全 文 ：园 艺 学 报 2014，41（5）：825–832 http: // www. ahs. ac. cn
Acta Horticulturae Sinica E-mail: yuanyixuebao@126.com
收稿日期：2014–01–08；修回日期：2014–04–10
基金项目：国家林业局‘948’项目（2008-4-20）
* 通信作者 Author for correspondence（E-mail：caobanghua@126.com，fengdianqi@163.com）
利用沙冬青抗寒基因 AmEBP1转化杏的研究
牛庆霖 1，曹帮华 1,*，王玉山 2，刘 静 2，赵进红 2，罗 磊 2，黄艳艳 2，
冯殿齐 1,2,*
（1 山东农业大学农业生态与环境重点实验室，山东泰安 271018；2 泰安市泰山林业科学研究院，山东泰安 271000）
摘 要：利用花粉管导入法，将沙冬青抗寒基因 AmEBP1 转化到‘大果’杏幼胚中，在改良 WPM 培
养基上经卡那霉素筛选，PCR、Southern 检测，结果得到 5 个转基因阳性株系；组培苗抗寒试验结果表明，
相同低温（–4 和–8 ℃）条件下，转基因植株均比对照表现出较高的成活率；随着处理温度的降低，转
基因株系 REC 与 MDA 含量始终低于对照植株；转基因植株的低温半致死温度（LT50）比未转基因对照
低 2.13 ℃。试验结果表明导入的 AmEBP1 基因提高了‘大果’杏的抗寒性。
关键词：杏；花粉管导入；AmEBP1 基因；基因转化
中图分类号：S 662.2 文献标志码：A 文章编号：0513-353X（2014）05-0825-08

Molecular Identification and Cold-resistance Analysis of the AmEBP1
Transgenic Apricot Plants
NIU Qing-lin1，CAO Bang-hua1,*，WANG Yu-shan2，LIU Jing2，ZHAO Jin-hong2，LUO Lei2，HUANG
Yan-yan2，and FENG Dian-qi1,2,*
（1Key Laboratory of Shandong Agricultural Ecology and Environment，Shandong Agricultural University，Tai’an，
Shandong 271018，China；2Taishan Institute of Forestry Science，Tai’an，Shandong 271000，China）
Abstract：The AmEBP1 gene coming from Ammopiptanthus mongolicus，was transformed into the
immature embryo of apricot by pollen tube. Grew in the modified WPM media，five transgenic lines were
obtained based on the following selections including kanamycin resistance，PCR and Southern analyses.
Results of the cold resistance tests pointed out that in the low temperature treatments（–4 and–8 ℃），the
transgenic plants exhibited higher survival rates than the untransformed control plants. Under the lower
temperature cold treatment，the REC and MDA of transgenic plants was obviously lower than that of
untransformed control plants. The LT50 of transgenic lines was remarkable lower than that of the
untransformed control plants by 2.13 ℃. These results indicate that the imported AmEBP1 gene increased
the cold resistance of the Daguo apricot.
Key words：apricot；pollen tube；AmEBP1 gene；gene transformation

杏属（Armeniaca vulgaris Lam.）共有 10 个种，中国有 9 个种，13 个变种，2 000 余个品种和
类型（赵锋 等，2005）。‘大果’杏源产于山东省德州市，属于华北生态群品种，树势强健，树姿半
开张，不完全花比率低，成花容易，坐果率高，结果较早，果实品质优良。该品种早熟丰产，耐瘠

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薄，耐干旱，设施栽培成功率较高（王金政 等，2005），其栽培管理较其他品种简单，且用途极为
广泛，现已在山东省及黄河流域其它地区广泛种植，并成为该地区经济效益较高的杏树品种（魏敏，
2003）。杏在荒山绿化、退耕还林和果树种植调整中发挥着重要作用（陈学森 等，2001）。杏树开花
早，易遭早春晚霜危害，轻则造成减产，重者甚至绝收（孙仲序 等，2005）。据统计，2001 年山东
邹平因低温冻害，全县杏经济损失 8 000 万元；同年山东泰安‘大果’和‘凯特’杏受冻均在 90%
以上。因此解决杏树早春晚霜冻害具有重要的意义。
植物的抗寒性是其对低温寒冷环境的长期适应，由遗传变异和自然选择获得的一种能力
（Glerum，1985），是对低温长期适应的一种遗传特性。由于木本植物的多年生和木质化构造的特
性，对低温比草本植物有更高的抵抗能力，因此，从木本植物中应该更容易分离到有较强抗寒能力
的基因（Welling et al.，2002），这也是改良林果树种的一个重要方向。
植物 EBP1 与人体内 EBP1 的结构和功能相似性，是近年发现的一种新型蛋白质，被认为是重
要的转录因子和转录共调节因（Yoo et al.，2000）。EBP1 是增殖相关蛋白 2G4（PAZG4s）家族的
一员，真核细胞中 PZG4 蛋白高度保守（Zhang et al.，2003），参与多个信号传导通路，与细胞周期、
蛋白质的转录翻译相关，影响细胞的增殖和分化（Zhang et al.，2003；Horvath et al.，2006）。AmEBP1
是从沙冬青（Ammopiptanthus mongolicus Cheng f.）中克隆（Cao et al.，2009）的与低温胁迫相关的
基因，该基因是第 1 个被证实能提高转基因植物抗寒性的核糖体相关蛋白基因，通过促进核糖体的
合成以及冷诱导中转录因子和下游起保护作用的蛋白的翻译而起作用。所以 AmEBP1 既对低温信号
的转导过程有重要作用，也在植物对低温的长期适应中发挥重要作用。花粉管通道法转化外源基因，
操作简便，已在番茄、番木瓜、苹果、核桃等果树上取得成功（牛庆霖 等，2013）。本研究中将沙
冬青 AmEBP1 通过花粉管通道法导入‘大果’杏幼胚中，经抗性筛选及分子检测，在改良 WPM 培
养基上培养阳性植株，探讨转基因植株的抗寒性，为下一步抗寒杏新品种选育提供参考。
1 材料与方法
1.1 试验材料
将沙冬青 AmEBP1 完整的开放阅读框用 PCR 方法克隆出来，插入 PBS-T 克隆载体，PCR 方法
鉴定与 LacZ 编码方向一致的中间载体，用 XbaⅠ和 SalⅠ酶切，同时双酶切载体 pCAMBIA2300（中
国科学院遗传与发育生物学研究所惠赠），用 T4 DNA 连接酶，以 6︰1 浓度比，16 ℃链接 12 h，获
得表达载体 pCAMBIA2300-AmEBP1，冻融法转化到大肠杆菌 DH5α中，卡那霉素筛选阳性菌株，4 ℃
下保存备用。授粉试验于泰安市泰山林业科学研究院试验基地进行，采集‘凯特’杏花粉 4 ℃保存。


图 1 表达载体 pCAMBIA2300-AmEBP1的表达框示意图
Fig. 1 The map of expression cassette expression vector pCAMBIA2300-AmEBP1

1.2 花粉管导入外源 AmEBP1
采用碱裂解法提取目的 AmEBP1 菌液（Lu et al.，2001）。经纯化后的质粒 DNA 溶于 pH 7.6 的
TE 缓冲液中，A260/A280 比值在 1.9 左右。
5 期 牛庆霖等：利用沙冬青抗寒基因 AmEBP1 转化杏的研究 827

于 2012 年 4 月初‘大果’杏花大蕾期人工去除个别花蕾未膨大和未开放的花，对开放的花去雄
授‘凯特’杏花粉，3 h 后取 5 μL AmEBP1 DNA 溶液涂抹柱头 2 ~ 3 次（Tang et al.，2005）。以未转化
的花为对照。于盛花期后 30 d，取幼胚，用 70%酒精、0.1%升汞灭菌，无菌水冲洗 3 ~ 4 次，剥去种
皮，接种在改良 WPM 培养基（附加 Kan 50 mg · L-1 + 6-BA 0.8 mg · L-1）上培养，筛选出的芽团用
作分子检测。阳性材料接种到改良培养基（WPM + IBA 0.2 mg · L-1）上生根成苗培养用于抗寒试验。
1.3 转基因植株的 PCR检测
按 CTAB 法提取转化植株和对照植株基因组 DNA，AmEBP1 质粒 DNA 作为阳性对照：正向引物：
5-ATGTCGGATGATGAAAGGGAGGAGAAGGA-3；反向引物：5-TAGGGAAGGGAGGTCAATCTTG
AGGTGT-3。反应体系：反应总体积为 25 μL，包括 2.5 μL 10× Buffer、0.4 mmol · L-1 dNTP、2 mmol · L-1
MgCl2，1 U Taq DNA polymerase、1 μL 正向引物、1 μL 反向引物、1 μL 模板 DNA（DNA 浓度 10
ng · μL-1），ddH2O 加至终体积 25 μL。反应程序：94 ℃，5 min 预变性；94 ℃ 变性 40 s，55 ℃扩增
40 s，72 ℃延伸 1 min，35 个循环；最后在 72 ℃延伸 5 min。扩增产物用 1%的琼脂糖凝胶电泳检测。
1.4 转基因植株的 Southern检测
CTAB 法提取 PCR 阳性的转基因植株和对照植株 DNA，由北京美莱博医学科技有限公司进行
PCR 标记法 Southern 检测（牛庆霖 等，2013）。具体方法：XbaⅠ和 SalⅠ双酶切 AmEBP1 质粒 DNA，
DIG-dUTP 标记（地高辛杂交检测试剂盒），得到 1 200 bp 的片段为标记探针；使用美莱博 DIGD-110
“地高辛杂交检测试剂盒Ⅱ（化学发光法）”（Sambrook et al.，1989）进行洗膜、信号检测。
1.5 转基因植株的抗寒能力测定
将 Southern 杂交检测为阳性的植株与对照，在培养基（改良 WPM + 6-BA 0.8 mg · L-1）上进行
芽团扩繁增殖到一定基数，每瓶 4 株，改良培养基（WPM + IBA 0.2 mg · L-1）上继续培养，选择长
势相近的对照苗进行试验。抗寒能力测定参照孙海伟等（2012）的方法并作改进，4 ℃预处理 4 h，
然后分别在–4 和–8 ℃冷冻处理 3、6、12、24 和 48 h，每处理 5 瓶。冷冻处理结束后，在 4 ℃，
黑暗条件下解冻 3 h，然后 24 ℃光照培养 2 d，统计存活率。将 Southern 检测为阳性的植株与长势
相近对照苗置于 4 ℃光照培养 24 h，然后置于 0、–4、–8、–12 和–16 ℃各处理 12 h，之后 4 ℃
解冻 12 h，每个处理取 5 瓶，每瓶 4 株，采用膜渗透—电解质外渗法（郭卫东 等，2009）测定叶
片相对电导率（REC）以表示细胞膜透性，重复 3 次，用 DPS 软件进行分析、比较。
MDA 的含量测定参照牛庆霖等（2013）的方法。
根据测定所得的 REC，应用 EXCEL、DPS 软件进行非线性回归分析，参照郭卫东等（2009）
的方法，测定转基因植株的半致死温度 LT50（Semi lethal temperature）。
2 结果与分析
2.1 转 AmEBP1基因组培杏苗的分子鉴定
2.1.1 PCR检测
经花粉管通道法转化 AmEBP1 基因的‘大果’杏幼胚，在改良 WPM 培养基上由芽团进行多代
扩繁。提取嫩叶 DNA 为模板，以载体质粒 DNA 为阳性对照，未转化的‘大果’杏为阴性对照，进
行 PCR 扩增。结果显示在扩繁的材料中有 6 个转基因株系 PCR 结果为阳性（图 2）。
2.1.2 Southern检测
将 PCR 扩增结果阳性的 6 个株系转基因‘大果’杏和对照植株同时采用地高辛标记法进行
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图 3 转基因植株的 Southern blot检测
CK：为 PCR 对照；CK-：未转基因对照；
1 ~ 6：转基因株系。
Fig. 3 Southern identification of the transgenic plants
CK：PCR control；CK-：Untransgenic plant；
1–6：Transgenic plants.
Southern 检测，结果表明，未转基因的对照植株没有出现杂交带，转基因植株中有 5 个株系分别出
现 1 ~ 3 条杂交带，说明 AmEBP1 基因已经通过花粉管通道法整合到这 5 个株系的基因组 DNA 中（图
3）。将阳性株系扩增到一定数量，用于下一步抗寒试验。

2.2 转基因株系抗寒能力检测
对得到的 5 个转基因阳性株系进行增殖扩繁，接种到改良 WPM + IBA 0.2 mg · L-1 培养基上继续
培养。选取长势相近，苗高 8 ~ 10 cm，叶片浓绿，生长健壮的组培苗和对照苗进行抗寒试验。转基
因植株在–4 ℃下处理 3、6 和 12 h 后，复苏培养均有较高的存活率（95%、85%和 66.7%），处理
12 h 后存活率急剧下降，处理 48 h，解冻复苏培养后仍有 10.2%的植株存活；对照植株在–4 ℃处
理 3 h 后受冻害现象明显增加，处理 12 h 后基本全部死亡（图 4）。–8 ℃处理转基因植株，3 h 后
冻害明显，处理 12 h 后，解冻复苏培养仅有 16.3%的植株存活（图 4；图 5，A6h、A12h），24 h 后
基本死亡（图 5，A24h）；–8 ℃处理未转基因对照植株 12 h 后（图 5，B12h），基本不能复苏。以
上结果显示：–4 和–8 ℃低温处理下，转基因植株比未转基因对照植株的存活率高。

图 4 转基因植株与未转基因对照植株在低温处理下的存活率
Fig. 4 Survival rate of the transgenic plant and the untransformed control plant under low temperatures
2.3 低温处理对影片细胞膜透性的影响
如图 6 可见，随着处理温度的降低，植物叶片受伤害程度加重，在–8 ~–16 ℃，转基因植株叶
片相对电导率值一直低于相应的对照，说明转基因植株受低温损伤程度较对照较轻；对照 REC 值在
图 2 转基因植株 PCR检测结果
M：2 000 bp marker；CK+：质粒对照；CK-：未转化植株；
1 ~ 6：转基因株系。
Fig. 2 PCR identification of the transgenic plants
M：2 000 bp marker；CK+：Plasmid control；CK-：Untransgenic plant；
1–6：Transgenic plants.
5 期 牛庆霖等：利用沙冬青抗寒基因 AmEBP1 转化杏的研究 829

–8 ℃时达到峰值，而转基因植株 REC 在–12 ℃时最大，二者峰值相差 11.2%；低温处理过程中，
植物材料体内 MDA 一直在积累，在–4 ~–16 ℃条件下，对照植株始终高于转基因植株，说明转
基因‘大果’杏低温处理下叶片损伤程度比对照轻。


图 5 转基因植株（A）与未转基因植株（B）在–8 ℃处理下的生长情况
Fig. 5 Growth of the transgenic plant（A）and the untransformed control plant（B）at–8 ℃



图 6 低温处理对叶片相对电导率和MDA含量的影响
Fig. 6 Changes of REC and MDA content of transgenic plant under low temperatures

2.4 转基因植株的半致死温度
应用电导法测定不同低温处理的植物组织，在不同温度下植物组织电解质外渗的累积量总是呈
“S”形曲线，Lyons 和 Raison（1970）把低温对植物细胞膜伤害过程用 Logistic 曲线加以表示，并
将曲线的拐点作为低温半致死温度。半致死温度主要反映了温度、水分与抗寒性之间的数量关系，
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大量研究表明，植株叶片半致死温度 LT50 的高低可以表示抗寒性的相对大小（沈洪波 等，2002）。
本研究表明，转基因株系的 LT50 是–5.80 ℃，未转基因对照为–3.67 ℃，理论上说明转基因株系的
抗寒能力明显好于对照植株，这与转基因植株在抗寒试验中存活率的结果一致。

表 1 根据 REC数值用 Logistic方程计算 LT50
Table 1 LT50 calculation of the transgenic lines base on the REC data using the Logistic equation
品系
Strain
Logistic 方程
Logistic equation
决定系数
Determination coefficient R2
半致死温度/℃
LT50
转基因植株 Transgenic plant y = 74.503 644 42/（1 + 2.175e-0.133 921x） 0.933 8** –5.80
未转基因植株 Un-transformed plant y = 92.218 925 83/（1 + 1.976e-0.185 591x） 0.964 2** –3.67
注：y = k/（1 + ae-bx）。a、b、k 分别表示曲线渐进度、曲线斜率和方程系数。
Note：y = k/（1 + ae-bx）. a，b，k represent curve gradient，slope of the curve and equation coefficient，respectively.
3 讨论
温度是限制植物生长、发育及其地理分布的一个重要因素，低温造成的冻害对杏及其他果树和
经济林木威胁很大（Shinozaki & Yamaguchi-Shinozaki，1996；Thomashow，1998）。关于木本植物
抗寒基因的研究与草本植物相比较为落后。自费云标等（1994）从沙冬青中分离出了第 1 个来自于
木本植物高热滞活性的 AFP，随后，Cao 等（2009）采用 cDNA-AFLP 方法，从沙冬青中克隆得到
了能提高植物抗寒性的核糖体相关蛋白基因 AmEBP1，并试验证明 AmEBP1 增强了转基因植物的抗
寒性是通过促进核糖体的合成以及冷诱导中转录因子和下游起保护作用的蛋白的翻译而进行的。随
后沙冬青极强的抗冻能力引起了分子生物学家的极大兴趣，利用木本植物分离得到相关抗性基因，
再转化到木本植物，现在已经成为植物抗性育种的新途径（Song et al.，2013）。近年来，果树上的
转基因研究日趋深入，果树大多为杂合体，后代基因易分离，因此利用转基因手段，将目的基因转
化到受体材料，按无性方式进行繁育，以获得目标性状的果树新品种。1988 年基因转化首先在核桃
（Juglans regia L.）上取得突破，McGranahan 等（1998）获得了转 gus 基因核桃再生植株，现已在
20 多种果树上获得了转化体或转化植株。王淑芳等（2001）将胆碱脱氢酶基因成功转化到番茄中，
得到转基因番茄；王燕霞（2009）利用农杆菌介导法将抗寒转录因子 CBF 基因转入‘嘎拉’苹果中，
PCR 检测并获得转基因阳性株系。中国在樱桃（Cerasus）、草莓、苹果等果树转基因方面做了许多
研究工作，并获得了转基因植株，特别是樱桃的转抗菌肽基因已由农业部批准进入田间试验，该项
研究处于国际领先水平。本研究中将源于沙冬青的抗寒基因 AmEBP1 转化到‘大果’杏中，探讨其
转化后的抗寒性能，以期解决早春寒冷低温对冻花、冻果的影响，为抗寒杏品种的选育提供参考。
基因转化的方法主要有农杆菌介导和外源 DNA 直接导入，花粉管通道法是 DNA 直接导入的一
种方式，其方法是将外源基因，通过花粉管进入胚珠，在植物体进行受精的过程中，胚囊内的精细
胞与卵细胞均没有细胞壁，融合形成合子，早期未分化的合子近似于感受态细胞，易于接受外源
DNA。方清（2002）将红树（Rhhoraa picutota）总 DNA 导入番茄，选育耐盐番茄；冯莎莎（2007）
将 pWBvecloa 质粒 DNA 导入富士苹果，对转化植株进行了相关抗性分析；王晓蔓（2009）对影响
核桃花粉管通道法转化因子进行了研究。花粉管通道法转化技术已经在果树转基因育种中有所运用，
本研究利用花粉管通道法，将沙冬青抗寒基因 AmEBP1 转化到‘大果’杏中，利用幼胚培养，经卡
那霉素筛选，PCR、Southern 检测得到 5 个转基因的阳性株系，并将阳性株系在改良 WPM + 6-BA 0.8
mg · L-1）培养基上增殖扩繁，在改良 WPM + IBA 0.2 mg · L-1 培养基上生根成苗，得到转基因株系，
进而对转基因组培苗的抗寒性能进行了分析。
在木本植物抗寒性测定中应用电导法测定不同低温处理的植物组织，在不同温度下植物组织电
5 期 牛庆霖等：利用沙冬青抗寒基因 AmEBP1 转化杏的研究 831

解质外渗的累积量总是呈“S”形曲线，Lyons 和 Raison（1970）把低温对植物细胞膜伤害过程用
Logistic 曲线加以表示，推导 Logistic 方程的二阶导数并令其为零，计算方程的拐点，得到 x = ln a/b，
求出各株系相对电导率变化曲线的拐点温度，拐点温度就是该株系的 LT50，能较好地反映植物的抗
寒力。本研究中转基因‘大果’杏的 LT50 是–5.80 ℃，未转基因对照 LT50 是–3.67 ℃，二者相差
2.13 ℃，说明转基因‘大果’杏的抗寒能力较对照有了明显提高；抗寒试验表明，–4 和–8 ℃条件
下，转基因‘大果’杏比对照有较高的存活能力；低温处理过程中，植物材料体内 MDA 与 REC 含
量转基因‘大果’杏始终低于对照，说明转基因‘大果’杏低温处理下叶片损伤程度比对照轻，能
够在相对的低温环境下生存。
本研究通过花粉管通道法得到 AmEBP1 转化的幼胚，又将幼胚培养成苗，并对转化苗的抗寒性
能进行了初步分析，得到抗寒性能较好的‘大果’杏转基因植株，为下一步抗寒杏选育提供了参考。

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