirt H (2001). Mitogen-activated protein (MAP)
kinase pathways in plants: versatile signaling tools. Int Rev
Cytol, 201: 209~275
Lin CW, Chang HB, Huang HJ (2005). Zinc induces mitogen-
activated protein kinase activation mediated by reactive
oxygen species in rice roots. Plant Physiol Biochem, 43:
963~968
MAPK Group (Ichimura K et al) (2002). Mitogen-activated pro-
tein kinase cascades in plants: a new nomenclature. Trends
Plant Sci, 7: 301~308
Song DH, Chen JH, Song FM, Zheng Z (2006). A novel rice
MAPK gene, OsBIMK2, is involved in disease resistance
response. Plant Biol, in press
Song F, Goodman RM (2002). OsBIMK1, a rice MAP kinase gene
involved in disease resistance responses. Planta, 215:
997~1005
Wen JQ, Oono K, Imai R (2002). Two novel mitogen-activated
protein signaling components, OsMEK1 and OsMAP1, are
involved in a moderate low-temperature signaling pathway
in rice. Plant Physiol, 129: 1880~1891
Xiong LZ, Yang YN (2003). Disease resistance and abiotic stress
tolerance in rice are inversely modulated by an abscisic acid-
inducible mitogen-activated protein kinase. Plant Cell, 15:
745~759
Yeh CM, Hsiao LJ, Huang HJ (2004). Cadmium activates a mito-
gen-activated protein kinase gene and MBP kinases in rice.
Plant Cell Physiol, 45: 1306~1312
Yeh CM, Hung WC, Huang HJ (2003). Copper treatment acti-
vates mitogen-activated protein kinase signaling in rice.
Physiol Plant, 119: 392~399
Zhang S, Klessig DF (2001). MAPK cascades in plant defense
signaling. Trends Plant Sci, 6: 520~527