全 文 :·生物技术· 北方园艺2016(02):110~112
第一作者简介:吴新义(1984-),男,河南南阳人,博士,助理研究员,
研究方向为瓠瓜和豇豆基因组学及分子育种。E-mail:wuxinyi@
mail.zaas.ac.cn.
责任作者:李国景(1966-),男,博士,研究员,研究方向为蔬菜育种
与栽培技术。E-mail:ligj@mail.zaas.ac.cn.
基金项目:浙江省自然科学基金资助项目(LY14C150004);浙江省
农业新品种选育重大科技专项资助项目(2012C12903)。
收稿日期:2015-10-08
DOI:10.11937/bfyy.201602029
瓠瓜基因组测定
吴 新 义,徐 沛,吴 晓 花,汪 宝 根,鲁 忠 富,李 国 景
(浙江省农业科学院 蔬菜研究所,浙江 杭州310021)
摘 要:以4份来自中国不同地区的瓠瓜(Lagenaria siceraria(Molina)Standl.)纯系为试
材,采用流式细胞术测定其基因组大小。结果表明:6种细胞核裂解液对瓠瓜嫩叶进行处理,发现
Otto I最适合瓠瓜细胞裂解;从5种候选内标作物中筛选出水稻日本晴(Oryza sativa L.var.Nip-
ponbare)为最适内标作物;4份中国瓠瓜种质资源的基因组大小为329.11~344.56Mb。
关键词:瓠瓜;基因组;流式细胞术;水稻
中图分类号:S 642.903.6 文献标识码:A 文章编号:1001-0009(2016)02-0110-03
瓠瓜(Lagenaria siceraria(Molina)Standl.)属葫芦
科(Cucurbitaceae)葫芦属(Lagenaria),又名瓠子、长瓜、
蒲瓜、夜开花、葫芦等。瓠瓜起源于非洲,随后可能在亚
洲和非洲得到独立驯化,目前在全世界各地均有种
植[1-2]。瓠瓜雌雄异花同株,其果实形状变异很大[3]。瓠
瓜成熟果可作容器、乐器或工艺品;瓠瓜也是传统的药
用植物,其蔓、须、叶、花、子、壳均可入药[1]。近年来瓠瓜
常作为黄瓜、西瓜等作物嫁接用砧木,以增强后者的抗
病性[4]。在我国瓠瓜栽培已经有7 000多年的历史,主
要以嫩果做蔬菜用,是我国南方地区重要的瓜类蔬菜作
物之一。
瓠瓜为同源二倍体植物,染色体数目为2n=2x=22[5]。
由于缺乏基因组信息,瓠瓜分子生物学研究远落后于黄
瓜、西瓜、甜瓜等其它葫芦科作物。随着测序技术的发
展和测序成本的大幅度降低,使得对瓠瓜等我国传统特
色蔬菜作物进行全基因组测序成为可能。评估一个物
种基因组大小是对该物种进行全基因组测序的前提,基
于该物种的基因组大小信息,可以估算测序成本,并为
基因组文库构建、测序深度和基因组组装提供理论依
据。基因组大小是指一个物种单倍体核的DNA含量,
常用质量(pg)和碱基对的数目(Mb)来量化,1pg=978Mb
或1Mb=1.022×10-3 pg[6]。目前测定基因组大小的
方法通常有2种,即Feulgen分光光度法和流式细胞术。
流式细胞术由于高效、准确等优点,目前被广泛应用于
测定物种的基因组大小[7]。现以4份中国瓠瓜种质资
源为材料,采用流式细胞术测定其基因组大小,以期为
瓠瓜分子生物学研究提供理论参考。
1 材料与方法
1.1 试验材料
以4份来自中国不同地区的瓠瓜纯系作为供试材
料,编号为J7③、I77①、G8-2①、G6-3-5②;水稻(日本晴)、
番茄、黄瓜、甜瓜、萝卜作为候选内标。
1.2 试验方法
1.2.1 细胞核裂解液配方 6种细胞核裂解液配方见
表1,裂解效果最高的将用于流式细胞术试验。
1.2.2 样品处理及DNA特异性染色 选择1cm2大小
的瓠瓜嫩叶组织置于培养皿上,加入1mL的细胞核裂
解液,用锋利的刀片迅速将其切碎,用400目的尼龙网过
滤除去悬浮物,5 000r/min离心2min,弃去上清液后再
次离心,用移液器将多余的上清液吸走,加入200μL的
碘化丙啶溶液(BD Biosciences),反复吸打后制成细胞核
悬浮液备用,整个过程均在冰上操作。采用同样的方法
获得内标作物的细胞核悬浮液备用。
1.2.3 基因组大小的测定与计算 采用BD FACSCalibur
流式细胞仪进行基因组大小测定。设定参数为:488nm
蓝光激发,收集FL2通道的荧光,检测PI的发射荧光强
度。每个样本至少收集1万个细胞,每个样品重复测定
3次。
1.3 项目测定
样本基因组大小计算采用DOLEEL等[8]的公式计
算,即:样品基因组大小=内标基因组大小× (样品2C
DNA峰值/内标2CDNA峰值)。
011
北方园艺2016(02):110~112 ·生物技术·
表1 6种细胞核裂解液配方
Table 1 Component of six nuclei isolation bufers
裂解液
Isolation bufer
配方
Component
参考文献
Reference
Otto I 0.1mol/L citric acid,0.5% (v/v)Tween 20 [8]
Galbraith’s 20mmol/L MOPS,45mmol/L MgCl2·6H2O,30mmol/L sodium citrate,0.1%Triton X-100,pH 7.0 [9]
Chopping 44.8mmol/L MgCl2,46mmol/L citric acid,20mmol/L MOPS,0.1%Triton X-100,50μg/mL RNaseA [9]
LB01 15mmol/L Tris,2mmol/L Na2EDTA,0.5mmol/L spermine·4HCl,80mmol/L KCl,20mmol/L NaCl,0.1%Triton X-100,15mmol/Lβ?巯基乙醇,pH 7.5 [8]
GPB 0.5mmol/L spermine·4HCl,30mmol/L sodium citrate,20mmol/L MOPS,80mmol/L KCl,20mmol/L NaCl,0.5% (v/v)Triton X-100,pH 7.0 [10]
Solution A MgSO4Bufer:(10mmol/L MgSO4·7H2O,50mmol/L KCl,5mmol/L Hepes,pH 8.0),10% (w/v)Triton X-100,1mg/mL DTT [11]
1.4 数据分析
利用流式细胞仪自带软件(CelQuest Pro Analysis)
分析和处理所得的图像和数据。
2 结果与分析
2.1 细胞核裂解液选择
根据6种细胞核裂解液制备的细胞核悬浮液在流
式细胞仪上显示的DNA峰图,Otto I的裂解效果最好
(图1a、b),获得的2C和4CDNA峰清晰可见,峰图质
量高而且同一材料的重复性较好。Galbraith’s Bufer
和LB01的效果次之,其余裂解液的效果均较差,说明
Otto I是最适合瓠瓜进行流式细胞术研究的细胞核裂
解液。
注:a,单独的瓠瓜样品;b,单独的水稻样品;c,瓠瓜和水稻的混合样品。
Note:a,Bottle gourd sample;b,Rice sample;c,Mixed samples of bottle gourd and rice.
图1 部分分离后的细胞核的相对荧光含量(相对DNA含量)
Fig.1 Relative fluorescence intensities(relative DNA content)of isolated plant nuclei
2.2 内标选择
采用Otto I裂解液,测得瓠瓜、番茄、水稻、黄瓜、萝
卜、甜瓜的2CDNA峰值分别为161.5、438.0、214.5、
184.5、299.0、217.0。从峰值的位置来看,番茄与瓠瓜
的2CDNA峰值相距较大,可能增大最终的计算误差;
黄瓜与瓠瓜的2CDNA峰值有重叠,表明二者混合后
可能无法区分;萝卜与瓠瓜的2CDNA峰值能够清楚
地分开,但与瓠瓜的4CDNA峰值可能有重叠;水稻和
甜瓜与瓠瓜的2CDNA峰值既能清楚地分开,位置相
距又不大(图1c),因而最适宜做为瓠瓜基因组测定的
内标。
2.3 瓠瓜基因组大小计算
该研究选择水稻作为内标作物测定瓠瓜的基因组
大小,水稻的基因组大小约为430Mb[12],其2CDNA峰
值平均为195.31,瓠瓜的2CDNA峰值平均为151.85,
根据水稻和瓠瓜的峰值的倍数关系,计算出瓠瓜的基因
组大小约为329.11~344.56Mb,且材料间基因组大小
差异并不显著(表2)。
表2 瓠瓜基因组大小测定结果
Table 2 Results of genome size of bottle gourd
品种
Variety
瓠瓜峰值位置
Peak position
of bottle gourd
水稻峰值位置
Peak position
of rice
二者比值
Ratio
瓠瓜基因组大小
Genome size of
bottle gourd/Mb
平均值
Mean
value
1 148 194 0.762 9 328.05 329.11
J7③ 2 149 193 0.772 0 331.96
3 153 201 0.761 2 327.32
1 156 206 0.757 3 325.64 333.72
I77① 2 162 209 0.775 1 333.29
3 156 196 0.795 9 342.24
1 161 189 0.851 9 366.32 344.56
G8-2① 2 147 186 0.790 3 339.83
3 147 193 0.761 7 327.53
1 157 203 0.773 4 332.56 332.96
G6-3-5② 2 144 190 0.757 9 325.90
3 152 192 0.791 7 340.43
3 讨论
该研究确定以水稻作为内标,测定了4份中国瓠
瓜的基因组大小,为瓠瓜的全基因组测序及基因组学
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·生物技术· 北方园艺2016(02):110~112
研究提供了基础数据。在流式细胞术分析中,样品前
处理至关重要,其中合适的细胞核裂解液起着关键的
作用。ACHIGAN-DAKO等[13]曾使用Galbraith’s Buf-
er测定瓠瓜基因组大小,该研究通过比较6种细胞核裂
解液对瓠瓜嫩叶的处理效果,发现Otto I比Galbraith’s
Bufer的效果更好,不仅峰图质量高,而且不同材料间稳
定性最强。在细胞核悬浮液的制备及染色上,传统的做
法是对离心收集到的细胞核再次加入细胞核裂解液,制
成细胞核悬浮液,然后加入染料染色20~120min[14-15],该
研究对离心收集到的细胞核加入PI染色液制成细胞核
悬浮液,直接上机进行测定,与传统方法相比,节省了染
色的时间,而且能最大限度的保持细胞核的完整性,使
得测定结果更为准确。
在该研究中,通过比较瓠瓜与番茄等其它5种作
物的2CDNA峰图,认为水稻和甜瓜的DNA峰与瓠瓜
差距不大且能清楚地区分,因而适合作为内标。水稻
品种“日本晴”是已经测序且序列组装质量较高的品
种,其基因组序列和大小得到了深入的研究,以该品种
作为内标可以确保瓠瓜基因组大小测定的准确性。
ACHIGAN-DAKO等[13]曾以萝卜为内标,利用流式细胞
仪测定非洲和美洲瓠瓜的2CDNA含量为0.683~
0.776pg,对应基因组大小约为333~379Mb,该研究还
发现不同材料间的基因组大小存在12%的变异。该研
究测定的瓠瓜基因组大小为329.11~344.56Mb,尽管
使用的内标不一样,但2份独立的试验获得的结果较为
一致。
(致谢:感谢浙江大学张宪银和李梅在细胞核提取
液选择、试验方法优化方面提供的帮助。)
参考文献
[1] HEISER C B.The gourd book:A thorough and fascinating account of
gourds from throughout the world[M].Norman:University of Oklahoma
Press,1979.
[2] ERICKSON D L,SMITH B D,CLARKE A C,et al.An asian origin for
a 10 000-year-old domesticated plant in the Americas[J].Proc Natl Acad Sci,
2005,102:18315-18320.
[3] XU P,XU S Z,WU X H,et al.Population genomic analyses from low-
coverage RAD-Seq data:a case study on the non-model cucurbit bottle gourd
[J].The Plant Journal,2014,177:430-442.
[4] YETISIR H,SARI N.Efect of diferent rootstock on plant growth,
yield and quality of watermelon[J].Aust J Exp Agric,2003,43:1269-
1274.
[5] BEEVY S S,KURIACHAN P.Chromosome numbers of south Indian
Cucurbitaceae and a note on the cytological evolution in the family[J].J Cytol
Genet,1996,31:65-71.
[6] DOLEEL J,BARTOJ,VOGLMAYR H.Nuclear DNA content and
genome size of trout and human[J].Cytometry A,2003,51:127-128.
[7] DOLEEL J,GREILHUBER J,SUDA J.Flow cytometry with plants:
an overview.In Flow Cytometry with Plant Cels[M].Weinheim:Wiley-
VCH,2007:41-65.
[8] DOLEEL J,GREILHUBER J,SUDA J.Estimation of nuclear DNA
content in plants using flow cytometry[J].Nature Protocols,2007(2):2233-
2244.
[9] GALBRAITH D W,HARKINS R K,MADDOX M J,et al.Rapid flow
cytometry analysis of the cel cycle in intact plant tissues[J].Science,1983,
220:1049-1051.
[10]LOUREIRO J,RODRIGUEZ E,DOLEEL J,et al.Two new nuclear
isolation bufers for plant DNA flow cytometry:a test with 37species[J].An-
nals of Botany,2007,100:875-888.
[11]ARUMUGANATHAN K,EARLE E D.Nuclear DNA content of some
important plant species[J].Plant Molecular Biology Reporter,1991(3):208-
218.
[12]YU J,HU S N,WANG J,et al.A draft sequence of the rice genome
(Oryza sativa L.ssp.indica)[J].Science,2002,296:79-92.
[13]ACHIGAN-DAKO E,FUCHS J,AHANCHEDE A,et al.Flow cyto-
metric analysis in Lagenaria siceraria(Cucurbitaceae)indicates correlation of
genome size with usage types and growing elevation[J].Plant Syst Evol,
2008,276:9-19.
[14]邓果特,刘清波,蒋建雄,等.五节芒基因组大小测定[J].植物遗传资
源学报,2013,14(2):339-341.
[15]李祯,伊贤贵,顾宇,等.山樱花基因组大小的测定[J].南京林业大学
学报(自然科学版),2014,38(S1):17-19.
Estimation of Genome of Botle Gourd
WU Xinyi,XU Pei,WU Xiaohua,WANG Baogen,LU Zhongfu,LI Guojing
(Institute of Vegetables,Zhejiang Academy of Agricultural Sciences,Hangzhou,Zhejiang 310021)
Abstract:Taking four Chinese bottle gourds from diferent areas as material,flow cytometry was used to determine the
genome size of bottle gourd.The results showed that the treatment efect of 6nuclei isolation bufers was compared and
Otto I was found as the best bufer for bottle gourd;the rice variety Nipponbare was selected as the optimal internal
standard from 5candidate crops;the genome size of 4Chinese bottle gourd germplasm was about 329.11-344.56Mb.
Keywords:bottle gourd;genome;flow cytometry;rice
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