全 文 ：植物病理学报
ＡＣＴＡ ＰＨＹＴＯＰＡＴＨＯＬＯＧＩＣＡ ＳＩＮＩＣＡ　 ４４(６): ７１３￣７１７(２０１４)
收稿日期: ２０１３￣０３￣２８ꎻ 修回日期: ２０１３￣０９￣０９
基金项目: 河北省自然科学基金(玉米抗粗缩病基因分子标记的建立)(Ｃ２００９００１３２８)ꎻ 国家科技重大专项(２０１１ＺＸ０８００３￣００１)
通讯作者: 邸垫平ꎬ 副研究员ꎬ主要从事植物病毒研究ꎻ Ｔｅｌ: ０３１２￣５９１５６８３ꎬ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｃｈｍｒｄｖ＠１６３.ｃｏｍ
苗洪芹ꎬ 研究员ꎬ主要从事植物病毒研究ꎻ Ｔｅｌ: ０３１２￣５９１５６８３ꎬ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｍｉａｏ５０５８３４５＠１６３.ｃｏｍꎮ
ｄｏｉ:１０.１３９２６ / ｊ.ｃｎｋｉ.ａｐｐｓ.２０１４.０６.０２１
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研究简报
玉米抗粗缩病遗传及分子标记研究
杨 菲ꎬ 邸垫平∗ꎬ 苗洪芹∗ꎬ 路银贵ꎬ 张爱红ꎬ 田兰芝
(河北省农林科学院植物保护研究所ꎬ河北省农业有害生物综合防治工程技术研究中心ꎬ
农业部华北北部作物有害生物综合治理重点实验室ꎬ 保定 ０７１０００)
Ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｍａｒｋｅｒｓ ｏｆ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ Ｒｉｃｅ ｂｌａｃｋ￣ｓｔｒｅａｋｅｄ ｄｗａｒｆ ｖｉｒｕｓ ｉｎ
ｍａｉｚｅ (Ｚｅａ ｍａｙｓ Ｌ.) 　 ＹＡＮＧ Ｆｅｉꎬ ＤＩ Ｄｉａｎ￣ｐｉｎｇꎬ ＭＩＡＯ Ｈｏｎｇ￣ｑｉｎꎬ ＬＵ Ｙｉｎ￣ｇｕｉꎬ ＺＨＡＮＧ Ａｉ￣ｈｏｎｇꎬ
ＴＩＡＮ Ｌａｎ￣ｚｈｉ　 (Ｐｌａｎｔ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｈｅｂｅｉ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ ａｎｄ Ｆｏｒｅｓｔｒｙ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ ＩＰＭ Ｃｅｎｔｅｒ ｏｆ Ｈｅｂｅｉ
Ｐｒｏｖｉｎｃｅꎬ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｏｆ Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ Ｐｅｓｔ Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ ｏｎ Ｃｒｏｐｓ ｉｎ Ｎｏｒｔｈｅｒｎ Ｒｅｇｉｏｎ ｏｆ Ｎｏｒｔｈ Ｃｈｉｎａꎬ Ｍｉｎｉｓｔｒｙ ｏｆ Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅꎬ
Ｂａｏｄｉｎｇ ０７１０００ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｍａｉｚｅ ｒｏｕｇｈ ｄｗａｒｆ ｄｉｓｅａｓｅ ｃａｕｓｅｄ ｂｙ Ｒｉｃｅ ｂｌａｃｋ￣ｓｔｒｅａｋｅｄ ｄｗａｒｆ ｖｉｒｕｓ (ＲＢＳＤＶ) ｉｓ ｔｒａｎｓｍｉｔｔｅｄ ｂｙ
ｐｌａｎｔｈｏｐｐｅｒ ｉｎ Ｃｈｉｎａ. Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｈｙｂｒｉｄｓ ａｒｅ ｃｏｍｐｌｉｃａｔｅｄ ｂｅｃａｕｓｅ ｏｆ ｔｈｅ
ｉｎｃｏｎｓｉｓｔｅｎｃｉｅｓ ｉｎ ｖｉｒａｌ ｄｉｓｅａｓｅ ｐｒｅｓｓｕｒｅ ｅｖｅｒｙ ｙｅａｒ. Ｍａｒｋｅｒ￣ａｓｓｉｓｔｅｄ ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ ｃａｎ ｐｒｏｖｉｄｅ ｍｅａｎｓ ｆｏｒ ｍａｉｎ￣
ｔａｉｎｉｎｇ ｖｉｒｕｓ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ａｌｌｅｌｅｓ ｅｖｅｎ ｉｎ ｔｈｅ ａｂｓｅｎｃｅ ｏｆ ｄｉｓｅａｓｅ. Ｉｎ ｔｈｉｓ ｐａｐｅｒ ａ Ｆ２ ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｗａｓ
ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｅｄ ｔｏ ｉｄｅｎｔｉｔｙ ｔｈｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｍａｒｋｅｒｓ ｌｉｎｋｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｇｅｎｅ ｕｓｉｎｇ ａ ｃｒｏｓｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ａ ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ａｎｄ
ａ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ ｐａｒｅｎｔｓ (Ｑｉ３１９×Ｙｅ１０７) . Ｆｉｆｔｅｅｎ￣ｄａｙ￣ｏｌｄ ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ ｏｆ Ｆ２ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｗｅｒｅ ｅｘｐｏｓｅｄ ｔｏ ｓｍａｌｌ ｂｒｏｗｎ
ｐｌａｎｔｈｏｐｐｅｒｓ ｃａｒｒｙｉｎｇ ＲＢＳＤＶ ｆｏｒ ３ ｄａｙｓ ｉｎ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ ｃｈａｍｂｅｒ. Ｔｈｅ ｉｎｏｃｕｌａｔｅｄ ｐｌａｎｔｓ ｗｅｒｅ
ｔｒａｎｓｐｌａｎｔｅｄ ｔｏ ｓｃｒｅｅｎｈｏｕｓｅ ａｆｔｅｒ ｒｅｍｏｖｉｎｇ ｔｈｅ ｉｎｓｅｃｔｓ ｃｏｍｐｌｅｔｅｌｙ. Ｉｎ ｐｌａｎｔ ｍａｔｕｒｉｔｙ ｓｔａｇｅ ｔｈｅ ｄｉｓｅａｓｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ
ｏｆ ａｌｌ ｔｈｅ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｗｅｒｅ ｖｉｓｕａｌｌｙ ａｓｓｅｓｓｅｄ. Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ １７ꎬ ８ꎬ １１ꎬ ５１ ａｎｄ １２２ ｐｌａｎｔｓ ｗｅｒｅ ｓｃａｌｅｄ
ｆｒｏｍ ０￣４ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙꎬ ｉｎ ｗｈｉｃｈ ０ ｍｅａｎｓ ｎｏ ｓｙｍｐｔｏｍｓ ａｎｄ ４ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｓ ｈｉｇｈｌｙ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ. Ｃｈｉ￣ｓｑｕａｒｅ ｔｅｓｔ
ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｒａｔｉｏ ｏｆ ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ ｗａｓ １∶１５ ( ｒｅｓｉｓｔａｎｔ: ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ) ｏｒ １ ∶ ６ ∶ ９( ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ∶
ｍｏｄｅｒａｔｅ ∶ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ) ｉｎ ｔｈｅ Ｆ２ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎꎬ ｉｎｄｉｃａｔｉｎｇ ＲＢＳＤＶ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｏｆ ｍａｉｚｅ ｗａｓ ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ ｂｙ ｔｗｏ
ｒｅｃｅｓｓｉｖｅ ｇｅｎｅｓ. Ｔｈｅ Ｆ２ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ＤＮＡ ｗｅｒｅ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ａｎｄ ２６１ ＳＳＲ ( ｓｉｍｐｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｒｅｐｅａｔ) ｐｒｉｍｅｒｓ
ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ｍａｉｚｅ ｇｅｎｏｍｅ ｔｅｎ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓ ｗｅｒｅ ｓｅｌｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｍａｉｚｅ ＧＤＢ ｄａｔａｂａｓｅ ｔｏ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔ ｇｅｎｅｔｉｃ
ｌｉｎｋａｇｅ ｍａｐ. Ｔｈｅ ｌｉｎｋａｇｅ ｍａｐ ｃｏｎｓｉｓｔｅｄ ｏｆ ７１ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ ＳＳＲ ｍａｒｋｅｒｓꎬ ｓｐａｎｎｉｎｇ ａ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ ｏｆ ９９６.
６ ｃＭ ｗｉｔｈ ａｎ ａｖｅｒａｇｅ ｉｎｔｅｒｖａｌ ｏｆ １４.０ ｃＭ ｂｅｔｗｅｅｎ ａｄｊａｃｅｎｔ ｍａｒｋｅｒｓ. Ｔｈｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ａｎｄ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ ｇｅｎｅ ｐｏｏｌｓ
ｗｅｒｅ ｓｅｔ ｕｐ ｆｏｒ ＢＳＡ (ｂｕｌｋｅｄ ｓｅｇｒｅｇａｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ) ａｎｄ ６ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ ｍａｒｋｅｒｓ ｗｅｒｅ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｗｉｔｈ ＢＳＡ￣ＳＳＲ
ｍｅｔｈｏｄ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｐｏｏｌｓ. Ｔｈｅ Ｆ２ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｗｅｒｅ ｆｕｒｔｈｅｒ ａｎａｌｙｚｅｄ ｗｉｔｈ ６ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ ｍａｒｋｅｒｓ.
Ｃｈｉ￣ｓｑｕａｒｅ ｔｅｓｔ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｐｈｉ ０５１ꎬ ｕｍｃ１４０７ ａｎｄ ｕｍｃ１４３２ꎬ ｍａｐｐｅｄ ｏｎ ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ ７ ａｎｄ １０ꎬ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ
ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｄｉｓｔｏｒｔｉｏｎ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ａｎｄ ｖｅｒｙ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｉｎ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ. Ｔｈｅｓｅ ｔｈｒｅｅ ＳＳＲ ｍａｒｋｅｒｓ
ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ａｓ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｍａｒｋｅｒｓ ｌｉｎｋｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｌｏｃｉ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｒｉｃｅ ｂｌａｃｋ￣ｓｔｒｅａｋｅｄ ｄｗａｒｆ ｖｉｒｕｓꎻ ＳＳＲ ｍａｒｋｅｒｓꎻ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｇｅｎｅｔｉｃｓ
　
植物病理学报 ４４卷
文章编号: ０４１２￣０９１４(２０１４)０６￣０７１３￣０５
　 　 玉米粗缩病在我国玉米产区流行甚广ꎬ危害持
续严重ꎬ培育和应用抗病品种是防治该病害最经济
高效的措施ꎮ 玉米粗缩病的抗性表现为数量性状
遗传特征ꎬ采用传统育种方法进行抗病品种选育是
一项繁琐而复杂的工作ꎮ 分子标记辅助选择
(Ｍａｋｅｒ Ａｓｓｉｓｔｅｄ ＳｅｌｅｃｔｉｏｎꎬＭＡＳ) 不受环境因素的
影响ꎬ可以进行早期选择和对隐性基因的选择ꎬ从
而可以减少大量的田间试验工作ꎬ促进抗病基因的
合理、快速利用ꎬ特别是对于易流行又难以接种鉴
定的病害更有事半功倍之效ꎮ 目前已鉴定和筛选
了玉米抗粗缩病基因的 ＲＡＰＤ、ＳＳＲ、ＳＴＳ、ＳＣＡＲ
等数个 ＤＮＡ标记[１]ꎬ但仍然难以满足抗病育种的
需要ꎬ开发更多与抗病基因紧密连锁的实用、高效
分子标记对于促进抗粗缩病育种具有重要意义ꎮ
本文采用人工接种方法对 Ｆ２群体进行抗病性鉴
定ꎬ分析玉米抗粗缩病遗传规律ꎬ检测与抗病基因
连锁的分子标记ꎬ为玉米抗粗缩病分子辅助育种提
供依据ꎮ
１　 材料与方法
１. １　 试验材料
　 　 在抗粗缩病性鉴定研究的基础上ꎬ以抗病自交
系齐 ３１９为母本与父本感病自交系掖 １０７ 杂交获
得 Ｆ１代ꎬＦ１代自交获得 Ｆ２群体ꎮ
１. ２　 试验方法
１. ２. １ 　 抗性遗传分析 　 在温度 ２５ ±１°Ｃ、光照
１４Ｌ ∶ １０Ｄ、湿度 ７０±５％的条件下ꎬ人工饲养繁殖无
毒灰飞虱ꎬ在感染 ＲＢＳＤＶ的小麦绿矮病株上饲毒
３ ｄꎬ而后转至健康小麦上饲养度过循回期ꎮ ２５ ｄ
后参照 Ｄｉ等[２]报道的方法接种 Ｆ２群体ꎬ抽雄孕穗
期按照 ０~４级标准[３]调查每株病情ꎬ统计 Ｆ２群体
中抗、感病个体数ꎬ用 χ２检验方法分析遗传分离比
例ꎮ
１. ２. ２　 基因型分析和遗传作图 　 利用 ＣＴＡＢ 法
分别提取亲本、Ｆ１代和 Ｆ２群体单株叶片基因组
ＤＮＡꎮ 从 Ｍａｉｚｅ ＧＤＢ 数 据 库 ( ｈｔｔｐ: / / ｗｗｗ.
ｍａｉｚｅｇｄｂ.ｏｒｇ / ｓｓｒ.ｐｈｐ)选取覆盖玉米基因组 １０ 条
染色体的 ２６１ 对 ＳＳＲ 引物ꎬ以亲本、Ｆ１和 Ｆ２群体
ＤＮＡ为模板进行 ＰＣＲ 扩增ꎬ反应产物经 ６％非变
性聚丙烯酰胺凝胶电泳ꎬ银染法检测ꎬ分析记录基
因型ꎮ 利用作图软件 ＭＡＰＭＡＫＥＲ / ＥＸＰ ３.０ 进行
遗传作图ꎬ运行ＷｉｎＱＴＬＣａｒｔ绘制连锁图ꎮ
１. ２. ３　 玉米抗粗缩病 ＢＳＡ￣ＳＳＲ 分析　 分别选取
１０株 Ｆ２群体抗性表型为 ０ 级和 ４ 级植株的 ＤＮＡꎬ
等量混合组成抗、感基因池ꎬ筛选在抗、感池间存在
多态性的 ＳＳＲ 引物ꎮ 利用抗、感池间表现多态的
ＳＳＲ引物检测 Ｆ２群体中 ２ ~ ４ 级病株的基因型ꎬ统
计分离比例ꎬ进行 χ２适合度检验ꎬ筛选出在 Ｆ２感病
群体中表现为偏分离的分子标记ꎬ并对照亲本基因
型确定与抗粗缩病基因紧密连锁的 ＳＳＲ标记ꎮ
２　 结果与分析
２. １　 齐 ３１９×掖 １０７ Ｆ２群体抗性鉴定及遗传分析
　 　 采用人工接种方法准确鉴定了 ２０９ 株 Ｆ２群体
植株抗病性ꎬ其中 １７ 株没有症状ꎬ为 ０ 级ꎬ即抗玉
米粗缩病ꎻ其他 １９２ 株均表现典型玉米粗缩病症
状ꎬ其中 １、２、３ 级病株数分别为 ８、１１、５１ꎬ合计 ７０
株ꎬ４级病株数为 １２２ꎮ χ２适合度检验表明 Ｆ２群体
分离比例为 １∶１５(抗病:感病) (χ２ ＝ １.２７<χ２０.０５(１)
＝ ３.８４)和 １∶６∶９(抗病:感病:高感)(χ２ ＝ ２.２５<χ２０.０５
(２)＝ ５.９９)(表 １)ꎬ推断玉米粗缩病抗性由 ２ 对隐
性主基因控制ꎮ
２. ２　 多态性引物筛选和遗传作图
　 　 从 ２６１对 ＳＳＲ引物中筛选获得 １５２ 对双亲间
多态性引物ꎬ多态性频率为 ５８.２４％ꎮ 选择标记带
型清晰、差异明显的７６对引物检测随机选取的
Ｔａｂｌｅ １　 Ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｆｏｒ Ｆ２ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｑｉ３１９×Ｙｅ１０７
Ｎｏ. ｏｆ ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ Ｎｏ. ｏｆ ｍｏｄｅｒａｔｅ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ Ｎｏ. ｏｆ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ Ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｒａｔｉｏ c２
１７ ７０ １２２ １: ６: ９ ２.２５
１７ １９２ １ ∶ １５ １.２７
４１７
　
　 ６期 杨 菲ꎬ等:玉米抗粗缩病遗传及分子标记研究
Ｆｉｇ. １　 Ｇｅｎｅｔｉｃ ｌｉｎｋａｇｅ ｍａｐ ｆｏｒ ＳＳＲ ｍａｒｋｅｒｓ
Ｎｏｔｅ: ＿ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｍａｒｋｅｒｓ ｗｅｒｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｆｒｏｍ ｔｈｏｓｅ ｉｎ ＩＢＭ２ Ｎｅｉｇｈｂｏｒｓ Ｍａｐ ２００８. ∗ ａｎｄ ∗∗ ｉｎｄｉｃａｔｅ
ｔｈａｔ ｍａｒｋｅｒｓ ｓｈｏｗｅｄ ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｄｉｓｔｏｒｔｉｏｎ (Ｐ<０.０５) ａｎｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｄｉｓｔｏｒｔｉｏｎ (Ｐ<０.０１) ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ.
１３４株 Ｆ２群体单株ꎬ获得 ７７个多态性标记ꎬ其中引
物 ｐ￣ｂｎｌｇ１０３７检测到 ２ 个标记ꎬ不存在共分离现
象ꎬ分别记为 ｂｎｌｇ１０３７ 和 ｂｎｌｇ１０３ａꎮ χ２分析显示
１１个标记在 Ｆ２群体中表现为偏分离(Ｐ<０.０５)ꎮ
利用 ７１ 个分子标记构建了包含 １２ 个连锁群的遗
传连锁图(图 １)ꎬ覆盖玉米基因组的 ３９.９％ꎬ１２ 个
连锁群分别定位到 １~８、１０ 号染色体上ꎬ每条染色
体定位的标记数为 ４ ~ １２ 个ꎬ标记间平均距离为
１４.０ ｃＭꎬ总长 ９９６.６ ｃＭꎮ 标记在连锁群中的位置
及排序与已发表的数据基本一致ꎮ
２. ３　 玉米抗粗缩病基因分子标记的筛选
　 　 用构建连锁图的分子标记检测抗、感池ꎬ其中
ｂｎｌｇ１６６２、 ｕｍｃ２１６２、 ｐｈｉ１２３、 ｐｈｉ０５１、 ｕｍｃ１４０７ 和
ｕｍｃ１４３２ 等 ６ 个标记在 Ｆ２抗、感池之间表现出多
态性ꎮ 分别用这 ６ 个多态性标记分析 １２２ 株 ２ ~ ４
级 Ｆ２感病单株ꎬ经 χ２适合度检验表明 ｐｈｉ０５１、
ｕｍｃ１４０７、ｕｍｃ２１６２和 ｕｍｃ１４３２标记在 Ｆ２感病群体
中显著或极显著偏离共显性理论分离比例(表 ２)ꎮ
标记 ｐｈｉ０５１、ｕｍｃ１４０７和 ｕｍｃ１４３２的抗病基因池电
泳带型与抗病亲本齐３１９带型一致 (图２ ) ꎬ而
Ｆｉｇ. ２　 Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｂｅｔｗｅｅｎ Ｆ２
ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ａｎｄ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ ｇｅｎｅ ｐｏｏｌｓ ｗｉｔｈ
ＳＳＲ ｍａｒｋｅｒｓ ｌｉｎｋｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｌｏｃｉ
１: ｐｈｉ０５１ꎻ ２: ｕｍｃ１４０７ꎻ ３: ｕｍｃ１４３２ꎻ Ｐ１ : Ｑｉ３１９ꎻ Ｐ２ :
Ｙｅ１０７ꎻ Ｒ: Ｒｒｅｓｉｓｔａｎｔ ｇｅｎｅ ｐｏｏｌꎻ Ｓ: Ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ ｇｅｎｅ ｐｏｏｌ.
５１７
　
植物病理学报 ４４卷
Ｔａｂｌｅ ２　 Ｓｅｇｒｅｇａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｃ ＳＳＲ ｍａｒｋｅｒｓ ｉｎ ｓｕｓｃｅｐｔｉｂｌｅ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｏｆ Ｆ２ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ
Ｍａｒｋｅｒ Ｃｈｒ. Ｇｅｎｏｔｙｐｅ
Ｄｉｓｅａｓｅ ｇｒａｄｅ
２ ３ ４
Ｓｕｍ Ｔｏｔａｌ χ２
ｐｈｉ０５１ ７
Ａ ０ １１ ３３ ４４
Ｂ ０ ９ １９ ２８
Ｈ ２ ８ ４０ ５０
１２２ ８.１６∗
ｕｍｃ１４０７ ７
Ａ ０ １０ ３２ ４２
Ｂ ０ ９ １８ ２７
Ｈ １ ９ ３８ ４８
１１７ ７.２６∗
ｕｍｃ１４３２ １０
Ａ ０ ５ １６ ２１
Ｂ ０ ４ １９ ２３
Ｈ ２ １９ ５７ ７８
１２２ ９.５４∗∗
ｂｎｌｇ１６６２ ２
Ａ ０ ０ ３２ ３２
Ｂ ２ １０ ２０ ３２
Ｈ ０ １５ ３６ ５１
１１５ １.４７
ｕｍｃ２１６２ ６
Ａ ０ ３ １８ ２１
Ｂ ０ １０ ２８ ３８
Ｈ ２ ９ ２７ ３８
９７ １０.５１∗∗
ｐｈｉ１２３ ６
Ａ ０ ６ １９ ２５
Ｂ １ ３ １５ １９
Ｈ １ １２ ３１ ４４
８８ ０.８２
Ｎｏｔｅ:∗ａｔ ０.０５ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｌｅｖｅｌꎻ ∗∗ ａｔ ０.０１ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｌｅｖｅｌ.
ｕｍｃ２１６２标记抗病基因池带型与感病亲本掖 １０７
一致ꎬ因此 ｐｈｉ０５１、ｕｍｃ１４０７ 和 ｕｍｃ１４３２ 与抗玉米
粗缩病基因连锁ꎮ
３　 讨论
　 　 玉米粗缩病田间发病时空分布很不均匀ꎬ基于
田间自然发病的表型筛选需要多年多点抗性鉴定ꎬ
分子标记辅助筛选可以提高选择的效率ꎮ Ｍｉｃｈｅｌ￣
ｍｏｒｅ等[４]在莴苣抗病性研究中提出了群体分离分
析法(ＢＳＡ)ꎬ该方法从近等基因系分析法演化而
来ꎬ是快速获得与目标基因连锁分子标记的有效方
法ꎮ 本文采用 ＢＳＡ￣ＳＳＲ方法获得 ３个抗粗缩病基
因分子标记 ｐｈｉ０５１、ｕｍｃ１４０７ 和 ｕｍｃ１４３２ꎬ并且分
别检测了 １６个玉米自交系ꎬ标记基因型与性状值
相符合的比例分别为 ６２.５０％、４３.７５％和 ８１.２５％
(未发表)ꎬ因此标记 ｐｈｉ０５１、ｕｍｃ１４３２ 可以用于分
子标记辅助筛选ꎬ促进抗粗缩病品种的选育ꎮ
Ｌｕａｎ等[５]利用自交系 ９０１１０ 鉴定的 ２ 个抗病基因
位点位于 ｂｉｎ ７.０２ 和 ｂｉｎ １０.０５ 区域ꎬ与本文获得
的抗性基因标记位于相同染色体的临近区域ꎬ二者
可能为相同抗病位点ꎬ但因材料和标记密度不同而
存在差异ꎬ在抗病基因区域构建高密度分子标记连
锁图ꎬ精细定位抗粗缩病基因ꎬ可以提高分子标记
辅助育种的可靠性ꎮ
　 　 玉米粗缩病抗性为数量遗传性状ꎬ因而近 ２００
份玉米自交系 ２年田间自然鉴定的病情指数表现为
２.４７％(沈 １３７) ~８７.３２％(８９０２)连续变异(未发表)ꎮ
本文采用的亲本材料齐 ３１９、掖 １０７、Ｆ１代杂交组合
田间自然鉴定平均病情指数分别为 ６. ７４％、
７２.１４％、２１.７０％ꎬ杂交组合病株多表现为 ０ ~ ３ 级ꎬ
但 Ｆ２群体接种鉴定显示玉米粗缩病抗性具有质量
性状特征ꎬ表明抗性遗传中存在主效基因ꎬ玉米粗
缩病抗性遗传模型需要进一步验证分析ꎮ
６１７
　
　 ６期 杨 菲ꎬ等:玉米抗粗缩病遗传及分子标记研究
参考文献
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ＳＣＡＲｓ ｆｒｏｍ ＡＦＬＰ ｍａｒｋｅｒｓ ｌｉｎｋｅｄ ｔｏ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ
Ｍａｉｚｅ ｒｏｕｇｈ ｄｗａｒｆ ｖｉｒｕｓ ( ＭＲＤＶ ) ｕｓｉｎｇ ｂｕｌｋｅｄ
ｓｅｇｒｅｇａｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ ｉｎ ｍａｉｚｅ ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ)[ Ｊ] . Ｓｃｉｅｎｔｉａ
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ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｏｆ ｍａｉｚｅ ｔｏ Ｍａｉｚｅ ｒｏｕｇｈ ｄｗａｒｆ ｖｉｒｕｓ ( ｉｎ
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ｅｖａｌｕａｔｉｎｇ ｔｈｅ ｄｉｓｅａｓｅ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｏｆ ｍａｉｚｅ ｔｏ ｔｈｅ ｄｉｓｅａｓｅ
ｃａｕｓｅｄ ｂｙ Ｍａｉｚｅ ｒｏｕｇｈ ｄｗａｒｆ ｆｉｊｉｖｉｒｕｓ ( ｉｎ Ｃｈｉｎｅｓｅ)
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ｔｉｖｅ ｔｒａｉｔ ｌｏｃｉ ｃｏｎｆｅｒｒｉｎｇ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ Ｒｉｃｅ ｂｌａｃｋ￣
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责任编辑:杨爱东
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