免费文献传递   相关文献

Identification and evaluation of biological control potential of B-401 endophytic bacteria in grasses on alpine grasslands

高寒草地禾草内生细菌B-401的鉴定及生物防治潜力评价



全 文 :书高寒草地禾草内生细菌犅401的
鉴定及生物防治潜力评价
畅涛,王涵琦,杨成德,王颖,杨小利,薛莉,陈秀蓉,徐长林
(草业生态系统教育部重点实验室 甘肃农业大学草业学院 甘肃省草业工程实验室 中-美草地畜牧业可持续发展研究中心,甘肃 兰州730070)
摘要:为了明确高寒草地禾草内生细菌B401的生物防治潜力,采用平板对峙法测定了其抑菌能力。抑菌谱表明,
B401对马铃薯坏疽病菌、马铃薯褐腐病菌、马铃薯炭疽病菌、马铃薯枯萎病菌、马铃薯干腐病菌、番茄早疫病菌、小
麦根腐病菌、孜然根腐病菌和黄瓜枯萎病菌的抑制率分别达74.45%,71.57%,70.05%,48.01%,56.01%,
60.25%,64.65%,45.01%和31.79%。在贮藏库中进行10倍液喷雾,对马铃薯坏疽病的防效达52.67%。生物学
功能测定表明,该菌株在含有色氨酸和不含色氨酸的King培养基中分泌IAA分别为3.42和2.60mg/L,且具有
固氮能力,无溶磷能力。对B401通过形态特征和生理生化测定,结合16SrDNA序列同源性分析,鉴定其为萎缩
芽孢杆菌(犅犪犮犻犾犾狌狊犪狋狉狅狆犺犪犲狌狊)。
关键词:禾草内生细菌;抑菌谱;生物学功能;鉴定
中图分类号:S812.29;S432.4+2  文献标识码:A  文章编号:10045759(2014)03028208
犇犗犐:10.11686/cyxb20140334  
  随着化学农药的大量、频繁使用,造成环境污染、农药残留和增加抗性等问题也越来越严重,促使人们不断地
倡导绿色农业[13]。因此,植物病害的生物防治成为了研究热点,其中尤以植物内生菌作为拮抗菌的研究得到众
多学者的青睐。植物内生细菌是指生活在植物的根、茎、叶、花、果实和种子中,但对植物没有任何实质性伤害的
细菌[4]。植物内生菌与植物能够互利互惠,究其原因则是由于植物为内生细菌提供生长必需的场所和营养等,而
内生细菌则通过其固氮、溶磷、抑菌及产生生物活性物质等生物功能,增强宿主植物的抗病性、抗虫性、抗旱性及
生长竞争能力等[56]。学者通过研究发现植物内生菌对植物的促生作用体现在产IAA来促进植物种子的发芽和
植株幼苗的生长[710]、通过联合固氮作用进行生物固氮[1113]和通过解磷或溶磷作用[1415]使植物能够尽可能地得
到养分的补充[1617],从而使植物对生物量进行了积累。同时也有学者分离得到了具有良好拮抗作用或抑菌作用
的内生细菌。据报道,已从人参(犘犪狀犪狓犵犻狀狊犲狀犵)[18]、棉花(犌狅狊狊狔狆犻狌犿)[19]、桔梗(犘犾犪狋狔犮狅犱狅狀犵狉犪狀犱犻犳犾狅
狉狌犿)[20]、向日葵(犎犲犾犻犪狀狋犺狌狊犪狀狀狌狌狊)[21]、茄子(犛狅犾犪狀狌犿犿犲犾狅狀犵犲狀犪)[22]、小麦(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)[23]、甜菜
(犅犲狋犪狏狌犾犵犪狉犻狊)[24]、水稻(犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪)[25]和西红柿(犔狔犮狅狆犲狉狊犻犮狅狀犲狊犮狌犾犲狀狋狌犿)[26]等植物体内分离得到内生菌
可以抑制病原菌对宿主植物进行侵染,从苦参(犛狅狆犺狅狉犪犲犳犾犪狏犲狊犮犲狀狋犻狊)[27]、红树(犚犺犻狕狅狆犺狅狉犪犮犲犪犲)[28]和珠芽蓼
(犘狅犾狔犵狅狀狌犿狏犻狏犻狆犪狉狌犿)[29]等植物体内分离得到的内生菌可以抑制病原菌对其他植物的侵染。这些内生菌主
要是通过其核糖体途径产生某些细菌素和酶类及活性蛋白质类来溶解病原菌的细胞壁、抑制菌丝生长和孢子萌
发或造成畸形,也可以通过非核糖体途径产生的抗菌肽、脂肽物质或抗菌素通过锌离子通道或其他机制作用于病
原菌的细胞膜[3031];从而对植物起到防病作用。由此可见,植物内生菌具有众多的生物学功能值得挖掘,而高寒
草地禾草作为优质牧草具有重要的应用价值,由于其内生菌的特殊生境,使内生菌具有耐低温等特性。因此,本
试验以高寒草地禾草内生菌B401为研究对象,对其生防能力和其他生物学功能进行了测定,并进行了鉴定,以
期为植物病害的生物防治和生物菌肥的研发提供菌种资源,也为高寒草地牧草内生细菌资源的开发提供理论依
据。
282-289
2014年6月
   草 业 学 报   
   ACTAPRATACULTURAESINICA   
第23卷 第3期
Vol.23,No.3
收稿日期:20130515;改回日期:20130701
基金项目:国家自然科学基金(No.31160122)和草业生态系统教育部重点实验室(甘肃农业大学)开放课题项目(No.CYzs2011011)资助。
作者简介:畅涛(1986),男,甘肃白银人,在读硕士。Email:changt1986@126.com
通讯作者。Email:yangcd@gsau.edu.cn
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 供试菌株 供试病原菌:马铃薯坏疽病菌(犘犺狅犿犪犳狅狏犲犪狋犪)、马铃薯褐腐病菌(犛狋狔狊犪狀狌狊狊狋犲犿狅狀犻狋犻狊)、马铃
薯炭疽病菌(犆狅犾犾犲狋狅狋狉犻犮犺狌犿犮狅犮犮狅犱犲狊)、马铃薯枯萎病菌(犉狌狊犪狉犻狌犿犪狏犲狀犪犮犲狌犿)、马铃薯干腐病菌(犉狌狊犪狉犻狌犿狅狓
狔狊狆狅狉狌犿)、番茄早疫病菌(犃犾狋犲狉狀犪狉犻犪狊狅犾犪狀犻)、小麦根腐病菌(犅犻狆狅犾犪狉犻狊狊狅狉狅犽犻狀犻犪狀犪)、孜然根腐病菌(犉狌狊犪狉犻狌犿
狊狅犾犪狀犻)和黄瓜枯萎病菌(犉狌狊犪狉犻狌犿狅狓狔狊狆狅狉狌犿)。供试拮抗菌:B401,为高寒草地禾草内生菌。
以上供试病原菌和供试拮抗菌均由甘肃农业大学植物病理实验室提供。
供试农药:10%氟硅唑(乳油,先正达有限公司);50%嘧菌酯(悬浮剂,先正达有限公司),均为马铃薯坏疽病
室内毒力测定较好的药剂[32]。
供试植物及品种:马铃薯(犛狅犾犪狀狀犿狋狌犫犲狉狅狊狌犿)新大坪,为来自于重病田的二级种薯。
1.1.2 培养基 供试培养基为NA培养基、NB培养液、LB培养液和PDA培养基,按参考文献[33]配制。
1.2 B401生防能力的评价
1.2.1 B401抑菌能力的测定 采用平板对峙法,指示菌为马铃薯坏疽病菌、番茄早疫病菌、马铃薯干腐病菌、
黄瓜枯萎病菌、孜然根腐病菌、马铃薯褐腐病菌、马铃薯炭疽病菌、小麦根腐病菌和马铃薯枯萎病菌。将活化后的
指示菌打成6mm菌饼置于PDA培养基的中央,与指示菌菌饼相隔2.5cm的圆周上等距离点接4次B401,每
个处理3次重复,25℃下黑暗培养。采用十字交叉法测量抑菌直径并计算抑制率。
1.2.2 B401稳定性测定 将B401培养于NB平板上,连续转接(每隔3d转接1次)10代,后测定其对马铃薯
坏疽病菌的抑菌能力,并利用SPSS16.0软件分析其稳定性。
1.2.3 B401对病原菌菌丝生长的影响 采用平板对峙法于接种后9d观察病原菌菌丝形态并显微拍照。
1.2.4 贮藏期防效试验 在甘肃省定西市马铃薯贮藏库进行;选择来自于重病田的200个均匀一致的薯块,将
B401的发酵液(CFU=7.83×1012)配制成10倍液喷于薯块表面,用50%嘧菌酯悬浮剂3000倍液和10%氟硅
唑乳油5000倍液作药剂对照,清水为空白对照,于2010年11月15日喷药,2011年3月23日检查发病率,利用
防效结果来评价B401的防病能力。
1.3 B401产IAA、溶磷和固氮能力测定
1.3.1 产IAA的定性测定 采用Salkowski比色法,对B401进行产IAA的测定,3个重复均变红为阳性,表
示能分泌生长激素IAA,均不变色为阴性,表示不分泌IAA,颜色越深表示分泌数量越多。
1.3.2 产IAA的定量测定 采用纯3IAA制作标准曲线。配制2组浓度依次为2.5,5.0,7.5,10.0,12.5,
15.0,17.5mg/L和25,50,75,100,125,150,175mg/L的标准液,分别取4mL,在1组中加入PC比色液4
mL,另一组中加入S2比色液4mL,黑暗静置0.5h,取出后测定其OD530值,制作标准曲线。将培养12d的B
401的菌悬浮液和空白对照离心10min,转速为10000r/min,取上清液4mL分别加入等量比色液,黑暗静置
30min后测定OD530值,以加了比色液的空白为对照。用相应的标准曲线计算菌株分泌IAA的量。
1.3.3 溶磷能力的定性测定 将B401点接于PKO(或蒙金娜)平板培养基上,置于28℃恒温培养箱培养5d
后,观察菌株在培养基平板上形成的溶磷圈,有溶磷圈的记为阳性。
1.3.4 固氮能力的定性测定 将B401用点接法接种在阿须贝培养基上,同时将200μLB401菌悬液接入阿
须贝液体培养基中,重复3次,以无菌水接种做对照,28℃培养,在第3,5,7天目测其生长状况,在无氮培养基上
明显生长者和能使液体培养基变浑浊的记为阳性,继代培养3代仍为阳性,则认为具有固氮能力。
1.4 B401的鉴定
1.4.1 培养性状和形态特征 B401活化后分别接种于NA平板、斜面及NB培养液,于28℃下培养5d后观察
培养性状。将B401在NA平板上活化培养18~24h后进行革兰氏染色和芽孢染色,观察菌体和测量菌体的大
小(30个),并显微拍照。
1.4.2 生理生化测定 具体方法参照《伯杰细菌鉴定手册》[34]和《常见系统细菌鉴定手册》[35]进行。
382第23卷第3期 草业学报2014年
1.4.3 16SrDNA序列分析 按上海生工提供的试剂盒(Ezup柱式基因组DNA抽提试剂盒,批号:82561202)
提取DNA并检测,对具有特异性DNA条带的保存于-20℃的冰箱备用。
使用引物1(5′CCGGATCCAGAGTTTGATCATGGCTCAGCA3′)和引物2(5′CGGGATCCTACGGC
TACCTTGTTACGACTT3′)进行PCR扩增,扩增条件为:94℃预变性5min,94℃变性10s,54℃退火20s,
68℃延伸40s,35个循环;最后在68℃下延伸7min,终止反应。反应体系:10×buffer(含 MgCl2):5μL,dNTP
(2.5mmol/L):1μL。primer1(10μmol/L):1μL,primer2(10μmol/L):1μL,Taqpolymerse(2U/μL):
0.4μL,TargetDNA(10ng/μL):1μL,ddH2O:40.6μL,总体积为50μL。经检测,将具特异性条带的扩增产
物送上海生工测序,所测序列与 GenBank数据库中已报道的序列进行同源性比较,采用Clustal1.8软件和
Mega4.0软件构建系统发育树,确定B401的系统发育学地位。
2 结果与分析
2.1 B401的生防能力评价
2.1.1 B401抑菌谱的测定 禾草内生菌B401对马铃薯坏疽病菌、马铃薯褐腐病菌、马铃薯炭疽病菌、小麦根
腐病菌和番茄早疫病菌的抑制效果明显,分别达74.45%,71.97%,70.05%,64.65%和60.25%;对孜然根腐病
菌、马铃干腐病菌和马铃薯枯萎病菌的抑制效果在45%以上;对黄瓜枯萎病菌具有一定的抑制效果(表1,图1)。
表明B401对马铃薯上多种病原菌及其他病原菌都具有抑制作用,可以一菌多防。
表1 犅401的抑菌能力测定
犜犪犫犾犲1 犜犺犲犻狀犺犻犫犻狋犻狅狀狉犪狋犲狅犳犅401犪犵犪犻狀狊狋狆犪狋犺狅犵犲狀犻犮犳狌狀犵犻
病原菌
Pathogenicfungi
菌落直径Diameterofcolony(cm)
对照CK B401
抑制率
Inhibitionrate(%)
马铃薯枯萎病菌犉.犪狏犲狀犪犮犲狌犿 7.13±0.047 4.15±0.032 48.01
孜然根腐病菌犉.犛狅犾犪狀犻 7.45±0.045 4.37±0.007 45.01
小麦根腐病菌犅.狊狅狉狅犽犻狀犻犪狀犪 7.77±0.047 3.13±0.052 64.65
番茄早疫病菌犃.狊狅犾犪狀犻 7.18±0.022 3.22±0.022 60.25
马铃薯干腐病菌犉.狅狓狔狊狆狅狉狌犿 8.12±0.042 3.90±0.125 56.10
马铃薯褐腐病菌犛.狊狋犲犿狅狀犻狋犻狊 8.03±0.002 2.68±0.045 71.97
马铃薯炭疽病菌犆.犮狅犮犮狅犱犲狊 6.83±0.087 2.47±0.032 70.05
黄瓜枯萎病菌犉.狅狓狔狊狆狅狉狌犿 6.07±0.082 4.20±0.125 31.79
马铃薯坏疽病菌犘.犳狅狏犲犪狋犪 8.23±0.012 2.55±0.020 74.45
2.1.2 B401稳定性测定 将拮抗菌B401的10代菌与马铃薯坏疽菌对峙培养,结果表明,B401原菌株与其
继代(10代)培养菌之间抑菌效果差异不显著(犘>0.05),说明该菌株的抑菌效果稳定(表2)。
2.1.3 B401对多种病原菌菌丝生长的影响 马铃薯坏疽病菌、马铃薯炭疽病菌和马铃薯褐腐病菌菌丝被
B401抑制后,有明显的畸形变化,菌丝断裂、细胞壁崩解、原生质外泄,菌丝产生泡囊、扭曲、变形,导致其原生质
凝聚和末端膨大(图2),说明B401可以通过使菌丝发生畸形变化来影响病菌菌丝生长。
2.1.4 贮藏期防治试验 清水对照的发病率为38.60%,喷雾B401之后的发病率为18.26%,其防效为
52.67%,比5000倍液10%氟硅唑的防效低34.66%,但和3000倍液嘧菌酯的差异不大(表3),说明B401具有
较好防治效果。
2.2 B401生物学功能测定
2.2.1 IAA的定性测定 结果表明,不含色氨酸的培养液颜色变化较为明显,含100mg/L色氨酸的培养液在
比色反应中呈红色,与对照差异明显(图3),说明在King培养基中加入100mg/L的色氨酸能够增加B401合成
IAA的量。
482 ACTAPRATACULTURAESINICA(2014) Vol.23,No.3
图1 犅401与9种病原菌的对峙照片
犉犻犵.1 犅401犮狅狀犳狉狅狀狋狀犻狀犲犽犻狀犱狊狅犳狆犪狋犺狅犵犲狀犻犮犳狌狀犵犻狆犺狅狋狅狊
 A:小麦根腐病菌犅.狊狅狉狅犽犻狀犻犪狀犪;B:黄瓜枯萎病菌犉.狊狅犾犪狀犻;C:孜然根腐病菌犉.狊狅犾犪狀犻;D:马铃薯炭疽病菌犆.犮狅犮犮狅犱犲狊;E:马铃薯枯萎病菌犉.
犪狏犲狀犪犮犲狌犿;F:马铃薯干腐病菌犉.狅狓狔狊狆狅狉狌犿;G:番茄早疫病菌犃.狊狅犾犪狀犻;H:马铃薯褐腐病菌犛.狊狋犲犿狅狀犻狋犻狊;I:马铃薯坏疽病菌犘.犳狅狏犲犪狋犪.
2.2.2 IAA 的定量测定 B401经连续培养12d
后,用PC和S2两种比色液测定OD530值,结果表明,
不含色氨酸的King培养液 OD530值为PC=0.089和
S2=0.073,通过标准曲线分泌IAA 的浓度为2.6
mg/L;含100mg/L色氨酸的King培养液OD530值为
PC=0.132和S2=0.077,其分泌IAA的浓度为3.42
mg/L,IAA的合成量与前者相差较大,说明色氨酸的
存在能较明显增加B401合成IAA的量。可认为外
源色氨酸是B401合成IAA必须前体物质。
2.2.3 溶磷能力的定性测定 结果表明,B401在
PKO无机磷培养基和蒙金娜培养基上(有机磷培养
基)分别培养5d之后,没有溶磷圈出现,说明B401
没有溶解有机磷和无机磷的能力。
表2 继代培养菌株对坏疽病菌的抑制结果
犜犪犫犾犲2 犜犺犲犻狀犺犻犫犻狋犻狅狀狉犪狋犲狅犳狊狌犫犮狌犾狋狌狉犲
犫犪犮狋犲狉犻犪犪犵犪犻狀狊狋犘.犳狅狏犲犪狋犪
项目
Item
菌落直径
Diameterofcolony
(cm)
抑制率
Inhibitionrate
(%)
对照CK 8.23±0.012
10代B401SubcultureB401 2.68±0.012 72.82a
B401 2.55±0.020 74.45a
 注:不同小写字母表示差异显著(犘<0.05)。
 Note:Differentsmallettersmeansignificantlydifferentat犘<0.05
level.
图2 犅401对病原菌菌丝的影响
犉犻犵.2 犐狀犳犾狌犲狀犮犲狅犳犅401犪犵犪犻狀狊狋犺狔狆犺狅犪犲狅犳狆犪狋犺狅犵犲狀犻犮犳狌狀犵犻
 A:炭疽处理Inhibithyphoaeof犆.犮狅犮犮狅犱犲狊;B:炭疽对照Normalhyphoaeof犆.犮狅犮犮狅犱犲狊;C束梗孢处理Inhibithyphoaeof犛.狊狋犲犿狅狀犻狋犻狊;D:束梗孢
对照Normalhyphoaeof犛.狊狋犲犿狅狀犻狋犻狊;E:坏疽病处理Inhibithyphoaeof犘.犳狅狏犲犪狋犪;F:坏疽病对照Normalhyphoaeof犘.犳狅狏犲犪狋犪. 
582第23卷第3期 草业学报2014年
表3 犅401的防治效果
犜犪犫犾犲3 犜犺犲犮狅狀狋狉狅犾犲犳犳犻犮犪犮狔狅犳犅401犪犵犪犻狀狊狋狆狅狋犪狋狅犵犪狀犵狉犲狀犲
项目Item B401 10%氟硅唑Flusilazole50%嘧菌酯 Azoxystrobin CK
病薯率Rateofdiseasepotato(%) 18.26±0.134 5.04±0.220 18.34±0.198 38.60±0.120
防效Controlefficiency(%) 52.67 86.93 52.48
2.2.4 固氮能力的定性测定 结果表明,B401点接
图3 犅401比色反应
犉犻犵.3 犅401犮狅犾狅狉犻犿犲狋狉犻犮狉犲犪犮狋犻狅狀
 
图4 犅401的革兰氏染色和芽孢染色
犉犻犵.4 犌狉犪犿狊狋犪犻狀犻狀犵(犃),狊狆狅狉犲狊狋犪犻狀犻狀犵(犅)狅犳犅401
 
图5 犅401的16犛狉犇犖犃电泳图
犉犻犵.5 16犛狉犇犖犃犘犆犚犲犾犲犮狋狉狅狆犺狅狉犲狊犻狊犿犪狆狅犳犅401 
于阿须贝培养基后,在第3天时形成菌落,第5天时形
成明显的菌落;接种于液体培养基后,5d后培养液变
浑浊。连续培养3代后,B401在第5天时同样能形
成菌落并能使培养液变浑浊,说明B401具有固氮能
力。
2.3 B401的鉴定
2.3.1 形态观察 经革兰氏染色,B401为 G+(图
4A),其芽孢中生(图4B),菌体大小为2.8~6.0μm×
0.8~1.4μm。其在平板培养基上菌落大小约为0.4
cm,中间凸起如凸镜状,边缘平整,黏度较大,硬度小
且不透明,呈乳黄色。斜面培养基上,菌苔丰富,光滑,
颜色呈乳黄色,边缘呈刺毛状。液体培养基中,不形成
菌膜,沉淀少,无气泡,菌液颜色为培养液颜色。
2.3.2 生理生化测定 B401具有将硝酸盐还原为
亚硝酸盐的能力,好氧生长,能够利用葡萄糖、阿拉伯
糖、木糖和甘露醇产酸,VP测定为阳性;能够水解酪
朊、淀粉、明胶、酪氨酸;能够利用丙酸盐和柠檬酸盐;
不能产生苯丙氨酸脱氨酶和卵磷脂酶,但能产生接触
酶;能够形成吲哚,表明该菌对植物具有促生作用;可
以在pH6.8和5.7的营养肉汤中生长,生长时可以
不需要NaCl和KCl;能够在10%的氯化钠溶液中生
长;生长温度在5~50℃。结合形态特征和生理生化
测定结果,初步认为B401属于芽孢杆菌属,种待定。
2.3.3 16SrDNA基因鉴定 提取B401的基因组
DNA,在0.8%琼脂糖凝胶上电泳检测,条带清楚,且
无非特异性条带,满足16SrDNA的要求,可以进行
PCR扩增。
16SrDNA的扩增和测序:用16SrDNA引物扩
增,产物经琼脂糖凝胶电泳检测,在1500bp处有一明亮的PCR特异性条带 (图5)。将PCR产物送往上海生工测
序,所得B401的16SrDNA基因序列碱基长度为1475bp。
B401的16SrDNA序列系统发育分析:用BLAST软件经同源性比较,结果表明,B401与已报道的犅犪犮犻犾
犾狌狊犪狋狉狅狆犺犪犲狌狊(JQ917920.1),犅犪犮犻犾犾狌狊狋犲狇狌犻犾犲狀狊犻狊 (JF411288.1),犅犪犮犻犾犾狌狊狊狌犫狋犻犾犻狊 (AB542912.1),犅犪犮犻犾犾狌狊
狆狌犿犻犾狌狊(EU379272.1)和犅犪犮犻犾犾狌狊犪狋狉狅狆犺犪犲狌狊(HF545325.1)等多株芽孢杆菌属的种相似性在99%以上。将相似序
列用Clustal1.8软件进行多重序列比较后,再用 Mega4.0软件邻接法构建系统发育树,B401与犅.犪狋狉狅狆犺犪犲狌狊同
源性最近(图6),再结合菌体形态,生理生化特征将B401确定为芽孢杆菌属的萎缩芽孢杆菌(犅犪犮犻犾犾狌狊犪狋狉狅狆犺犪犲狌狊)。
682 ACTAPRATACULTURAESINICA(2014) Vol.23,No.3
图6 犅401的16犛狉犇犖犃系统发育树
犉犻犵.6 16犛狉犇犖犃狆犺狔犾狅犵犲狀犲狋犻犮狋狉犲犲狅犳犅401
 
3 结论与讨论
李振东等[29]分离得到的以色氨酸为合成IAA
途径的内生菌Z5在外源色氨酸诱导时分泌IAA的
浓度为68.62mg/L,是不加色氨酸产IAA浓度的
13.4倍,B401无外源色氨酸诱导时分泌IAA的浓
度为2.60mg/L,外源色氨酸诱导分泌IAA的浓度
为3.42mg/L,二者对比较为明显;说明B401能够
产IAA,且以色氨酸为前体物合成IAA的途径是
B401合成IAA多种途径[36]的其中一条。Forchet
ti等[21]和Zhang等[37]认为生物菌肥应针对于具有固氮和分泌IAA能力的植物内生菌进行开发,而本研究结果
表明,B401能够在阿须贝培养基上生长,且能使无氮培养液变浑浊,连续培养之后,此结果差异不显著,说明B
401不仅具有分泌IAA的能力还具有固氮的能力,证明B401对植物具有促生作用,但对其固氮酶活性和对盆栽
或大田作物的促生作用还需进一步研究。
近年来,学者对于拮抗菌的抑菌机制进行了深入的研究,明确了拮抗菌可以通过分泌几丁质酶、β葡聚糖酶
和胞外蛋白酶等酶类物质及以抗菌肽为主的多肽物质来抑制病原菌的生长[30]。甘肃马铃薯产业是农民较为重
要的经济产业支柱,但据报道,甘肃近年来的马铃薯发病严重,烂薯率较高,其中尤以检疫病害马铃薯坏疽病最为
严重[32]。本试验研究表明,B401对马铃薯坏疽病菌、炭疽病和褐腐病具有较好的抑制作用,抑制率分别达
74.45%,70.05%和71.97%,且能使以上病原菌的菌丝断裂、扭曲和变形,并使病原菌的细胞壁崩解,但不清楚
是其分泌物中的哪一种抑菌物质在起作用,还需要进一步研究其抑菌机理。经测定,B401的室内拮抗能力较好
且其10代稳定性良好。由于马铃薯块茎贮藏期长,于贮藏库中不易进行化学防治,而B401在贮藏期对马铃薯
块茎进行喷雾处理后,其可以定殖在马铃薯块茎表面,且在贮藏期的防效能够达到52.67%,具有不污染环境和
不造成农药残留,还能较好地防治马铃薯贮藏期的主要病害,克服了化学防治的缺点。但对B401的发酵工艺的
优化以及在大田中使用的稳定性和防治效果等还需要进一步研究。
高寒草地禾草内生细菌B401为G+,其芽孢中生,菌体大小为2.8~6.0μm×0.8~1.4μm。结合生理生
化特征及16SrDNA序列分析将其鉴定为犅.犪狋狉狅狆犺犪犲狌狊。B401能够产生IAA,具有固氮能力,无溶磷能力,且
抑菌谱较广,说明该菌株具有防病促生的作用,与何红等[38]认为植物内生菌具有植物保护和促生的生物学作用
观点一致,因此B401不仅能用于生物农药的开发,还能用于微生物肥料的研发,应用前景广阔。
参考文献:
[1] 王震,郭爱玲,冯莉.青枯病生物防治的研究进展[J].中国生物防治,2007,23(增刊):8286.
[2] 游春平,肖爱萍,郑小波,等.产后果实病害生物防治的研究进展[J].植物保护学报,2005,32(2):214219.
[3] 胡健,蒋勤军,韩烈保,等.草坪草病原菌的抗药性现状及研究进展[J].草业学报,2009,18(2):194203.
[4] LodewyckxC,MergeayM,VangronsveldJ,犲狋犪犾.Isolation,characterization,andidentificationofbacteriaassociatedwith
thezinchyperaccumulator犜犺犾犪狊狆犻犮犪犲狉狌犾犲狊犮犲狀狊subsp.Calaminaria[J].InternationalJournalofPhytoremediation,2002,4:
101115.
[5] GuoB,WangY,SunX,犲狋犪犾.Bioactivenaturalproductsfromendophytes:Areview[J].AppliedBiochemistryandMicrobi
ology,2008,44(2):136142.
[6] 黄东益,黄小龙.旗草内生真菌与旗草抗病性研究[J].草业学报,2009,18(2):3945.
[7] DiasACF,CostaFEC,AndreoteFD,犲狋犪犾.Isolationofmicropropagatedstrawberryendophyticbacteriaandassessmentof
theirpotentialforplantgrowthpromotion[J].WorldJournalofMicrobiologyandBiotechnology,2009,25:189195.
[8] HouXJ,LiZN,HanDY,犲狋犪犾.Presenceofindigenousendophyticbacteriainjujubeseedlingsgerminatedfromseedsin
vitro[J].FrontiersofAgricultureinChina,2010,4(4):443448.
782第23卷第3期 草业学报2014年
[9] SgroyV,CassnF,MasciareliO,犲狋犪犾.Isolationandcharacterizationofendophyticplantgrowthpromoting(PGPB)or
stresshomeostasisregulating(PSHB)bacteriaassociatedtothehalophyteProsopisstrombulifera[J].AppliedBiochemistry
andMicrobiology,2009,85:371381.
[10] GovindarajanM,KwonSW,WeonHY.Isolation,molecularcharacterizationandgrowthpromotingactivitiesofendophytic
sugarcanediazotroph犓犾犲犫狊犻犲犾犾犪sp.GR9[J].WorldJournalofMicrobiologyandBiotechnology,2007,23:9971006.
[11] StoltzfusJR,SoR,MalarvithiPP,犲狋犪犾.Isolationofendophyticbacteriafromriceandassessmentoftheirpotentialfor
supplyingricewithbiologicalyfixednitrogen[J].PlantandSoil,1997,194:2536.
[12] OliveiraALM,UrquiagaS,DbereinerJ,犲狋犪犾.TheeffectofinoculatingendophyticN2fixingbacteriaonmicropropagated
sugarcaneplants[J].PlantandSoil,2002,242:205215.
[13] 孟宪法,隆小华,康健,等.菊芋内生固氮菌分离、鉴定及特性研究[J].草业学报,2011,20(6):157163.
[14] 蒋国彪,马沁沁,方志轩,等.一株高效溶磷小麦内生菌的筛选与鉴定[J].四川师范大学学报(自然科学版),2012,(1):
122126.
[15] 王辰月,陈秀蓉,杨成德,等.线叶嵩草内生细菌的鉴定及溶磷效果的初步研究[J].甘肃农业大学学报,2011,46(3):99
103.
[16] 刘佳莉,方芳,史煦涵,等.2株盐碱地燕麦根际促生菌的筛选及其促生作用研究[J].草业学报,2013,22(2):132139.
[17] 张英,朱颖,姚拓,等.分离自牧草根际四株促生菌株 (PGPR)互作效应研究[J].草业学报,2013,22(1):2937.
[18] ChoKM,SuhongY,MiLS,犲狋犪犾.Endophyticbacterialcommunitiesinginsengandtheirantifungalactivityagainstpatho
gens[J].MicrobialEcology,2007,54:341351.
[19] LiCH,ZhaoM W,TangC M,犲狋犪犾.Populationdynamicsandidentificationofendophyticbacteriaantagonistictoward
plantpathogenicfungiincottonroot[J].MicrobialEcology,2010,59:344356.
[20] IslamSMA,MathRK,KimJM,犲狋犪犾.Effectofplantageonendophyticbacterialdiversityofbaloonflower(犘犾犪狋狔犮狅犱狅狀
犵狉犪狀犱犻犳犾狅狉狌犿)rootandtheirantimicrobialactivities[J].CurrentMicrobiology,2010,61:346356.
[21] ForchettiG,MasciareliO,IzaguirreM,犲狋犪犾.Endophyticbacteriaimproveseedlinggrowthofsunflowerunderwater
stress,producesalicylicacid,andinhibitgrowthofpathogenicfungi[J].CurrentMicrobiology,2010,61:485493.
[22] RameshR,JoshiAA,GhanekarMP.Pseudomonads,majorantagonisticendophyticbacteriatosuppressbacterialwilt
pathogen,犚犪犾狊狋狅狀犻犪狊狅犾犪狀犪犮犲犪狉狌犿intheeggplant(犛狅犾犪狀狌犿犿犲犾狅狀犵犲狀犪L.)[J].WorldJournalofMicrobiologyandBiotech
nology,2009,25:4755.
[23] 李正辉,向晶晶,陈婧鸿,等.小麦赤霉病拮抗菌的分离与鉴定[J].麦类作物学报,2007,27(1):149152.
[24] 史应武,娄恺,李春,等.甜菜褐斑病内生拮抗菌的筛选、鉴定及其防效测定[J].植物病理学报,2009,39(2):221224.
[25] 农倩,陈雪凤,黎起秦,等.水稻内生细菌B196的鉴定及其对水稻纹枯病的防治作用[J].中国生物防治学报,2011,
27(1):99103.
[26] 黎起秦,罗宽,林纬,等.番茄青枯病内生拮抗细菌的筛选[J].植物病理学报,2003,33(4):364367.
[27] 王芳,纪明山,谷祖敏,等.苦参内生枯草芽孢杆菌B36抗菌物质对番茄叶霉病菌的作用机制[J].中国生物防治,2009,
25(3):250254.
[28] 汪远,詹儒林,何红,等.红树内生细菌菌株Kc38的抗菌物质及对采后芒果炭疽病的防效[J].中国生物防治学报,2012,
27(1):8287.
[29] 李振东,陈秀蓉,满百膺,等.珠芽蓼内生菌Z5产IAA和抑菌能力测定及其鉴定[J].草业学报,2010,19(2):6168.
[30] 刘雪,穆常青,蒋细良,等.枯草芽孢杆菌代谢物质的研究进展及其在植病生防中的应用[J].中国生物防治,2006,22(增
刊):179184.
[31] 吴希,张双全.抗菌肽对细菌杀伤作用的分子机制[J].生物化学与生物物理进展,2005,32(12):11091113.
[32] 姜红霞,杨成德,陈秀蓉,等.甘肃省马铃薯坏疽病鉴定及其病原生物学特性研究[J].草业学报,2013,22(2):123131.
[33] 方中达.植病研究方法(第三版)[M].北京:中国农业出版社,1997.
[34] 布坎南RE,吉本斯NE.伯杰细菌鉴定手册(第八版)[M].北京:科学出版社,1981.
[35] 东秀珠,蔡妙英.常见细菌系统鉴定手册[M].北京:科学出版社,2001.
[36] 李法峰,平淑珍,苏宝林,等.粪产碱菌的Tn5转座诱变及吲哚乙酸生物合成特性的研究[J].微生物学报,2000,40(5):
882 ACTAPRATACULTURAESINICA(2014) Vol.23,No.3
551555.
[37] ZhangGX,PengGX,WangET,犲狋犪犾.Diverseendophyticnitrogenfixingbacteriaisolatedfromwildrice犗狉狔狕犪狉狌犳犻狆狅犵狅狀
anddescriptionof犘犺狔狋狅犫犪犮狋犲狉犱犻犪狕狅狋狉狅狆犺犻犮狌狊gen.nov.sp.nov.[J].ArchivesofMicrobiology,2008,189:431439
[38] 何红,邱思鑫,胡方平,等.植物内生细菌生物学作用研究进展[J].微生物学杂志,2004,24(3):4045.
犐犱犲狀狋犻犳犻犮犪狋犻狅狀犪狀犱犲狏犪犾狌犪狋犻狅狀狅犳犫犻狅犾狅犵犻犮犪犾犮狅狀狋狉狅犾狆狅狋犲狀狋犻犪犾狅犳犅401
犲狀犱狅狆犺狔狋犻犮犫犪犮狋犲狉犻犪犻狀犵狉犪狊狊犲狊狅狀犪犾狆犻狀犲犵狉犪狊狊犾犪狀犱狊
CHANGTao,WANGHanqi,YANGChengde,WANGYing,YANGXiaoli,
XUELi,CHENXiurong,XUChanglin
(KeyLaboratoryofGrasslandEcosystem,GansuAgriculturalUniversity,MinistryofEducation,
ColegeofprataculturalScience,GansuAgriculturalUniversity,PrataculturalEngineering
LaboratoryofGansuProvince;SinoU.S.CenterforGrazingland
EcosystemSustainability,Lanzhou730070,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:TostudythebiologicalcontrolpotentialofB401endophyticbacteriaingrassesonalpinegrasslands,
thedeterminationofbacteriostaticabilitywascarriedoutbydualcultureagainstplantpathogenicfungi.B401
inhibitedthegrowthof犘犺狅犿犪犳狅狏犲犪狋犪,犛狋狔狊犪狀狌狊狊狋犲犿狅狀犻狋犻狊,犆狅犾犾犲狋狅狋狉犻犮犺狌犿犮狅犮犮狅犱犲狊,犉狌狊犪狉犻狌犿犪狏犲狀犪犮犲狌犿,
犉狌狊犪狉犻狌犿狅狓狔狊狆狅狉狌犿,犃犾狋犲狉狀犪狉犻犪狊狅犾犪狀犻,犅犻狆狅犾犪狉犻狊狊狅狉狅犽犻狀犻犪狀犪and犉狌狊犪狉犻狌犿狊狅犾犪狀犻by74.45%,71.57%,
70.05%,48.01%,56.01%,60.25%,64.65%and45.01%respectively.ThecontrolefficacyofB401against
potatogangrenewas52.67%whena10timesdilutionoffermentationbrothwassprayedonpotatotubersdur
ingthestorageperiod.TheconcentrationofIAAsecretedbyB401inKing’smediumcontaining100mg/L
tryptophanwas3.42mg/L,andtheconcentrationinthemediumwithouttryptophanwas2.60mg/L.B401
possessedthecapacityfornitrogenfixationbutitdidnothavethecapacityforphosphatesolubilization.Based
onmorphologyandphysiologicalandbiochemicalcharacters,combinedwith16SrDNAgenesequenceanalysis,
B401wasindentifiedas犅犪犮犻犾犾狌狊犪狋狉狅狆犺犪犲狌狊.
犓犲狔狑狅狉犱狊:endophyticbacteriaingrasses;inhibitingspectrum;biologyfunction;identification
982第23卷第3期 草业学报2014年