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新型禾本科模式植物——二穗短柄草



全 文 :植物生理学通讯 第 44卷 第 4期,2008年 8月 781
新型禾本科模式植物——二穗短柄草
陈军营, 李香妞, 赵一丹, 陈新建 *
河南农业大学农学院, 郑州 450002
A New Model Plant in Gramineae——Brachypodium distachyon L.
CHEN Jun-Ying, LI Xiang-Niu, ZHAO Yi-Dan, CHEN Xin-Jian*
College of Agronomy, Henan Agricultural University, Zhengzhou 450002, China
提要: 文章介绍二穗短柄草这一种新型的禾本科模式植物的分类地位、生物学特性和基因组学等方面的研究进展。
关键词: 禾本科; 二穗短柄草; 新型模式植物
收稿 2008-04-09 修定 2008-07-04
资助 国家转基因植物研究与产业化专项基金(JY03-B-19-2)和
河南省杰出人才创新基金(02 21 00 09 0)。
* 通讯作者(E-mail: xinjian@371.net; Tel: 0371-63554960)。
模式植物拟南芥和水稻已在植物学的各个研
究领域内广泛采用。但作为双子叶的拟南芥在某
种程度上并不具有禾谷类作物的生物学特性和相关
的农艺性状(如分蘖、穗分化等), 且在进化上与单
子叶植物距离较远(Keller和Feuillet 2000), 因此, 将
拟南芥中研究的结果直接应用于单子叶植物不完全
能得到好的效果; 水稻是热带植物, 与温带作物如
小麦等亲缘关系相差较远, 且具有个体大、半水
生、生活周期长、生长要求高等局限性(Draper等
2001)。因此, 需要一个新的模式植物来研究与禾
本科植物相关的一些问题。
二穗短柄草(Brachypodium distachyon L.)是一
年生温带禾本科植物, 起源于中东、北非、亚洲
和欧洲, 分布较广。它具有植株矮小、生活期短
(一般为 70 d左右)、自花授粉、繁殖力强、要
求的生长条件简单且易转化、基因组小、遗传资
源丰富、与禾谷类作物血源关系密切等特点, 所以
有望成为更有研究前途的禾谷类模式植物(Catalan
和Olmstead 2000; Kellogg 2001; Caetano-Anolle
2005)。本文就二穗短柄草生物学特性、组织培
养、遗传转化、基因组学和分子生物学应用中的
研究进展作简要介绍。
1 二穗短柄草的生物学特性、基因组大小和分类
地位
二穗短柄草植株矮小, 成熟后植株高度为
15~20 cm; 生活期短, 在室内长日照条件下, 生活
周期一般为8~11周; 通常在第7片叶长出时开始开
花, 每小花有 1枚雌蕊和 3枚雄蕊, 自花授粉; 节间
多毛, 穗子纺锤型; 颖果长而狭窄; 分枝较多, 每株
能收获多达 800粒种子(Catalan等 1995; Draper等
2001; 王宏归等 2007)。二穗短柄草有二倍体(2n=
10)四倍体(2n=20)和六倍体(2n=30)品种等丰富的多
倍体资源可供研究利用, 其多倍体基因组模式和小
麦等作物极其相似(Shi等 1993)。其中常见的是具
5对染色体和二倍体的二穗短柄草(2n=2x=10), 其生
态型多达50种(Khan和Stace 1999; Draper等2001;
Vogel等 2006a)。二穗短柄草的基因组(164 Mbp)
介于拟南芥的基因组(157 Mbp)和水稻的基因组
(490 Mbp)之间, 约是面包小麦(16 979 Mbp)的1/10,
硬粒小麦(12 030 Mbp)的 1/7以及大麦(5 439 Mbp)
的 1/3 (Bennett和 Leitch 2004; Catalan等 1995)。
DNA重复序列不到15%, 低于拟南芥(16%)和水稻
(20%)。约 35 000个基因, 在染色体上高密度分
布, 平均每 8~ 10 kb 涵盖 1 个基因(D ra pe r 等
2 00 1)。
二穗短柄草属于早熟禾亚科, 与小麦、大
麦、燕麦和水稻等粮食作物以及玉米、高梁、柳
枝稷等作物关系密切(Catalan和Olmstead 2000;
Kellogg 2001; Caetano-Anolle 2005)。Foote等(2004)
用小颖短柄草(Brachypodium sylvaticum)的 371 kb
的DNA测序片段与小麦、水稻中直系同源区域做
比较的结果显示, 二穗短柄草与小麦存在较高的微
共线性(microcolinearity), 而且比以往报道的小麦和
水稻间的微共线性好, 这说明二穗短柄草和小麦的
基因组在进化中有一定程度的保守性(Bossolini等
2007)。VogeI等(2006b)通过来源于二穗短柄草叶
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片、茎、根、愈伤组织和发育中的籽粒的 5 个
差异表达的 cDN A 文库中获得 20 440 条 EST
(expressed sequence tags)序列, 并对部分 ESTs的
系统发生作分析的结果表明, 二穗短柄草与小麦和
大麦之间的关系密切。总之, 二穗短柄草与麦类作
物的亲源关系比其与水稻之间的关系密切(图 1)。
图 1 二穗短柄草与几种禾本科作物的亲缘关系(Opeanowicz等 2008)
2 二穗短柄草的组织培养、遗传转化和生化诱变
Bablak等(1995)将二穗短柄草 3个基因型
B200、B373和 B377的成熟胚分别放在MS和N6
培养基上诱导出的愈伤组织再放在MSO或N6O培
养基上继续分化培养的结果表明, 60%以上的种子
接种在所有的培养基上10~12 d后都可以产生愈伤
组织, 加有 2.5 mg·L-1 2,4-D的MS和N6培养基最
适合于二穗短柄草胚性愈伤组织的诱导。
Christiansen等(2005)将二穗短柄草二倍体和四倍体
基因型的幼胚放在 LS培养基上培养的结果显示,
BDR017 (4n)和 BDR030 (4n)胚性愈伤组织诱导率
分别为 67%和 91%, 高于二倍体基因型 BDR001
(51%)和 BDR018 (46%)。所有基因型都可以获得
再生植株, 3~6周的 BDR017、BDR030、BDR001
和 BDR018愈伤组织的再生率为 90%~100%。
Chr is tiansen等(2005)用基因枪转化法对
BDR001、BDR017、BDR018和 BDR030这 4种
基因型的二穗短柄草幼胚的胚性愈伤组织进行转化
的结果表明, 4个基因型的平均转化率分别为 0、
3.8%、5.3%和4.1%, BDR017、BDR018和BDR030
最高转化率分别为 11%、9% 和 14%。Vain等
(2008)和 Pacurar等(2007)用农杆菌转化法对来源
于二穗短柄草Bd21和BDR018幼胚愈伤组织进行
转化的结果表明, Bd21的效率在 6%~17%之间,
BDR018农杆菌转化的效率则高达 55%, 说明基因
型不同的二穗短柄草的转化效率不同。
化学诱变方法和T-DNA插入突变方法都已在
二穗短柄草中得到应用。Engvild (2005)用不同浓
度叠氮化钠和甲基磺酸乙脂( e t h y l m e t h a n e
sulphona te, EMS)诱导二穗短柄草 BDR018、
BDR001和 BDR037 (2n)种子突变的结果表明, 叠
氮化钠诱变率比EMS的诱变率高。10 mmol·L-1叠
氮化钠诱变不同基因型的诱变率有较大差异 ,
BDR037 M1代的叶绿素诱变效率可高达45%, M2代
的叶片产生白化、黄化、浅绿和条纹 4种叶绿素
突变型; BDR018 M1和M2代的叶绿素基本上没有
突变; BDR001 M1和M2代全部表现为白化突变体。
Vain等(2008)以双元表达载体pVec8-GFP T-DNA插
入方法构建二穗短柄草突变体库时获得到2 500个
Bd21的T-DNA插入突变系, 这些突变系的部分突
变体的侧翼序列(flanking sequence)测序正在进行
中。
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3 二穗短柄草的分子生物学和基因组学
Allwood等(2006)以二穗短柄草对水稻稻瘟病
敏感的ABR1 (易感)和ABR5 (抗性)基因型为材料,
用傅立叶红外光谱仪(FT-IR)和电喷雾电离质谱
(ESI-MS)检测二穗短柄草与病原交互作用中的一些
关键代谢物变化的结果表明, 在感病过程中, ABR5
体内的磷脂酸(生物膜的组成分)增加而ABR1体内
则减少; ABR1中的磷脂酰甘油合成受抑制, 说明二
穗短柄草抗(或感)稻瘟病的机制中膜成分(磷脂酸)
的合成有增加或受抑制, 这些结果对水稻的抗性研
究提供了有价值的参考。Olsen等(2006)用基因枪
转化方法将受泛素启动子Ubi (ubiquitin)控制下的拟
南芥和多年生黑麦草开花负调控基因 T F 1 L 和
LpTF1L分别转入 2个二穗短柄草基因型 BDR017
(不需要春化处理也能够抽穗开花)和BDR018中过
量表达的结果表明, 转LpTF1L和TF1L的BDR017
植株抽穗比非转基因植株分别延迟 20和 23 d, 转
LpTF1L的 BDR018的植株抽穗则推迟 67 d, 说明
源于其他植物中的开花负调控基因在二穗短柄草中
也起作用。迄今, 二穗短柄草的研究还在起步阶
段, 以之研究与穗分化和分孽等有关的农艺性状的
结果尚未见报道。
国际短柄草协会(International Brachypodium
Initiative, IBI)正在构建二穗短柄草 Bd21的遗传连
锁图(http://www.brachypodium.org)。Luo等
(2007)曾构建了2个二穗短柄草(BD21)的BAC文库,
每个文库的覆盖度是基因组的10倍, BD-21指纹图
谱的绘制也已初步完成, 其中 26 967个为HindIII
酶解的BAC (bacterial artificial chromosome)以得到
克隆, 其指纹图谱(fingerprint)占 75%; 包括 1 987
个非重叠群(singletons)和705个重叠群(contigs), 重
叠群平均大小为 0 . 4 7 M b p ( h t t p : / / w w w .
brachypodium.org)。人们试图将这些图谱与水
稻、小麦和一些作物的基因组联系起来。加州大
学先后构建了 3个高覆盖度的二穗短柄草BAC文
库, 总覆盖度为基因组的 19.3倍, 包含 73 728个克
隆, 平均插入片段为 100~105 kb, 获得的约 6万个
BAC末端序列(BAC end sequences, BES)中有约10%
的BES与数据库中已知的DNA重复序列具有同源
性, 约有 40%的BES与EST库中的序列有关, 尤其
是与小麦和玉米的 EST有关(Huo等 2006, 2008;
Vogel等2006b)。二穗短柄草的基因组序列草图已
经完成, 全部序列的注释有望在 2008年完成(http://
www.brachypodium.org/node/8) (Bevan等 2007)。
4 结语
二穗短柄草不但生长周期短、基因组小、繁
殖力强、要求的生长条件简单、容易转化, 而且
具有拟南芥和水稻所不具备的生物学特性。二穗
短柄草有3~4周就能完成整个生长周期的品种, 有
需春化(如Bd21)和不需春化的品种; 二穗短柄草个
体虽小, 但籽粒较大, 适合于研究籽粒的灌浆和成
熟过程; 二穗短柄草中有些品种的种子有休眠现象
(如 Bd21), 可用于研究禾本科植物的相关问题; 二
穗短柄草对多种农作物病原菌敏感(如白粉病、大
麦和小麦的叶锈病和条锈病、水稻的稻瘟病等),
是研究农作物抗病机制的良好材料; 二穗短柄草的
细胞壁结构和组成与黍属植物(Panicum virgatum)
和荻属植物巨芒(Miscanthus giganteus)等能源植物
很相似, 可用于研究这些能源植物特性的分子机制
和品质改良(Draper等 2001; Vogel等 2006a; Olsen
等2006)。二穗短柄草全基因组功能注释将很快完
成, 这将更有利于解决拟南芥和水稻模式植物所不
能解决的禾本科植物中的一些问题。总之, 作为一
种新型的禾本科模式植物的二穗短柄草, 将在研究
与农业生产关系密切的禾本科植物各种生物学问题
方面发挥作用。
参考文献
王宏归, 王保莉, 林辰涛, 傅永福(2007). 二穗短柄草 Bd21的形态
学观察. 西北农业学报, 16 (6): 296~300
Allwood JW, Ellis DI, Heald JK, Goodacre R, Mur LAJ (2006).
Metabolomic approaches reveal that phosphatidic and phos-
phatidyl glycerol phospholipids are major discriminatory
non-polar metabolites in responses by Bra chypod ium
distachyon to challenge by Magnaporthe grisea. Plant J, 46
(3): 351~368
Bablak P, Draper J, Davey MR, Lynch PT (1995). Plant regen-
eration and micropropagation of Brachypodium distachyon.
Plant Cell Tiss Org Cult, 42 (1): 97~107
Bossolini E, Wicker T, Knobel PA, Keller B (2007). Comparison
of orthologous loci from small grass genomes Brachypodium
and rice: implications for wheat genomics and grass genome
annotation. Plant J, 49 (4): 704~717
Bennett MD, Leitch IJ (2004). Plant DNA C-values database
(release 3.0, Dec. 2004). http://www.rbgkew.org.uk/cval/
homepage.html
Bevan M, McKenzie N, Trick M, Snape J, Mockler T, Vogel J,
Garvin D (2007). Developing a genetic map of Brachypodium
distachyon Bd21. In: Plant & Animal Genomes XV Confer-
植物生理学通讯 第 44卷 第 4期,2008年 8月784
ence (ed). San Diego, CA: Town & Country Convention
Center
Caetano-Anolles G (2005). Evolution of genome size in the grasses.
Crop Sci, 45: 1809~1816
Catalan P, Olmstead RG (2000). Phylogenetic reconstruction of
the genus Brachypodium P. Beauv. (Poaceae) from combined
sequences of chloroplast ndhF gene and nuclear ITS. Plant
System Evolution, 220 (1~2): 1~19
Catalan P, Shi Y, Armstrong L, Draper J, Stace CA (1995). Mo-
lecular phylogeny of the grass genus Brachypodium P. Beauv.
based on RFLP and RAPD analysis. Bot J Lin Soc, 117 (4):
263~280
Christiansen P, Andersen CH, Didion T, Folling M, Nielsen KK
(2005). A rapid and efficient transformation protocol for
the grass Brachypodium distachyon. Plant Cell, 23 (10~11):
751~758
Draper J, Mur LAJ, Jenkins G, Ghosh-Biswas GC, Bablak P,
Hasterok R, Routedge A (2001). Brachypodium distachyon.
A new model system for functional genomics in grasses.
Plant Physiol, 127 (4): 1539~1555
Engvild KC (2005). Mutagenesis of the model grass Brachypodium
distachyon with sodium azide. Risoe-R-1510(EN) Report.
Denmark: Risoe National Laboratory
Foote TN, Griffiths S, Allouis S, Moore (2004). Construction and
analysis of a BAC library in the grass Brachypodium sylvaticum:
its use as a tool to bridge the gap between rice and wheat in
elucidating gene content. Funct Integr Genomics, 4 (1):
26~33
Huo N, Gu Y, Lazo G, Vogel J P, Coleman-Derr D, Luo MC,
Thilmony R, Garvin D, Anderson O (2006). Construction
a nd ch a r a c t er i za t io n o f tw o B A C l ib r a r i e s f ro m
Brachypodium distachyon, a new model for grass genomics.
Genome, 49: 1099~1108
Huo N, Lazo G, Vogel JP, You F, Ma Y, Hayden D, Coleman-Derr
D, Hill T, Dvorak J, Anderson O (2008). The nuclear ge-
nome of Brachypodium distachyon: analysis of BAC end
sequences. Funct Integr Genomics, 8: 135~147
Keller B, Feuillet C (2000). Colinearity and gene density in grass
genomes. Trends Plant Sci, 5 (6): 246~251
Kellogg EA (2001). Evolutionary history of the grasses. Plant
Physiol, 125 (3): 1198~1205
Khan MA, Stace CA (1999). Breeding relationships in the genus
Brachypodium (Poaceae: Pooideae). Nord J Bot, 19 (3):
257~269
Luo MC, Ma Y, Huo N, Vogel JP, Lazo GR, Hill T, Coleman-Derr
D, Hayden D, Dvorak J, Anderson O (2007). Construction of
physical map for Brachypodium distachyon. In: Plant &
Animal Genomes XV Conference (ed). San Diego, CA: Town
& Country Convention Center
Olsen P, Lenk l, Jensen CS (2006). Analysis of two heterologous
flowering genes in Brachypodium distachyon demonstrates
its potentia l as a grass model plant. Plant Sci, 170 (5):
1020~1025
Opanowicz M, Vain P, Draper J, Parker D, Doonan JH (2008).
Brachypodium distachyon: making hay with a wild grass.
Trends Plant Sci, 13 (4): 172~177
Pacurar DI, Thordal-Christensen H, Nielsen KK, Lenk I (2007).
A high-throughput Agrobacterium-mediated transformation
system for the grass model species Brachypodium distachyon
L. Transgenic Res, online first. doi: 10.1007/s11248-007-
9159-y
Shi Y, Draper J, Stace C (1993). Ribosomal DNA variation and its
phylogeneti c implicat ion in the genus Ba ch ypo dium
(Poaceae). Plant System Evol, 188: 125~138
Vain P, Worland B, Thole V, McKenzie N, Alves SC, Opanowicz
M, Fish LJ, Bevan MW, Snape JW (2008). Agrobacterium-
m e d i a te d t r a n s fo rm a t i o n o f t he t e m p e r a t e g r a s s
Brachypodium distachyon (genotype Bd21) for T-DNA
insertional mutagenesis. Plant Biotechnol J, 6: 236~245
Vogel JP, G arvin D F, Leong OM, Hayden DM (2 00 6a ).
Agrobacterium-mediated transformation and inbred line de-
velopment in the model grass Brachypodium distachyon.
Plant Cell Tiss Org Cult, 84 (2): 199~211
Vogel JP, Gu YQ, Twigg P, Lazo GR, Chingcuanco DL, Hayden DM,
Donze TJ, Vivian LA, Stamova B, Derr DC (2006b). EST
sequencing and phylogenetic analysis of the model grass
Brachypodium distachyon. Theor Appl Genet, 13: 186~
195