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Effects of exogenous nitric oxide on seed germination and seedling oxidative damage in Medicago sativa under NaCl stress

外源NO对NaCl胁迫下紫花苜蓿种子萌发及幼苗氧化损伤的影响



全 文 :书外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿种子
萌发及幼苗氧化损伤的影响
徐严1,2,魏小红1,李兵兵1,曹丽1,唐志敏2
(1.甘肃农业大学生命科学技术学院,甘肃 兰州730070;2.郴州市农业科学研究所,湖南 郴州423042)
摘要:1)利用浓度分别为0.1和1.0mmol/L的外源NO供体硝普钠(sodiumnitroprusside,SNP)浸泡紫花苜蓿种
子48h。在(25±1)℃下将每批50粒种子置于培养皿进行恒温光照培养,重复3次,连续10d在培养皿中加入6
mL0.15% NaCl处理液并统计日发芽率,以探讨NO对NaCl胁迫下紫花苜蓿种子萌发的影响。2)利用0.1和1.0
mmol/L浓度的外源NO供体SNP处理0.15% NaCl胁迫下的紫花苜蓿幼苗。试验设计了4个处理,分别为T1:
对照组(CK)为蒸馏水;T2:0.15% NaCl;T3:0.1mmol/LSNP+0.15% NaCl;T4:1.0mmol/LSNP+0.15%
NaCl。每个处理重复3次。分别于0(胁迫前),2,4,6和8d后采集生长状况一致的幼苗叶片测定游离脯氨酸含
量、丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量、过氧化氢(H2O2)含量、O2-产生速率、过氧化氢酶(catalase,CAT)、过
氧化物酶(peroxidase,POD)、超氧化物歧化酶(superoxidedismutase,SOD)、叶绿素含量、可溶性糖含量。以探讨
NO对NaCl胁迫下的紫花苜蓿幼苗叶片抗氧化系统的影响。结果表明,外源NO可以缓解NaCl胁迫对紫花苜蓿
种子萌发的抑制作用,促进NaCl胁迫下紫花苜蓿种子活力,促进脯氨酸和可溶性糖含量的积累,能缓解NaCl胁迫
引起的膜脂过氧化产物 MDA含量的增加、缓解活性氧代谢引发的 H2O2 含量的增加及叶绿素的降解,抑制 O2-
产生速率,提高SOD、POD、CAT的活性。这种保护效应与NO的浓度明显相关,0.1mmol/LSNP处理效果显著
优于1.0mmol/LSNP处理。
关键词:外源NO;紫花苜蓿;NaCl胁迫;种子萌发;氧化损伤
中图分类号:S816;S541+.103.4;Q945.78  文献标识码:A  文章编号:10045759(2013)05014509
犇犗犐:10.11686/cyxb20130517  
  土壤盐渍化是一个世界性问题,是影响农业生产和生态环境的一个重要的非生物胁迫因素[1],也是导致土地
退化最严重的问题之一[2]。甘肃省是盐渍地分布面积较大的省份之一,全省有盐渍地102万hm2[3],并随着生态
环境的恶化和不合理地开发利用,仍在进一步扩大[4]。因此,采取合理的措施控制或治理土壤盐渍化的发生是亟
待解决的关键问题。相对其他改良盐渍化土地的措施而言,生物改良措施成本低廉,效果稳定,不但可以降低土
壤盐分,而且可以培肥地力[5],豆科植物改良盐渍化土地可能效果会更好[6],董利苹等[7]的研究结果表明,在盐渍
土壤上种植耐盐植物可以有效地促进土壤脱盐和土壤pH的降低,豆科牧草对灌区盐渍化土壤的改良效果略好
于禾本科牧草。紫花苜蓿(犕犲犱犻犮犪犵狅狊犪狋犻狏犪)是一种多年生优质豆科草本植物,被誉为“牧草之王”,是世界分布
最广的豆科牧草,也是我国种植面积最大的人工牧草,我国苜蓿生产量在世界苜蓿生产大国中居第5位。盐碱化
面积的不断扩大,严重影响着紫花苜蓿的种植、生长,进而影响饲草及畜牧产业的发展[8]。许多研究证实,在盐渍
地种植苜蓿能有效改善土壤结构,提高土壤有机质,从而增加土壤肥力,起到改良盐渍地的作用[3]。提高紫花苜
蓿耐盐性,不但能提高盐碱地利用率,改良盐碱地,还可以增加优质蛋白质饲料,为盐碱地区发展畜牧业奠定物质
基础[9]。因此提高紫花苜蓿耐盐能力对于进一步开发利用盐碱地和扩大苜蓿生产都有重要意义。
NO对植物非生物因素胁迫的保护效应,与植物细胞所处的生理环境和NO的处理浓度有关。较低浓度的
NO对植物细胞具有保护作用,而较高浓度却表现为毒害效应[10,11]。SNP(硝普钠)是一种常用的外源NO供体,
第22卷 第5期
Vol.22,No.5
草 业 学 报
ACTAPRATACULTURAESINICA   
145-153
2013年10月
收稿日期:20120320;改回日期:20120611
基金项目:澳大利亚援助局资助项目(072036007)资助。
作者简介:徐严(1987),男,湖北石首人,硕士。Email:83537417@qq.com
通讯作者。Email:weixh@gsau.edu.cn
通常0.15mmol/L的SNP大约产生0.2μmol/L的NO
[12]。有研究表明,低浓度的NO能够缓解NaCl胁迫对
燕麦(犃狏犲狀犪狊犪狋犻狏犪)[13]叶片的氧化性损伤,提高渗透胁迫对小麦(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)[14]叶片的氧化性损伤的保
护效益。近年来国内关于NO提高植物的抗盐性的研究多见于小麦[15,16]、玉米(犣犲犪犿犪狔狊)[17,18]、黄瓜(犆狌犮狌犿犻狊
狊犪狋犻狏狌狊)[19]、番茄(犔狔犮狅狆犲狉狊犻犮狅狀犲狊犮狌犾犲狀狋狌犿)[20]、拟南芥(犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪)[21],而利用外源NO介导苜蓿抗
盐性的研究却鲜见报道。本研究试图通过外源NO处理NaCl胁迫下的紫花苜蓿种子和幼苗,对种子的萌发及
幼苗叶片中的SOD、POD、CAT活性和脯氨酸、MDA、过氧化氢含量、O2-产生速率、可溶性糖、叶绿素含量动态
变化的研究,探讨外源NO缓解NaCl胁迫对紫花苜蓿的毒害作用,旨在为在盐碱地推广紫花苜蓿的种植以及苜
蓿耐盐生理研究机制提供一定的科学依据。
1 材料与方法
1.1 试验材料
供试材料为多年生紫花苜蓿“牧歌”品种,由甘肃农业大学草业学院提供。本试验于2011年4-7月在甘肃
农业大学生命科学技术学院植物生理实验室进行。
1.1.1 种子萌发试验 挑选大小一致、饱满的紫花苜蓿种子先用98%浓硫酸处理30min,再用10%氯化汞溶液
消毒5min,最后用去离子水清洗5遍。将种子在0,0.1及1.0mmol/LSNP中浸泡48h,然后置于9cm垫有2
层滤纸的培养皿中,每皿放置50粒,培养皿中加入6mL0.15%NaCl处理液,所有的培养皿置于(25±1)℃恒温
光照培养箱中发芽培养,以胚根0.2cm作为萌发标志,每天统计发芽率,共统计10d。第4天测定发芽势。第
10天测定发芽率、发芽指数及活力指数,每组处理设置3个重复。
1.1.2 幼苗胁迫试验 将已经过处理的紫花苜蓿种子置于铺2层滤纸的培养皿(直径12cm)中暗培养1d。花
盆中装1.3kg营养土,浇透水后将发芽幼苗栽于花盆中(20株/盆)。培养50d后进行分组。选取生长整齐一
致、健康的苜蓿植株进行不同浓度SNP(0,0.1,1.0mmol/L)预处理,即分别量取40mL处理液喷施于叶面,每d
(间隔24h)处理1次,连续处理3次。3d后开始在土壤中施加含0.15% NaCl的 Hogland营养液,每d处理1
次,连续处理8d。
试验设计了4个处理:T1,对照组(CK)为蒸馏水;T2,0.15% NaCl;T3,0.1mmol/LSNP+0.15% NaCl;
T4,1.0mmol/LSNP+0.15% NaCl,每个处理重复3次,分别于0(胁迫前),2,4,6和8d后采生长状况一致的
幼苗叶片进行游离脯氨酸含量、MDA含量、过氧化氢含量、O2-产生速率、CAT、POD、SOD的活性、叶绿素含量、
可溶性糖含量的测定。
1.2 试验方法
种子萌发测定:
发芽势(%)=(4d内发芽的种子粒数/供发芽种子粒数)×100%
发芽率(%)=(发芽种子数/供试种子数)×100%
发芽指数(Gi)=∑Gt/Dt
其中,Gt为10d的发芽数,Dt为发芽日。
活力指数(VI)=发芽指数×幼苗平均鲜重(g)
脯氨酸含量测定采用茚三酮显色法[22]。MDA含量测定采用硫代巴比妥酸法[23]。过氧化氢含量测定参照
孙群和胡景江[24]的方法。叶绿素含量测定参照邹琦[25]的方法。O2-产生速率测定参照王爱国和罗广华[26]的方
法。可溶性糖含量测定采用蒽酮法[27]。SOD测定采用 NBT显色法[28],POD测定采用愈创木酚氧化法[29],
CAT测定采用紫外吸收法[30]。
1.3 统计分析
数据采用 MicrosoftExcel2003进行整理,使用SPSS18.0中一般线性模型(GLM)进行单因素方差分析,进
行Duncan多重比较分析差异显著。
2 结果与分析
2.1 不同浓度NO对NaCl胁迫下紫花苜蓿种子萌发的影响
0.15% NaCl胁迫下,紫花苜蓿的种子萌发均受到了抑制,发芽率、发芽势、发芽指数和活力指数与对照组比
641 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.5
较分别下降了14.43%(犘<0.01),12.05%,18.84%(犘<0.01)和37.04%(犘<0.01)。不同浓度的外源NO均
能不同程度地缓解NaCl胁迫对种子萌发造成的毒害作用,尤其以0.1mmol/LSNP对NaCl胁迫的处理效果最
为显著。0.1mmol/LSNP处理组与0.15% NaCl胁迫组比较发芽率、发芽势、发芽指数、活力指数分别提高了
7.23%(犘<0.01),10.96%,16.54%(犘<0.05),41.18%(犘<0.05)。0.1mmol/LSNP处理组与1.0mmol/L
SNP处理组比较发芽率、发芽势、发芽指数、活力指数分别提高了4.71%(犘<0.01),2.53%,10.78%,20.00%
(表1)。
表1 犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿种子萌发的影响
犜犪犫犾犲1 犈犳犳犲犮狋狅犳犖犗狅狀狊犲犲犱犵犲狉犿犻狀犪狋犻狅狀狅犳犕.狊犪狋犻狏犪
处理
Treatment
发芽率
Germinationrate(%)
发芽势
Germinationenergy(%)
发芽指数
Germinationindex
活力指数
Vigorindex
T1,CK 96.67±3.06aA 82.67±6.11aA 34.87±2.50aA 0.27±0.04aA
T2,0.15% NaCl 82.67±5.03bcB 73.33±2.31abcAB 28.30±0.75cdBC 0.17±0.04cdBC
T3,0.1mmol/LSNP+0.15% NaCl 88.67±3.06bA 81.33±4.62aA 32.98±2.11abAB 0.24±0.03abAB
T4,1.0mmol/LSNP+0.15% NaCl 85.33±3.06bcB 79.33±1.15abAB 29.77±2.19bcBC 0.20±0.01bcABC
 注:同列不同大写字母表示差异极显著(犘<0.01),不同小写字母表示差异显著(犘<0.05)。
 Note:Thedataindicatesmean±SD.Differentcapitallettersmeansignificantdifferenceat犘<0.01,differentsmallettersmeansignificantdiffer
enceat犘<0.05.
2.2 不同浓度NO对NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片脯氨酸和可溶性糖含量的影响
脯氨酸是植物体内重要的渗透调节物质,植物受到逆境胁迫时,体内的脯氨酸含量会大量的增加,并且积累
的指数与植物的抗逆性有关。第0天(NaCl胁迫前),各处理组脯氨酸含量均高于对照组。随着处理时间的延长
和NaCl胁迫强度的增加,叶片中游离脯氨酸的含量也在增加。所有的处理组在第8天脯氨酸浓度均达到最大
值。第8天,0.1mmol/LSNP处理组脯氨酸的含量比对照和NaCl胁迫组分别提高了170.25%(犘<0.01)和
25.71%(犘<0.01);1.0mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组相比较,脯氨酸的含量分别增加了158.23%
(犘<0.01)和20.12%(犘<0.01);0.1mmol/LSNP处理组比1.0mmol/LSNP处理组,脯氨酸含量增加了
4.65%。NO处理可以显著地促进 NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片中脯氨酸含量的增加,并且以0.1mmol/L
SNP的效果最为明显(图1)。
可溶性糖也是植物体内重要的渗透调节物质。NaCl胁迫前,各试验组可溶性糖含量均高于对照组。正常生
长条件下的苜蓿叶片中可溶性糖含量变化不大,随着处理时间的延长和NaCl胁迫程度的不断加强,各试验叶片
中可溶性糖含量也在增加,所有的处理组在第8天可溶性糖含量均达到最大值。第8天,0.1mmol/LSNP处理
组与对照和NaCl胁迫组相比较,可溶性糖含量分别提高了158.40%(犘<0.01)和24.36%(犘<0.01);1.0
mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组相比较,可溶性糖含量分别增加了144.78%(犘<0.01)和17.80%
(犘<0.01);0.1mmol/LSNP处理组比1.0mmol/LSNP处理组,可溶性糖含量增加了5.57%。NO处理可以
显著地促进NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片中可溶性糖含量的增加,并且以0.1mmol/LSNP的效果最为明显
(图2)。
2.3 不同浓度NO对NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片 MDA和过氧化氢含量的影响
植物细胞在受到逆境胁迫的情况下会发生膜脂过氧化反应,MDA是膜脂过氧化反应的最终产物,其含量可
以反映植物遭受逆境伤害的程度。第0天(NaCl胁迫前),各处理组 MDA含量均高于对照组。NaCl胁迫下,各
处理组的紫花苜蓿幼苗叶片中的 MDA含量呈先递增后递减的趋势,并且在整个试验期,NaCl胁迫组 MDA含
量一直高于SNP处理组。第4天,0.1mmol/LSNP处理组 MDA的含量与对照和NaCl胁迫组比较分别提高
233.42%(犘<0.01)和下降40.60%(犘<0.01);1.0mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组比较,MDA含
741第22卷第5期 草业学报2013年
量分别增加372.04%(犘<0.01)和下降15.91%(犘<0.05);1.0mmol/LSNP处理组比0.1mmol/LSNP处理
组,MDA含量增加了41.58%(犘<0.01)(图3)。可见NO处理可以显著地缓解NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片
MDA含量的增加。
植物在逆境胁迫下时,由于体内活性氧代谢加强会使得 H2O2 发生积累,并且其含量与植物的抗逆性密切相
关。第0天(NaCl胁迫前),各试验组H2O2 含量均高于对照组,这可能与植物的适应性有关。随着处理时间的
延长,土壤中NaCl含量的不断积累,叶片中H2O2 的含量也在增加。所有的处理组在第8天 H2O2 浓度均达到
最大值。0.1mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组比较,H2O2 第8天的含量分别增加了127.71%(犘<
0.01)和降低了15.74%;1.0mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组相比较,H2O2 第8天的含量分别增加
了147.11%(犘<0.01)和降低了8.64%;1.0mmol/LSNP处理组比0.1mmol/LSNP处理组,H2O2 含量增加
了7.77%(犘<0.01)。施加外源NO可以显著地抑制NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片中H2O2 含量的增加,并且
以0.1mmol/LSNP的效果最为明显(图4)。
图1 外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿幼苗
叶片脯氨酸含量的影响
犉犻犵.1 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀狆狉狅犾犻狀犲
犮狅狀狋犲狀狋犻狀狋犺犲犪犾犳犪犾犳犪犾犲犪狏犲狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
图2 外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿幼苗
叶片可溶性糖含量的影响
犉犻犵.2 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犮狅狀狋犲狀狋狅犳
狊狅犾狌犫犾犲狊狌犵犪狉犻狀狋犺犲犪犾犳犪犾犳犪犾犲犪狏犲狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
图3 外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿幼苗
叶片丙二醛含量的影响
犉犻犵.3 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犕犇犃
犮狅狀狋犲狀狋犻狀狋犺犲犪犾犳犪犾犳犪犾犲犪狏犲狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
图4 外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿幼苗
叶片过氧化氢含量的影响
犉犻犵.4 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犎2犗2
犮狅狀狋犲狀狋犻狀狋犺犲犪犾犳犪犾犳犪犾犲犪狏犲狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
841 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.5
2.4 不同浓度NO对NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片O2-产生速率和叶绿素含量的影响
第0天(NaCl胁迫前),各试验组O2-产生速率均高于对照组(图5)。NaCl胁迫下,各试验组的紫花苜蓿幼
苗叶片中的O2-产生速率呈先增后减的趋势,并且在整个试验期,NaCl胁迫组O2-产生速率一直高于SNP处理
组。第0~2天,各试验组紫花苜蓿叶片中O2-产生速率呈递增趋势且在第2天达到最大值,第2~8天,各试验
组O2-产生速率呈下降趋势。第2天,0.1mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组比较,O2-产生速率分别
提高204.35%(犘<0.01)和下降14.46%;1.0mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组比较,O2-产生速率分
别增加了211.83%(犘<0.01)和降低12.36%;1.0mmol/LSNP处理组比0.1mmol/LSNP处理组,O2-产生
速率增加了2.46%。可见NO处理可以显著地缓解NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片O2-产生速率的增加,0.1
mmol/LSNP的效果较好。
第0天(NaCl胁迫前),喷施SNP试验组叶绿素含量均高于对照组(图6),随着处理时间的延长,对照组幼苗
叶片中的叶绿素含量基本没有变化,而其他处理组叶片中叶绿素的含量在下降,NO处理能够明显的延缓NaCl
胁迫下叶绿素的降解。第8天,0.1mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组相比较,叶绿素的含量分别减少
35.11%(犘<0.01)和增加10.77%(犘<0.01);1.0mmol/LSNP处理组与对照和相应单NaCl胁迫组相比较,
叶绿素第8天的含量分别减少34.19%(犘<0.01)和增加12.35%(犘<0.01)。
图5 外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿幼苗
叶片犗2-产生速率的影响
犉犻犵.5 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犗2- 狆狉狅犱狌犮狋犻狅狀
狊狆犲犲犱犻狀狋犺犲犪犾犳犪犾犳犪犾犲犪狏犲狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊 
图6 外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿幼苗
叶片叶绿素含量的影响
犉犻犵.6 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犮犺犾狅狉狅狆犺狔犾
犮狅狀狋犲狀狋犻狀狋犺犲犪犾犳犪犾犳犪犾犲犪狏犲狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊 
2.5 不同浓度NO对NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片SOD活性的影响
第0天(NaCl胁迫前),各试验组SOD活性均高于对照组(图7)。整个胁迫期间,试验组SOD呈先增后降
的趋势,在第4天达到最大值。第4天NaCl胁迫组的SOD活性高于SNP处理组和显著高于对照(犘<0.01)。
第8天,各处理组SOD活性下降到最小值,但SNP处理组SOD活性高于NaCl胁迫组。第8天,0.1mmol/L
SNP处理组与对照和 NaCl胁迫组比较,SOD活性分别提高了13.27%(犘<0.01)和9.99%(犘<0.01);1.0
mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组比较,SOD活性分别增加了9.35%(犘<0.01)和6.18%(犘<0.01);
0.1mmol/LSNP处理组比1.0mmol/LSNP处理组,SOD活性增加了1.71%。
2.6 不同浓度NO对NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片POD活性的影响
在整个试验期POD活性呈现先增后减的趋势(图8)。胁迫前,各处理组的POD活性极显著高于对照组
(犘<0.01)。第6天,SNP处理组与 NaCl胁迫组的POD活性达到最大值,并且前者的活性极显著高于后者
(犘<0.01)。第6~8天,NaCl胁迫组POD活性急剧下降,第8天,各处理组的POD活性达到最低值,且对照组
POD活性极显著高于NaCl胁迫处理组(犘<0.01)。0.1mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组比较,POD
941第22卷第5期 草业学报2013年
活性分别提高了17.37%(犘<0.01)和30.01%(犘<0.01);1.0mmol/LSNP处理组与对照和NaCl胁迫组比
较,POD活性分别增加了15.52%(犘<0.01)和27.92%(犘<0.01);0.1mmol/LSNP处理组比1.0mmol/L
SNP处理组,POD活性增加了1.58%。上述结果表明,喷施SNP可以明显提高NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片
中POD活性,且0.1mmol/LSNP的效果较好。
图7 外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿幼苗
叶片犛犗犇活性的影响
犉犻犵.7 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犛犗犇
犪犮狋犻狏犻狋狔犻狀狋犺犲犪犾犳犪犾犳犪犾犲犪狏犲狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
图8 外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿幼苗
叶片犘犗犇活性的影响
犉犻犵.8 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犘犗犇
犪犮狋犻狏犻狋狔犻狀狋犺犲犪犾犳犪犾犳犪犾犲犪狏犲狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
图9 外源犖犗对犖犪犆犾胁迫下紫花苜蓿幼苗
叶片犆犃犜活性的影响
犉犻犵.9 犈犳犳犲犮狋狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀犆犃犜
犪犮狋犻狏犻狋狔犻狀狋犺犲犪犾犳犪犾犳犪犾犲犪狏犲狊狌狀犱犲狉狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
 
2.7 不同浓度 NO对 NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶
片CAT活性的影响
正常生长条件下的苜蓿叶片中CAT活性变化量
不大,在整个试验期,随着土壤中胁迫程度的加强和胁
迫时间的延长,SNP处理组和NaCl胁迫组CAT活性
逐渐降低(图9)。第8天,各处理组CAT活性降到最
小值。第8天,0.1mmol/LSNP处理组与对照和
NaCl胁迫组比较,CAT 活性分别下降了37.99%
(犘<0.01)和增加了31.90%(犘<0.01);1.0mmol/L
SNP处理组与对照和NaCl胁迫组比较,CAT活性分
别下降了43.44%(犘<0.01)和增加了20.31%(犘<
0.05);0.1mmol/LSNP处理组比1.0mmol/LSNP
处理组,CAT活性增加了8.79%。喷施SNP可以明
显缓解 NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗叶片中CAT活性
的下降,且0.1mmol/LSNP的保护效果较好。
3 讨论
盐碱、干旱、低温和高温、紫外线等逆境均可以诱导活性氧(reactiveoxygenspecies,ROS)的形成,O2-是活
性氧中毒害最强的一种,当O2-不能够及时得到清除时,H2O2 能够和O2-反应生成·OH,可以直接引发膜脂
过氧化反应,引起膜脂过氧化产物 MDA含量的增加。本试验的研究结果表明,在 NaCl胁迫下,紫花苜蓿幼苗
SOD和POD活性均呈先上升后下降趋势,CAT活性则呈下降趋势,这与刘爱荣等[31]的研究结果一致。0.1
mmol/LSNP可以显著提高SOD、POD、CAT的活性,加快NaCl胁迫下ROS物质的清除,从而缓解了NaCl胁
051 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.5
迫对紫花苜蓿的氧化损害作用。SOD是一种诱导酶,NaCl胁迫能够促进O2-含量的增加,进而诱导SOD活性
升高。SOD能与O2-歧化反应生成H2O2,因此SOD活性的增加会导致 H2O2 含量的增加。H2O2 含量的增加
也可能是与CAT活性的下降有关,CAT活性的下降可能是以下几个方面引起的:一是由于 H2O2 的积累使其失
活;二是可能发生了光失活,CAT为光失活酶,其酶活性的维持依赖于光下连续合成CAT蛋白,但其光修复对外
界因素却是非常敏感的;另外,H2O2 和O2-可以一起与CAT反应形成复合物或分别与CAT反应形成复合物,
这些钝化形式抑制了CAT的活性[32]。H2O2 具有强氧化性,它抑制二氧化碳的固定并参与叶绿体的降解。NO
提高保护酶的活性主要原因是NO能够对含铁的相关酶如CAT、COX等具有很强的亲和力以及抑制含非血红
素铁的顺乌头酸酶等靶酶的活性[14]。
叶绿体是植物细胞中对盐非常敏感的细胞器[33],盐逆境胁迫条件下植物细胞叶绿体和线粒体电子传递中泄
露的电子会导致ROS大量产生,并引发细胞内的氧化损伤,引起叶绿素降解、膜结构损伤、蛋白质变性、核酸断
裂,甚至细胞死亡[34]。叶绿素酶是叶绿素代谢中唯一肯定起作用的酶,NaCl能增加叶绿素酶的活性,加速叶绿
素分解,蒋明义等[35]已经证实渗透胁迫下叶绿素的降解主要与活性氧的氧化损伤有关。本试验的结果表明,外
源NO可以显著缓解NaCl胁迫下叶绿素的降解,从而保护叶绿体膜结构的完整性。
本试验的研究结果表明,在NaCl胁迫下,紫花苜蓿幼苗叶片的游离脯氨酸和可溶性糖含量会增加,这与邹
丽娜等[36]的研究结果一致。喷施外源NO可以显著促进NaCl胁迫下紫花苜蓿幼苗中游离脯氨酸和可溶性糖含
量,提高紫花苜蓿的抗盐性。
NO有可能是以下面3种不同的途径发挥作用的,一个是NO直接清除ROS物质[1],屠洁等[37]在2003年发
现SNP具有清除O2-的功能;一条途径是促进逆境条件下脯氨酸和可溶性糖的积累,外源NO可以促进低温胁
迫下一年生黑麦(犔狅犾犻狌犿犿狌犾狋犻犳犾狅狉狌犿)叶片中脯氨酸含量的积累,提高其抗寒性[38],也能够提高渗透胁迫下[39]
和盐胁迫下[16]小麦(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)叶片中脯氨酸含量;另外一条途径是NO作为信号分子,诱导细胞内抗
氧化酶的活性或相关酶类基因的表达[40],从而清除ROS。这样子一方面可以提高植物细胞内渗透调节物质的含
量,提高植物细胞的保水能力和抗氧化能力[35],另外一方面也可以直接或间接的清除 O2-、H2O2、·OH 等
ROS,从而缓解细胞膜发生过氧化反应。
外源NO可以缓解盐胁迫对黄瓜造成的伤害,提高其生长量和抗氧化活性[19]。苏桐等[13]证实低浓度 NO
能够缓解NaCl胁迫下的燕麦(犃狏犲狀犪狊犪狋犻狏犪)幼苗叶片氧化损伤,提高其抗氧化能力;王宪叶等[14]和王俊红等[39]
也分别证实了外源NO能够缓解渗透胁迫下的小麦幼苗叶片膜脂过氧化,提高其抗性。本试验的研究结果也表
明,外源NO可以提高NaCl胁迫下紫花苜蓿种子萌发,增强紫花苜蓿幼苗叶片中SOD、POD、CAT等抗氧化酶
的活性,调节 H2O2 和O2-含量,促进脯氨酸和可溶性糖含量的积累,降低膜脂过氧化产物 MDA的积累,使得细
胞的渗透调节能力和耐盐能力的提高成为可能。
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犈犳犳犲犮狋狊狅犳犲狓狅犵犲狀狅狌狊狀犻狋狉犻犮狅狓犻犱犲狅狀狊犲犲犱犵犲狉犿犻狀犪狋犻狅狀犪狀犱狊犲犲犱犾犻狀犵狅狓犻犱犪狋犻狏犲
犱犪犿犪犵犲犻狀犕犲犱犻犮犪犵狅狊犪狋犻狏犪狌狀犱犲狉犖犪犆犾狊狋狉犲狊狊
XUYan1,2,WEIXiaohong1,LIBingbing1,CAOLi1,TANGZhiming2
(1.ColageofLifeScienceandTechnology,GansuAgriculturalUniversity,Lanzhou730070,China;
2.ChenzhouInstituteofAgriculturalScience,Chenzhou423042,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:1)犕犲犱犻犮犪犵狅狊犪狋犻狏犪seedsweresoakedintwoconcentrations(0.1and1.0mmol/L)ofsodiumnitro
prusside(SNP)for48h.Samplesof50seedstakenon10consecutivedayswereculturedindishesundercondi
tionsofconstantlightandtemperatureat(25±1)℃.NaClsolution(6mL0.15%)wasaddedtoinvestigatethe
effectsofexogenousnitricoxideonseedgerminationunderNaClstress.2)Theinfluenceoftheexogenousni
tricoxidedonor(SNP)atconcentrationsof0.1and1.0mmol/Lon犕.狊犪狋犻狏犪seedlingleafoxidativedamage
under0.15% NaClstresswerestudiedfor8daysoftreatment.Thetreatmentswere,T1:CK(distiledwa
ter);T2:0.15% NaCl;T3:0.1mmol/LSNP+0.15% NaCl;T4:1.0mmol/LSNP+0.15% NaCl.There
sultsindicatedthatgerminationrate(犘<0.01),germinationenergy,germinationindex(犘<0.05)andvigor
index(犘<0.05)of犕.狊犪狋犻狏犪seedsweredramaticalypromotedbySNPtreatmentsduringgerminationunder
0.15% NaClstress.Theactivitiesofantioxidantenzymessuchassuperoxidedismutase(SOD),peroxidase
(POD)andcatalase(CAT),wereincreased,whichisconsistentwiththeupregulationofprolineandsoluble
sugars,andwiththedownregulationofO2-production,speedandcontentofmalondialdehyde(MDA),H2O2
andchlorophylin犕.狊犪狋犻狏犪seedlingleavescomparedwiththoseundersaltstress.Meanwhile,theprotective
abilityofconcentrationsof0.1mmol/Lwassignificantlybetterthanthoseof1.0mmol/L.
犓犲狔狑狅狉犱狊:exogenousnitricoxide;犕犲犱犻犮犪犵狅狊犪狋犻狏犪;NaClstress;seedgermination;oxidativedamag
檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵檵

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