免费文献传递   相关文献

Nitrogen metabolism and relative enzyme activities of the peanut relay-cropped with wheat

麦套花生氮素代谢及相关酶活性变化研究


Nitrogen metabolism and relative enzyme activities of peanut were studied by comparing relay-cropped peanut (RP) with wheat and mono-cropped peanut (MP) under filed condition. The tested peanut cultivar was Huayu 22. The results showed that, free amino acids and nitrogen contents in leaves and roots, soluble protein contents were higher in roots of RP compared to MP. However, soluble protein content was lower in RP leaves than in MP leaves. Nitrate reductase(NRase) activities and glutamate dehydrogenase(GDH) activities in leaves and roots, glutamine synthetase(GS) activities and glutamate pyruvate transaminase(GPT) activities (except for 25 days after sowing) were significantly lower in leaves of RP than those of MP during the wheat and peanut symbiotic period. GS activities and GPT activities were higher in roots of RP than those of MP during the entire growth period. It can be concluded that wheat shading in RP affected nitrogen metabolism and enzymatic activities at seedling stage.


全 文 :收稿日期:!""#$"!$%& 接受日期:!""#$"’$!(
基金项目:“十五”国家科技攻关计划(!""%)*&"+* $ "+);“十一五”国家科技支撑计划(!""’)*,!%)"( $ %&);山东省农业科学院青年科研基
金;山东省农业科学院高技术自主创新基金资助。
作者简介:郭峰(%-+’—),男,山东费县人,硕士,助理研究员,主要研究植物生理生化。./0:"&1%$#1%+-%(+,234560:78%!1(&’79:%!’; <=4
!通讯作者 ./0:"&1%$#1%+#%!+,234560:>5?@A: @55@B 5麦套花生氮素代谢及相关酶活性变化研究
郭 峰%,!,万书波%,!!,王才斌1,李新国%,!,孟静静%,!,徐平丽%,!
(% 山东省农业科学院高新技术研究中心,山东济南 !&"%"";
! 山东省作物与畜禽品种改良生物技术重点实验室,山东济南 !&"%"";1 山东省花生研究所,山东青岛 !’’%"")
摘要:大田条件下,以花生“花育 !!号”为材料,研究了麦套花生的氮素代谢及相关酶活性变化情况。结果表明,麦
套花生根、叶游离氨基酸、氮素平均含量及根系可溶性蛋白平均含量高于单作;而叶片可溶性蛋白平均含量则低于
单作。与小麦共生期间,麦套花生根叶硝酸还原酶(CD5@/)活性、谷氨酸脱氢酶(E,F)活性、叶片谷氨酰胺合成酶
(EG)活性及谷丙转氨酶(EH.)活性(除播后 !& I)明显低于单作;整个生育期麦套花生根系 EG平均活性及 EH.活
性高于单作花生。可见,花生苗期小麦遮荫对花生氮素代谢及酶活性有一定影响。
关键词:套种花生;氮素代谢;硝酸还原酶;谷氨酰胺合成酶;谷氨酸脱氢酶;谷丙转氨酶
中图分类号:G&’&;!;"% 文献标识码:* 文章编号:%""#$&"&J(!""-)"!$"(%’$"’
!"#$%&’( )’#*+%,"-) *(. $’,*#"/’ ’(01)’ *2#"/"#"’- %3
#4’ 5’*(6# $’,*172$%55’. 8"#4 84’*#
EKL M/?7%,!,N*C G9O3A=%,!!,N*CE P563A6?1,QR J6?37O=%,!,S2CE T6?73U6?7%,!,JK H6?7306%,!
(! "#$%&’()% *(+(,-)% .(/’(-,0%,/12/$ 3),1(45 26 3$-#)78’7-,8 0)#(/)(+,9#/,/ :;,?2-,’2-5 62- @(/(’#) A4B-2C(4(/’ 26
.-2B,3/#4,8 ,/1 D278’-5 26 0%,/12/$ D-2C#/)(,9#/,/ :;9+-#$*2#:C6VW=7/? 4/V5A=06@4 5?I W/05V6X/ /?YZ4/ 5/W/ @VOI6/I AZ <=4[5W6?7 W/05Z3(DH)>6V9 >9/5V 5?I 4=?=35@ FO5ZO !!; .9/
W/@O0V@ @9=>/I V95V,8W// 546?= 5<6I@ 5?I ?6VW=7/? <=?V/?V@ 6? 0/5X/@ 5?I W==V@,@=0OA0/ [W=V/6? <=?V/?V@ >/W/ 9679/W 6?
W==V@ =8 DH <=4[5W/I V= SHB F=>/X/W,@=0OA0/ [W=V/6? <=?V/?V >5@ 0=>/W 6? DH 0/5X/@ V95? 6? SH 0/5X/@ B C6VW5V/ W/IO<3
V5@/(CD5@/)5V6X6V6/@ 5?I 70OV545V/ [ZWOX5V/ VW5?@546?5@/(EH.)56?7)6? 0/5X/@ =8 DH >/W/ @673
?686<5?V0Z 0=>/W V95? V9=@/ =8 SH IOW6?7 V9/ >9/5V 5?I [/5?OV @Z4A6=V6< [/W6=IB EG 5=8 DH >/W/ 9679/W V95? V9=@/ =8 SH IOW6?7 V9/ /?V6W/ 7W=>V9 [/W6=IB RV <5? A/ <=?<0OI/I V95V >9/5V @95I6?7 6? DH 588//I ?6VW=7/? 4/V5A=06@4 5?I /?YZ45V6< 5:’1 8%$.-:W/05Z36V9 >9/5V;?6VW=7/? 4/V5A=06@4;?6VW5V/ W/IO70OV546?/ @Z?V9/V5@/;70OV545V/ I/9ZIW=7/?5@/;70OV545V/ [ZWOX5V/ VW5?@546?5@/
豆科与禾本科作物间套作有很强的养分吸收竞
争性和互补性,可明显地提高作物产量[%$!]。豆科
作物可以通过生物固氮满足氮素需求,禾本科作物
主要是吸收土壤中的氮素,豆科与禾本科间套作能
够提高豆科作物的生物固氮效率[1$’]。因此,为了
减少氮肥施用量和保持土壤的可持续利用,发展豆
科与禾本科作物间套作对可持续农业的发展有着重
要影响。随着我国耕地面积的不断下降,粮油争地
矛盾日益突出,两熟制面积迅速扩大,麦油两熟制是
未来黄淮海地区花生生产的发展方向,具有广阔的
植物营养与肥料学报 !""-,%&(!):(%’$(!%
""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""""
H05?V COVW6V6=? 5?I M/WV606Y/W G<6/?前景。与夏直播花生相比,麦套花生由于其可以增
加花生生长期提高产量、调节劳力余缺等优点,是两
熟制的主要种植方式。但麦套花生在小麦生育前期
有一个共生期,共生期间花生的生长环境与单作花
生相比发生了很大变化,其生长发育受到了一定的
影响,直接影响到麦套花生的产量。研究麦套花生
的生理特点,是制定麦套花生高产栽培技术不可缺
少的理论依据。
氮素是植物体内重要营养元素,其代谢生理过
程直接影响着植物产量和品质。蛋白质作为氮素代
谢的终极产物,其生物合成主要在硝酸还原酶
(!"#$%)、谷氨酰胺合成酶(&’)、谷氨酸脱氢酶
(&())、谷丙转氨酶(&*+)等一系列酶催化作用下
完成。但受诸多因素影响,如充足的光照、适宜的肥
水条件、温度以及良好的品种自身遗传特性等都会
促进花生的生长及酶活性提高[,-.]。我国花生种质
资源中部分种质的营养品质及其环境因素的影响已
有报道[/0-/1];对干旱胁迫、氮肥用量及其种类、植物
生长调节剂以及微量元素对花生叶片 !"#$%及根瘤
固氮酶活性也进行过相关研究[/2-/,];对于单作花生
衰老过程中的氮素部分代谢也有过研究[/3-40]。但
有关麦套花生生长发育过程中 !"#$%、&’、&()、&*+
等氮素代谢关键酶活性变化的研究报道不多[4/]。
为此,本研究探讨了麦套花生高产条件下整个生育
时期根、叶氮素代谢及部分主要调节酶活性的动态
变化,旨在为花生优质、高产提供栽培调控理论依
据。
! 材料与方法
!"! 试验设计
试验于 4001!400, 年在山东省花生研究所莱
西试验农场进行。试验地土壤类型为褐土,表层土
壤为沙壤土,0—50 67土壤肥力状况:有机质 /48/
9 : ;9、水解 ! 338. 79 : ;9、速效 * 2080 79 : ;9、速效 <
.58. 79 : ;9。供试品种花育 44 号。小区面积 444
74,重复 5次,试验采用大垄宽幅麦套种花生(以 "*
表示)种植方式,具体规格为:畦宽 .0 67,畦内起宽
20 67、高 /0 67的垄,垄沟内播 4行小麦。播种前每
公顷基施三元复合肥(/2 -/2 -/2),20 ;9 : =74,小麦
起身拔节期追尿素 /20 ;9 : =74。小麦 .月下旬至 /0
月上旬播种,次年 >月中旬收获。次年小麦开花初
期(2月上旬)小麦株高已定型,为 30 67左右,在垄
上裸栽套种 4行花生,行距 50 67,穴距 />82 67,每
穴 4粒,花生与小麦共生期为 12 ? 左右,随着花生
株高的增加,与小麦的株高差减小,花生冠层获得的
光照增加。同时按照同样种植规格春播单作花生
(以 @*表示)作为对照。单作花生每公顷基施三元
复合肥 ,20 ;9 : =74。小麦、花生的其他措施按常规
高产田进行。
!"# 测定项目与方法
播后 42 ?开始每隔 /0 ?左右取样,直至收获。
于上午 .:00—//:00 在田间不同地点选生长一致
且有代表性的花生植株做测定样本:每个小区取 4
株,共 >株取主茎倒二和倒三展开叶(以 A 表示);
取 0—50 67土层的根系(以 "表示),取根系时,先
用水浇灌植株,使根部土壤湿润疏松,然后挖动根部
土层用清水缓慢冲净泥土,尽量保持幼根和根毛完
整,洗净后液氮速冻,置于 - >0B低温冰箱中保存待
测。
硝酸还原酶活性(!"#$%)测定采用活体法[44];
游离氨基酸测定采用茚三酮溶液显色法[44];谷丙
转氨酶(&*+)活性测定采用分光光度法[45];氮素用
微量凯式定氮法[41];可溶性蛋白用考马斯亮蓝 &-
420染色法[42]。
谷氨酰胺合成酶(&’)和谷氨酸脱氢酶(&())活
性测定参照 CD%E #E? )FD%G[4>]的方法略作改动。
&’测定:称取 /80 9 鲜样,加 5 7A H)380 的
0802 7IG : A +DF$J)CG缓冲液(内含 4 77IG : A (++,081
7IG : A的蔗糖)冰浴研磨,1B下 /2000 K 9 离心 40
7FE,取上清液 08, 7A,加入 08, 7A 10 77IG : A L+*
和 /8> 7A反应液 L(内含 30 77IG : A @94 M,40 77IG :
A谷氨酸钠盐,40 77IG : A半胱氨酸、4 77IG : A N(+L
和 30 77IG : A盐酸羟胺),5,B保温 50 7FE,加 / 7A
显色剂(内含 084 7IG : A +CL,085, 7IG : A O%CG5和 08>
7IG : A )CG)摇匀放置片刻,2000 K 9 离心 /0 7FE,取
上清液在 210 E7处测吸光度,以加反应液 P(反应
液 L不加盐酸羟胺)为对照。
&()测定:称取新鲜材料 /80 9,加 3 7A 084
7IG : A H) 384 +DF$J)CG 缓冲液冰浴研磨,1B 下
/2000 K 9 离心 40 7FE,/ 7A上清液加 4 7A反应液
L(>0!7IG : A A -谷氨酸 M /8>!7IG : A !L( M 5>0
!7IG : A +DF$J)CG缓冲液),以加反应液 P(/8>!7IG : A
!L( M 5>0!7IG : A +DF$J)CG缓冲液)为对照于 510 E7
比色,每隔 50 $记录一次 Q(值。
# 结果与分析
#"! 麦套花生根、叶中氮含量的变化
氮素是植物体主要营养元素之一,其含量的多
,/14期 郭峰,等:麦套花生氮素代谢及相关酶活性变化研究
少影响着株体正常生理代谢。由图 !可以看出,麦
套和单作花生叶片氮含量均呈现下降趋势,存在极
显著差异(" # $%&’(!!),整个生育期氮含量较单作
低 !)%*+,饱果期氮含量下降速率较单作慢。二者
根系氮含量差异不显著,但苗期差异较大,麦套高出
单作 !)%&+,饱果期氮含量略高于单作花生(图 !)。
!"! 麦套花生根、叶中游离氨基酸含量的变化
麦套花生叶片游离氨基酸含量比单作花生平均
提高 *%*+,差异极显著( " # &%’,*!!)。播后 ,& -
出现一峰值,较单作花生晚 !’ -左右;结荚期和饱
果期含量明显高于单作花生,收获时高出单作花生
)’+。根系游离氨基酸含量变化趋势与叶相似,差
异显著(" # (%,./!),麦套花生在花针期和饱果期其
含量明显高于单作花生(图 ()。
图 # 花生根、叶氮含量
$%&’# (%)*+&,- .+-),-) %- /,01,2 0-3 *++)2 +4 5,0-6)
图 ! 花生根、叶游离氨基酸含量
$%&’! $*,, 07%-+ 0.%3 .+-),-) %- /,01,2 0-3 *++)2 +4 5,0-6)
[注(01"2):345,343分别为麦套花生叶片与根系 526728 69- :11"8 1; :2<6=>?:1@@2- @269A";B45,B43分别为单作花生叶片与根系
526728 69- :11"8 1; C191>?:1@@2- @269A" D下同 EF2 86C2 G2<1HD]
!"8 麦套花生根、叶可溶性蛋白质含量的变化
可溶性蛋白是植物体内氮素存在的主要形式,
其含量的多少与植物体代谢和衰老有密切的关系。
由图 /可知,麦套花生叶片可溶性蛋白含量明显低
于单作花生,整个生育期二者差异显著( " #
(%*,&!)。播后 $& -左右达到高峰,较单作花生迟
(’ -左右,之后二者迅速下降,进入饱果期后基本趋
于稳定,维持在 )%&’ CI J I,KL左右。整个生育期二
者根系可溶性蛋白差异极显著(" # )%$’.!!),麦套
花生高于单作花生,饱果期含量最高;而单作花生
在结荚末期达到高峰,进入饱果期后迅速下降,明显
低于麦套花生(图 /)。
!"9 麦套花生根、叶硝酸还原酶((:02,)活性的变

03682活性的高低控制着整个同化过程,其强
弱在一定程度上反映了蛋白质合成和氮代谢活性。
图 )看出,麦套和单作花生叶片和根系 03682活性
变化趋势均存在显著差异( " # !%/&)!和 !%&&’!),
随生育进程均表现为下降趋势。麦套花生与小麦共
生期,其叶、根 03682活性均低于单作花生;麦收后
图 8 花生根、叶可溶性蛋白含量
$%&’8 ;+/6套种花生的叶、根 03682活性高于单作花生,尤其在
花针期,比单作分别高出 !.%’+和 ((%(+,结荚和
饱果期均保持较高水平,收获时均明显高于单作花
生 ($%&+和 ((%!+(图 ))。
!"= 麦套花生根、叶谷氨酰胺合成酶(>;)活性的
变化
MN是参与氮代谢的多功能酶,其活性高低影响
着部分糖代谢和其他多种氮代谢酶。麦套和单作花
$!) 植 物 营 养 与 肥 料 学 报 !&卷
生叶片 !" 活性变化均呈现先升后降趋势(图 #)。
所不同的是麦套花生生育前期 !"活性明显低于单
作,且峰值出现晚,进入结荚期后两种种植方式差异
不十分明显。根系中 !"活性均呈现低—高—低的
趋势,峰值均出现在花针期,但麦套早于单作。与叶
片不同的是,麦套花生根系中 !" 活性在多数时期
高于单作,其中峰值比单作高 $%&’(,收获前高出
单作 $#&)(。
图 ! 花生根、叶硝酸还原酶活性
"#$%! &’()* (+,#-#,. #/ 0*(-*) (/1 233,) 34 5*(/6,
图 7 花生根、叶谷氨酰胺合成酶活性
"#$%7 89 (+,#-#,. #/ 0*(-*) (/1 233,) 34 5*(/6,
:;< 麦套花生根、叶谷氨酸脱氢酶(8=>)活性的变

!*+一般参与氨基酸降解过程的氧化脱氨作
用,在作物衰老和环境胁迫时,!*+在氨的再同化中
起重要作用,尤其是在作物果实发育后期对于催化合
成谷氨酸具有重要作用。图 ,表明,麦套和单作花生
叶片 !*+活性变化趋势均为先升后降,麦收前由于
小麦的影响,活性小于后者,峰值出现晚于后者 $- .
左右,且比后者小 $/&%(。根系 !*+活性麦套花生
高峰期出现在花针期,单作则在结荚末期和饱果初
图 < 花生根、叶谷氨酸脱氢酶活性
"#$%< 8=> (+,#-#,. #/ 0*(-*) (/1 233,) 34 5*(/6,
期,前者比单作早一个月,结荚期明显小于单作。
:;? 麦套花生根、叶谷丙转氨酶(8@A)活性的变化
!01是最重要的转氨酶之一,催化谷氨酸与丙
酮酸之间的转氨和酮基作用,既是多种氨基酸分解
代谢的起步过程,也是体内某些非必需氨基酸合成
的途径。麦套和单作花生叶片 !01活性基本随生
育期的推进而降低,所不同的是,麦套花生在播种后
#- .内(除播后 ’# .)活性一直低于单作,之后一直
高于单作。根系中 !01活性两种种植方式规律相
似,全生育期稳中有降,所不同的是整个生育期麦套
花生的活性一直高于单作,二者差异极显著( 2 3
,&),)!!)(图 4)。
图 ? 花生根、叶谷丙转氨酶活性
"#$%? 8@A (+,#-#,. #/ 0*(-*) (/1 233,) 34 5*(/6,
:;B 麦套花生产量
表 $看出,麦套花生根、茎、叶及荚果干物质重均
低于单作花生,其中荚果干重为单作花生的 45&5(,
而果针干物质重明显高于单作,为单作的 ’倍,全株
生物产量低于单作,荚果产量为单作的 %#(。
5$)’期 郭峰,等:麦套花生氮素代谢及相关酶活性变化研究
表 ! 麦套和单作花生产量
"#$%& ! "’& ()&%*+ ,- .&%#(/0.,11&* 1ê(56)#2* 7,2,/0.,11&* 1ê(86)
种植方式 生物产量 !"#$%&&(’ ( $)) 荚果产量 *#+ ,"-.+
*%//-01& 根 2##/ 茎 3/-$ 叶 4-%5 果针 6,1#78#0- 荚果 *#+ 全株 *.%1/ (9’ ( 8$))
:* );<= % =;><= % )?@;<= % ;;?@;=<= %
2* );<) % =?)<> % )?C
D<; E >=)C?;<; E
注(F#/-):同列数据后不同字母表示达 AG显著水平 H%.I-& 5#..#J-+ E, +"55-0-1/ .-//-0& %0- &"’1"5"K%1/ %/ AG .-L-. M
9 讨论
花生所需氮素来源主要有两条途径:一是吸收
土壤和肥料中的氮,一是根瘤固氮[;B]。保持花生
根、叶一定的含氮量是进行光合作用和生理代谢的
基础,生育前期旺盛的叶片氮含量高达 >G!AG,而
后期衰老的叶片只有 ;G!)G[;D]。本研究表明,麦
套花生根、叶含氮量生育前期最高,后期下降,与上
述报道一致,所不同的是氮含量达不到上述水平,可
能是小麦对土壤氮素的过度吸收,导致麦套花生氮
素摄入不足。
在植物氮素代谢中 F2%&- 是十分重要的限速
酶,其活性高低直接影响花生对无机氮的利用,幼嫩
组织中的 F2%&-含量较高[);]。本研究表明,麦套花
生根、叶 F2%&-生育前期最高,后期逐渐降低。这是
由于随生长进程,硝酸盐吸收数量增加,各器官被
还原的数量也明显提高,需要地上部合成大量的碳
水化合物作为能源,造成花生生长盛期后 F2%&-活
性逐渐降低;另外,F2%&-活性受到组织衰老程度、
供氮状况、环境因素等条件的影响[;=N;A,);]。与单作
花生相比,麦套花生前期 F2%&-活性小,麦收后活性
较单作高与 F2%&-是一种光诱导酶有关,麦收后改
善了麦套花生的光照条件,促进酶活性提高。
花生叶片是光合作用的主要场所,具有较强的
蛋白质合成能力。63、6OP在氨的同化、氨基酸合
成及蛋白质合成过程中起着非常重要的作用[);]。
本研究表明,整个生育期,麦套花生根、叶 63、6OP
活性呈单峰曲线,峰值出现在花针期前后,正值麦套
花生营养生长和生殖生长两旺时期,表明此阶段氮
素代谢较为旺盛。麦套花生前期受环境胁迫影响,
根系积累的氨浓度较高,使 6OP活性提高进行铵同
化[)@],麦收后也要有一个阶段的生理恢复期,因此
前期根系 6OP活性较高,这与中前期根系游离氨基
酸和可溶性蛋白质含量高有一定的关系。
6*Q作为最重要的转氨酶之一,催化谷氨酸与
丙酮酸之间的转氨作用,谷氨酸参与三羧酸循环途
径,在各种氨基酸转换中起着十分重要的作用。本
研究表明,麦套花生根系和叶片的 6*Q活性苗期最
高,说明苗期谷氨酸与丙酮酸之间转氨作用最强,为
植株的生长发育提供必要的谷氨酸和丙氨酸。
参 考 文 献:
[;] R%07-1&/-"1S:%K8%1 :,3/I-.71%’-. 2M !"#$%&& ,"-.+ %1+ 1"/0#’-1
5"T%/"#1 #5 .-’I$-& $#1#K0#77-+ %1+ "1/-0K0#77-+ J"/8 0,- %1+ 0#/%/"#1
-55-K/& #1 % &IE&-UI-1/ $%"V-K0#7[W]M *.%1/ 3#".,)???,;D:);A N
)=)<
[)] 4" 4,3I1 W P,X8%1’ Y 3 !" #$ M Z8-%/ ( $%"V- #0 J8-%/ ( &#,E-%1 &/0"7
"1/-0K0#77"1’ M [:\"-.+ %+L%1/%’- %1+ "1/-0&7K"5"K "1/-0%K/"#1& #1 1I/0"S
-1/[W]M Y"-.+ ]0#7 2-&M,)??;,@;:;)=N;=@<
[=] *-#7.-& : !,P-00"+’- O Y,4%+8% W RM !"#.#’"K%. 1"/0#’-1 5"T%/"#1:
%1 -55"K"-1K, #5 1"/0#’-1 5#0 &I&/%"1%E.- %’0"KI./I0- 70#+IK/ "#1[W]M
*.%1/ 3#".,;BBA,;@>:=N)D<
[>] YI^"/% R,_5#&#S!I+I R 6,_’%1/% 3M !"#.#’"K%. 1"/0#’-1 5"T%/"#1 "1
$"T-+ .-’I$-SK-0-%. K0#77"1’ &,&/-$[W]M *.%1/ 3#".,;BB),;>;:;AA
N;@A<
[A] Q% Q ],Y%0"& : ‘M 37-K"-& L%0"%/"#1 "1 /8- 5"T%/"#1 %1+ /0%1&5-0 #5 1"S
/0#’-1 50#$ .-’I$- /# %&&#K"%/"#1 ’0%&&[W]M *.%1/ 3#".,;BD@,BD:)CA
N)@><
[C] O%1&# 3 R ‘,X%7%/% Y,P%0+%0 6 M F"/0#’-1 5"T%/"#1 "1 5%E% E-%1&
%& %55-K/-+ E, 7.%1/ 7#7I.%/"#1 +-1&"/, "1 &#.- #0 "1/-0K0#77-+ &,&/-$
J"/8 E%0.-,[W]M 3#"; !"#. M !"#K8-$M,;BD@,;B:>;;N>;A<
[@] W%+8%L ! !,3-1’I7/% a R,38%0$% ‘M b55-K/ #5 ."’8/ "1/-1&"/, #1
/0%1&.#K%/"#1 #5 %&&"$".%/-& "1 7-%1I/[ W]M [1+M WM *.%1/ *8,&"#. M,
;BB=,=C()):;)DN;=?<
[D] 3IE0%$%1"%1 H !,2-++, 6 W,:%8-&J%0" :M *8#/#&,1/8-&"& %1+ 7.%1/
J%/-0 &/%/I& #5 "00"’%/-+ %1+ +0,.%1+ KI./"L%0& #5 ’0#I1+1I/[W]M [1+M WM
*.%1/ *8,&"#. M ;BB=,=C(>):)=CN)=D<
[B] Z0"’8/ 6 ],P%$$-0 6 4M O"&/0"EI/"#1 #5 1"/0#’-1 %1+ 0%+"%/"#1 I&-
-55"K"-1K, "1 7-%1I/ K%1#7"-&[W]M ‘I&/ M WM ‘’0"KM 2-&M,;BB>,>A
(=):ACANA@><
[;?] 肖昌珍,吴渝,甘冬生,等 M 中国花生种质主要生化品质分析
[W]M 花生科技,;BBB,(增刊):;C;N;C@<
c"%# ] X,ZI \,6%1 O 3 !" #$ M ‘1 %1%.,&"& #5 7-%1I/ "+"#$%/"K
$#&/., E"#K8-$"K%. UI%."/"-& "1 ]8"1%[W]M *-%1I/ 3K" M,;BBB,(3I7S
7. M):;C;N;C@<
[;;] 聂呈荣,黎振兴 M 稀土对花生光合作用和氮素代谢的影响
?)> 植 物 营 养 与 肥 料 学 报 ;A卷
[!]" 广东农业科学,#$$%,(&):’&(’)*
+,- . /,0, 1 2" 344-56 74 898- -986:; 7< =:767;><6:-;,; 9A-69B7C,;A 74 =-9’)*
[#’] 左元梅,刘永秀,张福锁 " 玉米 H花生混作改善花生铁营养对
花生根瘤碳氮代谢及固氮的影响[!]" 生态学报,’IIJ,’J
(##):’&KJ(’&$I*
1D7 L M,0,D L 2,1:9<@ N G" 344-56; 74 ,A=87O-? ,87< =-9<,687@-(##):’&KJ(’&$I*
[#T] 姜慧芳,任小平 " 干旱胁迫对花生叶片 GUV活性和蛋白质的
影响[!]" 作物学报,’IIJ,TI(’):#%$(#)J*
!,9<@ W N,/-< 2 X" Y:- -44-56 7< GUV 956,O,6> 9,< @87D ?87D@:6 ;68-;;[!]" F569 F@87<" G,<",’IIJ,
TI(’):#%$(#)J*
[#J] 聂呈荣 " 不同氮肥和调节膦对花生氮代谢与产量的作用[!]"
中国油料,#$$%,#K(’):T#(TT*
+,- . /" 344-56 74 47;9A,<- 9A-69B7C,;A 9 74 =-9#$$%,#K(’):T#(TT*
[#&] 聂呈荣,凌菱生 " 花生不同密度群体施用植物生长调节剂对
生长发育和氮素代谢的影响[!]" 中国油料作物学报,#$$K,’I
(J):J)(&#*
+,- . /, 0,<@ 0 G" 344-56 74 @87P6: 8-@DC96,7< 7< <,687@-<
A-69B7C,;A,@87P6: 9C96,7<;[!]" .:,<" !" U,C .87= G5, ",#$$K,’I(J):J)(&#*
[#%] 杜应琼,廖新荣,黄志尧,等 " 硼、钼对花生氮代谢的影响[!]"
作物学报,’II#,’)(&):%#’(%#%*
VD L Z,0,97 2 /,WD9<@ 1 / !" #$ " 344-56 74 A7C>B?-B787< 7< <,687@-< A-69B7C,;A 74 =-9’II#,’)(&):%#’ ( %#%*
[#)] 赵福庚,王晓云,王汉忠,张国珍 " 花生叶片生长发育过程中
多胺代谢的变化[!]" 作物学报,#$$$,’&(’):’J$(’&T*
1:97 N E,[9<@ 2 L,[9<@ W 1 !" #$ " .:9<@-; 74 =7C>9A,<-; ,<
C-94 @87P6: 9’&(’):’J$ ( ’&T*
[#K] 李向东,王晓云,张高英 " 花生衰老的氮素调控[!]" 中国农业
科学,’III,TT(&):TI(T&*
0,97 2 V,[9<@ 2 L,1:9<@ E L" Y:- 8-@DC96,7< 74 <,687@-< 478
=-9[#$] 李向东,万勇善,于振文 " 花生叶片衰老过程中氮素代谢指标
变化[!]" 植物生态学报,’II#,’&(&):&J$(&&’*
0, 2 V,[9< L G,LD 1 [" .:9<@-; ,< <,687@-< A-69B7C,;A ,74 %&#’()* (+,-.!# C-9O-; ?D8,<@ C-94 ;-<-;5-<5-[!]" F569 X:>67-57C "
G,<",’II#,’&(&):&J$(&&’*
[’I] \O,-< . \,UQ,9;RF],<; X" 095] 74 A7<7598=,5 ;-<-;5-<5- ,< 4C78D<-8 =-9[’#] 张智猛,张威,胡文广,等 " 高产花生氮素代谢相关酶活性变
化的研究[!]" 花生学报,’II%,T&(#):K(#’"
1:9<@ 1 M,1:9<@ [,WD [ E" G6D?> 7< -A96,5 956,O,6> 5788-C9R
6,O- P,6: <,687@-< A-69B7C,;A :,@:R>,-C? =-9’II%,T&(#):K(#’*
[’’] 李合生 " 植物生理生化实验原理和技术[M]" 北京:高等教育
出版社,’III* #’)(#’K*
0, W G" 3S=-8,A-<6 =8,<5,=C- ^ 6-5:<7C7@> 74 =C9<6 =:>;,7C7@> ^ B,7R
5:-A,;68>[M]" _-,‘,<@:W,@:-8 3?D596,7< X8-;;,’III* #’)(#’K*
[’T] 汤章城 " 现代植物生理学实验指南[M]" 北京:科学出版社,
’IIJ* #&J(#&%*
Y9<@ 1 W" 3S=-8,A-<6 @D,?- 74 A7?-8< =C9<6 =:>;,7C7@>[M]" _-,R
‘,<@:G5,-<5- X8-;;,’IIJ* #&J(#&%*
[’J] 鲍士旦 " 土壤农化分析[M]" 北京:中国农业出版社,’III*
’%&(’%K*
_97 G V" F<9C>;,; 74 ;7,C 9@8,5DC6D89C 5:-A,;68>[M]" _-,‘,<@:.:,R
<-;- F@8,5DC6D89C X8-;;,’III* ’%&(’%K*
[’&] 王爱国,罗广华,邵从本,等 " 大豆种子超氧化物歧化酶的研
究[!]" 植物生理学报,#$KT,$(#):))(KT*
[9<@ F E,0D7 E W,G:97 . _ !" #$ " F ;6D?> 7< 6:- ;D=-87S,?-
?,;AD69;- 74 ;7>B-9< ;--?;[!]" F569 _76 " G,<",#$KT,$(#):))(
KT*
[’%] .8-< M,W,8-C _" ECD69A,<- ;><6:-69;- ,< :,@:-8 =C9<6:8-@DC96,7< 74
@-<- 9X:>;,7C ",#$$$,JI:##K)(##$T*
[’)] 黄国存,田波 " 高等植物中的谷氨酸脱氢酶及其生理作用
[!]" 植物学通报,’II#,CK(J):T$%(JI#*
WD9<@ E .,Y,9< _" Y:- =:>;,7C7@,59C 87C- 74 @CD69A96- ?-:>?87@-R
<9;- ,< :,@:-8 =C9<6;[!]" .:,<" _DCC " _76 ",’II#,#K(#J):T$% (
JI#*
#’J’期 郭峰,等:麦套花生氮素代谢及相关酶活性变化研究