全 文 ：植物科学学报 ２０１４ꎬ ３２(３): ２１６ ~ ２２７
Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｊｏｕｒｎａｌ
ＤＯＩ:１０ ３７２４ / ＳＰ Ｊ １１４２ ２０１４ ３０２１６
基于 ２个核糖体 ＤＮＡ序列的国产白酒草属、 小舌菊属和
歧伞菊属(菊科紫菀族)分子系统学研究
钟彩霞１ꎬ 黎维平１∗ꎬ 杨秀林１ꎬ 唐 明２ꎬ 廖 威１ꎬ 陈三茂１
(１ 湖南师范大学生命科学学院ꎬ 长沙 ４１００８１ꎻ ２ 中国科学院华南植物园ꎬ
中国科学院植物资源保护与可持续利用重点实验室ꎬ 广州 ５１０６５０)
摘 要: 国产白酒草亚族(菊科紫菀族)由白酒草属(Ｃｏｎｙｚａ)、 小舌菊属(Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ)和歧伞菊属(Ｔｈｅｓｐｉｓ)
３个小属组成ꎬ 且国产白酒草亚族各属间及其与非洲白酒草属植物之间的分子系统发育关系尚无报道ꎬ 故本研究
利用核糖体 ＤＮＡ ＩＴＳ和 ＥＴＳ序列并采用最大简约法和贝叶斯分析法ꎬ 重建了国产白酒草亚族的分子系统发育
树ꎮ 结果表明ꎬ 国产 ４种白酒草属植物、 歧伞菊和非洲白酒草属植物组成一支ꎬ 而劲直白酒草的两变种和小舌
菊嵌入田基黄亚族分支ꎻ 小舌菊与 Ｐｓｉａｄｉａ ｐａｓｃａｌｉｉ近缘ꎮ 基于这些结果ꎬ 我们认为: (１)劲直白酒草和 Ｃｏｎｙｚａ
ｉｎｃｉｓａ应处理为田基黄亚族的一个独立的属ꎻ (２)国产 ４种白酒草属植物和歧伞菊以及大多数非洲白酒草属植物
属于 Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ属ꎬ 而且 Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ属代表一个新的亚族ꎬ 歧伞菊可处理为 Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ属的一个组ꎮ
Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ属可能从非洲经数次长距离传播到达我国南部ꎻ (３)Ｗｅｌｗｉｔｓｃｈｉｅｌｌａ 和小舌菊属应保持属的地位ꎬ
Ｐｓｉａｄｉａ ｐａｓｃａｌｉｉ、 Ｃｏｎｙｚａ ｓｃａｂｒｉｄａ和 Ｃ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ可并入小舌菊属ꎮ
关键词: 国产白酒草族ꎻ 白酒草属ꎻ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａꎻ 小舌菊属ꎻ 分子系统发育ꎻ 歧伞菊属
中图分类号: Ｑ９４９ ７８３ ５ 文献标识码: Ａ 文章编号: ２０９５￣０８３７(２０１４)０３￣０２１６￣１２
收稿日期: ２０１４￣０１￣２１ꎬ 修回日期: ２０１４￣０２￣２０ꎮ
基金项目: 国家自然科学基金资助项目(３１３７０２６５)ꎻ 湖南省生态学重点学科建设项目资助ꎻ 湖南省教育厅科学研究基金资助
(０８Ａ０４６)ꎮ
钟彩霞(１９８８－)ꎬ 女ꎬ 硕士研究生ꎬ 主要研究方向为种子植物分类学(Ｅ￣ｍａｉｌ: ８６０９０５４３０＠ ｑｑ ｃｏｍ)ꎮ
∗ 通讯作者(Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅ. Ｅ￣ｍａｉｌ: ｌｗｐｒｅｎｙｉ＠ ａｌｉｙｕｎ ｃｏｍ)ꎮ
Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚａꎬ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ａｎｄ
Ｔｈｅｓｐｉｓ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ: Ａｓｔｅｒｅａｅ) Ｂａｓｅｄ ｏｎ
Ｔｗｏ Ｎｕｃｌｅａｒ Ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ＤＮＡ Ｒｅｇｉｏｎｓ
ＺＨＯＮＧ Ｃａｉ￣Ｘｉａ１ꎬ ＬＩ Ｗｅｉ￣Ｐｉｎｇ１∗ꎬ ＹＡＮＧ Ｘｉｕ￣Ｌｉｎ１ꎬ ＴＡＮＧ Ｍｉｎｇ２ꎬ ＬＩＡＯ Ｗｅｉ１ꎬ ＣＨＥＮ Ｓａｎ￣Ｍａｏ１
(１ Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｈｕｎａｎ Ｎｏｒｍａｌ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ Ｃｈａｎｇｓｈａ ４１００８１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ
２ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｏｆ Ｐｌａｎｔ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ Ｃｏｎｓｅｒｖａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｓｕｓｔａｉｎａｂｌｅ Ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎꎬ Ｓｏｕｔｈ Ｃｈｉｎａ Ｂｏｔａｎｉｃａｌ Ｇａｒｄｅｎꎬ
Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｇｕａｎｇｚｈｏｕ ５１０６５０ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｃｈｉｎｅｓｅ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｃｏｎｙｚｉｎａｅ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ: Ａｓｔｅｒｅａｅ) ｃｏｎｓｉｓｔｓ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｓｍａｌｌ
ｇｅｎｅｒａꎬ Ｃｏｎｙｚａꎬ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ａｎｄ Ｔｈｅｓｐｉｓ Ｔｏ ｄａｔｅꎬ ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ
ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａｍｏｎｇ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａꎬ ａｎｄ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚａꎬ Ｔｈｅｓｐｉｓ ａｎｄ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｈａｖｅ
ｎｏｔ ｂｅｅｎ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ Ｔｈｅ ｉｎｔｅｒｎａｌ ａｎｄ ｅｘｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ ｓｐａｃｅｒｓ ｏｆ ｎｕｃｌｅａｒ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ＤＮＡ
ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｔｏ ｒｅｃｏｎｓｔｒｕｃｔ ｔｈｅ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚｉｎａｅ ｔｈｒｏｕｇｈ ｍａｘｉｍｕｍ ｐａｒｓｉｍｏｎｙ
ａｎｄ Ｂａｙｅｓｉａｎ ａｎａｌｙｓｅｓ Ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｆｏｕｒ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ Ｔｈｅｓｐｉｓ
ｄｉｖａｒｉｃａｔａ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ａ ｃｌａｄｅ ｗｉｔｈ ｍｏｓｔ ｓａｍｐｌｅｄ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａꎬ ｗｈｅｒｅａｓ ｔｗｏ Ｃｏｎｙｚａ
ｓｔｒｉｃｔａ ｖａｒｉｅｔｉｅｓ ａｎｄ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｐｙｒｉｆｏｌｉａ ｗｅｒｅ ｅｍｂｅｄｄｅｄ ｄｅｅｐｌｙ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ ｓｕｂｔｒｉｂｅ
Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅ ｃｌａｄｅ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｐｙｒｉｆｏｌｉａ ｗａｓ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｐｓｉａｄｉａ ｐａｓｃａｌｉｉ Ｂａｓｅｄ ｏｎ
ｐｈｙｌｏｇｅｎｙꎬ ｗｅ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｔｈａｔ (１) Ｃ ｓｔｒｉｃｔａ ａｎｄ Ｃ ｉｎｃｉｓａ ｓｈｏｕｌｄ ｂｅ ｔｒｅａｔｅｄ ａｓ ａ ｓｅｐａｒａｔｅ
ｇｅｎｕｓ ｔｈａｔ ｂｅｌｏｎｇｓ ｔｏ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｇｒａｎｇｅｉａｎｅꎻ (２) ｆｏｕｒ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚａꎬ Ｔｈｅｓｐｉｓ ａｎｄ ｍｏｓｔ
ｓａｍｐｌｅｄ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｂｅｌｏｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｓｈｏｕｌｄ ｂｅｌｏｎｇ ｔｏ ａ
ｎｅｗ ｓｅｐａｒａｔｅ ｓｕｂｔｒｉｂｅꎬ ｗｈｉｌｅ Ｔｈｅｓｐｉｓ ｓｈｏｕｌｄ ｂｅ ｔｒｅａｔｅｄ ａｓ ａ ｓｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ
Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｍａｙ ｈａｖｅ ａｒｒｉｖｅｄ ａｔ ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｃｈｉｎａ ｂｙ ｓｅｖｅｒａｌ ｌｏｎｇ￣ｄｉｓｔａｎｃｅ ｄｉｓｐｅｒｓａｌｓ ｆｒｏｍ
Ａｆｒｉｃａꎻ (３) ｉｔ ｉｓ ｒｅａｓｏｎａｂｌｅ ｔｏ ｍａｉｎｔａｉｎ ｔｈｅ ｇｅｎｅｒｉｃ ｓｔａｔｕｓ ｏｆ Ｗｅｌｗｉｔｓｃｈｉｅｌｌａ ａｎｄ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ
ａｎｄ ｔｒｅａｔ Ｐｓｉａｄｉａ ｐａｓｃａｌｉｉꎬ Ｃ ｓｃａｂｒｉｄａ ａｎｄ Ｃ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ ａｓ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚｉｎａｅꎻ Ｃｏｎｙｚａꎻ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａꎻ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａꎻ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙꎻ
Ｔｈｅｓｐｉｓ
Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｔｒｉｂｅ Ａｓｔｅｒｅａｅ ｉｓ ｔｈｅ ｓｅｃｏｎｄ ｌａｒｇｅｓｔ
ｉｎ Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ (Ｃｏｍｐｏｓｉｔａｅ)ꎬ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｒｅｌａ￣
ｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ｗｉｔｈｉｎ Ａｓｔｅｒｅａｅ ａｒｅ ｓｔｉｌｌ ｆａｒ ｆｒｏｍ ｒｅ￣
ｓｏｌｖｅｄ[１￣５] Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｓｔｅｒｅａｅ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｃｏｎｙｚｉｎａｅ
ｃｏｎｓｉｓｔｓ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｇｅｎｅｒａꎬ Ｃｏｎｙｚａ Ｌｅｓｓꎬ Ｍｉｃｒｏ￣
ｇｌｏｓｓａ ＤＣ ａｎｄ Ｔｈｅｓｐｉｓ ＤＣ [６]ꎬ ｗｈｉｃｈ ｈａｖｅ ｎｏｔ
ｙｅｔ ｂｅｅｎ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ ｅｖａｌｕａｔｅｄ ｂａｓｅｄ ｏｎ
ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｄａｔａ.
Ｃｏｎｙｚａ ｗａｓ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ ｉｎ １８３２ ｂｙ Ｌｅｓｓｉｎｇ
ａｎｄ ｔｙｐｉｆｉｅｄ ｂｙ Ｃ ｃｈｉｌｅｎｓｉｓ Ｓｐｒｅｎｇｅｌꎬ ａ Ｎｅｗ
Ｗｏｒｌｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ( ＝ Ｃｏｎｙｚａ ｐｒｉｍｕｌｉｆｏｌｉａ (Ｌａｍ)
Ｃｕａｔｒｅｃ ａｎｄ Ｌｏｕｒｔｅｉｇ) [６ꎬ７] Ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｔｕｄｉ￣
ｅｓ[７￣１０] ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｄａｔａ[１ꎬ２ꎬ４ꎬ１１￣１３] ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ
Ｎｅｗ Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａ ｗａｓ ｎｏｔ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｏｌｄ
Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａ Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙ￣
ｓｅｓ[１ꎬ２ꎬ１２] ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ Ｎｅｗ Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａ ｗａｓ
ａｔ ｌｅａｓｔ ｂｉｐｈｙｌｅｔｉｃ ａｎｄ ｎｏｒｔｈｅｒｎ ａｎｄ ｓｏｕｔｈｅｒｎ
Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｗｅｒｅ ａｌｌ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ Ｅｒｉｇｅｒｏｎ
Ｌ Ａｃｃｏｒｄｉｎｇｌｙꎬ Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ[１４] ｍｅｒｇｅｄ ａ ｆｅｗ
Ｎｅｗ Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ ｔｏ Ｃｈｉｎａ
ｉｎｔｏ Ｅｒｉｇｅｒｏｎ Ｃｏｎｖｅｒｓｅｌｙꎬ Ｎｅｓｏｍ[７] ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ
ｔｈａｔ Ｏｌｄ Ｗｏｒｌｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ａｓ Ｃｏｎｙｚａ ｗｅｒｅ
ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｇｅｎｅｒａ ｏｕｔｓｉｄｅ Ｃｏｎｙｚｉｎａｅꎬ ａｎｄ Ｎｅ￣
ｓｏｍ ａｎｄ Ｒｏｂｉｎｓｏｎ[１０] ｓｔａｔｅｄ ｔｈａｔ “ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ
Ｃｏｎｙｚａ ｎａｔｉｖｅ ｔｏ Ａｆｒｉｃａ ａｐｐａｒｅｎｔｌｙ ａｒｅ ｍｏｒｅ ｓｉｍｉ￣
ｌａｒ ａｎｄ ｐｅｒｈａｐｓ ｍｏｒｅ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｇｅｎｅｒａ ｏｆ
ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅ” Ｓｉｍｉｌａｒｌｙꎬ Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ ｅｔ ａｌ [１]
ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅ ｓｈｏｕｌｄ
ｂｅ ｅｘｐａｎｄｅｄ ｔｏ ｉｎｃｌｕｄｅ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ Ｒｅ￣
ｃｅｎｔｌｙꎬ ａｓ ａ ｓｍａｌｌ ｐａｒｔ ｏｆ Ｏｌｄ Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａꎬ
Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ( ｅｘｃｌｕｄｉｎｇ Ｃ ｓｔｒｉｃｔａ Ｗｉｌｌｄ )
ｎａｔｉｖｅ ｔｏ Ｃｈｉｎａ ｗｅｒｅ ａｓｓｉｇｎｅｄ ｔｏ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ
Ｍｏｅｎｃｈ[１４]ꎬ ｔｈｅ ｏｌｄｅｓｔ ｎａｍｅ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇ Ｏｌｄ
Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａ[８] .
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ Ｏｌｄ Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａ ｉｓ ｎｏｔ ｍｏｎｏ￣
ｐｈｙｌｅｔｉｃ Ａｓ ｅａｒｌｙ ａｓ １９９０ꎬ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｃｅｒｔａｉｎ
ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｆｅａｔｕｒｅｓꎬ Ｎｅｓｏｍ[８] ｃｏｎｃｌｕｄｅｄ ｔｈａｔ
Ｏｌｄ Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａ ｗａｓ ｓｔｒｏｎｇｌｙ ｈｅｔｅｒｏｇｅｎｅｏｕｓ
ａｎｄ ｉｔｓ ｔａｘｏｎｏｍｙ ｗａｓ ｆａｒ ｆｒｏｍ ｒｅｓｏｌｖｅｄ Ｉｎ ａｄｄｉ￣
ｔｉｏｎꎬ ｓｏｍｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｅｓ
ｈａｖｅ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ Ｎｅｓｏｍ[８]ꎬ ｓｈｏｗｉｎｇ ｔｈａｔ Ｏｌｄ
Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａ ｗａｓ ｐｏｌｙｐｈｙｌｅｔｉｃ[３] ｏｒ ａｔ ｌｅａｓｔ
ｂｉｐｈｙｌｅｔｉｃ[１ꎬ２ꎬ１１ꎬ１３]. Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ １４ ｓａｍｐｌｅｄ
Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｍａｄａｇａｓｃａｒ ａｎｄ Ｉｎｄｉａｎ
Ｏｃｅａｎ ｉｓｌａｎｄｓ ｆｏｒｍｅｄ ｓｅｖｅｒａｌ ｓｍａｌｌｅｒꎬ ｍｏｓｔｌｙ
ｗｅａｋｌｙ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｃｌａｄｅｓ ｗｉｔｈ ｔｗｏ ｔｏ ｆｉｖｅ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｉｎ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｔｒｅｅｓꎬ ｉｎｄｉｃａｔｉｎｇ ｔｈａｔ Ａｆｒｉｃａｎ
Ｃｏｎｙｚａ ｗａｓ ｐｏｌｙｐｈｙｌｅｔｉｃ[３] Ｓｔｒｉｊｋ[３] ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ
ｔｈｒｅｅ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｃ ｓｃａｂｒｉｄａ ＤＣꎬ
Ｃ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ Ｓｃｈ Ｂｉｐ ａｎｄ Ｃ ａｇｅｒａｔｏｉｄｅｓ
ＤＣ ) ｔｏ ａ ｎｅｗｌｙ ｃｉｒｃｕｍｓｃｒｉｂｅｄ Ｐｓｉａｄｉａ ｓ ｓꎬ
ｗｈｅｒｅａｓ ｏｔｈｅｒ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ
ｐａｒａｐｈｙｌｅｔｉｃ ｗｉｔｈ ｒｅｓｐｅｃｔ ｔｏ Ｆｒａｐｐｉｅｒｉａ Ｃｏｒｄｅｍｏｙꎬ
ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｒｅｓｕｒｒｅｃｔｅｄ ｂｙ Ｓｔｒｉｊｋ[３] ｔｏ ａｃｃｏｍｍｏ￣
ｄａｔｅ ｔｈｅ ｓｍａｌｌｅｒ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｃｌａｄｅｓ ｏｆ Ｐｓｉａｄｉａ.
Ｕｐ ｔｏ ｎｏｗꎬ ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｐｈｙｌｏｇｅ￣
ｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｅｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ Ｏｌｄ Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａꎬ
ｈａｖｅ ｍａｉｎｌｙ ｓａｍｐｌｅｄ Ａｆｒｉｃａｎ ｓｐｅｃｉｅｓ[１￣５ꎬ１１ꎬ１３] .
Ｔｈｒｅｅ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ Ｃ ｂｌｉｎｉｉ Ｈ Ｌéｖ (Ｅｓ￣
ｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｂｌｉｎｉｉ (Ｈ Ｌéｖ ) Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ )ꎬ Ｃ
ｐｅｒｅｎｎｉｓ Ｈａｎｄ ￣Ｍａｚｚ (Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｐｅｒｅｎｎｉｓ
(Ｈａｎｄ ￣Ｍａｚｚ ) Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ) ａｎｄ Ｃ ｍｕｌｉｅｎｓｉｓ Ｙ
Ｌ Ｃｈｅｎ (Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｍｕｌｉｅｎｓｉｓ (Ｙ Ｌ Ｃｈｅｎ)
Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ)ꎬ ａｒｅ ｅｎｄｅｍｉｃ ｔｏ Ｃｈｉｎａꎬ ｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅｉｒ
ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｄａｔａ ｈａｖｅ ｎｏｔ ｙｅｔ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ.
Ｔｈｅｓｐｉｓ ＤＣ ｉｓ ａ ｓｍａｌｌ ｇｅｎｕｓ ｗｉｔｈ ｔｈｒｅｅ ｓｐｅ￣
７１２
第 ３期
钟彩霞等: 基于 ２个核糖体 ＤＮＡ序列的国产白酒草属、 小舌菊属和
歧伞菊属(菊科紫菀族)分子系统学研究(英文)
ｃｉｅｓ ａｎｄ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ ｓｏｕｔｈ￣ｅａｓｔｅｒｎ Ａｓｉａ Ｔｈｅｓ￣
ｐｉｓ ｄｉｖａｒｉｃａｔａ ＤＣ ｉｓ ｔｈｅ ｏｎｌｙ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｇｅ￣
ｎｕｓ ｆｒｏｍ Ｃｈｉｎａ Ｔｈｅ ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｉｓ
ｇｅｎｕｓ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｐｒｏｂｌｅｍａｔｉｃ ｆｏｒ ａ ｌｏｎｇ ｔｉｍｅ Ｌｉｎｇ
ｅｔ ａｌ[６] ｐｌａｃｅｄ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ ｗｉｔｈｉｎ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｃｏｎｙｚｉ￣
ｎａｅꎬ ｗｈｅｒｅａｓ Ｚｈａｎｇ ａｎｄ Ｂｒｅｍｅｒ[１５] ｔｒｅａｔｅｄ ｉｔ ａｓ
ａｎ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｇｅｎｕｓ ｏｆ Ａｓｔｅｒｅａｅ ａｎｄ Ｂｒｅｍｅｒ[１６]
ｔｈｏｕｇｈｔ ｉｔ ｔｏ ｂｅ ａ ｍｅｍｂｅｒ ｏｆ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ａｓｔｅｒｉｎａｅ
Ｎｅｓｏｍ[９] ｉｎｃｌｕｄｅｄ ｉｔ ｔｅｎｔａｔｉｖｅｌｙ ｉｎ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｌａｇ￣
ｅｎｏｐｈｏｒｉｎａｅ Ｎｅｓｏｍꎬ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ Ｎｅ￣
ｓｏｍ ａｎｄ Ｒｏｂｉｎｓｏｎ[１０] Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｉｔｓ ｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔａ￣
ｔｕｓ ｗａｓ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｂｙ Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ[１４]ꎬ ｉｔｓ ｓｙｓｔｅｍ￣
ａｔｉｃ ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｒｅｍａｉｎｓ ｕｎｃｅｒｔａｉｎ ａｎｄ ｎｏ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｅｓ ｈａｖｅ ｉｎｖｏｌｖｅｄ Ｔｈｅｓｐｉｓ ｓｏ
ｆａｒ.
Ｗｉｔｈ ａｐｐｒｏｘｉｍａｔｅｌｙ １０ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ
ＤＣ [１４] ｉｓ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ Ａｆｒｉｃａ ａｎｄ ｔｒｏｐｉｃａｌ Ａｓｉａ
Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｐｙｒｉｆｏｌｉａ (Ｌａｍ ) Ｏ Ｋｕｎｔｚｅ ｏｃｃｕｒｓ
ｗｉｄｅｌｙ ｆｒｏｍ Ａｆｒｉｃａ ｔｏ ｔｒｏｐｉｃａｌ Ａｓｉａꎬ ａｎｄ ｉｎ Ｃｈｉｎａ
ｉｔ ｉｓ ａ ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ ｍｅｄｉｃｉｎｅ ａｎｄ ｔｈｅ ｏｎｌｙ ｒｅｐｒｅｓｅｎ￣
ｔａｔｉｖｅ ｏｆ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ[６ꎬ１４] Ｌｉｎｇ ｅｔ ａｌ [６] ａｓｓｉｇｎｅｄ
ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ ｗｉｔｈｉｎ Ｃｏｎｙｚｉｎａｅꎬ ｗｈｉｌｅ Ｚｈａｎｇ ａｎｄ
Ｂｒｅｍｅｒ[１５]ａｎｄ Ｂｒｅｍｅｒ[１６] ｐｌａｃｅｄ ｉｔ ｉｎ ｔｈｅ Ｅｒｉｇｅｒ￣
ｏｎ￣Ｃｏｎｙｚａ ｇｒｏｕｐ Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ Ｎｅｓｏｍ[９] ｐｌａｃｅｄ ｉｔ
ｉｎ ｔｈｅ Ｐｓｉａｄｉａ ｇｒｏｕｐ ｏｆ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｂａｃｃｈａｒｉｄｉｎａｅꎬ
ａｎｄ Ｎｅｓｏｍ ａｎｄ Ｒｏｂｉｎｓｏｎ[１０] ｔｒｅａｔｅｄ ｉｔ ａｓ ａｎ ｕｎ￣
ｐｌａｃｅｄ ｇｅｎｅｒａ ｉｎ ｔｒｉｂｅ Ａｓｔｅｒｅａｅ Ｔｈｕｓ ｆａｒꎬ ｈｏｗ￣
ｅｖｅｒꎬ ｉｔｓ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｈａｓ ｎｏｔ ｂｅｅｎ ｅｖａｌｕａｔｅｄ ｂｙ
ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｄａｔａ.
Ｂａｓｅｄ ｏｎ ｎｕｃｌｅａｒ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ＤＮＡ ( ｎｒＤＮＡ)
ＩＴＳ ａｎｄ ＥＴＳ ( ｉｎｔｅｒｎａｌ ａｎｄ ｅｘｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ
ｓｐａｃｅｒｓ ｏｆ ３５Ｓ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ＤＮＡ )ꎬ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｔ
ｓｔｕｄｙ ａｉｍｅｄ ｔｏ ｒｅｃｏｎｓｔｒｕｃｔ ｔｈｅ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｏｆ Ｃｈｉ￣
ｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚａꎬ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ａｎｄ Ｔｈｅｓｐｉｓ ａｎｄ ｔｏ
ｄｉｓｃｕｓｓ ｔｈｅｉｒ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ.
１ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｓ
１ １ Ｔａｘｏｎ ｓａｍｐｌｉｎｇ ａｎｄ ｓｏｕｒｃｅ ｏｆ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ
Ｆｏｕｒ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｎａｔｉｖｅ ｔｏ Ｃｈｉｎａꎬ ｔｈｒｅｅ
Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎｔｒｏｄｕｃｅｄ ｔｏ Ｃｈｉｎａꎬ
Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｐｙｒｉｆｏｌｉａ ａｎｄ Ｔｈｅｓｐｉｓ ｄｉｖａｒｉｃａｔａ (Ａｐ￣
ｐｅｎｄｉｘ) ｗｅｒｅ ｓａｍｐｌｅｄ ｉｎ Ｃｈｉｎａ ｆｏｒ ｓｅｑｕｅｎｃｅ
ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ ｉｎ ｎｒＤＮＡ ＩＴＳ ａｎｄ ＥＴＳ Ｔｈｅ ＩＴＳ ａｎｄ
ＥＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ Ｃ ｓｕｍａｔｒｅｎｓｉｓ (Ｒｅｔｚ ) Ｗａｌｋ￣
ｅｒ ａｎｄ Ｃ ｊａｐｏｎｉｃａ ( Ｔｈｕｎｂ ) Ｌｅｓｓ ｗｅｒｅ ｐｒｏ￣
ｄｕｃｅｄ ｆｒｏｍ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ[４]ꎬ ａｎｄ ｔｈｏｓｅ ｏｆ ｔｈｅ
ｏｔｈｅｒ ｓｅｖｅｎ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｎｅｗｌｙ ｇｅｎｅｒａｔｅｄ (Ａｐ￣
ｐｅｎｄｉｘ) .
Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ ｅｔ ａｌ [２] ｄｉｖｉｄｅｄ Ａｓｔｅｒｅａｅ ｉｎｔｏ ｓｉｘ
ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｌｉｎｅａｇｅｓꎬ ｔｈａｔ ｉｓꎬ ｔｈｅ ｂａｓａｌ ｌｉｎｅａ￣
ｇｅｓꎬ ｐａｌａｅｏ￣Ｓｏｕｔｈ Ａｍｅｒｉｃａｎ ｃｌａｄｅꎬ Ｎｅｗ Ｚｅａ￣
ｌａｎｄ ｃｌａｄｅꎬ Ａｕｓｔｒａｌａｓｉａｎ ｌｉｎｅａｇｅｓꎬ Ｓｏｕｔｈ Ａｍｅ￣
ｒｉｃａｎ ｌｉｎｅａｇｅｓ ａｎｄ Ｎｏｒｔｈｅｒｎ Ａｍｅｒｉｃａｎ ｌｉｎｅａｇｅ
Ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ Ｌｉ ｅｔ ａｌ[４]ꎬ ｔｈｅｒｅ ｉｓ ａ ｓｅｖｅｎｔｈ ｃｌａｄｅꎬ
Ｂｅｌｌｉｄｉｎａｅꎬ ａｎｄ ａｎ ｅｉｇｈｔｈ ｃｌａｄｅꎬ Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅ
Ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ ｐｏｓｉｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ
Ｃｈｉｎｅｓｅ ｇｅｎｅｒａꎬ ａｌｌ ｅｉｇｈｔ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｌｉｎｅａｇｅｓ
ｗｅｒｅ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｂｙ ｍｏｒｅ ｏｒ ｌｅｓｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｏｕｒ
ＩＴＳ ｍａｔｒｉｘ ａｎｄ ｓｅｖｅｎ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｌｉｎｅａｇｅｓ ｉｎ ｔｈｅ
ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｍａｔｒｉｘ Ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ ｍｏｒｅ ａｃｃｅｓｓｉｏｎｓ ｉｎ
ｔｈｅ ＩＴＳ ｍａｔｒｉｘ ｔｈａｎ ｉｎ ｔｈｅ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｍａｔｒｉｘ ｂｅ￣
ｃａｕｓｅ ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｍｏｒｅ ＩＴＳ ｄａｔａ ａｖａｉｌａｂｌｅ ｉｎ Ｇｅｎ￣
Ｂａｎｋ[１ꎬ４ꎬ５ꎬ１１ꎬ１２ꎬ１７￣２６] Ｓｔｒｉｊｋ[３] ａｎｄ Ｓｔｒｉｊｋ ｅｔ ａｌ[５] ｓｕｇ￣
ｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｎｅｓｔｅｄ
ｗｉｔｈ ｔｗｏ ｌａｒｇｅ ｃｌａｄｅｓꎬ ｓｏ ｉｎ ｏｕｒ ＩＴＳ ｍａｔｒｉｘ ｓｏｍｅ
Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｒｅｌａｔｉｖｅｓ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ
ｔｗｏ ｃｌａｄｅｓ (ｏｎｅ ｃｌａｄｅ: Ｃ ａｇｅｒａｔｏｉｄｅｓꎬ Ｃ ｓｃａｂｒｉ￣
ｄａꎬ Ｃ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａꎬ Ｃ ｓｔｒｉｃｔａꎬ Ｐｓｉａｄｉａ ｐａｓ￣
ｃａｌｉｉ Ｌａｂａｔ ａｎｄ Ｂｅｅｎｔｊｅꎬ Ｐ ｐｕｎｃｔｕｌａｔａ (ＤＣ )
Ｖａｔｋｅꎻ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｃｌａｄｅ: ｅｉｇｈｔ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ
ａｎｄ Ｐｓｉａｄｉａ ａｒｇｅｎｔｅａ Ｃｏｒｄｅｍ ) ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ｒｅｖａｌ￣
ｕａｔｅ ｔｈｅ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ａｍｏｎｇ ｔｈｅｓｅ Ａｆｒｉｃａｎ ｐｌａｎｔｓ
ａｎｄ ｔｈｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｔａｘａ Ｉｎ ｔｈｅ ＩＴＳ ｍａｔｒｉｘꎬ ｔｗｏ ｓｅ￣
ｑｕｅｎｃｅｓ (ＨＥ９７８３６３ ａｎｄ ＧＵ０４５８３０) ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ
ｂｙ Ｓｔｒｉｊｋ ｅｔ ａｌ [５] ｗｅｒｅ ｒｅｃｏｒｄｅｄ ｉｎ ＧｅｎＢａｎｋ ａｎｄ
ｗｅｒｅ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ Ｃｏｎｙｚａ
ｕｌｍｉｆｏｌｉａ Ｔｈｅ ｔｗｏ ａｒｅ ｑｕｉｔｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔꎬ ｈｏｗｅｖｅｒ
Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｏｕｒ ＩＴＳ ｔｒｅｅ ｗｉｔｈ ｔｈａｔ ｏｆ Ｓｔｒｉｊｋ ｅｔ ａｌ[３]
ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ＨＥ９７８３６３ ｗａｓ ｔｈｅ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｏｆ
Ｃ ｉｎｃｉｓａ[５] ｉｎｓｔｅａｄ ｏｆ Ｃ ｕｌｍｉｆｏｌｉａ Ａｓ ａ ｒｅｓｕｌｔꎬ
８１２ 植 物 科 学 学 报 第 ３２卷
ｗｅ ｔｒｅａｔｅｄ ＨＥ９７８３６３ ａｓ ｔｈｅ ＩＴＳ ｏｆ Ｃ ｉｎｃｉｓａ
ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ Ｆｉｇｕｒｅｓ ２ ａｎｄ ３ ｏｆ Ｓｔｒｉｊｋ ｅｔ ａｌ [５] Ｔｈｅ
ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ＧＵ０４５８２７ ｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｂｙ Ｓｔｒｉｊｋ
ｅｔ ａｌ[５] ｗａｓ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ Ｃ ｓｔｒｉｃｔａ ｓａｍｐｌｅｄ
ｆｒｏｍ ｅａｓｔｅｒｎ Ａｆｒｉｃａ Ｗｅ ｒｅｇａｒｄｅｄ ｉｔ ａｓ Ｃ ｓｔｒｉｃｔａ
ｖａｒ ｓｔｒｉｃｔａ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ ｂｏｔｈ Ａｓｉａ ａｎｄ Ａｆｒｉｃａꎬ
ａｎｄ ｗａｓ ｔｈｕｓ ｄｉｓｔｉｎｇｕｉｓｈｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｓａｍ￣
ｐｌｅｄ ｖａｒｉｅｔｙꎬ Ｃ ｓｔｒｉｃｔａ ｖａｒ ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ Ｋｉｔａｍ
Ｃｏｎｙｚａ ｓｔｒｉｃｔａ ｖａｒ ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ ｉｓ ｒｅｓｔｒｉｃｔｅｄ ｔｏ
ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ａｓｉａ ａｎｄ ｗａｓ ｓａｍｐｌｅｄ ｆｒｏｍ Ｙｕｎｎａｎꎬ
Ｃｈｉｎａ (Ａｐｐｅｎｄｉｘ) . Ｂｅｃａｕｓｅ ｓｏｍｅ ｔａｘａ ｏｆ ｔｈｅ
ＩＴＳ ｍａｔｒｉｘ ｗｅｒｅ ｕｎａｖａｉｌａｂｌｅ ｆｏｒ ＥＴＳꎬ ｔｈｅ ｃｏｍ￣
ｂｉｎｅｄ ＩＴＳ / ＥＴＳ ｍａｔｒｉｘ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ｏｎｌｙ ３４ ｉｎｇｒｏｕｐ
ｔａｘａ (Ａｐｐｅｎｄｉｘ) . Ｉｎ ｔｈｅ ｔｗｏ ｍａｔｒｉｃｅｓꎬ Ｃｈｒｙｓａｎ￣
ｔｈｅｍｕｍ ｃｏｒｏｎａｒｉｕｍ Ｌ ａｎｄ Ｄｅｎｄｒａｎｔｈｅｍａ ｉｎｄｉ￣
ｃｕｍ (Ｌ ) Ｄｅｓ Ｍｏｕｌ ｏｆ ｔｒｉｂｅ Ａｎｔｈｅｍｉｄｅａｅ ａｎｄ
Ｃａｌｅｎｄｕｌａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ Ｌ ｏｆ ｔｒｉｂｅ Ｃａｌｅｎｄｕｌｅａｅ (Ａｐ￣
ｐｅｎｄｉｘ) ｗｅｒｅ ｓｅｌｅｃｔｅｄ ａｓ ｏｕｔｇｒｏｕｐｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｒｏｏ￣
ｔｉｎｇ ｏｆ ｔｈｅ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｔｒｅｅｓ ｂｅｃａｕｓｅ ｉｎ ｍｏｌｅｃｕ￣
ｌａｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｅｓ[２７ꎬ２８] Ａｎｔｈｅｍｉｄｅａｅ ａｎｄ
Ａｓｔｅｒｅａｅ ａｒｅ ｓｉｓｔｅｒｓꎬ ａｎｄ Ｃａｌｅｎｄｕｌｅａｅ ｉｓ ａ ｓｉｓｔｅｒ
ｔｏ ｔｒｉｂｅｓ Ｇｎａｐｈａｌｉｅａｅꎬ Ａｎｔｈｅｍｉｄｅａｅ ａｎｄ Ａｓｔｅｒｅ￣
ａｅ.
１ ２ ＤＮＡ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎꎬ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｃｈａｉｎ ｒｅａｃｔｉｏｎ
(ＰＣＲ) ａｎｄ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ
Ｔｏｔａｌ ｇｅｎｏｍｉｃ ＤＮＡ ｗａｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｆｒｅｓｈ
ｌｅａｆ ｍａｔｅｒｉａｌｓ ｏｒ ｓｉｌｉｃａ ｇｅｌ￣ｄｒｉｅｄ ｌｅａｖｅｓ Ａｍｐｌｉｆｉ￣
ｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｗｅｒｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｕｓｉｎｇ
ｐｒｉｍｅｒｓ ＩＴＳ１ ａｎｄ ＩＴＳ４[２９] ｆｏｒ ｔｈｅ ＩＴＳ ｒｅｇｉｏｎꎬ ａｎｄ
ｕｓｉｎｇ ｐｒｉｍｅｒｓ Ａｓｔ￣８[３０] ａｎｄ １８Ｓ￣ＥＴＳ[３１] ｆｏｒ ｔｈｅ
ＥＴＳ ｒｅｇｉｏｎ.
Ｔｈｅ ＰＣＲ ｍｉｘｔｕｒｅ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ １ μＬ (５０－１００ ｎｇ)
ｏｆ ｓａｍｐｌｅ ＤＮＡꎬ ２ × ２ μＬ ｏｆ ｐｒｉｍｅｒ (１０ ｐｍｏｌ)ꎬ
５ μＬ ｏｆ １０ × ＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒꎬ ３ μＬ ｏｆ Ｍｇ２＋(２５ ｍｏｌ / Ｌ)ꎬ
０ ８ μＬ ｏｆ ｄｅｏｘｙｒｉｂｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｔｒｉｐｈｏｓｐｈａｔｅ (ｅａｃｈ
２５ ｍｏｌ / Ｌ )ꎬ ０ ５ μＬ ｏｆ Ｔａｑ ＤＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ
(５ Ｕ / ｍＬ) ａｎｄ ｓｔｅｒｉｌｅ ｗａｔｅｒ ｆｏｒ ａ ｆｉｎａｌ ｖｏｌｕｍｅ ｏｆ
５０ μＬ Ｔｈｅ ＰＣＲ ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓ ｗｅｒｅ ａｓ ｆｏｌｌｏｗｓ: ｉｎｉ￣
ｔｉａｌ ｄｅｎａｔｕｒａｔｉｏｎ ｆｏｒ ４ ｍｉｎ ａｔ ９５℃ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ
３０ ｃｙｃｌｅｓ ｏｆ ｄｅｎａｔｕｒａｔｉｏｎ ( ９４℃ꎬ １ ｍｉｎ)ꎬ ａｎ￣
ｎｅａｌｉｎｇ ( ５６℃ꎬ ４０ ｓ ) ａｎｄ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ( ７２℃ꎬ
１ ｍｉｎ)ꎬ ａｎｄ ａ ｆｉｎａｌ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｏｆ １０ ｍｉｎ ａｔ ７２℃.
Ｔｈｅ ＰＣＲ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ｗｉｔｈ ａ
ＵＮＩＱ￣１０ Ｓｐｉｎ Ｃｏｌｕｍｎ ＰＣＲ Ｐｒｏｄｕｃｔ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ
Ｋｉｔ (Ｓａｎｇｏｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｃｏꎬ Ｌｔｄꎬ Ｓｈａｎｇｈａｉꎬ Ｃｈｉ￣
ｎａ) ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｔｈｅ ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｅｒｓ ｉｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎｓ Ｄｉ￣
ｒｅｃｔ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｗａｓ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｉｎ ｂｏｔｈ ｄｉｒｅｃｔｉｏｎｓ
ｂｙ Ｓａｎｇｏｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ Ｃｏꎬ Ｌｔｄ.
１ ３ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ ａｎｄ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａ￣
ｌｙｓｅｓ
Ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｏｕｒ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｙ[４]ꎬ ｂｏｕｎｄａ￣
ｒｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ＩＴＳ ａｎｄ ＥＴＳ ｒｅｇｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ
Ａｌｌ ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｗｅｒｅ ａｌｉｇｎｅｄ ｉｎｉｔｉａｌｌｙ ｕｓｉｎｇ
Ｃｌｕｓｔａｌ Ｘ １ ８３[３２] ａｎｄ ｔｈｅｎ ａｄｊｕｓｔｅｄ ｍａｎｕａｌｌｙ ｉｎ
ＢｉｏＥｄｉｔ[３３] Ｔｈｅ ＩＴＳ ｒｅｇｉｏｎ ｗａｓ ａｎａｌｙｓｅｄ ｓｅｐａ￣
ｒａｔｅｌｙ ａｎｄ ｉｎ ａ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｄａｔａ ｓｅｔ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ＥＴＳ
ｒｅｇｉｏｎ Ｔｈｅ ｉｎｃｏｎｇｒｕｅｎｃｅ ｌｅｎｇｔｈ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｔｅｓｔ[３４]
ｗａｓ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｔｏ ｔｅｓｔ ｔｈｅ ｈｏｍｏｇｅｎｅｉｔｙ ｂｅｔｗｅｅｎ
ｄａｔａ ｓｅｔｓ ｕｓｉｎｇ ＰＡＵＰ∗ ｖｅｒｓｉｏｎ ４ ０ｂ１０ ｗｉｔｈ １０００
ｒｅｐｌｉｃａｔｅｓ Ｍａｘｉｍｕｍ ｐａｒｓｉｍｏｎｙ (ＭＰ) ａｎｄ Ｂａｙｅ￣
ｓｉａｎ ｉｎｆｅｒｅｎｃｅ (ＢＩ) ｗｅｒｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｆｏｒ ｔｈｅ ｄａｔａ
ｓｅｔｓ ｕｓｉｎｇ ＰＡＵＰ∗ ｖｅｒｓｉｏｎ ４ ０ｂ１０[３５] ａｎｄ Ｍｒ￣
Ｂａｙｅｓ ｖｅｒｓｉｏｎ ３１ ２[３６]ꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ Ｉｎ ｔｈｅ ＭＰ
ａｎａｌｙｓｉｓꎬ ｃｈａｒａｃｔｅｒｓ ｗｅｒｅ ｕｎｏｒｄｅｒｅｄ ａｎｄ ｅｑｕａｌｌｙ
ｗｅｉｇｈｔｅｄꎬ ｇａｐｓ ｗｅｒｅ ｓｃｏｒｅｄ ａｓ ｍｉｓｓｉｎｇ ｄａｔａꎬ
ａｎｄ ａ ｈｅｕｒｉｓｔｉｃ ｓｅａｒｃｈ ｗａｓ ｉｍｐｌｅｍｅｎｔｅｄ ｗｉｔｈ
１０００ ｒａｎｄｏｍ ａｄｄｉｔｉｏｎａｌ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｒｅｐｌｉｃａｔｅｓ ａｎｄ
ｓｕｂ￣ｔｒｅｅ ｐｒｕｎｉｎｇ￣ｒｅｇｒａｆｔｉｎｇ ｂｒａｎｃｈ ｓｗａｐｐｉｎｇ
Ｓｕｐｐｏｒｔ ｆｏｒ ｃｌａｄｅｓ ｗａｓ ｅｓｔｉｍａｔｅｄ ｂｙ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ
ｗｉｔｈ １０００ ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ Ｔｈｅ ＭａｘＴｒｅｅｓ ｓｅｔｔｉｎｇ ｉｎ
ＰＡＵＰ∗ ｗａｓ ｓｅｔ ｔｏ ５０００ ｆｏｒ ｔｈｅ ｓｅａｒｃｈｅｓ ａｎｄ
ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｔｅｓｔｓ Ｆｏｒ ＢＩ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ＩＴＳ ｒｅｇｉｏｎ
ａｎｄ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｄａｔａ ｓｅｔꎬ ｔｈｅ ｂｅｓｔ￣ｆｉｔｔｉｎｇ ｍｏｄｅｌ ｏｆ
ｅａｃｈ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｐａｒｔｉｔｉｏｎ ( ＩＴＳ１ꎬ ＩＴＳ２ꎬ ５ ８Ｓꎬ
ＥＴＳ) ｗａｓ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｕｓｉｎｇ ＭｒＭｏｄｅｌｔｅｓｔ ２ ２[３７]
Ｔｈｅ ＳＹＭ ＋ Ｇ ｍｏｄｅｌ ｗａｓ ｃｈｏｓｅｎ ｆｏｒ ｔｈｅ ５ ８Ｓ ｒｅ￣
ｇｉｏｎꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ＧＴＲ ＋ Ｉ ＋ Ｇ ｍｏｄｅｌ ｆｏｒ ｔｈｅ ＩＴＳ１ꎬ
ＩＴＳ２ ａｎｄ ＥＴＳ ｒｅｇｉｏｎｓ Ｔｈｅ Ｍａｒｋｏｖ ｃｈａｉｎ Ｍｏｎｔｅ
Ｃａｒｌｏ ａｌｇｏｒｉｔｈｍ ｗａｓ ｒｕｎ ｆｏｒ １００００００ ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｓꎬ
ｒｅｓｕｌｔｉｎｇ ｉｎ ａｎ ｏｖｅｒａｌｌ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｏｆ １００００ ｔｒｅｅｓ
９１２
第 ３期
钟彩霞等: 基于 ２个核糖体 ＤＮＡ序列的国产白酒草属、 小舌菊属和
歧伞菊属(菊科紫菀族)分子系统学研究(英文)
Ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ３０００ ｔｒｅｅｓ ｗｅｒｅ ｄｉｓｃａｒｄｅｄ ａｓ ａ ｃｏｎｓｅｒ￣
ｖａｔｉｏｎ ｂｕｒｎ￣ｉｎꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｒｅｍａｉｎｉｎｇ ｔｒｅｅｓ ｗｅｒｅ
ｕｓｅｄ ｔｏ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔ ｔｈｅ ５０％ ｍａｊｏｒｉｔｙ ｒｕｌｅ ｃｏｎｓｅｎ￣
ｓｕｓ ｔｒｅｅ.
２ Ｒｅｓｕｌｔｓ
２ １ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｄａｔａ
Ｔｈｅ ＩＴＳ ｄａｔａ ｓｅｔ ｃｏｎｓｉｓｔｅｄ ｏｆ ６８０ ａｌｉｇｎｅｄ ｎｕ￣
ｃｌｅｏｔｉｄｅｓꎬ ｏｆ ｗｈｉｃｈ ３８３ (５６ ３２％) ｗｅｒｅ ｖａｒｉａｂｌｅ
ａｎｄ ２７８ (４０ ８８％) ｗｅｒｅ ｐａｒｓｉｍｏｎｙ￣ｉｎｆｏｒｍａｔｉｖｅ
Ｔｈｅ ＩＬＤ ｔｅｓｔ ( ｐ ＝ ０ １２３) ｆａｉｌｅｄ ｔｏ ｒｅｊｅｃｔ ｔｈｅ
ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ＩＴＳ ａｎｄ ＥＴＳ ｍａｒｋｅｒｓ Ｔｈｅｒｅ￣
ｆｏｒｅꎬ ａ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｗｏ ｒｅｇｉｏｎｓ ｗａｓ
ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｕｓｉｎｇ ＰＡＵＰ∗ ａｎｄ ＭｒＢａｙｅｓ Ｔｈｅ ｃｏｍ￣
ｂｉｎｅｄ ＩＴＳ ａｎｄ ＥＴＳ ｄａｔａ ｓｅｔ ｃｏｎｓｉｓｔｅｄ ｏｆ １３３５
ａｌｉｇｎｅｄ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓꎬ ｏｆ ｗｈｉｃｈ ７１５ (５３ ５６％) ｗｅｒｅ
ｖａｒｉａｂｌｅ ａｎｄ ４９５ ( ３７ ０８ ％) ｗｅｒｅ ｐａｒｓｉｍｏｎｙ￣
ｉｎｆｏｒｍａｔｉｖｅ Ｎｅａｒ ｔｈｅ ｅｎｄ ｏｆ ｔｈｅ ＥＴＳ ｒｅｇｉｏｎ Ｅｒｉ￣
ｇｅｒｏｎ ｂｒｅｖｉｓｃａｐｕｓ (Ｖａｎｔ ) Ｈａｎｄ ￣Ｍａｚｚꎬ Ｃｏｎｙ￣
ｚａ ｃａｎａｄｅｎｓｉｓ ( Ｌ ) Ｃｒｏｎｑꎬ Ｃ ｂｏｎａｒｉｅｎｓｉｓ
(Ｌ ) Ｃｒｏｎｑ ａｎｄ Ｃ ｓｕｍａｔｒｅｎｓｉｓ ｈａｄ ａｎ ｉｎｓｅｒｔ
ａｓ ｌｏｎｇ ａｓ ８４ ｂｐ ｔｈａｔ ｗａｓ ｔｈｅｉｒ ｓｙｎａｐｏｍｏｒｐｈｙ.
２ ２ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｅｓ
Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｅｓ ｕｓｉｎｇ ＩＴＳ ａｎｄ ｔｈｅ
ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｄａｔａ ｓｅｔｓ ｙｉｅｌｄｅｄ ｇｅｎｅｒａｌｌｙ ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ
ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｔｒｅｅｓ ( Ｂａｙｅｓｉａｎ ｔｒｅｅｓꎻ ｓｅｅ Ｆｉｇ １ꎬ
Ｆｉｇ ２)ꎬ ｔｈｏｕｇｈ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ａｎａｌｙｓｅｓ ｒｅｓｕｌｔｅｄ ｉｎ
ｍｏｒｅ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｃｌａｄｅｓ ａｎｄ ｍｏｒｅ ｒｅｓｏｌｖｅｄ ｒｅｌａ￣
ｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ｔｈａｎ ｔｈｅ ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ａｎａｌｙｓｉｓ ｂａｓｅｄ ｏｎ
ＩＴＳ ｄａｔａ Ｉｎ ｂｏｔｈ ｔｈｅ ＩＴＳ ｔｒｅｅ ａｎｄ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｔｒｅｅꎬ
ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｃｏｎｙｚａ ｗａｓ ｎｏｔ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃ ａｎｄ ｏｃ￣
ｃｕｒｒｅｄ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｒｅｅ ｂｉｇ ｃｌａｄｅｓ ｗｉｔｈ ｈｉｇｈｅｒ Ｂａｙｅ￣
ｓｉａｎ ｐｏｓｔｅｒｉｏｒ ｐｒｏｂａｂｉｌｉｔｙ ( ＰＰ ) ａｎｄ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ
ｓｕｐｐｏｒｔ (ＢＳ) (ｃｌａｄｅ １: ＰＰ ＝ １ ００ ａｎｄ ＢＳ ＝
９９ ｉｎ Ｆｉｇ １ꎬ ａｎｄ ＰＰ ＝ １ ００ ａｎｄ ＢＳ ＝ １００ ｉｎ
Ｆｉｇ ２ꎻ ｃｌａｄｅ ２: ＰＰ ＝ １ ００ ａｎｄ ＢＳ ＝ ６８ ｉｎ
Ｆｉｇｓ １ ａｎｄ ２ꎻ ｃｌａｄｅ ７: ＰＰ ＝ ０ ９９ ａｎｄ ＢＳ ＝ ９０
ｉｎ Ｆｉｇ １ꎬ ａｎｄ ＰＰ ＝ １ ００ ａｎｄ ＢＳ ＝ １００ ｉｎ
Ｆｉｇ ２) . Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ ｉｎ ｅａｃｈ ｏｆ ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ ｃｌａｄｅｓ
ｔｈｅ Ｃｏｎｙｚａ ｗｅｒｅ ｎｏｔ ｇｒｏｕｐｅｄ ｉｎ ａｎ ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ
ｓｕｂｃｌａｄｅ ｂｕｔ ｍｉｘｅｄ ｗｉｔｈ ｏｔｈｅｒ ｇｅｎｅｒａ (Ｆｉｇ １ ａｎｄ
Ｆｉｇ ２) . Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｐｙｒｉｆｏｌｉａ ｗａｓ ｎｅｓｔｅｄ ｗｉｔｈｉｎ
ｃｌａｄｅ ２ ａｎｄ ｗａｓ ｎｏｔ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｍｏｓｔ Ｃｈｉ￣
ｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚａ (Ｆｉｇ １ ａｎｄ Ｆｉｇ ２)ꎬ ｗｈｅｒｅａｓ Ｔｈｅｓ￣
ｐｉｓ ｄｉｖａｒｉｃａｔａ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ｃｌａｄｅ ７ ｗｉｔｈ ｍｏｓｔ Ａｆｒｉ￣
ｃａｎ ａｎｄ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚａ ｓａｍｐｌｅｄ.
３ Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
３ １ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚａ ａｎｄ ｔｈｅ
ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ
Ｔｈｒｅｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ Ｃ ｂｏｎａ￣
ｒｉｅｎｓｉｓꎬ Ｃ ｃａｎａｄｅｎｓｉｓ ａｎｄ Ｃ ｓｕｍａｔｒｅｎｓｉｓꎬ ａｒｅ
ｗｉｄｅｌｙ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｔｈｒｏｕｇｈｏｕｔ Ｃｈｉｎａ Ｔｈｅｙ ｗｅｒｅ
ｆｏｕｎｄ ｔｏ ｂｅ ｎｅｓｔｅｄ ｉｎ ｔｈｅ Ｎｏｒｔｈ Ａｍｅｒｉｃａｎ ｃｌａｄｅ
ｗｉｔｈ ｈｉｇｈ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｖａｌｕｅｓ (ｃｌａｄｅ １: ＰＰ ＝ １ ００
ａｎｄ ＢＳ ＝ ９９ ｉｎ Ｆｉｇ １ꎻ ＰＰ ＝ １ ００ ａｎｄ ＢＳ ＝ １００
ｉｎ Ｆｉｇ ２) ｏｆ Ａｓｔｅｒｅａｅ ａｎｄ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｅｒｉ￣
ｇｅｒｏｎ Ｉｎ ｐａｒｔｉｃｕｌａｒꎬ Ｅｒｉｇｅｒｏｎ ｂｒｅｖｉｓｃａｐｕｓ ｓｈａｒｅｄ
ａｎ ８４ ｂｐ ｓｅｇｍｅｎｔ ｏｆ ＥＴＳꎬ ａ ｓｙｎａｐｏｍｏｒｐｈｉｃ
ｃｈａｒａｃｔｅｒꎬ ｗｉｔｈ Ｃ ｃａｎａｄｅｎｓｉｓꎬ Ｃ ｂｏｎａｒｉｅｎｓｉｓ
ａｎｄ Ｃ ｓｕｍａｔｒｅｎｓｉｓ Ｔｈｅｓｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｓｕｐｐｏｒｔ ｐｒｅｖｉ￣
ｏｕｓ ｒｅｐｏｒｔｓ[１￣４ꎬ７ꎬ１１￣１３] ａｎｄ ｔｈｅ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
ｏｆ Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ[１４] ｔｈａｔ ｔｈｅｓｅ ｔｈｒｅｅ Ｃｏｎｙｚａ ｗｅｒｅ
ｐｌａｃｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｅｒｉｇｅｒｏｎ Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｐｒｅｖｉｏｕｓ
ｓｔｕｄｉｅｓ ａｌｓｏ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ Ｎｅｗ Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａ ｗｅｒｅ
ｎｏｔ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｏｌｄ Ｗｏｒｌｄ Ｃｏｎｙｚａꎬ ｏｎｌｙ
ｏｎｅ Ａｓｉａｎ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ Ｃ ｊａｐｏｎｉｃａ (Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ
ｊａｐａｎｉｃａ)ꎬ ｗａｓ ｉｎｃｌｕｄｅｄ[４] Ｏｕｒ ｓｔｕｄｙ ｓｈｏｗｅｄ
ｔｈａｔ ｉｎ ｔｈｅ ｔｒｅｅｓ (Ｆｉｇ １ ａｎｄ Ｆｉｇ ２) ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ ｉｎ￣
ｖａｓｉｖｅ ａｌｉｅｎ Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｆａｒ ｆｒｏｍ ｔｈｅ
Ｃｏｎｙｚａ ｎａｔｉｖｅ ｔｏ Ｃｈｉｎａ.
Ｏｕｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｔｒｅｅｓ ( Ｆｉｇ １ ａｎｄ Ｆｉｇ ２)
ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｅｄ ｔｈａｔ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙｚａ ｗｅｒｅ ｂｉｐｈｙｌｅ￣
ｔｉｃ ｂｅｃａｕｓｅ Ｃｏｎｙｚａ ｓｔｒｉｃｔａ ｖａｒ ｓｔｒｉｃｔａ ａｎｄ ｖａｒ
ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ｃｌａｄｅ ２ ａｎｄ ｗｅｒｅ ｎｏｔ
ｃｌｏｓｅ ｔｏ ｃｌａｄｅ ７ ｗｈｅｒｅ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｔｈｒｅｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ
Ｃｏｎｙｚａ ｏｃｃｕｒｒｅｄ (Ｆｉｇ １ ａｎｄ Ｆｉｇ ２) . Ｃｏｎｙｚａ ｉｎ￣
ｃｉｓａ ａｎｄ ｔｈｅ ｔｗｏ Ｃ ｓｔｒｉｃｔａ ｖａｒｉｅｔｉｅｓ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｉｎ ａ
ｗｅｌｌ￣ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｓｕｂ￣ｃｌａｄｅ (ＰＰ ＝ １ ００ꎬ ＢＳ ＝ ９５ꎻ
Ｆｉｇ １) . Ｕｎｅｘｐｅｃｔｅｄｌｙꎬ ｖａｒ ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ ｉｎｉｔｉａｌｌｙ
０２２ 植 物 科 学 学 报 第 ３２卷
Aster verticillatus
Aster tataricus
Aster ageratoides lasiocladus
Sheareria nana
Baccharis neglecta
Aster lavanduliifolius
Calotis hispidula
Lagenophora pumila
Myriactis nepalensis
Myriactis wightii
Conyza chilensis
Conyza sumatrensis
Conyza bonariensis
Conyza canadensis
Erigeron breviscapus
Symphyotrichum subulatum
Eurybia sibirica
Bellis perennis
Galatella dahurica
Tripolium vulgare
Dichrocephala auriculata
Nidorella polycephala
Grangea maderaspatana
Conyza stricta stricta
Conyza stricta pinnatifida
Conyza incisa
Welwitschiella nereifolia
Conyza ageratoides
Psiadia punctulata
Microglossa pyrifolia
Psiadia pascalii
Conyza scabrida
Conyza pyrrhopappa
Psiadia argentea
Conyza attenuata
Conyza pinnata
Conyza limosa
Conyza subscaposa
Conyza muliensis
Conyza japonica
Conyza gouanii
Conyza tigrensis
Conyza aegyptiaca
Conyza blinii
Conyza ulmifolia
Thespis divericata
Madagaster madagascariensis
Oritrophium peruvianum
Felicia aethiopica
Felicia filifolia
Mairia hirsuta
Pleurophyllum hookeri
Celmisia mackaui
Llerasia macrocephala
Chiliotrichum diffusum
Nannoglottis delavayi
Printzia polifolia
Chrysanthemum coronarium
Dendranthema indicum
Calendula officinalis
var.
var.
var.
AIS = Astereae incertae sedis
AL = Australasian lineages
BE = Bellidinae
BL = early-branching lineages
BS = Eschenbachia
GR = Grangeinae
NA = North American lineage
NZ = New Zealand clade
OG = outgroup
PSA = palaeo South American clade
SA = South American lineages
1.00/96
1.00/100 AL
SA
AL
NA
BE
GR
AIS
ES
PSA
BL
NZ
PSA
BL
OG
0.99/-
1.00/100
1.00/781.00/100
1.00/99
1.00/87
0.96/-
1.00/88
1.00/-
1.00/54
0.98/64
1.00/68
1.00/-
3
1.00/95
2
0.99/53
0.94/-
4
1.00/100
5
1.00/100
1.00/-
6
0.97/77
1.00/90
0.99/96
0.97/-
0.97/62
-/78
0.99/90
7
0.98/51
0.99/67
0.93/54
0.98/95
0.99/98
1.00/99
0.94/99
1.00/100
1
Ｂａｙｅｓｉａｎ ｐｏｓｔｅｒｉｏｒ ｐｒｏｂａｂｉｌｉｔｉｅｓ ( ≥ ０ ９０) ａｎｄ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｖａｌｕｅｓ ( ≥ ５０％) ａｒｅ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ａｂｏｖｅ ｔｈｅ ｂｒａｎｃｈｅｓꎻ “－” ｏｒ ｎｏ ｎｕｍｂｅｒ ｉｎｄｉ￣
ｃａｔｅｓ ｔｈａｔ Ｂａｙｅｓｉａｎ ｐｏｓｔｅｒｉｏｒ ｐｒｏｂａｂｉｌｉｔｉｅｓ ａｒｅ < ０ ９０ ａｎｄ ｏｒ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅｓ ａｒｅ < ５０％ Ｆｏｒ ｃｏｎｖｅｎｉｅｎｃｅ ｏｆ ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ ａｎｄ ｒｅａｄａ￣
ｂｉｌｉｔｙꎬ ｓｏｍｅ ｃｌａｄｅｓ ａｒｅ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｂｙ ｎｕｍｂｅｒｓ ｂｅｌｏｗ ｔｈｅ ｂｒａｎｃｈ Ａｂｂｒｅｖｉａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｅ ｌｉｎｅａｇｅｓ ａｒｅ ｓｈｏｗｎ ｏｎ ｔｈｅ ｒｉｇｈｔ ｓｉｄｅ ｏｆ ｔｈｅ ｔａｘａ ａｎｄ
ｅｘｐｌａｉｎｅｄ (ｓｅｅ ｆｒａｍｅ ａｔ ｔｈｅ ｔｏｐ ｌｅｆｔ￣ｈａｎｄ ｓｉｄｅ ｏｆ ｔｈｅ ｆｉｇｕｒｅ) .
Ｆｉｇ １ ５０％ ｍａｊｏｒｉｔｙ ｒｕｌｅ ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ ｔｒｅｅ ｆｒｏｍ Ｂａｙｅｓｉａｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｎｕｃｌｅａｒ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ＤＮＡ ｉｎｔｅｒｎａｌ
ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ ｓｐａｃｅｒ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ
１２２
第 ３期
钟彩霞等: 基于 ２个核糖体 ＤＮＡ序列的国产白酒草属、 小舌菊属和
歧伞菊属(菊科紫菀族)分子系统学研究(英文)
Aster verticillatus
Aster tataricus
Aster ageratoides lasiocladus
Sheareria nana
Lagenophora pumila
Aster lavanduliifolius
Myriactis nepalensis
Myriactis wightii
Conyza sumatrensis
Conyza bonariensis
Conyza canadensis
Erigeron breviscapus
Symphyotrichum subulatum
Eurybia sibirica
Bellis perennis
Galatella dahurica
Tripolium vulgare
Dichrocephala auriculata
Nidorella polycephala
Grangea maderaspatana
Conyza stricta pinnatifida
Microglossa pyrifolia
Conyza muliensis
Conyza japonica
Conyza blinii
Thespis divericata
Madagaster madagascariensis
Felicia aethiopica
Felicia filifolia
Oritrophium peruvianum
Pleurophyllum hookeri
Celmisia mackaui
Llerasia macrocephala
Chiliotrichum diffusum
Chrysanthemum coronarium
Dendranthema indicum
Calendula officinalis
var.
var.
1.00 96/
1.00 100/
1.00/100
1.00 100/
1.00 -/
1.00 98/
1.00 100/
1.00 100/
1.00 87/
1.00 98/
0.98/70
1.00/68 1.00/66
1.00/98
1.00/67
-/76
1.00/100
1.00/100
1
0.99 -/
1.00 100/
2 3
7
1.00/95
0.99/79
0.99 -/
1.00/62
1.00 100/
1.00 -/
ES
AL
NA
BE
GR
AIS
BL
PSA
NZ
PSA
OG
Ｂａｙｅｓｉａｎ ｐｏｓｔｅｒｉｏｒ ｐｒｏｂａｂｉｌｉｔｉｅｓ ( ≥ ０ ９０) ａｎｄ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｖａｌｕｅｓ ( ≥ ５０％) ａｒｅ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ａｂｏｖｅ ｔｈｅ ｂｒａｎｃｈｅｓꎻ “－” ｏｒ ｎｏ ｎｕｍｂｅｒ ｉｎ￣
ｄｉｃａｔｅｓ ｔｈａｔ Ｂａｙｅｓｉａｎ ｐｏｓｔｅｒｉｏｒ ｐｒｏｂａｂｉｌｉｔｉｅｓ ａｒｅ < ０ ９０ ａｎｄ ｏｒ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅｓ ａｒｅ < ５０％ Ｓｏｍｅ ｃｌａｄｅｓ ａｒｅ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｂｙ ｎｕｍ￣
ｂｅｒｓ ｂｅｌｏｗ ｔｈｅ ｂｒａｎｃｈꎬ ｉｄｅｎｔｉｃａｌ ｔｏ Ｆｉｇ １ Ａｂｂｒｅｖｉａｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｅ ｌｉｎｅａｇｅｓ ａｒｅ ｓｈｏｗｎ ｏｎ ｔｈｅ ｒｉｇｈｔ ｓｉｄｅ ｏｆ ｔｈｅ ｔａｘａ ａｎｄ ａｒｅ ｉｄｅｎｔｉｃａｌ ｔｏ
ｔｈｏｓｅ ｉｎ Ｆｉｇ １.
Ｆｉｇ ２ ５０％ ｍａｊｏｒｉｔｙ ｒｕｌｅ ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ ｔｒｅｅ ｆｒｏｍ Ｂａｙｅｓｉａｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｄａｔａ ｓｅｔ
(ｎｕｃｌｅａｒ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ＤＮＡ ｉｎｔｅｒｎａｌ ａｎｄ ｅｘｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ ｓｐａｃｅｒ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ)
ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｗｉｔｈ Ｃ ｉｎｃｉｓａ ｒａｔｈｅｒ ｔｈａｎ ｗｉｔｈ ｖａｒ
ｓｔｒｉｃｔａ (Ｆｉｇ １)ꎬ ａｌｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ
ｔｗｏ ｔａｘａ ｗａｓ ｌｏｗｌｙ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄꎬ ｉｍｐｌｙｉｎｇ ｔｈａｔ Ｃ
ｓｔｒｉｃｔａ ｍｉｇｈｔ ｎｏｔ ｂｅ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃ ａｎｄ ｉｓ ｉｎ ｎｅｅｄ
ｏｆ ａ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｒｅｖｉｓｉｏｎ Ａｌｔｈｏｕｇｈ Ｃ ｓｔｒｉｃｔａ ａｎｄ
Ｃ ｉｎｃｉｓａ ｗｅｒｅ ｅｍｂｅｄｄｅｄ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｌａｒｇｅ
ｃｌａｄｅ (ｃｌａｄｅ ２ꎻ Ｆｉｇ １) ａｓ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｔｈｒｅｅ Ａｆｒｉ￣
ｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ (Ｃ ａｇｅｒａｔｏｉｄｅｓꎬ Ｃ ｓｃａｂｒｉｄａ ａｎｄ
Ｃ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ)ꎬ ｔｈｅ ｆｏｒｍｅｒ ａｎｄ ｌａｔｔｅｒ ｄｉｄ ｎｏｔ
ｆｏｒｍ ａ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃ ｃｌａｄｅꎬ ｉｎｄｉｃａｔｉｎｇ ｔｈａｔ ｔｈｅ
ｆｏｒｍｅｒ ｓｈｏｕｌｄ ｂｅ ｔｒｅａｔｅｄ ａｓ ａ ｓｅｐａｒａｔｅ ｇｅｎｕｓ
Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ ｔｈｅ ｎｅｗ ｇｅｎｕｓ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ｓｕｂ￣
ｔｒｉｂｅ Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅ ｂｅｃａｕｓｅ ｉｔ ｗａｓ ｅｍｂｅｄｄｅｄ ｗｉｔｈｉｎ
ｃｌａｄｅ ２ (ＰＰ ＝ １００ ａｎｄ ＢＳ ＝ ６８ ｉｎ Ｆｉｇ １ ａｎｄ
Ｆｉｇ ２)ꎬ ｉ ｅ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｎｃｌｕｄ￣
ｅｄ ｔｙｐｉｃａｌ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｖｅｓ ｓｕｃｈ ａｓ Ｇｒａｎｇｅａꎬ Ｄｉ￣
ｃｈｒｏｃｅｐｈａｌａꎬ Ｎｉｄｏｒｅｌｌａ[６ꎬ１０] ａｎｄ Ｗｅｌｗｉｔｃｈｉｅｌｌａ [１] .
Ｉｎ ｔｈｅ ＩＴＳ ｔｒｅｅꎬ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｔｈｒｅｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ
Ｃｏｎｙｚａꎬ Ｃ ｂｌｉｎｉｉꎬ Ｃ ｍｕｌｉｅｎｓｉｓ ａｎｄ Ｃ ｊａｐｏｎｉ￣
ｃａꎬ ｆｏｒｍｅｄ ｔｈｅ ｈｉｇｈｌｙ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｃｌａｄｅ ７ (ＰＰ ＝
０ ９９ ａｎｄ ＢＳ ＝ ９０ ｉｎ Ｆｉｇ １) ｗｉｔｈ ｓｅｖｅｎ Ａｆｒｉｃａｎ
Ｃｏｎｙｚａ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ｏｎｅ Ａｆｒｉｃａｎ￣Ａｓｉａｎ Ｃｏｎｙｚａ
ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｃ ａｅａｇｙｐｔｉａｃａ) . Ｔｈｅ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｔｒｅｅ
(Ｆｉｇ ２) ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅｓｅ ｔｈｒｅｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｃｏｎｙ￣
ｚａ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｃｌａｄｅ (ｃｌａｄｅ ７ꎻ ＰＰ ＝
１ ００ꎬ ＢＳ ＝ １００) . Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ [１４] ｒｅｓｕｒｒｅｃｔｅｄ
Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｔｙｐｉｆｉｅｄ ｂｙ Ｅ ｇｌｏｂｏｓａ Ｍｏｅｎｃｈꎬ
ａ ｓｙｎｏｎｙｍ ｏｆ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ａｅｇｙｐｔｉａｃａ ( Ｌ )
２２２ 植 物 科 学 学 报 第 ３２卷
Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ ( ＝ Ｃｏｎｙｚａ ａｅｇｙｐｔｉａｃａ (Ｌ ) Ａｉｔｏｎ) ａｎｄ
ｄｅｌｉｍｉｔｅｄ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｔｏ ｉｎｃｌｕｄｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｎａｔｉｖｅ
Ｃｏｎｙｚａ (ｅｘｃｌｕｄｉｎｇ Ｃ ｓｔｒｉｃｔａ) . Ｏｕｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ
ａｎａｌｙｓｅｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｃｌａｄｅ ７ (Ｆｉｇ １ ａｎｄ Ｆｉｇ ２)
ｉｎｃｌｕｄｅｄ ｍｏｓｔ ｓａｍｐｌｅｄ ｔａｘａ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ ａｎｄ Ａｆｒｉ￣
ｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ａｎｄ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｅｓ￣
ｃｈｅｎｂａｃｈｉａ.
Ｔｈｅ Ａｆｒｉｃａｎ ｏｒｉｇｉｎ ｏｆ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｉｓ ｂａｓｅｄ
ｏｎ ｔｗｏ ｒｅａｓｏｎｓ Ｆｉｒｓｔꎬ ｔｈｅ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｃｅｎｔｅｒ ｏｆ ｔｈｅ
ｇｅｎｕｓ ｗａｓ ｌｏｃａｔｅｄ ｉｎ Ａｆｒｉｃａ ｗｈｅｒｅ ｍｏｓｔ Ｅｓｃｈｅｎ￣
ｂａｃｈｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｃｃｕｒ ( ｓｅｅ ｃｌａｄｅ ７ ｉｎ Ｆｉｇ １) .
Ｓｅｃｏｎｄｌｙꎬ ｉｔ ｓｅｅｍｓ ｔｈａｔ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｍｉｇｈｔ
ｏｒｉｇｉｎａｔｅ ｆｒｏｍ Ａｆｒｉｃａｎ ｔａｘａ ｂｅｃａｕｓｅ ｃｌａｄｅ ７ ｗａｓ
ａ ｓｉｓｔｅｒ ｔｏ ｔｈｅ Ａｆｒｉｃａｎ Ｍａｄａｇａｓｔｅｒ ｍａｄａｇａｓｃａ￣
ｒｉｅｎｓｉｓ ｃｌａｄｅ (Ｆｉｇ １) ａｎｄ ｗａｓ ｄｅｒｉｖｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ
Ａｆｒｉｃａｎ ｂａｓａｌ ｌｉｎｅａｇｅｓ (ＢＬꎻ Ｆｉｇ １ ａｎｄ Ｆｉｇ ２) . Ｉｆ
ｔｈｅ Ａｆｒｉｃａｎ ｏｒｉｇｉｎ ｏｆ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｉｓ ｔｒｕｅꎬ Ｅｓ￣
ｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｍｉｇｈｔ ｈａｖｅ ａｒｒｉｖｅｄ ｉｎ ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｃｈｉｎａ
ｂｙ ｌｏｎｇ￣ｄｉｓｔａｎｃｅ ｄｉｓｐｅｒｓａｌ ｆｒｏｍ Ａｆｒｉｃａ Ｔｒａｎｓ￣
ｃｏｎｔｉｎｅｎｔａｌ ｏｒｉｇｉｎｓ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｗｅｌｌ ｄｏｃｕｍｅｎｔｅｄ
ｗｉｔｈｉｎ Ａｓｔｅｒｅａｅ[１１ꎬ３８] .
Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ ｔｈｅ ｄｉｓｐｅｒｓａｌ ｈａｐｐｅｎｅｄ ｓｅｖｅｒ￣
ａｌ ｔｉｍｅｓ ｂｅｃａｕｓｅ ｔｈｅ ｆｏｕｒ ｓａｍｐｌｅｄ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｅｓ￣
ｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ Ｔｈｅｓｐｉｓ ｄｉｖａｒｉｃａ￣
ｔａ ( ｄｉｓｃｕｓｓｅｄ ｂｅｌｏｗ)ꎬ ｄｉｄ ｎｏｔ ｆｏｒｍ ａ ｓｉｎｇｌｅ
ｃｌａｄｅ ( Ｆｉｇ １) . Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ Ｃ ｊａｐｏｎｉｃａ ｗａｓ
ｍｏｒｅ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｔｈａｎ Ｃ
ｍｕｌｉｅｎｓｉｓ ａｎｄ Ｃ ｂｌｉｎｉｉ ｅｎｄｅｍｉｃ ｔｏ Ｃｈｉｎａꎬ ａｎｄ
ｔｈｅ ｔｗｏ ｅｎｄｅｍｉｃ ｓｐｅｃｉｅｓ ｓｅｅｍ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ
ｃｌｏｓｅｒ ｔｏ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｔｈａｎ ｔｏ ｅａｃｈ ｏｔｈｅｒ.
Ｎｅｓｏｍ[９] ａｎｄ Ｎｅｓｏｍ ａｎｄ Ｒｏｂｉｎｓｏｎ[１０] ｓｕｇ￣
ｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｗｅｒｅ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ
ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅ ｏｒ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ ｇｅｎｅｒａ
ｏｆ ｔｈｅ ｓｂｕｔｒｉｂｅꎬ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｂｙ Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ
ｅｔ ａｌ [１] ｂｕｔ ｎｏｔ ｆｕｌｌｙ ｂｙ ｏｕｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ( Ｆｉｇ １ ａｎｄ
Ｆｉｇ ２) . Ａｌｔｈｏｕｇｈ ａ ｆｅｗ Ａｆｒｉｃａｎ ａｎｄ Ａｓｉａｎ Ｃｏｎｙｚａ
ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅꎬ ｍｏｓｔ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ Ｅｓ￣
ｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ａｎｄ ｗｅｒｅ ｎｏｔ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ
Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅ ( Ｆｉｇ １ ａｎｄ Ｆｉｇ ２ ) . Ｉｎ ｔｈｅ ｔｒｅｅｓ
(Ｆｉｇ １ ａｎｄ Ｆｉｇ ２)ꎬ ｃｌａｄｅ ２ (ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｇｒａｎｇｅｉｎ￣
ａｅ) ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ａ ｂｉｇ ｃｌａｄｅ ｗｉｔｈ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｂｅｌｌｉ￣
ｎａｅ ( ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｂｙ Ｂｅｌｌｉｓ ｐｅｒｅｎｎｉｓ )ꎬ Ｎｏｒｔｈ
Ａｍｅｒｉｃａｎ ａｎｄ Ａｕｓｔｒａｌａｓｉａｎ ｌｉｎｅａｇｅｓꎬ ｗｈｅｒｅａｓ
ｃｌａｄｅ ７ ( Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ) ｗａｓ ｓｉｓｔｅｒ ｔｏ ｔｈｅ ｂｉｇ
ｃｌａｄｅ ｂｕｔ ｎｏｔ ｗｉｔｈｉｎ ｉｔ Ｉｔ ｉｓꎬ ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｒｅａｓｏｎａ￣
ｂｌｅ ｔｏ ｔｒｅａｔ ｃｌａｄｅ ７ (Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ) ａｓ ａ ｎｅｗ
ｓｅｐａｒａｔｅ ｓｕｂｔｒｉｂｅ ｂｅｃａｕｓｅ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ ｃａｎ ｎｏｔ
ｂｅ ｐｌａｃｅｄ ｗｉｔｈｉｎ ａｎｙ ｅｘｉｓｔｅｎｔ ｓｕｂｔｒｉｂｅｓ.
３ ２ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ Ｔｈｅｓｐｉｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ
ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ
Ｕｐ ｔｏ ｎｏｗꎬ ｂｏｔａｎｉｓｔｓ ｈａｖｅ ｒｅｃｏｇｎｉｚｅｄ ｔｈｅ
ｇｅｎｅｒｉｃ ｓｔａｔｕｓ ｏｆ Ｔｈｅｓｐｉｓꎬ ｂｕｔ ｐｌａｃｅｄ ｉｔ ｉｎ ｄｉｆｆｅ￣
ｒｅｎｔ ｓｕｂｔｒｉｂｅｓꎬ Ｃｏｎｙｚｉｎａｅ[６]ꎬ Ａｓｔｅｒｉｎａｅ[１６] ｏｒ
Ｌａｇｅｎｏｐｈｏｒｉｎａｅ[９ꎬ１０]ꎬ ｏｒ ｔｒｅａｔｅｄ ｉｔ ａｓ ａｎ ｉｓｏｌａｔｅｄ
ｇｅｎｕｓ ｏｆ Ａｓｔｅｒｅａｅ[１５]ꎬ ｏｒ ａｖｏｉｄｅｄ ｄｉｓｃｕｓｓｉｎｇ ｉｔｓ
ｓｕｂｔｒｉｂａｌ ｐｏｓｉｔｉｏｎ[１４] Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｏｕｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ
ｔｒｅｅｓ ( Ｆｉｇ １ ａｎｄ Ｆｉｇ ２ ) ｒｅｊｅｃｔｅｄ ａｌｌ ｐｒｅｖｉｏｕｓ
ｔｒｅａｔｍｅｎｔｓ Ｔｈｅｓｐｉｓ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ｔｈｅ ｓｔｒｏｎｇｌｙ
ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｃｌａｄｅ ７ (ＰＰ ＝ ０ ９９ ａｎｄ ＢＳ ＝ ９０ ｉｎ
Ｆｉｇ １ꎻ ＰＰ ＝ １ ００ ａｎｄ ＢＳ ＝ １００ ｉｎ Ｆｉｇ ２) ａｎｄ
ｗａｓ ｎｅｓｔｅｄ ａｍｏｎｇ ｓｏｍｅ Ａｆｒｉｃａｎ ａｎｄ Ｃｈｉｎｅｓｅ
Ｃｏｎｙｚａ (Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ)ꎬ ｉｎｄｉｃａｔｉｎｇ ｔｈａｔ Ｔｈｅｓｐｉｓ
ｓｈｏｕｌｄ ｂｅ ｍｅｒｇｅｄ ｉｎｔｏ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ Ｔｈｅｓｐｉｓ
ｓｐｅｃｉｅｓ ａｒｅ ａｎｎｕａｌ ｈｅｒｂｓ ｗｉｔｈ ａｌｔｅｒｎａｔｅ ｓｉｍｐｌｅ
ｌｅａｖｅｓꎬ ｓｍａｌｌ ｄｉｓｃｉｆｏｒｍ ｃａｐｉｔｕｌａ ｗｉｔｈ ２￣ｓｅｒｉａｔｅ
ｈｅｒｂａｃｅｏｕｓ ｓｕｂｅｑｕａｌ ｐｈｙｌｌａｒｉｅｓꎬ ｍｕｌｔｉｓｅｒｉａｔｅ ｆｅｒ￣
ｔｉｌｅ ｐｉｓｔｉｌｌａｔｅ ｆｌｏｒｅｔｓꎬ ａｎｄ ｈａｖｅ ｓｌｉｇｈｔｌｙ ｃｏｍ￣
ｐｒｅｓｓｅｄ ａｃｈｅｎｅｓ ｗｉｔｈ １￣ｓｅｒｉａｔｅ ｂａｒｂｅｌｌａｔｅ ｂｒｉｓｔｌｅ
ｐａｐｐｕｓ ｔｈａｔ ｉｓ ｌａｒｇｅｌｙ ｉｄｅｎｔｉｃａｌ ｔｏ ｔｈａｔ ｉｎ ｏｔｈｅｒ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｅｓｃｈｅｎｂａｃｈｉａ[１４] . Ｔｈｅｓｐｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ
ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ａｒｅ ｑｕｉｔｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｆｒｏｍ ｏｔｈｅｒ Ｅｓｃｈｅｎ￣
ｂａｃｈｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｓｏｍｅ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓ￣
ｔｉｃｓ Ｆｉｒｓｔｌｙꎬ ｔｈｅ ｈｅａｄｓ ｉｎ Ｔｈｅｓｐｉｓ ａｒｅ ｆａｓｃｉｃｌｅｄ
ｉｎ ｄｉｖａｒｉｃａｔｅｌｙ ｂｒａｎｃｈｅｄ ｃｏｒｙｍｂｉｆｏｒｍ ｓｙｎｆｌｏｒｅｓ￣
ｃｅｎｃｅｓ Ｓｅｃｏｎｄｌｙꎬ ｔｈｅｉｒ ｄｉｓｃ ｆｌｏｒｅｔｓ ａｒｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎ￣
ａｌｌｙ ｍａｌｅ ａｎｄ ｓｔｅｒｉｌｅ Ｆｉｎａｌｌｙꎬ ｔｈｅ ｄｉｓｃ ｆｌｏｒｅｔｓ
ｓｏｍｅｔｉｍｅｓ ｈａｖｅ ｎｏ ｐａｐｐｕｓ ａｎｄ ｔｈｅ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ
ｆｅｍａｌｅ ｆｌｏｒｅｔｓ ｌａｃｋ ｃｏｒｏｌｌａ Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ Ｔｈｅｓｐｉｓ
ｗｏｕｌｄ ｂｅ ｂｅｔｔｅｒ ｔｒｅａｔｅｄ ａｓ ａ ｓｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｅｓｃｈｅｎ￣
ｂａｃｈｉａ.
３２２
第 ３期
钟彩霞等: 基于 ２个核糖体 ＤＮＡ序列的国产白酒草属、 小舌菊属和
歧伞菊属(菊科紫菀族)分子系统学研究(英文)
３ ３ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ａｎｄ ｔｈｅ ｔａｘｏ￣
ｎｏｍｉｃ ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ
Ｌｉｎｇ ｅｔ ａｌ [６]ꎬ Ｚｈａｎｇ ａｎｄ Ｂｒｅｍｅｒ[１５] ａｎｄ
Ｂｒｅｍｅｒ[１６] ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｗａｓ ｒｅｌａｔ￣
ｅｄ ｔｏ Ｃｏｎｙｚａꎬ ｗｈｅｒｅａｓ Ｎｅｓｏｍ ａｎｄ Ｒｏｂｉｎｓｏｎ[１０]
ｃｏｕｌｄ ｎｏｔ ａｓｓｉｇｎ ｉｔ ｔｏ ａｎｙ ｋｎｏｗｎ ｓｕｂｔｒｉｂｅ ｏｆ Ａｓ￣
ｔｅｒｅａｅ Ｔｈｅ ｔｗｏ ｔｒｅｅｓ ( Ｆｉｇｓ １ ａｎｄ ２) ｄｅｍｏｎ￣
ｓｔｒａｔｅｄ ｔｈａｔ Ｍ ｐｙｒｉｆｏｌｉａ ｗａｓ ｅｍｂｅｄｄｅｄ ｄｅｅｐｌｙ ｉｎ
ｃｌａｄｅ ２ (ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅ)ꎬ ｗｈｉｃｈ ｄｏｅｓ ｎｏｔ
ｓｕｐｐｏｒｔ ａｎｙ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｎ ｔｈｅ ｓｕｂｔｒｉｂａｌ ｐｏ￣
ｓｉｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｐｙｒｉｆｏｌｉａ ｆｏｒｍｅｄ
ａ ｓｔｒｏｎｇｌｙ ｓｕｐｐｏｒｔｅｄ ｃｌａｄｅ (ＰＰ ＝ １ ００ ａｎｄ
ＢＳ ＝ １００ ｉｎ Ｆｉｇ １) ｗｉｔｈ Ｐｓｉａｄｉａ ｐａｓｃａｌｉｉ ａｎｄ ｆｕｒ￣
ｔｈｅｒ ｃｏｍｂｉｎｅｄ Ｃ ｓｃａｂｒｉｄａ ａｎｄ Ｃ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ
ｔｏ ｆｏｒｍ ｃｌａｄｅ ６ (ＰＰ ＝ １ ００ꎻ Ｆｉｇ １) . Ｃｌａｄｅ ６
ｗａｓ ｏｎｅ ｏｆ ｔｈｒｅｅ ｓｕｂｃｌａｄｅｓ ｉｎ ｃｌａｄｅ ４ꎬ ａｓ ｗａｓ
ｃｌａｄｅ ５ (ＰＰ ＝ １ ００ ａｎｄ ＢＳ ＝ １００ ｉｎ Ｆｉｇ １)ꎬ
ｔｈｅ ｐｒｉｎｃｉｐａｌ ｐａｒｔ ｏｆ Ｐｓｉａｄｉａ ｒｅ￣ｄｅｌｉｍｉｔａｔｅｄ ｂｙ Ｓｔｒｉ￣
ｊｋ[３] ａｎｄ Ｓｔｒｉｊｋ ｅｔ ａｌ [５] Ｓｔｒｉｊｋ[３] ｅｘｐａｎｄｅｄ Ｐｓｉａ￣
ｄｉａ ｔｏ ｉｎｃｌｕｄｅ ｓｏｍｅ Ａｆｒｉｃａｎ Ｃｏｎｙｚａ ｓｕｃｈ ａｓ Ｃ
ｓｃａｂｒｉｄａ ａｎｄ Ｃ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ ｏｆ ｃｌａｄｅ ６ (Ｆｉｇ １).
Ｔｈｅ ｌａｔｔｅｒ ｔｗｏ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｎｏｔ ｅｍｂｅｄｄｅｄ ｗｉｔｈｉｎ
ｃｌａｄｅ ５ ( Ｆｉｇ １)ꎬ ｈｏｗｅｖｅｒ Ｓｔｒｉｊｋ[３] ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ
Ｃ ｓｃａｂｒｉｄａ ａｎｄ Ｃ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ ｔｏ Ｐｓｉａｄｉａꎬ
ｗｈｉｃｈ ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｃｌａｄｅ ４ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ
Ｐｓｉａｄｉａ ａｎｄ ｔｈａｔ Ｗｅｌｗｉｔｓｃｈｉｅｌｌａ ａｎｄ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ
(ａｔ ｌｅａｓｔ Ｍ ｐｙｒｉｆｏｌｉａ) ｓｈｏｕｌｄ ｂｅ ｍｅｒｇｅｄ ｉｎｔｏ Ｐｓｉ￣
ａｄｉａ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａꎬ ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｉｓ ｑｕｉｔｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｆｒｏｍ Ｐｓｉａｄｉａ ｂｙ ｉｔｓ ｉｎｆｌｏｒｅｓｃｅｎｃｅｓ ｏｆ ｄｅｎｓｅ ｃｏｒ￣
ｙｍｂｏｓｅ ｔｏ ｓｕｂｇｌｏｂｏｓｅ ｃｙｍｅｓ ( ｖｓ ｃｏｒｙｍｂｏｓｅ
ｏｎｅｓ ｉｎ Ｐｓｉａｄｉａ)ꎬ ｒｅｃｅｐｔａｃｌｅｓ ｗｉｔｈ ｎｏ ｐａｌｅａｅ (ｖｓ
ｍｉｎｕｔｅｌｙ ｐａｌｅａｅ)ꎬ ｗｈｉｔｅ ( ｖｓ ｙｅｌｌｏｗ ) ｍａｒｇｉｎａｌ
ａｎｄ ｄｉｓｃ ｆｌｏｒｅｔｓꎬ ａｎｄ ｐｅｒｆｅｃｔ ( ｖｓ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｌｙ
ｍａｌｅ) ｄｉｓｃ ｆｌｏｒｅｔｓ Ａｌｓｏꎬ Ｗｅｌｗｉｔｓｃｈｉｅｌｌａ ｄｉｆｆｅｒｓ
ｆｒｏｍ Ｐｓｉａｄｉａ ｂｙ ｉｔｓ ｈｅｒｂａｃｅｏｕｓ ( ｖｓ ｓｈｒｕｂｂｙ )
ｓｔｅｍｓꎬ ｒｅｃｅｐｔａｃｌｅｓ ｗｉｔｈ ｎｏ ｐａｌｅａｅ ( ｖｓ ｍｉｎｕｔｅｌｙ
ｐａｌｅａｔｅ) ａｎｄ ｐａｐｐｕｓ ｏｆ ｔｏｏｔｈｅｄ ｓｃａｌｅｓ (ｖｓ ｂｒｉｓ￣
ｔｌｅｓ) . Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｉｔ ｉｓ ｒｅａｓｏｎａｂｌｅ ｔｏ ｍａｉｎｔａｉｎ ｔｈｅ
ｇｅｎｅｒｉｃ ｓｔａｔｕｓ ｏｆ Ｗｅｌｗｉｔｓｃｈｉｅｌｌａ ａｎｄ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ
ａｎｄ ｔｒｅａｔ Ｐｓｉａｄｉａ ｐａｓｃａｌｉｉꎬ Ｃ ｓｃａｂｒｉｄａ ａｎｄ Ｃ
ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ ａｓ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｒａｔｈｅｒ
ｔｈａｎ ａｓ Ｐｓｉａｄｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ Ｍｏｒｅ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｒｏｍ
ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｄａｔａꎬ ｃｙｔｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ｉｓ ｎｅｃ￣
ｅｓｓａｒｙ ｔｏ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅ ｔｈｅ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｓｔａｔｕｓ ｏｆ Ｍｉ￣
ｃｒｏｇｌｏｓｓａꎬ Ｗｅｌｗｉｔｓｃｈｉｅｌｌａꎬ Ｐｓｉａｄｉａ ｐａｓｃａｌｉｉꎬ Ｃ
ｓｃａｂｒｉｄａ ａｎｄ Ｃ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ.
Ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｅｍｅｎｔｓ: Ｗｅ ｔｈａｎｋ ｔｈｅ ｒｅｆｅｒｅｅｓ ｆｏｒ ｔｈｅｉｒ
ｕｓｅｆｕｌ ｃｏｍｍｅｎｔｓꎬ ｓｕｇｇｅｓｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｑｕｅｓｔｉｏｎｓꎻ Ｄｒ
ＹＡＮＧ Ｆｕ￣Ｓｈｅｎｇ ｆｏｒ ｈｉｓ ｈｅｌｐ ｉｎ ａｎａｌｙｓｉｎｇ ｔｈｅ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
ｄａｔａ ａｎｄ Ｍｓ ＺＨＡＮＧ Ｐｉｎｇ ｆｏｒ ｆｉｅｌｄ ａｓｓｉｓｔａｎｃｅ.
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:
[ １ ] Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ Ｌꎬ Ａｎｄｅｒｂｅｒｇ ＡＡꎬ Ｎｅｓｏｍ ＧＬꎬ Ｌｏｗｒｅｙ
ＴＫꎬ Ｕｒｂａｔｓｃｈ ＬＥ Ｗｅｌｗｉｔｓｃｈｉｅｌｌａ ｉｓ ａ ｍｅｍｂｅｒ ｏｆ
ｔｈｅ Ａｆｒｉｃａｎ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｇｒａｎｇｅｉｎａｅ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ Ａｓ￣
ｔｅｒｅａｅ): ａ ｎｅｗ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｐｏｓｉｔｉｏｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ
ｎｄｈＦ ａｎｄ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｄａｔａ [ Ｊ ] . Ｋｅｗ Ｂｕｌｌꎬ
２００９ꎬ ６４: ６４５－６６０.
[ ２ ] Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ Ｌꎬ Ｌｏｗｒｅｙ ＴＫꎬ Ｕｒｂａｔｓｃｈ Ｌꎬ Ｋａｒａｍａｎ￣
Ｃａｓｔｒｏ Ｖꎬ Ｓａｎｃｈｏ Ｇꎬ Ｗａｇｓｔａｆｆ Ｓꎬ Ｓｅｍｐｌｅ ＪＣ
Ａｓｔｅｒｅａｅ [Ｍ] ∥ Ｆｕｎｋ ＶＡꎬ Ｓｕｓａｎｎａ Ａꎬ Ｓｔｕｅｓｓｙ
ＴＦꎬ Ｂａｙｅｒ ＲＪꎬ ｅｄｓ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃｓꎬ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ａｎｄ
Ｂｉｏｇｅｏｇｒａｐｈｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｃｏｍｐｏｓｉｔａｅ Ｖｉｅｎｎａ: ＩＡＰＴꎬ
２００９: ４４９－４９０.
[ ３ ] Ｓｔｒｉｊｋ Ｊ Ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｖｅｒｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ
ｉｎ ｔｈｅ Ｍａｄａｇａｓｃａｒ ａｎｄ Ｉｎｄｉａｎ Ｏｃｅａｎ Ｉｓｌａｎｄｓ
ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｈｏｔｓｐｏｔ[Ｄ] . Ｔｏｕｌｏｕｓｅ: Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔé ｄｅ
Ｔｏｕｌｏｕｓｅꎬ ２０１０.
[ ４ ] Ｌｉ ＷＰꎬ Ｙａｎｇ ＦＳꎬ Ｊｉｖｋｏｖａ Ｔꎬ Ｙｉｎ ＧＳ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅ￣
ｔｉｃ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ａｎｄ ｇｅｎｅｒｉｃ ｄｅｌｉｍｉｔａｔｉｏｎ ｏｆ Ｅｕｒａｓｉａｎ
Ａｓｔｅｒ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ: Ａｓｔｅｒｅａｅ) ｉｎｆｅｒｒｅｄ ｆｒｏｍ ＩＴＳꎬ
ＥＴＳ ａｎｄ ｔｒｎＬ￣Ｆ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｄａｔａ [ Ｊ ] . Ａｎｎ Ｂｏｔꎬ
２０１２ꎬ １０９: １３４１－１３５７.
[ ５ ] Ｓｔｒｉｊｋ ＪＳꎬ Ｎｏｙｅｓ ＲＤꎬ Ｓｔｒａｓｂｅｒｇ Ｄꎬ Ｃｒｕａｕｄ Ｃꎬ
Ｇａｖｏｒｙ Ｆꎬ Ｃｈａｓｅ ＭＷꎬ Ａｂｂｏｔｔ ＲＪꎬ Ｔｈéｂａｕｄ Ｃ
Ｉｎ ａｎｄ ｏｕｔ ｏｆ Ｍａｄａｇａｓｃａｒ: ｄｉｓｐｅｒｓａｌ ｔｏ ｐｅｒｉｐｈｅｒａｌ
ｉｓｌａｎｄｓꎬ ｉｎｓｕｌａｒ ｓｐｅｃｉａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｉｖｅｒｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ
Ｉｎｄｉａｎ Ｏｃｅａｎ ｄａｉｓｙ ｔｒｅｅｓ (Ｐｓｉａｄｉａꎬ Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)
[Ｊ] . ＰｌｏＳ Ｏｎｅꎬ ２０１２ꎬ ７ (８): ｅ４２９３２.
[ ６ ] Ｌｉｎｇ Ｒꎬ Ｃｈｅｎ ＹＬꎬ Ｓｈｉ Ｚ Ａｓｔｅｒｅａｅ[Ｍ]∥Ｌｉｎｇ Ｒꎬ
Ｃｈｅｎ ＹＬꎬ Ｓｈｉ Ｚꎬ ｅｄｓ Ｆｌｏｒａ Ｒｅｉｐｕｂｌｉｃａｅ Ｐｏｐｕｌａｒｉｓ
Ｓｉｎｉｃａｅ: Ｖｏｌ ７４ Ｂｅｉｊｉｎｇ: Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｒｅｓｓꎬ １９８５:
７０－３５３.
[ ７ ] Ｎｅｓｏｍ ＧＬ Ｇｅｎｅｒｉｃ ｃｏｎｓｐｅｃｔｕｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔｒｉｂｅ Ａｓ￣
４２２ 植 物 科 学 学 报 第 ３２卷
ｔｅｒｅａｅ ( Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ) ｉｎ Ｎｏｒｔｈ Ａｍｅｒｉｃａꎬ Ｃｅｎｔｒａｌ
Ａｍｅｒｉｃａꎬ ｔｈｅ Ａｎｔｉｌｌｅｓꎬ ａｎｄ Ｈａｗａｉｉ [ Ｊ] . Ｓｉｄａ Ｂｏｔ
Ｍｉｓｃꎬ ２０００ꎬ ２０: １－１００.
[ ８ ] Ｎｅｓｏｍ ＧＬ Ｆｕｒｔｈｅｒ ｄｅｆｉｎｉｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｏｎｙｚａ ( Ａｓｔｅｒ￣
ａｃｅａｅ: Ａｓｔｅｒｅａｅ ) [ Ｊ ] . Ｐｈｙｔｏｌｏｇｉａꎬ １９９０ꎬ ６８:
２２９－２３３.
[ ９ ] Ｎｅｓｏｍ ＧＬ Ｓｕｂｔｒｉｂａｌ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ａｓｔｅｒｅａｅ
(Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ) [ Ｊ] . Ｐｈｙｔｏｌｏｇｉａꎬ １９９４ꎬ ７６: １９３ －
２７４.
[１０] Ｎｅｓｏｍ ＧＬꎬ Ｒｏｂｉｎｓｏｎ Ｈ Ｔｒｉｂｅ Ａｓｔｅｒｅａｅ Ｃａｓｓ
[Ｍ]∥Ｋａｄｅｒｅｉｔ ＪＷꎬ Ｊｅｆｆｒｅｙ Ｃꎬ ｅｄｓ Ｔｈｅ Ｆａｍｉｌｉｅｓ
ａｎｄ Ｇｅｎｅｒａ ｏｆ Ｖａｓｃｕｌａｒ Ｐｌａｎｔｓ Ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ ｐｌａｎｔｓ:
Ｅｕｄｉｃｏｔｓ: Ａｓｔｅｒａｌｅｓ Ｂｅｒｌｉｎ: Ｓｐｒｉｎｇｅｒꎬ ２００７:
２８４－３４２.
[１１] Ｎｏｙｅｓ ＲＤꎬ Ｒｉｅｓｅｂｅｒｇ ＬＨ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｄａｔａ
ｓｕｐｐｏｒｔ ａ ｓｉｎｇｌｅ ｏｒｉｇｉｎ ｆｏｒ Ｎｏｒｔｈ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ａｓｔｅｒｅ￣
ａｅ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ) ａｎｄ ｒｅｆｌｅｃｔ ｄｅｅｐ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃ ｄｉ￣
ｖｉｓｉｏｎｓ ｉｎ Ａｓｔｅｒ ｓ ｌ [ Ｊ] . Ａｍ Ｊ Ｂｏｔꎬ １９９９ꎬ ８６:
３９８－４１２.
[１２] Ｎｏｙｅｓ ＲＤ Ｂｉｏｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌ ａｎｄ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ ｉｎ￣
ｓｉｇｈｔｓ ｏｎ Ｅｒｉｇｅｒｏｎ ａｎｄ ａｌｌｉｅｓ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ) ｆｒｏｍ
ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｄａｔａ [ Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｓｙｓｔ Ｅｖｏｌꎬ ２０００ꎬ
２２０: ９３－１１４.
[１３] Ｆｉｚ Ｏꎬ Ｖａｌｃａｒｃｅｌ Ｖꎬ Ｖａｒｇａｓ Ｐ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｐｏｓｉ￣
ｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｅｄｉｔｅｒｒａｎｅａｎ Ａｓｔｅｒｅａｅ ａｎｄ ｃｈａｒａｃｔｅｒ ｅｖｏ￣
ｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ｄａｉｓｉｅｓ (Ｂｅｌｌｉｓꎬ Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ) ｉｎｆｅｒｒｅｄ ｆｒｏｍ
ｎｒＤＮＡ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ[Ｊ] . Ｍｏｌ Ｐｈｙｌ Ｅｖｏｌꎬ ２００２ꎬ
２５: １５７－１７１.
[１４] Ｃｈｅｎ ＹＬꎬ Ｃｈｅｎ ＹＳꎬ Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ Ｌꎬ Ｓｅｍｐｌｅ ＪＣ
Ｔｒｉｂｅ Ａｓｔｅｒｅａｅ [Ｍ] ∥Ｗｕ ＺＹꎬ Ｒａｖｅｎ ＰＨꎬ ｅｄｓ
Ｆｌｏｒａ ｏｆ Ｃｈｉｎａ: Ｖｏｌ ２１ Ｂｅｉｊｉｎｇ ａｎｄ Ｓｔ Ｌｏｕｉｓ:
Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｐｒｅｓｓ ａｎｄ Ｍｉｓｓｏｕｒｉ Ｂｏｔａｎｉｃａｌ Ｇａｒｄｅｎ
Ｐｒｅｓｓꎬ ２０１１: ９３０－１１１１.
[１５] Ｚｈａｎｇ ＸＰꎬ Ｂｒｅｍｅｒ Ｋ Ａ ｃｌａｄｉｓｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ
ｔｒｉｂｅ Ａｓｔｅｒｅａｅ ( Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ) ｗｉｔｈ ｎｏｔｅｓ ｏｎ ｔｈｅｉｒ
ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｕｂｔｒｉｂａｌ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ[Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｓｙｓｔ
Ｅｖｏｌꎬ １９９３ꎬ １８４: ２５９－２８３.
[１６] Ｂｒｅｍｅｒ Ｋ Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ－Ｃｌａｄｉｓｔｉｃｓ ａｎｄ Ｃｌａｓｓｉｆｉｃａ￣
ｔｉｏｎ[Ｍ] . Ｐｏｒｔｌａｎｄꎬ ＯＲ: Ｔｉｍｂｅｒ Ｐｒｅｓｓꎬ １９９４.
[１７] Ｍｏｒｇａｎ ＤＲ Ｒｅｔｉｃｕｌａｔｅ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｉｎ Ｍａｃｈａｅｒａｎ￣
ｔｈｅｒａ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)[Ｊ]. Ｓｙｓｔ Ｂｏｔꎬ １９９７ꎬ ２２: ５９９－
６１５.
[１８] Ｂａｙｅｒ ＲＪꎬ Ｇｒｅｂｅｒ ＤＧꎬ Ｂａｇｎａｌｌ ＮＨ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｏｆ
Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ Ｇｎａｐｈａｌｉｅａｅ ( Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ) ｂａｓｅｄ ｏｎ
ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ａｎｄ ｎｕｃｌｅａｒ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓꎬ ｔｈｅ ｔｒｎＬ ｉｎ￣
ｔｒｏｎꎬ ｔｒｎＬ / ｔｒｎＦ ｉｎｔｅｒｇｅｎｉｃ ｓｐａｃｅｒꎬ ｍａｔＫꎬ ａｎｄ ＥＴＳ
[Ｊ] . Ｓｙｓｔ Ｂｏｔꎬ ２００２ꎬ ２７: ８０１－８１４.
[１９] Ｌｉｕ ＪＱꎬ Ｇａｏ ＴＧꎬ Ｃｈｅｎ ＺＤꎬ Ｌｕ ＡＭ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ａｎｄ ｂｉｏｇｅｏｇｒａｐｈｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｑｉｎｇｈａｉ￣Ｔｉｂｅｔ
Ｐｌａｔｅａｕ ｅｎｄｅｍｉｃ Ｎａｎｎｏｇｌｏｔｔｉｓ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ) [ Ｊ] .
Ｍｏｌ Ｐｈｙｌ Ｅｖｏｌꎬ ２００２ꎬ ２３: ３０７－３２５.
[２０] Ｗａｇｓｔａｆｆ ＳＪꎬ Ｂｒｅｉｔｗｉｅｓｅｒ Ｉ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｒｅｌａｔｉｏｎ￣
ｓｈｉｐｓ ｏｆ Ｎｅｗ Ｚｅａｌａｎｄ Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ ｉｎｆｅｒｒｅｄ ｆｒｏｍ ＩＴＳ
ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ[Ｊ]. Ｐｌａｎｔ Ｓｙｓｔ Ｅｖｏｌꎬ ２００２ꎬ ２３１: ２０３ －
２２４.
[２１] Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔ Ｌꎬ Ｕｒｂａｔｓｃｈ ＬＥꎬ Ｒｏｂｅｒｔｓ ＲＰ Ｔｏｎｅｓｔｕｓ
ｋｉｎｇｉｉ ａｎｄ Ｔ ａｂｅｒｒａｎｓ ａｒｅ ｒｅｌａｔｅｄ ｔｏ Ｅｕｒｙｂｉａ ａｎｄ
ｔｈｅ Ｍａｃｈａｅｒａｎｔｈｅｒｉｎａｅ ( Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ: Ａｓｔｅｒｅａｅ)
ｂａｓｅｄ ｏｎ ｎｒＤＮＡ ( ＩＴＳ ａｎｄ ＥＴＳ) ｄａｔａ: ｒｅｉｎｓｔａｔｅ￣
ｍｅｎｔ ｏｆ Ｈｅｒｒｉｃｋｉａ ａｎｄ ａ ｎｅｗ ｇｅｎｕｓꎬ Ｔｒｉｎｉｔｅｕｒｙｂｉａ
[Ｊ] . Ｓｉｄａꎬ Ｃｏｎｔｒｉｂ Ｂｏｔꎬ ２００４ꎬ ２１: ８８９－９００.
[２２] Ｋａｒａｍａｎ Ｖ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｏｆ Ｈｉｎｔｅｒｈｕｂｅｒａꎬ Ｎｏｖｅｎｉａ
ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ｎｕｃｌｅａｒ ｒｉｂｏｓｏ￣
ｍａｌ (ｎｒ) ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｄａｔａ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ: Ａｓ￣
ｔｅｒｅａｅ) [Ｄ] . Ｂａｔｏｎ Ｒｏｕｇｅ: Ｌｏｕｉｓｉａｎａ Ｓｔａｔｅ Ｕｎｉ￣
ｖｅｒｓｉｔｙꎬ ２００６.
[２３] Ｓｈｉｍａｍｕｒａ Ｒꎬ Ｗａｔａｎａｂｅ Ｋ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｓｙｓｔｅｍａ￣
ｔｉｃｓ ｏｆ Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ Ｃａｌｏｔｉｓ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ: Ａｓｔｅｒｅａｅ)
[Ｊ] . Ａｕｓｔ Ｓｙｓｔ Ｂｏｔꎬ ２００６ꎬ １９: １５５－１６８.
[２４] Ｋａｒａｍａｎ￣Ｃａｓｔｒｏ Ｖꎬ Ｕｒｂａｔｓｃｈ ＬＥ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｏｆ
Ｈｉｎｔｅｒｈｕｂｅｒａ ｇｒｏｕｐ ａｎｄ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｅｎｅｒａ (Ｈｉｎｔｅｒｈｕ￣
ｂｅｒｉｎａｅ: Ａｓｔｅｒｅａｅ) ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ｎｒＤＮＡ ＩＴＳ ａｎｄ
ＥＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ [ Ｊ] . Ｓｙｓｔ Ｂｏｔꎬ ２００９ꎬ ３４: ８０５ －
８１７.
[２５] Ｗａｇｓｔａｆｆ ＳＪꎬ Ｂｒｅｉｔｗｉｅｓｅｒ Ｉꎬ Ｉｔｏ Ｍ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ａｎｄ
ｂｉｏｇｅｏｇｒａｐｈｙ ｏｆ Ｐｌｅｕｒｏｐｈｙｌｌｕｍ (Ａｓｔｅｒｅａｅꎬ Ａｓｔｅｒ￣
ａｃｅａｅ)ꎬ ａ ｓｍａｌｌ ｇｅｎｕｓ ｏｆ ｍｅｇａｈｅｒｂｓ ｅｎｄｅｍｉｃ ｔｏ
ｔｈｅ ｓｕｂａｎｔａｒｃｔｉｃ ｉｓｌａｎｄｓ[Ｊ] . Ａｍ Ｊ Ｂｏｔꎬ ２０１１ꎬ ９８:
６２－７５.
[２６] Ｂｏｎｉｆａｃｉｎｏ ＪＭꎬ Ｆｕｎｋ ＶＡ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ ｔｈｅ
Ｃｈｉｌｉｏｔｒｉｃｈｕｍ ｇｒｏｕｐ ( Ｃｏｍｐｏｓｉｔａｅ: Ａｓｔｅｒｅａｅ ):
Ｔｈｅ ｓｔｏｒｙ ｏｆ ｔｈｅ ｆａｓｃｉｎａｔｉｎｇ ｒａｄｉａｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｐａｌｅａｔｅ
Ａｓｔｅｒｅａｅ ｇｅｎｅｒａ ｆｒｏｍ ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｓｏｕｔｈ Ａｍｅｒｉｃａ[Ｊ] .
Ｔａｘｏｎꎬ ２０１２ꎬ ６１: １８０－１９６.
[２７] Ｐａｎｅｒｏ ＪＬꎬ Ｆｕｎｋ ＶＡ Ｔｈｅ ｖａｌｕｅ ｏｆ ｓａｍｐｌｉｎｇ
ａｎｏｍａｌｏｕｓ ｔａｘａ ｉｎ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｓｔｕｄｉｅｓ: ｍａｊｏｒ
ｃｌａｄｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ ｒｅｖｅａｌｅｄ [ Ｊ] . Ｍｏｌ Ｐｈｙｌ
Ｅｖｏｌꎬ ２００８ꎬ ４７: ７５７－７８２.
５２２
第 ３期
钟彩霞等: 基于 ２个核糖体 ＤＮＡ序列的国产白酒草属、 小舌菊属和
歧伞菊属(菊科紫菀族)分子系统学研究(英文)
[２８] Ｇａｒｃｉａ Ｓꎬ Ｐａｎｅｒｏ ＪＬꎬ Ｓｉｒｏｋｙ Ｊꎬ Ｋｏｖａｒｉｋ Ａ Ｒｅ￣
ｐｅａｔｅｄ ｒｅｕｎｉｏｎｓ ａｎｄ ｓｐｌｉｔｓ ｆｅａｔｕｒｅ ｔｈｅ ｈｉｇｈｌｙ ｄｙ￣
ｎａｍｉｃ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ ５Ｓ ａｎｄ ３５Ｓ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ ＲＮＡ
ｇｅｎｅｓ ( ｒＤＮＡ) ｉｎ ｔｈｅ Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ ｆａｍｉｌｙ[Ｊ] . ＢＭＣ
Ｐｌａｎｔ Ｂｉｏｌꎬ ２０１０ꎬ １０: １７６.
[２９] Ｗｈｉｔｅ ＴＪꎬ Ｂｒｕｎｓ Ｔꎬ Ｌｅｅ Ｓꎬ Ｔａｙｌｏｒ Ｊ Ａｍｐｌｉｆｉｃａ￣
ｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｉｒｅｃｔ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｏｆ ｆｕｎｇａｌ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ
ＲＮＡ ｇｅｎｅｓ ｆｏｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ [Ｍ] ∥ Ｉｎｎｉｓ ＭＡꎬ
Ｇｅｌｆａｎｄ ＤＨꎬ Ｓｎｉｎｓｋｙ ＪＪꎬ Ｗｈｉｔｅ ＴＪꎬ ｅｄｓ ＰＣＲ
Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ: ａ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ
Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ: Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓꎬ １９９０ꎬ ３１５－３２２.
[３０] Ｍａｒｋｏｓ Ｓꎬ Ｂａｌｄｗｉｎ ＢＧ Ｈｉｇｈｅｒ￣ｌｅｖｅｌ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ
ａｎｄ ｍａｊｏｒ ｌｉｎｅａｇｅｓ ｏｆ Ｌｅｓｓｉｎｇｉａ ( Ｃｏｍｐｏｓｉｔａｅꎬ
Ａｓｔｅｒｅａｅ) ｂａｓｅｄ ｏｎ ｎｕｃｌｅａｒ ｒＤＮＡ ｉｎｔｅｒｎａｌ ａｎｄ ｅｘ￣
ｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ ｓｐａｃｅｒ ( ＩＴＳ ａｎｄ ＥＴＳ ) ｓｅ￣
ｑｕｅｎｃｅｓ[Ｊ] . Ｓｙｓｔ Ｂｏｔꎬ ２００１ꎬ ２６: １６８－１８３.
[３１] Ｂａｌｄｗｉｎ ＢＧꎬ Ｍａｒｋｏｓ Ｓ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｕｔｉｌｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ
ｅｘｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ ｓｐａｃｅｒ ( ＥＴＳ) ｏｆ １８Ｓ －２６Ｓ
ｎｒＤＮＡ: ｃｏｎｇｒｕｅｎｃｅ ｏｆ ＥＴＳ ａｎｄ ＩＴＳ ｔｒｅｅｓ ｏｆ Ｃａｌｙ￣
ｃａｄｅｎｉａ (Ｃｏｍｐｏｓｉｔａｅ)[Ｊ] . Ｍｏｌ Ｐｈｙｌ Ｅｖｏｌꎬ １９９８ꎬ
１０: ４４９－４６３.
[３２] Ｊｅａｎｍｏｕｇｉｎ Ｆꎬ Ｔｈｏｍｐｓｏｎ ＪＤꎬ Ｇｏｕｙ Ｍꎬ Ｈｉｇｇｉｎｓ
ＤＧꎬ Ｇｉｂｓｏｎ ＴＪ Ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ ｗｉｔｈ
Ｃｌｕｓｔａｌ Ｘ [ Ｊ] . Ｔｒｅｎｄｓ Ｂｉｏｃｈｅｍ Ｓｃｉꎬ １９９８ꎬ ２３:
４０３－４０５.
[３３] Ｈａｌｌ ＴＡ ＢｉｏＥｄｉｔ: ａ ｕｓｅｒ￣ｆｒｉｅｎｄｌｙ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｅ￣
ｑｕｅｎｃｅ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ ｅｄｉｔｏｒ ａｎｄ ａｎａｌｙｓｉｓ ｐｒｏｇｒａｍ ｆｏｒ
Ｗｉｎｄｏｗｓ ９５ / ９８ / ＮＴ[Ｊ] . Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｓｙｍｐ Ｓｅｒꎬ
１９９９ꎬ ４１: ９５－９８.
[３４] Ｆａｒｒｉｓ ＪＳꎬ Ｋａｌｌｅｒｓｊｏ Ｍꎬ Ｋｌｕｇｅ ＡＧꎬ Ｂｕｌｔ Ｃ Ｔｅｓ￣
ｔｉｎｇ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｏｆ ｃｏｎｇｒｕｅｎｃｅ [ Ｊ] . Ｃｌａｄｉｓｔｉｃｓꎬ
１９９４ꎬ １０: ３１５－３１９.
[３５] Ｓｗｏｆｆｏｒｄ ＤＬ ＰＡＵＰ∗: ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｕｓｉｎｇ
ｐａｒｓｉｍｏｎｙ (∗ａｎｄ ｏｔｈｅｒ ｍｅｔｈｏｄｓ)ꎬ ｖｅｒｓｉｏｎ ４ ０ｂ１０
Ｓｕｎｄｅｒｌａｎｄꎬ ＭＡ: Ｓｉｎａｕｅｒ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓꎬ ２００１.
[３６] Ｒｏｎｑｕｉｓｔ Ｆꎬ Ｈｕｅｌｓｅｎｂｅｃｋ ＪＰ ＭｒＢａｙｅｓ ３: Ｂａｙｅ￣
ｓｉａｎ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｉｎｆｅｒｅｎｃｅ ｕｎｄｅｒ ｍｉｘｅｄ ｍｏｄｅｌｓ
[Ｊ] . Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓꎬ ２００３ꎬ １９: １５７２－１５７４.
[３７] Ｎｙｌａｎｄｅｒ ＪＡＡ ＭｒＭｏｄｅｌｔｅｓｔꎬ ｖｅｒｓｉｏｎ ２ Ｐｒｏｇｒａｍ
ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ａｕｔｈｏｒ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ Ｂｉｏｌｏｇｙ
Ｃｅｎｔｒｅꎬ Ｕｐｐｓａｌａ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｈｔｔｐ: ∥ｗｗｗ ａｂｃ ｓｅ /
~ｎｙｌａｎｄｅｒ / ｍｒｍｏｄｅｌｔｅｓｔ２/ ｍｒｍｏｄｅｌｔｅｓｔ２ ｈｔｍｌ ２００４.
[３８] Ｌｉｕ ＪＱꎬ Ｇａｏ ＴＧꎬ Ｃｈｅｎ ＺＤꎬ Ｌｕ ＡＭ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ａｎｄ ｂｉｏｇｅｏｇｒａｐｈｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｑｉｎｇｈａｉ－Ｔｉｂｅｔ
Ｐｌａｔｅａｕ ｅｎｄｅｍｉｃ Ｎａｎｎｏｇｌｏｔｔｉｓ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ) [ Ｊ] .
Ｍｏｌ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔ Ｅｖｏｌꎬ ２００２ꎬ ２３: ３０７－３２５.
Ａｐｐｅｎｄｉｘ: Ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｓｏｕｒｃｅｓꎬ ｖｏｕｃｈｅｒ ｎｕｍｂｅｒｓ ａｎｄ ＧｅｎＢａｎｋ ａｃｃｅｓｓｉｏｎｓ ( ＩＴＳꎬ ＥＴＳ) ｕｓｅｄ ｉｎ ｔｈｉｓ
ｓｔｕｄｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｓｏｕｒｃｅｓ ａｎｄ ｖｏｕｃｈｅｒ ｎｕｍｂｅｒｓ ｉｓ ｌｉｍｉｔｅｄ ｔｏ ｔｈｏｓｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ｗｈｉｃｈ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ
ｗｅｒｅ ｎｅｗｌｙ ｇｅｎｅｒａｔｅｄ Ｓｏｍｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｕｎａｖａｉｌａｂｌｅ ｆｏｒ ＥＴＳ (★: Ｄａｔａ ａｒｅ ｂｅｉｎｇ ｓｕｂｍｉｔｔｅｄ ｔｏ ＮＣＢＩ).
Ａｓｔｅｒ ａｇｅｒａｔｏｉｄｅｓ Ｔｕｒｃｚ ｖａｒ ｌａｓｉｏｃｌａｄｕｓ (Ｈａｙａｔａ) Ｈａｎｄ ￣Ｍａｚｚꎬ ＪＮ５４３７８１ꎬ ＪＮ５４３７８２[４] ꎻ Ａｓｔｅｒ ｌａｖａｎｄｕｌｉｉｆｏｌｉｕｓ
Ｈａｎｄ ￣Ｍａｚｚꎬ ＪＮ５４３７８１ꎬ ＪＮ５４３７８２[４] ꎻ Ａｓｔｅｒ ｔａｔａｒｉｃｕｓ Ｌ ｆꎬ ＪＮ５４３７４８ꎬ ＪＮ５４３７４９[４] ꎻ Ａｓｔｅｒ ｖｅｒｔｉｃｉｌｌａｔｕｓ ( Ｒｅｉｎ￣
ｗａｒｄｔ) Ｂｒｏｕｉｌｌｅｔꎬ Ｓｅｍｐｌｅ ａｎｄ Ｙ Ｌ Ｃｈｅｎꎬ ＪＮ５４３７０６ꎬ ＪＮ５４３７０７[４] ꎻ Ｂａｃｃｈａｒｉｓ ｎｅｇｌｅｃｔａ Ｂｒｉｔｔｏｎ Ｕ９７６０４[１７] ꎻ Ｂｅｌｌｉｓ ｐｅ￣
ｒｅｎｎｉｓ Ｌꎬ ＪＮ３１５９１８ꎬ ＪＮ３１５９４２[４] ꎻ Ｃａｌｅｎｄｕｌａ ｏｆｆｉｃｉｎａｌｉｓ Ｌꎬ ＪＮ３１５９４１ꎬ ＪＮ３１５９６５[４] ꎻ Ｃａｌｏｔｉｓ ｈｉｓｐｉｄｕｌａ (Ｆ Ｍｕｅｌｌ )
Ｆ Ｍｕｅｌｌꎬ ＡＢ１９６５９７[２３] ꎻ Ｃｅｌｍｉｓｉａ ｍａｃｋａｕｉ Ｒａｏｕｌꎬ ＡＦ４２２１１５[２０] ꎬ ＨＱ４３９８２５[２５] ꎻ Ｃｈｉｌｉｏｔｒｉｃｈｕｍ ｄｉｆｆｕｓｕｍ (Ｇ Ｆｏｒｓｔ )
Ｋｕｎｔｚｅ ＡＦ０４６９４５[１１] ꎬ ＤＱ４７９１２８[２２] ꎻ Ｃｈｒｙｓａｎｔｈｅｍｕｍ ｃｏｒｏｎａｒｉｕｍ Ｌꎬ ＪＮ３１５９３９ꎬ ＪＮ３１５９６３ [４] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ａｅｇｙｐｔｉａｃａ
(Ｌ ) Ａｉｔꎬ ＧＵ０４５８２１ [５] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ａｇｅｒａｔｏｉｄｅｓ ＤＣꎬ ＧＵ０４５８２２[５] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ａｔｔｅｎｕａｔａ ＤＣꎬ ＧＵ０４５８２３[５] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｂｌｉ￣
ｎｉｉ Ｈ Ｌéｖꎬ Ｃｈｉｎａꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇꎬ ｌｗｐ ０７０８２８２ (ＨＮＮＵ)ꎬ ★ꎬ★ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｂｏｎａｒｉｅｎｓｉｓ (Ｌ ) Ｃｒｏｎｑꎬ Ｃｈｉｎａꎬ Ｃｈａｎｇｓｈａꎬ
ｌｗｐ １１０３００５ (ＨＮＮＵ)ꎬ ★ꎬ★ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｃａｎａｄｅｎｓｉｓ (Ｌ ) Ｃｒｏｎｑꎬ Ｃｈｉｎａꎬ Ｃｈａｎｇｓｈａꎬ ｌｗｐ １１０３００９ (ＨＮＮＵ)ꎬ ★ꎬ★ꎻ
Ｃｏｎｙｚａ ｃｈｉｌｅｎｓｉｓ Ｓｐｒｅｎｇꎬ ＡＦ１１８５１０[１２] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｇｏｕａｎｉｉ ( Ｌ ) Ｗｉｌｌｄꎬ ＡＦ０４６９４８[１１] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｉｎｃｉｓａ Ａｉｔꎬ
ＨＥ９７８３６３[５] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｊａｐｏｎｉｃａ (Ｔｈｕｎｂ ) Ｌｅｓｓꎬ ＪＮ３１５９３８ꎬ ＪＮ３１５９６２[４] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｌｉｍｏｓａ Ｏ Ｈｏｆｆｍꎬ ＧＵ０４５８２４[５] ꎻ
Ｃｏｎｙｚａ ｍｕｌｉｅｎｓｉｓ Ｙ Ｌ Ｃｈｅｎꎬ Ｃｈｉｎａꎬ Ｓｉｃｈｕａｎꎬ ｌｗｐ ０７０８０７４ ( ＨＮＮＵ)ꎬ ★ꎬ★ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｐｉｎｎａｔａ ( Ｌ ｆ ) Ｋｕｎｔｚｅꎬ
ＧＵ０４５８２５[５] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｐｙｒｒｈｏｐａｐｐａ Ｓｃｈ Ｂｉｐ ｅｘ Ａ Ｒｉｃｈꎬ ＡＦ０４６９５３[１１] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｓｃａｂｒｉｄａ ＤＣꎬ ＧＵ０４５８２６[５] ꎻ
Ｃｏｎｙｚａ ｓｔｒｉｃｔａ Ｗｉｌｌｄ ｖａｒ ｐｉｎｎａｔｉｆｉｄａ (Ｄ Ｄｏｎ) Ｋｉｔａｍꎬ Ｃｈｉｎａꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇꎬ ｌｗｐ １００９０１２ (ＨＮＮＵ)ꎬ ★ꎬ★ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｓｔｒｉｃｔａ
Ｗｉｌｌｄ ｖａｒ ｓｔｒｉｃｔａꎬ ＧＵ０４５８２６[５] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｓｕｂｓｃａｐｏｓａ Ｏ Ｈｏｆｆｍꎬ ＧＵ０４５８２８[５] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｓｕｍａｔｒｅｎｓｉｓ (Ｒｅｔｚ ) Ｗａｌｋｅｒꎬ
ＪＮ３１５９２３ꎬ ＪＮ３１５９４７[４] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｔｉｇｒｅｎｓｉｓ Ｏｌｉｖ ａｎｄ Ｈｉｅｒｎꎬ ＧＵ０４５８２９[５] ꎻ Ｃｏｎｙｚａ ｕｌｍｉｆｏｌｉａ ( Ｂｕｒｍ ｆ ) Ｋｕｎｔｚｅꎬ
６２２ 植 物 科 学 学 报 第 ３２卷
ＧＵ０４５８３０[５] ꎻ Ｄｅｎｄｒａｎｔｈｅｍａ ｉｎｄｉｃｕｍ (Ｌ ) Ｄｅｓ Ｍｏｕｌꎬ ＪＮ３１５９４０ꎬ ＪＮ３１５９６４[４] ꎻ Ｄｉｃｈｒｏｃｅｐｈａｌａ ａｕｒｉｃｕｌａｔａ (Ｔｈｕｎｂ )
Ｄｒｕｃｅꎬ ＪＮ３１５９１９ꎬ ＪＮ３１５９４３[４] ꎻ Ｅｒｉｇｅｒｏｎ ｂｒｅｖｉｓｃａｐｕｓ ( Ｖａｎｔ ) Ｈａｎｄ ￣Ｍａｚｚꎬ ＪＮ３１５９２５ꎬ ＪＮ３１５９４９[４] ꎻ Ｅｕｒｙｂｉａ
ｓｉｂｉｒｉｃａ (Ｌ ) Ｎｅｓｏｍꎬ ＡＹ７７２４２１ꎬ ＡＹ７７２４３５[２１] ꎻ Ｆｅｌｉｃｉａ ａｅｔｈｉｏｐｉｃａ (Ｂｕｒｍ ｆ ) Ｂｏｌｕｓ ａｎｄ Ｗｏｌｌｅｙ￣Ｄｏｄ ｅｘ Ａｄａｍｓｏｎ
ａｎｄ Ｔ Ｍ Ｓａｌｔｅｒꎬ ＤＱ４７８９９７ꎬ ＤＱ４７９０５４[２４] ꎻ Ｆｅｌｉｃｉａ ｆｉｌｉｆｏｌｉａ (Ｖｅｎｔ ) Ｂｕｒｔｔ Ｄａｖｙꎬ ＦＪ４５７９３７[１] ꎬ ＡＦ３１９７０３[１８] ꎻ Ｇａｌａ￣
ｔｅｌｌａ ｄａｈｕｒｉｃａ ＤＣꎬ ＪＮ３１５９３５ꎬ ＪＮ３１５９５９[４] ꎻ Ｇｒａｎｇｅａ ｍａｄｅｒａｓｐａｔａｎａ (Ｌ ) Ｐｏｉｒꎬ ＪＮ３１５９２０ꎬ ＪＮ３１５９４４[４] ꎻ Ｌａｇｅｎｏ￣
ｐｈｏｒａ ｐｕｍｉｌａ ( Ｇ Ｆｏｒｓｔ ) Ｃｈｅｅｓｅｍａｎꎬ ＤＱ４７９０３７ꎻ ＤＱ４７９０９４[２４] ꎻ Ｌｌｅｒａｓｉａ ｍａｃｒｏｃｅｐｈａｌａ ( Ｒｕｓｂｙ ) Ｐｒｕｓｋｉꎬ
ＪＱ０４２７５１ꎬ ＪＱ０４２７９０[２６] ꎻ Ｍａｄａｇａｓｔｅｒ ｍａｄａｇａｓｃａｒｉｅｎｓｉｓ (Ｈｕｍｂｅｒｔ) Ｎｅｓｏｍꎬ ＤＱ４７９０３１ꎬ ＤＱ４７９０８７[２４] ꎻ Ｍａｉｒｉａ ｈｉｒ￣
ｓｕｔａ ＤＣꎬ ＦＪ４５７９２９[１] ꎻ Ｍｉｃｒｏｇｌｏｓｓａ ｐｙｒｉｆｏｌｉａ ( Ｌａｍ ) Ｏ Ｋｕｎｔｚｅꎬ Ｃｈｉｎａꎬ Ｙｕｎｎａｎꎬ ｌｗｐ ０８０４０７８ (ＨＮＮＵ)ꎬ ★ꎬ★ꎻ
Ｍｙｒｉａｃｔｉｓ ｎｅｐａｌｅｎｓｉｓ Ｌｅｓｓꎬ ＪＮ３１５９２１ꎬ ＪＮ３１５９４５[４] ꎻ Ｍｙｒｉａｃｔｉｓ ｗｉｇｈｔｉｉ ＤＣꎬ ＪＮ３１５９２２ꎬ ＪＮ３１５９４６[４] ꎻ Ｎａｎｎｏｇｌｏｔｔｉｓ
ｄｅｌａｖａｙｉ (Ｆｒａｎｃｈ ) Ｌｉｎｇ ａｎｄ Ｃｈｅｎꎬ ＡＹ０１７１６７[１９]ꎻ Ｎｉｄｏｒｅｌｌａ ｐｏｌｙｃｅｐｈａｌａ ＤＣꎬ ＤＱ４７８９９９ꎬ ＤＱ４７９０５７[２４]ꎻ Ｏｒｉｔｒｏｐｈｉｕｍ
ｐｅｒｕｖｉａｎｕｍ ( Ｌａｍ ) Ｃｕａｔｒꎬ ＤＱ４７９１１７[２４]ꎬ ＪＱ０４２７９６[２６]ꎻ Ｐｌｅｕｒｏｐｈｙｌｌｕｍ ｈｏｏｋｅｒｉ Ｂｕｃｈꎬ ＨＱ４３９８６４ꎬ ＨＱ４３９８５３[２５]ꎻ
Ｐｒｉｎｔｚｉａ ｐｏｌｉｆｏｌｉａ ( Ｌ ) Ｈｕｔｃｈꎬ ＦＪ４５７９２７[１] ꎻ Ｐｓｉａｄｉａ ａｒｇｅｎｔｅａ Ｃｏｒｄｅｍꎬ ＨＥ９７８３９４[５] ꎻ Ｐｓｉａｄｉａ ｐａｓｃａｌｉｉ Ｌａｂａｔ ａｎｄ
Ｂｅｅｎｔｊｅꎬ ＨＥ９７８４５０[５] ꎻ Ｐｓｉａｄｉａ ｐｕｎｃｔｕｌａｔａ (ＤＣ ) Ｏｌｉｖ ａｎｄ Ｈｉｅｒｎ ｅｘ Ｖａｔｋｅꎬ ＨＥ９７８４５７[５] ꎻ Ｓｈｅａｒｅｒｉａ ｎａｎａ Ｓ Ｍｏｏｒｅꎬ
ＪＮ５４３７０３ꎬ ＪＮ５４３７０４[４] ꎻ Ｓｙｍｐｈｙｏｔｒｉｃｈｕｍ ｓｕｂｕｌａｔｕｍ (Ｍｉｃｈｘ ) Ｎｅｓｏｍꎬ ＪＮ３１５９２７ꎬ ＪＮ３１５９５１[４] ꎻ Ｔｈｅｓｐｉｓ ｄｉｖａｒｉｃａｔａ
ＤＣꎬ Ｃｈｉｎａꎬ Ｙｕｎｎａｎꎬ ｌｗｐ ０８０４０６７ ( ＨＮＮＵ )ꎬ ★ꎬ★ꎻ Ｔｒｉｐｏｌｉｕｍ ｖｕｌｇａｒｅ Ｎｅｅｓꎬ ＪＮ３１５９３７ꎬ ＪＮ３１５９６１[４] ꎻ Ｗｅｌ￣
ｗｉｔｓｃｈｉｅｌｌａ ｎｅｒｅｉｆｏｌｉａ Ｏ Ｈｏｆｆｍꎬ ＦＪ４５７９４３[１] .
(责任编辑: 张 平)
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第 ３期
钟彩霞等: 基于 ２个核糖体 ＤＮＡ序列的国产白酒草属、 小舌菊属和
歧伞菊属(菊科紫菀族)分子系统学研究(英文)