全 文 :园艺学报,2015,42 (4):791–798.
Acta Horticulturae Sinica
doi:10.16420/j.issn.0513-353x.2014-0975;http://www. ahs. ac. cn 791
收稿日期:2014–12–18;修回日期:2015–03–24
基金项目:中央高校基本科研业务费专项基金项目(DL13CA13);国家基础科学人才培养基金项目(J1210053)
* 通信作者 Author for correspondence(E-mail:lanxingguo@126.com)
羽衣甘蓝 ARC1 与 Exo70A1 蛋白相互作用结构
域的分析与鉴定
曹明明,杨 佳,李晓屿,李玉花,蓝兴国*
(东北林业大学生命科学学院,哈尔滨 150040)
摘 要:为阐明羽衣甘蓝自交不亲和信号传递因子 ARC1 与下游底物 Exo70A1 相互作用的结构域,
利用酵母双杂交系统进行检测与分析。将羽衣甘蓝 BoARC1、BoARC1-N 端(1 ~ 279 aa,含有 UND 结构
域)及 BoARC1-C 端(280 ~ 663 aa,含有 U-box 结构域和 Arm repeat 结构域)的序列分别构建到 pGBKT7
载体中,获得 BD-ARC1、BD-ARC1-N 和 BD-ARC1-C 重组质粒。将羽衣甘蓝 BoExo70A1、BoExo70A1-Δ1
(1 ~ 85 aa)、Exo70A1-Δ2(1 ~ 270 aa)及 Exo70A1-Δ3(271 ~ 638 aa,含有 Exo70 结构域)的序列分别
构建到 pGADT7 载体中,获得 AD-Exo70A1、AD-Exo70A1-Δ1、AD-Exo70A1-Δ2 和 AD-Exo70A1-Δ3 重
组质粒。将获得的重组质粒分别共转化到酵母 Y187 菌株中,在双缺陷(-Leu-Trp)酵母培养基中培养与
生长。β-gal 显色检测结果表明,共转 BD-ARC1-N/BoExo70A1-Δ1 或 BD-ARC1-N/BoExo70A1-Δ2 的酵母
在滤纸上显示蓝色,这说明 BoARC1 的 N 端与 BoExo70A1 的 N 端介导了两者的相互作用。
关键词:羽衣甘蓝;自交不亲和性;ARC1;Exo70A1;结构域
中图分类号:S 681.9 文献标志码:A 文章编号:0513-353X(2015)04-0791-08
Analysis and Characterization of Interaction Domain Between ARC1 and
Exo70A1 from Ornamental Kale(Brassica oleracea var. acephala)
CAO Ming-ming,YANG Jia,LI Xiao-yu,LI Yu-hua,and LAN Xing-guo*
(College of Life Sciences,Northeast Forestry University,Harbin 150040,China)
Abstract:The yeast-two hybrid system was used to detect the interaction between ARC1 and
Exo70A1 from ornamental kale(Brassica oleracea var. acephala). The nucleotide sequences of full-length
BoARC1,N terminal of BoARC1(1–279 aa,UND domain),C terminal of BoARC1(280–663 aa,
U-box domain and Arm repeat domain)were constructed into the vector pGBKT7,respectively. Thus,the
plasmids BD-ARC1,BD-ARC1-N or BD-ARC1-C were obtained and confirmed. On the other hand,the
nucleotide sequences of full-length BoExo70A1,BoExo70A1-Δ1(1–85 aa),Exo70A1-Δ2(1–270 aa),
Exo70A1-Δ3(271–638 aa,Exo70 domain)were constructed into the vector pGADT7,respectively. And
the plasmids AD-Exo70A1,AD-Exo70A1-Δ1,AD-Exo70A1-Δ2 or AD-Exo70A1-Δ3 were also obtained
and confirmed. These plasmids were used to co-transform yeast strain Y187,which were then plated onto
SD/-Leu-Trp(synthetic dropout glucose agar plates lacking leucine and tryptophan). The β-galactosidase
Cao Ming-ming,Yang Jia,Li Xiao-yu,Li Yu-hua,Lan Xing-guo.
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assays showed that yeast cells co-transformed with the BoARC1-N/AD-Exo70A1-Δ1 plasmids or
BoARC1-N/BD-Exo70A1-Δ2 plasmids turned blue. These results indicated that N terminal of BoARC1
and BoExo70A1 mediated interaction between BoARC1 and BoExo70A1.
Key words:Brassica oleracea var. acephala;self-incompatibility;ARC1;Exo70A1;domain
自交不亲和性(Self-incompatibility,SI)是指正常可育的雌雄同株植物自交授粉之后,自我花
粉(花粉管)与雌蕊细胞(柱头、花柱或胚珠细胞)之间进行信号识别和传递,使显花植物能够识
别自我和非我的花粉(花粉管),导致自我花粉(花粉管)不能够正常萌发和生长的过程,最终导致
植株不能产生种子(de Nettancourt,2001;Franklin-Tong,2008)。
芸薹属自交不亲和植物是研究显花植物 SI 的模式植物(Zhang et al.,2009;Iwano & Takayama,
2012)。SI 的识别和反应的特异性是 S 位点富含半胱氨酸蛋白 SCR(S-locus cysteine-rich protein)/SP11
(S-locus protein 11)配体和 S 位点受体激酶 SRK(S-receptor kinase)受体特异性相互作用引起的
(Kachroo et al.,2001;Takayama et al.,2001)。SCR/SP11 配体是一个低分子量并富含半胱氨酸的
分泌蛋白,决定花粉的 SI(Schopfer et al.,1999;Takayama et al.,2000)。SRK 受体具有 3 个结构
域:胞外域、跨膜结构域和胞内激酶域,控制柱头乳突细胞的 SI(Goring et al.,1992;Takasaki et al.,
2000)。当花粉落到柱头表面之后,花粉中的 SI 信号分子 SCR/SP11 转运到柱头乳突细胞的表面,
被受体 SRK 的胞外域识别,并引起 SRK 胞内域的磷酸化,通过下游的信号传递来完成 SI 反应
(Cabrillac et al.,2001;Ivanov et al.,2010;Indriolo & Goring,2014)。
目前,ARC1(Arm repeat containing 1)和 M 位点蛋白激酶(M locus protein kinase,MLPK)
被认为是 SRK 下游传递因子(Indriolo & Goring,2014)。MLPK 是一个只含有胞内丝氨酸/苏氨酸
蛋白激酶结构域的蛋白,属于类受体胞质蛋白激酶(Receptor-like cytoplasmic kinase,RLCK)家族
中的成员(Murase et al.,2004;Kakita et al.,2007)。芜菁(Brassica rapa)隐性突变体(mlpk/mlpk)
具有彻底打破柱头 SI 的现象(Murase et al.,2004)。MLPK 能够与 SRK 相互作用,并且 SRK 能够
磷酸化 MLPK(Kakita et al.,2007)。因此认为,类受体胞质蛋白激酶 MLPK 与受体蛋白激酶 SRK
形成 SI 信号复合体。ARC1 是含有 U-box 结构域和 ARM 结构域一类的蛋白质,被认为是 SI 信号复
合体下游的传递因子(Stone et al.,2003)。ARC1 与 SRK 激酶域相互作用,并且能够被 SRK 激酶
域磷酸化(Gu et al.,1998;蓝兴国 等,2011)。ARC1 具有依赖 U-box 功能域的 E3 连接酶活性,
而且在不亲和授粉的柱头蛋白质泛素化水平有特异性地增加(Stone et al.,2003)。在转基因试验中,
油菜(Brassica napus)BnARC1 反义基因的植株有部分打破 SI 的现象(Stone et al.,1999;Indriolo et
al.,2012),而且在拟南芥植株中转入油菜 BnARC1 或琴叶拟南芥(Arabidopsis lyrata)AlARC1 能够
恢复 SI(Indriolo et al.,2014)。
Exo70A1是以ARC1为诱饵筛选油菜柱头 cDNA文库,得到一个与ARC1相互作用的蛋白(Samuel
et al.,2009)。在体外泛素化研究中,Exo70A1 能够被 ARC1 泛素化,这说明 Exo70A1 可能是 SI 信号
传递过程中被降解的底物(Samuel et al.,2009)。过量表达 Exo70A1 的植株具有部分打破 SI 的现象;
并且 Exo70A1 功能丧失的植株干扰了亲和花粉管的生长,这表明 Exo70A1 在 SI 反应及促进亲和花粉
的水和、萌发和花粉管延伸的过程中起到重要作用(Samuel et al.,2009;Safavian & Goring,2013)。
作者已从羽衣甘蓝自交不亲和系(S13-bS13-b)中分离出了 BoARC1 与 BoExo70A1 基因,并进行
了序列与表达分析(蓝兴国 等,2011;杨佳 等,2012)。在本研究中,拟利用酵母双杂交系统分析
BoARC1 与 BoExo70A1 相互作用的结构域,为进一步探讨二者在 SI 上的作用提供更多的线索。
曹明明,杨 佳,李晓屿,李玉花,蓝兴国.
羽衣甘蓝 ARC1 与 Exo70A1 蛋白相互作用结构域的分析与鉴定.
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1 材料与方法
1.1 材料
试验于 2012 年 9 月至 2013 年 12 月在东北林业大学生命科学学院发育生物学实验室完成。羽
衣甘蓝自交不亲和系(S13-bS13-b)由东北林业大学花卉生物工程研究所提供。
KOD-plus Taq DNA 聚合酶、Blend Taq DNA 聚合酶、dNTP、T4 DNA 连接酶、rATP 购自东洋
纺(Toyobo)生物科技有限公司;DL2000 DNA Marker、EcoRⅠ、NdeⅠ、XhoⅠ限制性内切酶购于
大连宝生物(TaKaRa)公司;Top10 感受态细胞、普通质粒小提试剂盒购于天根生化科技有限公司。
载体:pGBKT7、pGADT7、pGBKT7-53、pGBKT7-Lam、pGADT7-T;Y187 酵母菌株;YPD
培养基、YPD agar 培养基、Minimal SD agar base、-Leu/-Trp DO supplement、鲑精 DNA 购于 Clontech
公司;β–巯基乙醇(β-ME)、PEG3350、二甲基亚砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)、LiAC 购于
Sigma 公司;X-β-gal 购于 Amresco 公司;硫酸腺(adenine hemisulfate)购于 Fluka 公司。
1.2 BoARC1 与 BoExo70A1 蛋白结构域的分析
BoARC1 与 BoExo70A1 的氨基酸序列递交到 NCBI(http://www. ncbi. nlm. nih. gov/)保守结
构域数据库 CDD(Conserved Domain Database)进行检索和分析(Marchler-Bauer et al.,2011)。
1.3 BoARC1 酵母表达质粒的构建
以 pGEM-BoARC1 质粒为模板(蓝兴国 等,2011),以 BD-ARC1-F1/BD-ARC1-R1、BD-ARC1-F1/
BD-ARC1-R279、BD-ARC1-F280/BD-ARC1-R1 为引物对(表 1),分别扩增编码 BoARC1、BoARC1-N
端(1 ~ 279 aa,含有 UND 结构域)及 BoARC1-C 端(280 ~ 663 aa,含有 U-box 结构域和 ARM 结
构域)的编码区序列。PCR 反应采用 KOD-plus Taq DNA 聚合酶,扩增条件为 94 ℃变性 15 s,55 ℃
退火 30 s,68 ℃延伸 1 ~ 2 min,共 30 个循环后,72 ℃延伸 7 min。PCR 产物回收、NdeⅠ和 EcoRⅠ
双酶切后,构建到 pGBKT7 载体中。连接产物转化大肠杆菌 Top10。质粒经 PCR 和双酶切鉴定正确
后,进行 DNA 序列分析,获得 BD-ARC1、BD-ARC1-N 和 BD-ARC1-C 重组质粒。
表 1 羽衣甘蓝 BoARC1 和 BoExo70A1 克隆所用引物
Table 1 Primers used to clone analysis of BoARC1 and BoExo70A1 from ornamental kale
引物名称
Primer name
引物序列(5′–3′)
Primer sequences
限制性内切酶
Restriction enzymes
重组质粒
Plasmids
BD-ARC1-F1 GGAATTCCATATGGCCACTGATTCAGCAATGTTC NdeⅠ
BD-ARC1-R1 CAGAATTCTTATCTCTGTGTTTTCTGGTCGC EcoRⅠ
BD-ARC1
BD-ARC1-F1 GGAATTCCATATGGCCACTGATTCAGCAATGTTC NdeⅠ
BD-ARC1-R279 CAGAATTCTTAAAGCGTTGTAAACGTGTTC EcoRⅠ
BD-ARC1-N
BD-ARC1-F280 GGAATTCCATATGCCAAAGGATTTCATCTGC NdeⅠ
BD-ARC1-R1 CAGAATTCTTATCTCTGTGTTTTCTGGTCGC EcoRⅠ
BD-ARC1-C
AD-Exo70-F1 GGAATTCCATATGGCCGTCGATAGCGGAATG NdeⅠ
AD-Exo70-R1 GCGCTCGAGTTACCGTCGTGGTTCATTCATA XhoⅠ
AD-Exo70A1
AD-Exo70-F1 GGAATTCCATATGGCCGTCGATAGCGGAATG NdeⅠ
AD-Exo70-R85 GCGCTCGAGTTACTGACGGAGGAGATCAAACTGA XhoⅠ
AD-Exo70A1-Δ1
AD-Exo70-F1 GGAATTCCATATGGCCGTCGATAGCGGAATG NdeⅠ
AD-Exo70-R270 GCGCTCGAGTTACCAATTTCCAATTTTGGCC XhoⅠ
AD-Exo70A1-Δ2
AD-Exo70-F271 GGAATTCCATATGATCCATTTCATGCGCATTGC NdeⅠ AD-Exo70A1-Δ3
AD-Exo70-R1 GCGCTCGAGTTACCGTCGTGGTTCATTCATA XhoⅠ
Cao Ming-ming,Yang Jia,Li Xiao-yu,Li Yu-hua,Lan Xing-guo.
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1.4 BoExo70A1 酵母表达质粒的构建
以 pGEM-BoExo70A1 质粒为模板(杨佳 等,2012),以 AD-Exo70-F1/AD-Exo70-R1、AD-Exo70-
F1/AD-Exo70-R85、AD-Exo70-F1/AD-Exo70-R270、AD-Exo70-F271/AD-Exo70-R1 为引物(表 1),分
别扩增编码 BoExo70A1、BoExo70A1-Δ1(1 ~ 85 aa)、Exo70A1-Δ2(1 ~ 270 aa)及 Exo70A1-Δ3(271 ~
638 aa)的编码区序列。PCR 反应采用 KOD-plus Taq DNA 聚合酶,扩增条件为 94 ℃变性 15 s,55 ℃
退火 30 s,68 ℃延伸 1 ~ 2 min,30 个循环;72 ℃延伸 7 min。PCR 产物回收、NdeⅠ和 XhoⅠ双酶切
后构建到 pGADT7 载体中。连接产物转化大肠杆菌 Top10。质粒经 PCR 和双酶切鉴定正确后,进行
DNA 序列分析,获得 AD-Exo70A1、AD-Exo70A1-Δ1、AD-Exo70A1-Δ2 和 AD-Exo70A1-Δ3 重组质粒。
1.5 酵母感受态的制备及质粒共转
参考 Clontech 公司的 GAL4 Two-Hybrid System 3 系统的说明书。主要的步骤如下:在 YPDA
平板上划线 Y187 酵母菌种,30 ℃培养 3 ~ 4 d,直至出现克隆。挑取直径约 2 ~ 3 mm 的酵母克隆接
种到 1 mL YPDA 液体培养基中,剧烈振荡使细胞凝块均匀分散。将细胞转移到含有 50 mL YPDA
液体培养基的锥形瓶中,30 ℃,250 r · min-1,振荡孵育 16 ~ 18 h,直到稳定期(OD600 > 1.5)。将
适当培养物转移到含有 300 mL YPDA 液体培养基的椎形瓶中,使其 OD600 到达 0.2 ~ 0.3。30 ℃,
230 r · min-1,振荡孵育 3 h,使其 OD600 达到 0.4 ~ 0.6。将细胞转移到数个 50 mL 离心管中,室温离
心,1 000 × g,离心 5 min。弃去上清液,用消毒 H2O 重悬、清洗细胞,并收集细胞至一个管中。
室温,1000 × g,离心 5 min,弃上清液。加入 1.5 mL 新鲜配置的无菌的 1× TE/1× LiAc 重悬细胞。
在每个 1.5 mL 管中,加入各 0.1 μg 需要转染的质粒、0.1 mg 鲑精 DNA,分装 100 µL 新鲜配制的酵
母感受态细胞,轻柔混匀。在每个管中,加入 600 μL 的 1× PEG/1× LiAc,高速震荡混匀。30 ℃,
200 r · min-1,振荡孵育 30 min。在每个管中,加入 70 μL 的 DMSO,温和颠倒混匀,不振荡。42 ℃
热激 15 min。置于冰上 1 ~ 2 min。室温,14 000 r · min-1,离心 5 s,移去上清液,加入 100 μL 的 1×
TE 重悬细胞。涂布于 SD/glucose(-Leu-Trp)平板上,30 ℃倒置平板培养 3 ~ 4 d。
1.6 滤纸转移法检测 β–半乳糖苷酶的分泌
待酵母菌落长到直径 2 ~ 3 mm 大小时,取大小合适无菌的 Whatman 滤纸覆盖在酵母板上。待
滤纸被琼脂板上的水分基本浸湿后,揭下滤纸在液氮中速冻 13 s。将新配制 Z-buffer/X-β-gal 溶液滴
在另一无菌的 Whatman 滤纸上,并完全浸湿滤纸。将附着有酵母克隆的滤纸(有细胞的一面朝上)
放在浸有 Z-buffer/X-β-Gal 的滤纸上,注意不要产生气泡。在室温孵育 2 h 内,显蓝色为阳性结果。
2 结果与分析
2.1 BoARC1 结构域分析及酵母表达质粒的构建
BoARC1 是一个含有 663 氨基酸的蛋白。通过结构域(图 1)分析发现,BoARC1 含有 N 端 UND
结构域(1 ~ 279 aa)、中间 U-box 结构域(280 ~ 347 aa)和 C 端 ARM 结构域(380 ~ 488 aa)。
图 1 羽衣甘蓝 BoARC1 结构域示意图
Fig. 1 Domain structure diagram of BoARC1
曹明明,杨 佳,李晓屿,李玉花,蓝兴国.
羽衣甘蓝 ARC1 与 Exo70A1 蛋白相互作用结构域的分析与鉴定.
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图 2 羽衣甘蓝 BoARC1(a)、BoARC1-N(b)与
BoARC1-C(c)的 PCR 扩增产物
Fig. 2 PCR products of BoARC1(a),BoARC1-N(b)
and BoARC1-C(c)
图 4 羽衣甘蓝 BoExo70A1(a)、BoExo70A1-Δ1(b)、Exo70A1-Δ2
(c)与 Exo70A1-Δ3(d)的 PCR 扩增产物
Fig. 4 PCR products of BoExo70A1(a),BoExo70A1-Δ1(b),
Exo70A1-Δ2(c)and Exo70A1-Δ3(d)
为了进一步分析 BoARC1 的结构域功能,
分别以 BD-ARC1-F1/BD-ARC1-R1、BD-ARC1-
F1/BD-ARC1-R279、BD-ARC1-F280/BD-ARC1-R1
为引物对,扩增 BoARC1 全长、BoARC1-N 端
(1 ~ 279 aa)及 BoARC1-C 端(280 ~ 663 aa)
的编码区序列,大小分别为 1 989、837 和 1 152
bp(图 2)。将获得的 PCR 产物克隆到酵母质粒
pGBKT7,分别获得 BD-ARC1、BD-ARC1-N 和
BD-ARC1-C 重组质粒。
2.2 BoExo70A1 结构域分析及酵母表达质粒的构建
羽衣甘蓝 BoExo70A1 是一个含有 638 氨基酸的蛋白。通过结构域分析发现,BoExo70A1 蛋白
的 C 末端(271 ~ 627 aa)含有一个典型的 Exo70 结构域(图 3)。
图 3 羽衣甘蓝 BoExo70A1 结构域示意图
Fig. 3 Domain structure diagram of BoExo70A1
进一步分析 BoExo70A1 的结构域功能,分
别以 AD-Exo70-F1/AD-Exo70-R1、AD-Exo70-
F1/AD-Exo70-R85、AD-Exo70-F1/AD-Exo70-R270、
AD-Exo70-F271/AD-Exo70-R1 为引物对,扩增
编码 BoExo70A1、BoExo70A1-Δ1(1 ~ 85 aa)、
Exo70A1-Δ2(1 ~ 270 aa)及 Exo70A1-Δ3(271 ~
638 aa,含有 Exo70 结构域)的编码区序列,
大小为 1 914、265、810 和 1 104 bp(图 4)。
将获得的 PCR 产物,克隆到酵母质粒 pGADT7,分别获得 AD-Exo70A1、AD-Exo70A1-Δ1、
AD-Exo70A1-Δ2 和 AD-Exo70A1-Δ3 重组质粒。
2.3 BoARC1 与 BoExo70A1 相互作用结构域分析
为了分析 BoARC1 与 BoExo70A1 的相互作用,将获得的 BD-ARC1、BD-ARC1-N 和 BD-ARC1-C
质粒分别与 AD-Exo70A1、AD-Exo70A1-Δ1、AD-Exo70A1-Δ2 和 AD-Exo70A1-Δ3 质粒共转化到 Y187
酵母菌株。共转化的酵母在双缺陷(-Leu-Trp)培养基中培养和生长 3 ~ 4 d,通过-gal 显色进行检
验和分析。图 5 的结果表明,共转阳性对照质粒 pGBKT7-53/pGADT7-T 的酵母细胞,酵母在滤纸
上显示出蓝色;共转阴性对照质粒 pGBKT7-Lam/pGADT7-T 的酵母细胞没有变成蓝色。共转
BD-ARC1 或 BD-ARC1-C 与 BoExo70A1、BoExo70A1-Δ1、BoExo70A1-Δ2 和 BoExo70A1-Δ3 的酵
母在滤纸上没有显示蓝色。而共转 BD-ARC1-N/BoExo70A1-Δ1 或 BD-ARC1-N/BoExo70A1-Δ2 的酵
母在滤纸上显示出蓝色,其它与 BD-ARC1-N 的组合也没有显示出蓝色(图 5)。这说明 BoARC1 的
N 端与 BoExo70A1 的 N 端介导了两者的相互作用。
Cao Ming-ming,Yang Jia,Li Xiao-yu,Li Yu-hua,Lan Xing-guo.
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图 5 利用酵母双杂交检测 BoARC1 与 BoExo70A1 的相互作用
pGBKT7-53/pGADT7-T 和 pGBKT7-Lam/pGADT7-T 质粒共转到酵母细胞中,分别作为阳性和阴性对照。
Fig. 5 Interaction analysis between BoARC1 and BoExo70A1 in the yeast two-hybrid system
Combinations of pGBKT7-53/pGADT7-T and pGBKT7-Lam/pGADT7-T were the positive and
negative controls,respectively.
3 讨论
本研究中通过对羽衣甘蓝 BoARC1 的结构域进行分析,发现 BoARC1 主要含有 UND 结构域、
U-box 结构域和 ARM 结构域。这与油菜 BnARC1 和琴叶拟南芥 AlARC1 有相似的蛋白质结构域组
成(Gu et al.,1998;Stone et al.,2003;Indriolo et al.,2014)。ARC1 的 ARM 结构域特异地与 SRK
的激酶域结合,介导 SI 信号的传递(Gu et al.,1998;Stone et al.,2003)。U-box 结构域是一类具
有 E3 泛素连接酶活性的结构域(Hatakeyama & Nakayama,2003);并且在体外试验中表明,BnARC1
和 BoARC1 具有依赖 U-box 功能域的 E3 连接酶活性(Stone et al.,2003;蓝兴国 等,2013)。UND
结构域位于 BoARC1 的 N 端,被认为是与下游底物结合的区域。
Exo70A1 是植物 Exo70 蛋白家族的成员之一,参与调控细胞胞吐和囊泡转运,在导管发育、细
胞板形成、种皮粘液的形成及柱头—花粉间相互作用等方面具有重要的生物学作用(Synek et al.,
2006;Kulich et al.,2010;Samuel et al.,2009;Li et al.,2010,2013;Safavian & Goring,2013;Zárský
et al.,2013;Safavian et al.,2014)。在本试验中,通过结构域分析发现羽衣甘蓝 BoExo70A1 蛋白
曹明明,杨 佳,李晓屿,李玉花,蓝兴国.
羽衣甘蓝 ARC1 与 Exo70A1 蛋白相互作用结构域的分析与鉴定.
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的 C 末端(271 ~ 627 aa)含有一个典型的 Exo70 结构域(图 3)。在酵母中,Exo70 结构域能够与
Rho3 GTPase 发生相互作用,介导细胞的极性运输(Robinson et al.,1999)。BoExo70A1 蛋白的 N
末端(1 ~ 270 aa)并没有发现典型的结构域,但这部分结构可能参与蛋白质间相互作用。
在油菜 SI 信号转导研究中,以 BnARC1 的 UND 结构域为诱饵筛选油菜柱头 cDNA 文库,获得
与 BnARC1 相互作用的蛋白 BnExo70A1(BoExo70A1-Δ1,1 ~ 85 aa)(Samuel et al.,2009)。然而,
对 ARC1 与 Exo70A1 相互作用的结构域未进行全面分析。在本研究中,将羽衣甘蓝 BoARC1、
BoARC1-N 端及 BoARC1-C 端分别与 BoExo70A1、BoExo70A1-Δ1、Exo70A1-Δ2 及 Exo70A1-Δ3 进
行蛋白质相互作用的检测。BoARC1 的 N 端 UND 结构域能够与 BoExo70A1 的 N 端结构域
(BoExo70A1-Δ1、BoExo70A1-Δ2)发生相互作用。这说明两者间的 N 端介导了相互作用,这个结
果与油菜中获得的 BnARC1 与 BnExo70A1 相互作用的结果一致。然而并没有检测到 BoARC1 的全
长与 BoExo70A1 的全长发生相互作用。在体外的泛素化试验及转基因试验已经证明了 BnExo70A1
是 BnARC1 的下游底物,并且参与了 SI 反应(Samuel et al.,2009)。这说明在酵母系统中 ARC1 与
Eo70A1 两者间可能存在阻碍两者相互作用的区域,可能受到其他因子的修饰调控。下一步的研究
主要是进一步分析 Exo70A1 与 ARC1 在植物体内的信号复合体及其相互作用的调控机制。
References
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