全 文 ：中国白块菌———攀枝花块菌子囊果内可培养细菌的多样性研究∗
万山平１ꎬ２ꎬ 刘培贵１∗∗
(１ 中国科学院昆明植物研究所东亚植物多样性与生物地理学重点实验室ꎬ 云南 昆明 ６５０２０１ꎻ
２ 中国科学院大学ꎬ 北京 １０００４９)
摘要: 对新近发现的块菌属一新种———攀枝花白块菌 (Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ) 子囊果中可培养细菌的多样
性进行了研究ꎮ 采用胰蛋白大豆培养基 (ＴＳＡ) 对菌株进行分离ꎮ 用毛细管电泳 (ＨＰＣＥ) 对所有获得的
菌株的 １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３高变区进行筛选获得不同条带大小的菌株ꎬ 对筛选出的菌株的 １６Ｓ ｒＤＮＡ 进行测序ꎬ
并进行细菌多样性分析和研究ꎮ 结果显示ꎬ 攀枝花块菌子囊果内可培养细菌在数量及种类上都表现出很高
的多样性ꎬ 所有细菌分属于 ５个门的 １１个属和 ２０个种ꎮ 在所分离到的变形菌门的细菌中ꎬ 数量最多的菌
株 (４９ ６８％) 属于 γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａꎬ 其中假单胞菌属的 Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｌｕｒｉｄａ 为优势类群ꎻ 其次为 α￣Ｐｒｏ￣
ｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａꎬ 占 ３７ ４２％ꎬ 其中以固氮菌 Ｂｒａｄｙｒｈｉｚｏｂｉｕｍ ｊａｐｏｎｉｃｕｍ和 Ｐｈｙｌｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐｐ.为优势类群ꎮ 其余的
菌株属于放线菌门 (Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ) (３ ２２％) 和厚壁菌门 (Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ) (７ ７４％)ꎬ 厚壁菌门中以芽孢杆
菌属 (Ｂａｃｉｌｌｕｓ) 为代表菌群ꎮ 酸杆菌门中的 Ｔｅｒｒｉｇｌｏｂｕｓ ｒｏｓｅｕｓ (１ ９４％) 首次从块菌中分离获得ꎮ
关键词: 攀枝花块菌ꎻ 子囊果ꎻ 细菌多样性ꎻ １６Ｓ ｒＤＮＡꎻ 序列分析
中图分类号: Ｑ ９４９ ３２ꎬ Ｑ ９３９ １ 文献标识码: Ａ 文章编号: ２０９５－０８４５(２０１４)０１－０２９－０８
Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ ａ
Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｗｈｉｔｅ Ｔｒｕｆｆｌｅꎬ Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ (Ａｓｃｏｍｙｃｏｔａ)∗
ＷＡＮ Ｓｈａｎ￣Ｐｉｎｇ１ꎬ２ꎬ ＬＩＵ Ｐｅｉ￣Ｇｕｉ１∗∗
(１ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｆｏｒ Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｂｉｏｇｅｏｇｒａｐｈｙ ｏｆ Ｅａｓｔ Ａｓｉａꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ
Ｋｕｎｍｉｎｇ ６５０２０１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ２ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｂｅｉｊｉｎｇ １０００４９ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: Ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ ｉｎｈａｂｉｔｉｎｇ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ｗｅｒｅ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ. Ｉｓｏｌａｔｅｓ
ｏｂｔａｉｎｅｄ ｏｎ ｔｒｙｐｔｏｎｅ ｓｏｙ ａｇａｒ (ＴＳＡ) ｗｅｒｅ ｓｃｒｅｅｎｅｄ ｗｉｔｈ ｈｉｇｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ (ＨＰＣＥ) ａｃ￣
ｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ ｉｎ ｓｉｚｅ ｏｆ １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３. Ｔａｒｇｅｔ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｂｙ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ ｗｈｏｌｅ ｌｅｎｇｔｈ ｏｆ １６Ｓ
ｒＤＮＡ ｇｅｎｅ. Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ｈａｒｂｏｒｅｄ ａ ｇｒｅａｔ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅ￣
ｒｉａ ｗｈｉｃｈ ｂｅｌｏｎｇｉｎｇ ｔｏ ２０ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ １１ ｇｅｎｅｒａ ｉｎ ５ ｐｈｙｌａ. Ｍｏｓｔ ｉｓｏｌａｔｅｓ (４９ ６８％) ｗｅｒｅ ａｆｆｉｌｉａｔｅｄ ｔｏ ｔｈｅ γ￣Ｐｒｏ￣
ｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａꎬ ｄｏｍｉｎａｔｅｄ ｂｙ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｌｕｒｉｄａ. Ｔｈｅ ｓｅｃｏｎｄ ｍａｊｏｒ ｓｕｂｃｌａｓｓ ｗａｓ α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ (３７ ４２％)ꎬ ｗｉｔｈ
Ｐｈｙｌｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｎｄ ａ ｎｉｔｒｏｇｅｎ￣ｆｉｘｉｎｇ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ Ｂｒａｄｙｒｈｉｚｏｂｉｕｍ ｊａｐｏｎｉｃｕｍ ａｌｓｏ ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ ａｓ ｄｏｍｉｎａｎｔ ｔａｘａ. Ｔｈｅ ｒｅ￣
ｍａｉｎｉｎｇ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ (３ ２２％) ａｎｄ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ (７ ７４％) ｏｆ ｗｈｉｃｈ Ｂａｃｉｌｌｕｓ
ｗａｓ ｔｈｅ ｃｏｍｍｏｎｅｓｔ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ. Ａ ｎｏｖｅｌ Ｔｕｂｅｒ￣ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ Ｔｅｒｒｉｇｌｏｂｕｓ ｒｏｓｅｕｓꎬ ｗａｓ ｉｓｏｌａ￣
ｔｅｄ ａｎｄ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｆｏｒ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｔｉｍｅ ｉｎ Ｔｕｂｅｒ ａｓｃｏｃａｒｐｓ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅꎻ Ａｓｃｏｃａｒｐꎻ Ｂａｃｔｅｒｉａ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎻ １６Ｓ ｒＤＮＡ
植 物 分 类 与 资 源 学 报 ２０１４ꎬ ３６ (１): ２９~３６
Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ＤＯＩ: １０.７６７７ / ｙｎｚｗｙｊ２０１４１３０１８
∗
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Ｆｕｎｄｉｎｇ: Ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｎａｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｉｎａ ( ３１２７００７５)ꎬ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｏｏｐｅｒａｔｉｏｎ Ｙｕｎｎａｎ Ｐｒｏｇｒａｍ ｏｆ Ｉｎｎｏｖａｔｉｏｎ ｔｏ
Ｓｔｒｅｎｇ ｔｈｅｎ Ｐｒｏｖｉｎｃｅｓ ｂｙ Ｓｃｉｅｎｃｅ ＆ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ (２００９ＡＣ０１３)ꎬ ｔｈｅ Ｊｏｉｎｔ Ｆｏｕｎｄｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｉｎａ ａｎｄ
Ｙｕｎｎａｎ Ｐｒｏｖｉｎｃｅ Ｇｏｖｅｒｎｍｅｎｔ (Ｕ１２０２２６２)
Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅꎻ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｐｇｌｉｕ＠ ｍａｉｌ. ｋｉｂ. ａｃ. ｃｎ
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ ｄａｔｅ: ２０１３－０２－１５ꎬ Ａｃｃｅｐｔｅｄ ｄａｔｅ: ２０１３－０６－１０
作者简介: 万山平 (１９８７－) 女ꎬ 硕士研究生ꎬ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｗａｎｓｈａｎｐｉｎｇ＠ ｍａｉｌ. ｋｉｂ. ａｃ. ｃｎ
Ｔｒｕｅ ｔｒｕｆｆｌｅｓ ａｒｅ ａｓｃｏｍｙｃｅｔｏｕｓ ｈｙｐｏｇｅｏｕｓ ｆｕｎｇｉ
ｏｆ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｔｕｂｅｒ ｔｈａｔ ｅｓｔａｂｌｉｓｈ ｓｙｍｂｉｏｔｉｃ ｒｅｌａｔｉｏｎ￣
ｓｈｉｐｓ ｗｉｔｈ ｓｏｍｅ ｐｌａｎｔ ｒｏｏｔｓ ｏｆ ｇｙｍｎｏｓｐｅｒｍｓ ａｎｄ ａｎ￣
ｇｉｏｓｐｅｒｍｓ (Ｈａｒｌｅｙ ａｎｄ Ｓｍｉｔｈꎬ １９９３). Ｔｒｕｆｆｌｅｓ ａｒｅ
ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｆｕｎｇｉ ｎｏｔ ｏｎｌｙ ｂｅｃａｕｓｅ ｏｆ ｐｌａｙｉｎｇ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ
ｒｏｌｅ ｉｎ ｍａｉｎｔａｉｎｉｎｇ ｈｅａｌｔｈ ｏｆ ｎａｔｕｒａｌ ｅｃｏｓｙｓｔｅｍｓꎬ ｂｕｔ
ａｌｓｏ ｄｕｅ ｔｏ ｔｈｅ ｈｉｇｈ ｃｕｌｉｎａｒｙ ｖａｌｕｅ ｏｆ ｓｏｍｅ ｐｕｔａｔｉｖｅ
ｇｏｕｒｍｅｔ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ Ｔ. ｍａｇｎａｔｕｍ Ｐｉｃｏ.ꎬ Ｔ.
ｍｅｌａｎｏｓｐｏｒｕｍ Ｖｉｔｔ.ꎬ ａｎｄ Ｔ. ｉｎｄｉｃｕｍ Ｃｏｏｋｅ ＆ Ｍａｓ￣
ｓｅｅ. Ｔｈｅｓｅ ｓｔｉｍｕｌａｔｅ ｒｅｓｅａｒｃｈｅｓ ｏｎ ｔａｘｏｎｏｍｙꎬ ｂｉｏｌｏ￣
ｇｙꎬ ｅｃｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｕｂｅｒ. Ｏｎｅ ｏｆ ｉｎｔｅｒｅｓｔ￣
ｉｎｇ ｉｓｓｕｅｓ ａｂｏｕｔ ｔｒｕｆｆｌｅｓ ｉｓ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｆｏｒ
ｉｔｓ ｒｏｌｅ ｉｎ ｔｈｅ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｙｓｔｅｍ. Ｉｔ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｒｅｐｏｒｔｅｄ
ｔｈａｔ ｔｈｅ ｓｙｍｂｉｏｔｉｃ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ
ｏｎ ｐｌａｎｔ ｒｏｏｔｓ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｉｎｆｌｕｅｎｃｅｄ ｂｙ ｓｏｍｅ ｂａｃｔｅｒｉａ
ｐｒｅｓｅｎｔ ｉｎ ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ( Ｄｕｐｏｎｎｏｉｓ ａｎｄ
Ｇａｒｂａｙｅꎬ １９９２ꎻ Ｖａｒｅｓｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９６ꎻ Ｊｏｈａｎｓｓｏｎ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００４ꎻ Ｊｏｎｅｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００４ꎻ ｄｅ Ｒｉｄｄｅｒ￣Ｄｕｉｎｅ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００５ꎻ Ｍｅｌｌｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０). Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｍｉｃｒｏｂｅｓ
ｈａｖｅ ａｌｓｏ ｂｅｅｎ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ ｔｈｅ
ｈｙｐｈａｅ ｏｆ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ (Ｌｉ ａｎｄ Ｃａｓｔｅｌｌａｎｏꎬ
１９８７ꎻ Ｇａｒｂａｙｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９０ꎻ Ｖａｒｅｓｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９６ꎻ
Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎻ Ｎｅａｌ Ｊｒ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９６４ꎻ Ａｎｄｒａｄｅ
ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７ꎻ Ｍａｎｓｆｅｌｄ￣Ｇｉｅｓｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｓｂｒａｎａ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２). Ｉｎ ｔｅｒｍｓ ｏｆ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｓｓｏ￣
ｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｕｂｅｒ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ
ｉｎ ｔｒｕｆｆｌｅ ｓｐｏｒｏｃａｒｐｓ ｗｅｒｅ ｓｔｕｄｉｅｄ ａｎｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｔｙｐｅｓ ｏｆ
ｂａｃｔｅｒｉａ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｉｓｏｌａｔｅｄ ａｎｄ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄꎬ ｓｕｃｈ ａｓ Ａｃ￣
ｔｉｎｏｍｙｃｅｔｅｓꎬ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｎｄ ａｅｒｏｂｉｃ ｓｐｏｒｅ￣ｆｏｒｍｉｎｇ
ｂａｃｔｅｒｉａ (Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ
Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７). Ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｎ ｔｈｅ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｂａｃ￣
ｔｅｒｉａ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔｕｂｅｒ ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ｃａｎ ｈｅｌｐ ｔｏ
ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄ ｔｈｅｉｒ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｒｏｌｅ ｉｎ ｔｈｅ ｔｒｕｆｆｌｅ ｌｉｆｅ ｃｙｃｌｅ
ａｎｄ ｃａｎ ｂｅ ｕｓｅｄ ｆｏｒ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｃａｌ
ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｂｙ ｕｔｉｌｉｚｉｎｇ ｂｅｎｅｆｉｃｉａｌ ｓｔｒａｉｎｓ.
Ｔｈｅ ａｉｍ ｏｆ ｔｈｉｓ ｒｅｓｅａｒｃｈ ｉｓ ｔｏ ａｎａｌｙｚｅ ａｎｄ ｅｖａｌｕ￣
ａｔｅ ｔｈｅ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎｓｉｄｅ ｔｈｅ ａｓｃｏ￣
ｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅꎬ ａ ｎｅｗ ｗｈｉｔｅ ｔｒｕｆｆｌｅ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｆｏｕｎｄ ｉｎ ｓｏｕｔｈｗｅｓｔ ｏｆ Ｃｈｉｎａ ａｎｄ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ｂｙ Ｄｅｎｇ ｅｔ
ａｌ. (２０１２) ａｎｄ ｈａｓ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｃｏｍｍｅｒｃｉａｌ ｖａｌｕｅ ｆｏｒ ｉｔｓ
ｓｐｅｃｉａｌ ｆｒａｇｒａｎｃｅ ａｎｄ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ. Ｔｈｅ ｉｎｆｏｒ￣
ｍａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｉｎｈａｂｉｔａｎｔｓ ｏｆ ｔｈｉｓ ｔｒｕｆｆｌｅ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｃａｎ ｈｅｌｐ ｔｏ ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａ￣ｔｒｕｆｆｌｅ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ
ａｎｄ ｗｉｌｌ ｂｅ ｏｆ ｐｒａｃｔｉｃａｌ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ ｉｎ ｉｍｐｒｏｖｉｎｇ ｍｙ￣
ｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ ｆｏｒ ｔｒｕｆｆｌｅ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ.
１ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｓ
１ １ Ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ
Ｓｉｘ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ｗｅｒｅ ｏｂ￣
ｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｎａｔｕｒａｌ Ｐｉｎｕｓ ａｒｍａｎｄｉ ｆｏｒｅｓｔｓ ｉｎ Ｑｕｊｉｎｇ
Ｐｒｅｆｅｃｔｕｒｅꎬ Ｙｕｎｎａｎꎬ Ｃｈｉｎａ. Ａｆｔｅｒ ｃｏｌｌｅｃｔｉｎｇꎬ ｆｒｅｓｈ
ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ｗｅｒｅ ｋｅｐｔ ｉｎ ａｎ ｉｃｅ ｂｏｘ ａｎｄ ｐｒｏｃｅｓｓｅｄ
ｗｉｔｈｉｎ ａ ｆｅｗ ｈｏｕｒｓ ｆｏｒ ｒｅｄｕｃｉｎｇ ｔｈｅ ｓｔｏｒａｇｅ ｍｏｄｉｆｙｉｎｇ
ｔｈｅ ａｕｔｏｃｈｔｈｏｎｏｕｓ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ. Ｔｈｅ ｓａｍｐｌｅｓ
ｗｅｒｅ ｇｅｎｔｌｙ ｗａｓｈｅｄ ｗｉｔｈ ｓｔｅｒｉｌｅ ｄｉｓｔｉｌｌｅｄ ｗａｔｅｒ ａｎｄ
ｓｕｒｆａｃｅ￣ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｅｄ ｗｉｔｈ ９６％ ｅｔｈｙｌ ａｌｃｏｈｏｌ (１ ｍｉｎ)ꎬ
５％ ｓｏｄｉｕｍ ｈｙｐｏｃｈｌｏｒｉｄｅ (３ ｍｉｎ) ａｎｄ ９６％ ｅｔｈｙｌ ａｌ￣
ｃｏｈｏｌ (０ ５ ｍｉｎ) (Ｐｅｔｒｉｎｉ ａｎｄ Ｍüｌｌｅｒꎬ １９８６)ꎬ ａｎｄ
ｔｈｅｎ ｂｒｉｅｆｌｙ ｆｌａｍｅｄ. Ａｂｏｕｔ １ ｇ (ｗｅｔ￣ｗｅｉｇｈｔ) ｏｆ ｇｌｅｂａ
ｔｉｓｓｕｅ ｗａｓ ｒｅｍｏｖｅｄ ｆｒｏｍ ｅａｃｈ ａｓｃｏｍａ ａｎｄ ｈｏｍｏｇｅ￣
ｎｉｚｅｄ ｉｎ １ ｍＬ ｏｆ ｆｉｌｔｅｒ ｓｔｅｒｉｌｉｚｅｄ ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃ ｓｏｌｕｔｉｏｎ
(０ ８５％ ＮａＣｌ). １００ μＬ ｇｌｅｂａ ｓｕｓｐｅｎｓｉｏｎ ｗａｓ ｄｉｌｕ￣
ｔｅｄ ｆｒｏｍ １０－２ ｔｏ １０－６ꎬ １０－４ ｔｏ １０－６ ｗｅｒｅ ｃｈｏｓｅｎ ｔｏ
ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｎ ｔｒｙｐｔｏｎｅ ｓｏｙ ａｇａｒ ( ＴＳＡ) ａｎｄ ｉｎｏｃｕｌａｔｅｄ
ａｔ ２８ ℃ (ＴＳＡꎬ Ｄｉｆｃｏ) ｆｏｒ ｉｓｏｌａｔｉｎｇ ｔｈｅ ｆｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ
ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａ (Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｓｂｒａｎａ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５). Ａｆｔｅｒ ｔｗｏ
ｄａｙｓ’ ｉｎｃｕｂａｔｉｏｎ ｏｎ ＴＳＡꎬ ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ＣＦＵ (ｃｏｌ￣
ｏｎｙ ｆｏｒｍｉｎｇ ｕｎｉｔ) ｗａｓ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ａｎｄ ａｌｌ ｃｏｌｏｎｉｅｓ
ｇｒｏｗｉｎｇ ｏｎ ｔｈｅ Ｐｅｔｒｉ ｄｉｓｈｅｓ ｗｅｒｅ ｐｉｃｋｅｄ. Ｖｏｕｃｈｅｒ
ｓｐｅｃｉｍｅｎｓ ｏｆ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｗｅｒｅ ｄｅｐｏｓｉｔｅｄ ｉｎ Ｃｒｙｐｔｏｇａｍｉｃ
Ｈｅｒｂａｒｉｕｍ ｏｆ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ
Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ (ＫＵＮ￣ＨＫＡＳ) (Ｔａｂｌｅ １).
１ ２ ＤＮＡ ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ
Ｔｈｅ ｓｉｎｇｌｅ ｃｏｌｏｎｙ ｏｆ ｅａｃｈ ｉｓｏｌａｔｅ ｗａｓ ｐｉｃｋｅｄ ｕｐ
ａｎｄ ｃｕｌｔｕｒｅｄ ｉｎ ｔｒｙｐｔｏｎｅ ｓｏｙ ｂｒｏｔｈ ( ＴＳＢ) ｆｏｒ ｔｗｏ
ｄａｙｓ. Ｔｏｔａｌ ＤＮＡ ｏｆ ｅａｃｈ ｓｔｒａｉｎ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｂｙ ＴＩ￣
ＡＮａｍｐ Ｂａｃｔｅｔｉａ ＤＮＡ Ｋｉｔ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｔｈｅ ｍａｎｕｆａｃｔｕｒ￣
ｅｒ’ｓ ｉｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ.
１ ３ Ｉｓｏｌａｔｅ ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ
１ ３ １ ＰＣＲ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａｌ １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３
ｒｅｇｉｏｎ ａｎｄ ｔｈｅ １６Ｓ ｒＤＮＡ
ＰＣＲ ｗｅｒｅ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｏｎ ａ ｔｈｅｒｍｏｃｙｃｌｅｒ ( Ｂｉ￣
ｏｍｅｔｒａ￣Ｔｇｒａｄｉｅｎｔꎬ Ｇｅｒｍａｎｙ) ｉｎ ａ ｆｉｎａｌ ｖｏｌｕｍｅ ｏｆ ２５
０３ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３６卷
μＬ ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ １ μＬ ｏｆ ＤＮＡꎬ １ μＬ (５ μＭ) ｏｆ ｅａｃｈ
ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ２ μＬ ｏｆ １０ × ｂｕｆｆｅｒ (Ｍｇ２＋ )ꎬ ０ ５ μＬ ｏｆ
ｄＮＴＰ (１０ μＭ)ꎬ ０ ５ μＬ ＢＳＡ (１％)ꎬ １ ５ μＬ ＭｇＣｌ２ꎬ
０ １ Ｕ ｏｆ Ｔａｑ ＤＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ (Ｔａｋａｒａ Ｔａｇꎬ Ｔａｋａｒａ
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬ Ｄａｌｉａｎ Ｃｏ. Ｌｔｄ.ꎬ Ｃｈｉｎａ).
Ｖａｒｉａｂｌｅ ｒｅｇｉｏｎ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｏｆ １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３ ｗｅｒｅ
ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｂｙ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｄ ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ｆ３４１
(５′￣ＣＣＴＡＣＧＧＧＡＧＧＣＡＧＣＡＧ￣３′) ａｎｄ ｒ５１８ ( ５′￣
ＡＴＴＡＣＣＧＣＧＧＣＴＧＣＴＧＧ￣３′)ꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ
ｔｈｅｒｍｏｃｙｃｌｉｎｇ ｐｒｏｇｒａｍ: ９５ ℃ ｆｏｒ ５ ｍｉｎꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ
３０ ｃｙｃｌｅｓ ａｔ ９４℃ ｆｏｒ １ ｍｉｎꎬ ６０℃ ｆｏｒ １ ｍｉｎ ａｎｄ ７２℃
ｆｏｒ １ ｍｉｎ. Ｔｈｅ ｆｉｎａｌ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｗａｓ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ａｎ ｅｘ￣
ｔｅｎｓｉｏｎ ａｔ ７２ ℃ ｆｏｒ １０ ｍｉｎ. ２ μＬ ＰＣＲ ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｗｅｒｅ
ｃｈｅｃｋｅｄ ｏｎ ｔｈｅ １％ ａｇａｒｏｓｅ ｇｅｌ. Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｓｉｚｅｓ ｏｆ
ＤＮＡ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｓｃｒｅｅｎｅｄ ｂｙ ｈｉｇｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ
ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ (ＨＰＣＥ) ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ
ｓｉｚｅ ｏｆ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｔｉｃ ｂａｎｄｓ (Ｆｉｇ １).
Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ ｐｒｏｋａｒｙｏｔｉｃ ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ６３ｆ ( ５′￣ＣＡＧ￣
ＧＣＣＴＡＡＣＡＣＡＴＧＣＡＡＧＴＣ￣３′) ａｎｄ １４９５ｒ (５′￣ＣＴ￣
ＡＣＧＧＣＴＡＣＣＴＴＧＴＴＡＣＧＡ￣３′) ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ ｔｏ ａｍｐｌｉ￣
ｆｙ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｇｅｎｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｔａｒｇｅｔ ｉｓｏｌａｔｅｓ. Ｅａｃｈ ｃｏｍ￣
ｐｏｎｅｎｔ ｃｏｎｔｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ａｓ ｓａｍｅ ａｓ
ｔｈｅ ＰＣＲ ｆｏｒ ｂａｃｔｅｒｉａｌ １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３ ｒｅｇｉｏｎꎬ ａｎｄ ｔｈｅ
ｃｙｃｌｉｎｇ ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ ａｒｅ ｉｎｖａｒｉａｎｔ ｅｘｃｅｐｔ ａｎｎｅａｌｉｎｇ
ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｃｈａｎｇｅｄ ｔｏ ５６ ℃ ｆｏｒ １ ｍｉｎ.
１ ４ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ
１６Ｓ ｒＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ ｐｕｒｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｕｌｔｕｒｅｓ
ｗｅｒｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｗｉｔｈ ＡＢＩ Ｐｒｉｓｍ ＢｉｇＤｙｅ ｔｅｒｍｉｎａｔｏｒ
ｃｙｃｌｅ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｋｉｔ ｉｎ ＡＢＩ ＰＲＩＳＭ ３７３０ ａｕｔｏｍａｔｉｃ
ｓｅｑｕｅｎｃｅｒ. Ｔｈｅ Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｗａｓ ａｎａｌｙｚｅｄ ｕ￣
ｓｉｎｇ ｔｈｅ ＢＬＡＳＴ ａｌｇｏｒｉｔｈｍ (Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ
Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌｓ) ａｖａｉｌａｂｌｅ ｏｎ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｒｅ ｆｏｒ
Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ (ＮＣＢＩ) ｗｅｂｓｉｔｅ (ｈｔｔｐ: / /
ｗｗｗ.ｎｃｂｉ.ｎｌｍ.ｎｉｈ.ｇｏｖ / ) .
１ ５ Ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｉｎ ｏｒｄｅｒ ｔｏ ａｓｓｅｓｓ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ
１６Ｓ ｒＤＮＡ ｃｕｌｔｕｒｅ ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎꎬ ｎｅａｒｌｙ ｆｕｌｌ￣ｌｅｎｇｔｈ １６Ｓ
ｒＤＮＡ (ｃ. １ ４５０ ｎｔ) ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｗｅｒｅ ａｎａｌｙｚｅｄ ａｎｄ ｃｏｍ￣
ｐａｒｅｄ ｗｉｔｈ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ａｖａｉｌａｂｌｅ ｆｒｏｍ ＤＤＢＪ / ＥＭＢＬ /
ＧｅｎＢａｎｋ. Ｔｈｅ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｖａｌｕｅｓ ｇｒｅａｔｅｒ ｔｈａｎ ９７％ ｗｅｒｅ
ａｐｐｌｉｅｄ ｔｏ ｄｅｆｉｎｅ ａｎ ｏｐｅｒａｔｉｏｎａｌ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｕｎｉｔ (ＯＴＵ).
Ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｗｅｒｅ ｅｄｉｔｅｄ ｗｉｔｈ ＳｅｑＭａｎ ( ＤＮＡＳＴＡＲ
Ｐａｃｋａｇｅ). Ａｌｉｇｎｍｅｎｔｓ ｗｅｒｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｗｉｔｈ Ｃｌｕｓｔａｌ ３
ｖｅｒｓｉｏｎ １ ８１ (Ｔｈｏｍｐｓｏｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７) ａｎｄ ａｄｊｕｓｔｅｄ
ｍａｎｕａｌｌｙ ｗｉｔｈ ＢｉｏＥｄｉｔ Ｖｅｒｓｉｏｎ ５ ０ ９ (Ｈａｌｌꎬ １９９９).
Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ ｗｅｒｅ ｍａｄｅ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｔｈｅ ｍｅｔｈ￣
ｏｄｓ ｏｆ Ｓａｉｔｏｕ ＆ Ｎｅｉ ｅｔ ａｌ. (１９８７) ａｎｄ Ｔａｍｕｒａ (２００７).
Ｔｈｅ ｍｅａｎ ｖａｌｕｅ ｏｆ ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｆｒｏｍ ｄｉｆｆｅｒ￣
ｅｎｔ ａｓｃｏｃａｒｐ ｗａｓ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ａｎｄ ａｎａｌｙｚｅｄ ｗｉｔｈ ｏｎｅ￣
ｆａｃｔｏｒ ＡＮＯＶＡ (ｉｄｅｎｔｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａ).
２ Ｒｅｓｕｌｔｓ
２ １ Ｓｉｚｅ ｏｆ ｔｈｅ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ
Ａ ｔｏｔａｌ ｏｆ １５５ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｓｃｒｅｅｎｅｄ
ｏｕｔ ｆｒｏｍ ｓｉｘ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ (Ｔａｂｌｅ
１). Ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｎｏ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｉｎ ｔｈｅ ｎｕｍ￣
ｂｅｒ ｏｆ ＣＦＵ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ｐｅｒ １ ｇ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｓｉｘ ｆｒｅｓｈ
ｓｐｏｒｏｃａｒｐｓ (Ｐ ＝ ０ ０９３). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｇｒｏｕｐｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｅａｃｈ ａｓｃｏ￣
ｃａｒｐ ｉｓ ｖｅｒｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ.
Ｆｉｇ １ Ｐａｒｔｉａｌ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｆ ｓｃｒｅｅｎｅｄ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｂａｎｄｓ ｏｆ ｖａｒｉａｂｌｅ ｒｅｇｉｏｎ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｏｆ １６Ｓ ｒＤＮＡ Ｖ３
ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｂｙ ｈｉｇｈ ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ ｃａｐｉｌｌａｒｙ ｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ (ＨＰＣＥ)
１３１期 ＷＡＮ ａｎｄ ＬＩＵ: Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ ａ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｗｈｉｔｅ Ｔｒｕｆｆｌｅ
Ｔａｂｌｅ １ Ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｓｃｒｅｅｎｅｄ ｆｒｏｍ ｓｉｘ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ
Ｂａｃｔｅｒｉａ
Ｓａｍｐｌｅ ｏｆ ａｓｃｏｃａｒｐ
Ｔ１ Ｔ２ Ｔ３ Ｔ４ Ｔ５ Ｔ６
Ｈｅｒｂａｒｉｕｍ Ｃｏｄｅ ＨＫＡＳ７２０１４ ＨＫＡＳ７２０６９ ＨＫＡＳ７２０７７ ＨＫＡＳ７２０１６ ＨＫＡＳ７２０２４ ＨＫＡＳ７２０２５
ＣＦＵ ｇ－１ ６ ７±０ ２５×１０６ １ ８±０ ２３×１０７ ２ ２±０ ３７×１０７ ５ ３±０ ５５×１０７ ７ ９±０ ６７×１０６ ５ ７±０ ２５×１０６
Ｎｕｍｂｅｒ ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓ ３６ ２９ ３５ １８ ２３ １４
ＯＴＵｓ ６ ４ ７ ６ ４ ３
α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ６ ５ ２０ ６ １１ ０
γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ２８ ２４ ８ １２ ５ １０
Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ ０ ０ ４ ０ ２ ０
Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ ２ ０ ３ ０ ５ ０
Ａｃｉｄｏｂａｃｔｅｒｉａ ０ ０ ０ ０ ０ ４
２ ２ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ
Ｔｈｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ａｎａｌｙｓｉｓ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ １５５ ｉｓｏ￣
ｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ａｓ ｆｉｖｅ ｐｈｙｌａꎬ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓꎬ Ａｃｔｉ￣
ｎｏｂａｃｔｅｒｉａꎬ Ａｃｉｄｏｂａｃｔｅｒｉａꎬ Ａｌｐｈａｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ
Ｇａｍｍａｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ. Ｔｈｅｙ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ １１ ｇｅｎｅｒａ
ａｎｄ ２０ ｓｐｅｃｉｅｓ ( Ｆｉｇ ２). Ａｍｏｎｇ ｔｈｅｍꎬ ｔｈｅ Ｐｒｏ￣
ｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗａｓ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｍｏｒｅ ｎｕｍｅｒｏｕｓ ｔｈａｎ
ｏｔｈｅｒ ｇｒｏｕｐ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ.
２ ２ １ Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ
Ａｍｏｎｇ ｔｈｅ １５５ ｉｓｏｌａｔｅｓ ４９ ６８％ (７７ ｏｆ １５５) ｏｆ
ｂａｃｔｅｒｉａ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ｓｈｏｗｅｄ ａ
ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｏｆ γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ. Ｉｎ γ￣Ｐｒｏ￣
ｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａꎬ ５４ ５５％ ( ４２ ｏｆ ７７ ) ｉｓｏｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ
Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｌｕｒｉｄａ ａｎｄ ｏｎｌｙ ２５ ９７％ (２０ ｏｆ ７７) ｏｆ
γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ Ｐ. ｕｍｓｏｎｇｅｎｓｉｓꎬ Ｐ.
ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ ａｎｄ Ｐ. ｏｔｉｔｉｄｉｓ ( ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ >９９％). Ｔｈｅｒｅ
ｗｅｒｅ ｔｗｏ ｉｓｏｌａｔｅｓꎬ Ｔ４Ｂ４ ａｎｄ Ｔ４Ｂ１０ ｇｒｏｕｐｅｄ ｔｏｇｅｔｈ￣
ｅｒ ｗｉｔｈ ｕｎｄｅｓｃｒｉｂｅｄ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ( Ｆｉｇ ２).
Ｉｎ ｃｏｎｔｒａｓｔ ｗｉｔｈ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｇｒｏｕｐꎬ ｏｎｌｙ ａ ｆｅｗ ｉｓｏ￣
ｌａｔｅｓ (１３ ｏｆ ７７ꎬ １６ ８８％) ｗｉｔｈ Ｓｔｅｎｏｔｒｏｐｈｏｍｏｎａｓ
ｍａｌｔｏｐｈｉｌｉａ ｏｎ ａ ｓｉｎｇｌｅ ｂｒａｎｃｈ ｗｉｔｈ ａ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ ｌｅｖｅｌ
ｏｆ ９９％ ｏｎ １ ４５０ ｎｔ (Ｆｉｇ ２).
Ａｎｏｔｈｅｒ ｓｕｂｃｌａｓｓ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗａｓ
α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ( ５８ ｏｆ １５５ꎬ ３７ ４２％). Ｉｎ ｔｈｉｓ
ｇｒｏｕｐꎬ ５５ １７％ (３２ ｏｆ ５８) ｉｓｏｌａｔｅｓ ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ｇｅ￣
ｎｕｓ ｏｆ Ｐｈｙｌｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍꎬ ３１ ０３％ (１８ ｏｆ ５８) ｔｏ Ｂｒａ￣
ｄｙｒｈｉｚｏｂｉｕｍ ｊａｐｏｎｉｃｕｍꎬ ａｎｄ １３ ７９％ (８ ｏｆ ５８) ｔｏ
Ｂｏｓｅａꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ.
２ ２ ２ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ ａｎｄ Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ
Ｔｈｅ ｌｏｗ ａｎｄ ｈｉｇｈ ＧＣ Ｇｒａｍ￣ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｂａｃｔｅｒｉａ
ｗｅｒｅ ａｌｓｏ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ＴＳＡ. Ｍｏｓｔ ｏｆ ｔｈｅ ｉｓｏｌａｔｅｓ
ｂｅｌｏｎｇｅｄ ｔｏ ｌｏｗ ＧＣ Ｇｒａｍ￣ｐｏｓｉｔｉｖｅ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓ (１２ ｏｆ
１５５ꎬ ７ ７４％)ꎬ ａｍｏｎｇ ｗｈｉｃｈ ８３ ３３％ (１０ ｏｆ １２)
ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ ｉｎｔｏ ｇｅｎｕｓ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｗｉｔｈ ｈｉｇｈ ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ (>
９９％)ꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ Ｂ. ｆｉｒｍｕｓꎬ Ｂ. ｍｏｊａｖｅｎｓｉｓ ａｎｄ Ｂ.
ｆｏｒｔｉｓꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｒｅｓｔ ｏｆ ｔｈｅ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｗｅｒｅ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔ￣
ｅｄ ｔｏ Ｂｒｅｃｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｆｒｉｇｏｒｉｔｏｌｅｒａｎｓ (Ｆｉｇ ２). Ｔｈｅｒｅ
ｗｅｒｅ ｏｎｌｙ ３ ２２％ (５ ｏｆ １５５) ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｉｎ ｈｉｇｈ ＧＣ
Ｇｒａｍ￣ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｗｈｉｃｈ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｂｙ Ｍｉ￣
ｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｅｓｔａｃｅｕｍ ａｎｄ Ｋｉｎｅｏｃｏｃｃｕｓ ｘｉｎｊｉａｎｇｅｎｓｉｓ
(Ｆｉｇ ２).
２ ２ ３ Ａｃｉｄｏｂａｃｔｅｒｉａ
Ａ ｖｅｒｙ ｕｎｉｑｕｅ ｇｒｏｕｐ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａꎬ Ｔｅｒｒｉｇｌｏｂｕｓ ｒｏ￣
ｓｅｕｓ ｗｉｔｈｉｎ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ｗａｓ
ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ (３ ｏｆ １５５ꎬ １ ９４％)ꎬ ｗｈｉｃｈ
ｗａｓ ｎｏｔ ｆｏｕｎｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ ａｓｓｏｃｉ￣
ａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ ｏｒ ｔｈｅ ｓｐｏｒｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ. ｍｅｌａｎ￣
ｏｐｓｐｏｒｕｍꎬ Ｔ. ｍａｃｕｌａｔｕｍꎬ Ｔ. ｂｏｃｈｉｉꎬ ａｎｄ Ｔ. ｍａｇｎａ￣
ｔｕｍ (Ｌｉ ａｎｄ Ｃａｓｔｅｌｌａｎｏꎬ １９８７ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ
Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００７). Ｔｈｉｓ ｉｓ ｔｈｅ ｆｉｒｓｔ ｔｉｍｅ
ｔｈａｔ ｓｔｒａｉｎｓ ｏｆ Ａｃｉｄｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ａｎｄ ｒｅ￣
ｃｏｒｄｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔｕｂｅｒ.
３ Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
Ｓｉｘ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ｗｅｒｅ ｕｓｅｄ
ｆｏｒ ｔｈｉｓ ａｎａｌｙｓｉｓ. Ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｎｏ ｏｂｖｉｏｕｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ｂｅ￣
ｔｗｅｅｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｉｎ ｔｈｅ ａｍｏｕｎｔ ｏｆ ＣＦＵ ｏｆ
ｂａｃｔｅｒｉａ. Ｆｉｖｅ ｇｒｏｕｐｓ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ｗｅｒｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｆｒｏｍ
１５５ ｉｓｏｌａｔｅｓ. Ｔｈｅ ｍａｊｏｒｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅｍ ｗｅｒｅ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｉｎ
ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓꎬ ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｎｄ
Ｓｔｅｎｏｔｒｏｐｈｏｍｏｎａｓ (γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ)ꎻ Ｂｏｓｅａꎬ Ｂｒａ￣
ｄｙｒｈｉｚｏｂｉｕｍꎬ ａｎｄ Ｐｈｙｌｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ( α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅ￣
２３ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３６卷
ｒｉａ)ꎻ Ｆｉｒｍｉｃｕｔｅｓꎻ Ａｃｔｉｎｏｂａｃｔｅｒｉａ ａｎｄ Ａｃｉｄｏｂａｃｔｅｒｉａ
(Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００７ꎬ ２０１０). β￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗａｓ ｄｅ￣
ｔｅｃｔｅｄ ａｎｄ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ａｓｃｏｍａ ｏｆ Ｔ. ｂｏｒｃｈｉｉ ａｎｄ
Ｔ. ｍａｇｎａｔｕｍ ｉｎ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ ( Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００５ꎬ ２００７)ꎬ ｂｕｔ ｎｏｒ ｆｒｏｍ ａｌｌ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｓｔｕｄｉｅｄ
ｈｅｒｅ. Ｉｔ ｗａｓ ｐｒｏｂａｂｌｙ ｄｕｅ ｔｏ ｔｈｅｉｒ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｈａｂｉｔａｔｓ
ａｎｄ ｈｏｓｔｓ.
α￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗａｓ ｏｎｅ ｏｆ ｔｈｅ ｐａｒｔｉｃｕｌａｒｌｙ
ｃｏｎｓｔａｎｔ ａｎｄ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｇｒｏｕｐｓꎬ ｉｎｄｉｃａｔｉｎｇ ｉｔ
ｗａｓ ｐｒｏｂａｂｌｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ａｓｃｏ￣
ｃａｒｐｓ. Ｐｈｙｌｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｍｙｓｉｎａｃｅａｒｕｍ ａｎｄ Ｂｒａｄｙｒｈｉ￣
ｚｏｂｉｕｍ ｊａｐｏｎｉｃｕｍ ｗｅｒｅ ｔｈｅ ｍａｉｎ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｖｅｓ ｏｆ ｔｈｉｓ
ｇｒｏｕｐ. Ｐ. ｍｙｓｉｎａｃｅａｒｕｍ ｗａｓ ｔｈｅ ｃｏｍｍｏｎｅｓｔ ｂａｃｔｅｒｉｕｍ
Ｆｉｇ ２ Ｎｅｉｇｈｂｏｒ￣ｊｏｉｎｉｎｇ ｔｒｅｅ ｂａｓｅｄ ｏｎ １６Ｓ ｒＤＮＡ ｇｅｎｅ ｐａｒｔｉａｌ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ ２１ ＯＴＵｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｆｒｕｉｔ ｂｏｄｉｓ ｏｆ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ.
Ｉｔ ｓｈｏｗｓ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓ ｇｅｎｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｔｏ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ＧｅｎＢａｎｋ
ｄａｔａｂａｓｅ. Ｔｈｅ ｎｕｍｂｅｒｓ ａｔ ｅａｃｈ ｂｒａｎｃｈ ｎｏｄｅ ａｒｅ ｔｈｅ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｎｕｍｂｅｒｓ ｆｒｏｍ １０００ ｒｅ￣ｓａｍｐｌｉｎｇｓ. Ｔｈｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ
ｏｆ Ａｑｕｉｆｅｘ ｐｙｒｏｐｈｉｌｕｓ (Ｍ８３５４８) ｗａｓ ｕｓｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｏｕｔ ｇｒｏｕｐ
３３１期 ＷＡＮ ａｎｄ ＬＩＵ: Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ Ｂａｃｔｅｒｉａ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ ａ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｗｈｉｔｅ Ｔｒｕｆｆｌｅ
ａｎｄ ｗａｓ ｆｏｕｎｄ ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔｌｙ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｒｕｆｆｌｅｓ
ｓｔｕｄｉｅｄ (Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ
２００７). Ｂ. ｊａｐｏｎｉｃｕｍꎬ ｗｈｉｃｈ ｉｓ ｗｅｌｌ ｋｎｏｗｎ ｆｏｒ ｉｔｓ ａ￣
ｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｆｏｒｍ ｓｙｍｂｉｏｔｉｃ ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎｓ ｗｉｔｈ ｌｅｇｕｍｉｎｏｕｓ
ｈｏｓｔ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ｂｅｉｎｇ ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ ｏｆ ｔｈｅ ｎｉｔｒｏｇｅｎ￣ｆｉｘ￣
ｉｎｇ ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｉｎ ｔｈｅ ｎｏｄｕｌｅｓꎬ ｗａｓ ａｌｓｏ ｆｒｅｑｕｅｎｔｌｙ ｉｓｏ￣
ｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｒｕｆｆｌｅｓ ( Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００７ꎬ
２０１０). Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ. (２０１０) ａｍｐｌｉｆｉｅｄ ｔｈｅ ｎｉｔｒｏｇｅ￣
ｎａｓｅ ｇｅｎｅ ｎｉｆＨ ｆｒｏｍ Ｔ. ｍａｇｎａｔｕｍ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ａｔ ｄｉｆ￣
ｆｅｒｅｎｔ ｓｔａｇｅｓ ｏｆ ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ ｕｓｉｎｇ ｄｅｇｅｎｅｒａｔｅ ＰＣＲ
ｐｒｉｍｅｒｓꎬ ａｎｄ ｐｕｔａｔｉｖｅ ａｍｉｎｏ ａｃｉｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｒｅｖｅａｌｅｄ
ｔｈａｔ ｔｈｅ ｎｉｆＨ ｇｅｎｅｓ ｆｒｏｍ ｂａｃｔｅｒｉａ ｏｆ α￣ ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ
ａｆｆｉｌｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｂｒａｄｙｒｈｉｚｏｂｉｕｍ ｓｐｐ. Ｂｅｓｉｄｅｓꎬ ｔｈｅ ｎｉ￣
ｔｒｏｇｅｎ￣ｆｉｘｉｎｇ ｂａｃｔｅｒｉａ ｈａｖｅ ａｌｓｏ ｂｅｅｎ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ
ｔｈｅ ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ｏｆ ｏｔｈｅｒ ＥＭ￣ｆｕｎｇｉ ａｎｄ ＡＭ￣ｆｕｎｇｉ
(Ｌａｒｓｅｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９７８ꎻ Ｓｐａｎｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９８２ꎻ Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ
１９９２ꎻ Ｂｉａｎｃｉｏｔｔｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９６ꎻ Ｈｕｒｅｋ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７ꎻ
Ａｍｏｒａ￣Ｌａｚｃａｎｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９８ꎻ Ａｎｔｏｕｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９８ꎻ
Ｆｒｅｙ￣Ｋｌｅｔｔ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７ ). Ｎｉｔｒｏｇｅｎ ｆｉｘａｔｉｏｎ ａｎｄ
ｔｒａｎｓｆｅｒ ｂｙ ｔｈｅ ｏｒｇａｎｏｔｒｏｐｈｉｃ ｂａｃｔｅｒｉａ ｍｉｇｈｔ ｂｅ ｉｍ￣
ｐｏｒｔａｎｔ ｆｏｒ ｔｈｅ ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ ｔｒｕｆｆｌｅｓ ａｎｄ
ｏｔｈｅｒ ｆｕｎｇｉ.
γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗａｓ ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅｌｙ ｐｒｅｄｏｍｉｎａ￣
ｔｅｄ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ ｉｓｏｌａｔｅｓ ａｎｄ ｉｔ ｗａｓ ｈｅａｖｉｌｙ ｐｏｐｕｌａｔｅｄ
ｂｙ ｍｅｍｂｅｒｓ ｏｆ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｎｄ Ｓｔｅｎｏｔｒｏｐｈｏｍｏｎａｓ.
Ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ ｆｏｕｎｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ
ｗａｓ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔａｔｉｖｅ ｏｆ ｔｈｅ ｃｕｌｔｕｒａｂｌｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｆｒａｃｔｉｏｎ
ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｒｕｆｆｌｅｓ ( Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ
Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００７).
Ｉｔ ｗａｓ ｒｅｐｏｒｔｅｄ ｔｈａｔ ｃｅｒｔａｉｎ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｈａｄ ｔｈｅ ｃａ￣
ｐａｂｉｌｉｔｙ ｉｎ ｄｅｇｒａｄｉｎｇ ｃｈｉｔｉｎｏｌｉｔｉｃ ｃｏｍｐｏｕｎｄꎬ ａｎｄ
ｓｏｍｅ ｓｔｒａｉｎｓ ｗｅｒｅ ｓｈｏｗｎ ｔｏ ｒｅｓｔｒｉｃｔ ｇｒｏｗｔｈ ｏｆ ｐｈｙｔｏ￣
ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ ｆｕｎｇｉ. Ｔｈｅｓｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ ｗｅｒｅ ａｓｓｕｍｅｄ ｔｏ ｂｅ
ａｂｌｅ ｔｏ ｓｔｉｍｕｌａｔｅ ｓｐｏｒｅ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｍｙｃｅｌｉｕｍ
ｇｒｏｗｔｈ ｗｉｔｈｉｎ ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ｏｆ Ｔ. ｂｏｒｃｈｉｉ ａｎｄ ｆａｃｉｌｉｔａ￣
ｔｅｄ ｔｈｅ ｍｏｒｐｈｏｇｅｎｅｓｉｓ ｏｆ ａｓｃｕｓ (Ｂｅｄｉｎｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ
Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００ꎬ ２００２).
Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｏｆ ｔｒｕｆｆｌｅ
ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ａｎｄ ｔｈｅ γ￣Ｐｒｏｔｅｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ Ｍｏｒａｘｅｌｌａ
ｏｓｌｏｅｎｓｉｓ ｉｎ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｙ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ Ｍ. ｏｓｌｏｅｎｓｉｓ
ｓｅｅｍｓ ｔｏ ｂｅ ａ ｐｒｏｍｉｓｉｎｇ ｍａｒｋｅｒ ｏｆ ｔｒｕｆｆｌｅ ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｏｒ
ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙ (Ｍｅｌｌｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｉｓ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ｗａｓ ｎｏｔ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ Ｔ. ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ.
Ｓｐｏｒｅ￣ｆｏｒｍｉｎｇ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｔ. ｐａｎｚｈｉ￣
ｈｕａｎｅｎｓｅ ｗｅｒｅ ｍｏｓｔｌｙ ｒｅｆｅｒｒｅｄ ｔｏ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｆｉｒｍｕｓꎬ Ｂ.
ｍｏｊａｖｅｎｓｉｓꎬ ａｎｄ Ｂ. ｆｏｒｔｉｓ. Ｓｏｍｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｉｎｖｅｓｔｉｇａ￣
ｔｉｏｎｓ ｈａｖｅ ｓｈｏｗｎ ｔｈａｔ Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｔ.
ｂｏｒｃｈｉｉ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ａｌｓｏ ｅｘｐｒｅｓｓｅｄ ａ ｃｌｅａｒ ｃｈｉｔｉｎｏｌｉｔｉｃ
ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｔｏ ａｆｆｅｃｔ ａｓｃｏｓｐｏｒｅ ｇｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
ａｎｄ ｆａｃｉｌｉｔａｔｅ ａｓｃｕｓ ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇ ａｎｄ ｏｐｅｎｉｎｇ (Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ
ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９). Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ｓｏｍｅ ｃｕｌｔｕｒｅｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ
ｆｒｏｍ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｅ ａｎｄ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｆ Ｌａｃｃａｒｉａ
ａｎｄ Ｒｈｉｚｏｐｏｇｏｎ ｗｅｒｅ ａｂｌｅ ｔｏ ｅｎｈａｎｃｅ ｆｕｎｇａｌ ｇｒｏｗｔｈꎬ
ｒｏｏｔ ｃｏｌｏｎｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｕｂｓｅｑｕｅｎｔ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ ａｎｄ
ｆｕｎｃｔｉｏｎｉｎｇ ｏｆ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｅ (Ｇａｒｂａｙｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９０ꎻ
Ｇａｒｂａｙｅ ａｎｄ Ｄｕｐｏｎｎｏｉｓꎬ １９９２).
Ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ ｏｎ ｔｈｅ Ｔ. ｂｏｒｃｈｉｉ ｍｉｃｒｏｂｉａｌ
ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ ｈａｖｅ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｏｆ Ａｃｔｉ￣
ｎｏｂａｃｔｅｒｉａ ｗｉｔｈｉｎ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｅ ａｎｄ ａｓｃｏｃａｒｐｓ
(Ｂｅｄｉｎｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００ꎬ ２００２ꎻ
Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５). Ｓｉｍｉｌａｒ ｒｅｓｕｌｔｓ ｗｅｒｅ ｏｂｔａｉｎｅｄ
ｆｒｏｍ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｏｎ Ｔ.
ｍａｇｎａｔｕｍ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｓ ｃｏｌｌｅｃｔｅｄ ｉｎ ａ ｔｒｕｆｆｌｅ ｏｒｃｈａｒｄ
(２９％ ｏｆ ｉｓｏｌａｔｅｓꎬ ｕｎｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｒｅｓｕｌｔｓ) ａｎｄ ｆｒｏｍ
ｒｈｉｚｏｐｌａｎｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｔ. ｍｅｌａｎｏｓｐｏｒｕｍ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ
ｒｏｏｔｓ (Ｍａｍｏｕｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９８６). Ｉｎ ｏｕｒ ｓｔｕｄｉｅｓꎬ ｔｈｅｒｅ
ｗｅｒｅ ｆｅｗ ｎｕｍｂｅｒｓ ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｈｉｇｈ ＧＣ Ｇｒａｍ￣
ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ｂｙ Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ
ｗｈｉｃｈ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ａｌｓｏ ｉｓｏｌａｔｅｄ ｆｒｏｍ ａｓｃｏｃａｒｐｓ ｏｆ Ｔ.
ｂｏｒｃｈｉｉ ａｎｄ Ｔ. ｍａｇｎａｔｕｍ ( Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ
２００７). Ｂｅｓｉｄｅｓꎬ ａｎｏｔｈｅｒ ｎｏｖｅｌ ｇｒｏｕｐ ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ ｔｏ￣
ｇｅｔｈｅｒ ｗｉｔｈ Ｋｉｎｅｏｃｏｃｃｕｓ ｗａｓ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｉｎ ｏｕｒ ｒｅｓｅａｒｃｈ.
Ｔｈｅ ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｓｔｒａｉｎｓ ｃｏｎｆｉｒｍｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｉｓ
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｇｒｏｕｐ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｅｄ ａ ｃｏｍｍｏｎ ｆｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ
ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｉｎｈａｂｉｔｉｎｇ Ｔｕｂｅｒ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｏｒ
ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ.
Ｉｎｔｅｒｅｓｔｉｎｇｌｙꎬ ａ ｎｏｖｅｌ Ｔｕｂｅｒ￣ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｃｕｌｔｕｒ￣
ａｂｌｅ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ Ｔｅｒｒｉｇｌｏｂｕｓ ｒｏｓｅｕｓꎬ ｗａｓ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｉｎ ｔｈｉｓ
ｓｔｕｄｙ. Ｂａｃｔｅｒｉａ ｂｅｌｏｎｇｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ｐｈｙｌｕｍ Ａｃｉｄｏｂａｃｔｅ￣
ｒｉａ ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｏｂｓｅｒｖｅｄ ｉｎ ａ ｗｉｄｅ ｖａｒｉｅｔｙ ｏｆ ｅｎｖｉｒｏｎ￣
ｍｅｎｔｓ ａｎｄ ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇ ｄｏｍｉｎａｎｔ ａｎｄ ｍｅｔａｂｏｌｉｃａｌｌｙ
ａｃｔｉｖｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ｉｎ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌ ( Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００８). Ｈｏｗｅｖｅｒ ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｎｏ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｖａｉｌａｂｌｅ
ｏｎ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｉｔｈ ｅｃｔｏ￣
４３ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３６卷
ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ.
Ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｍｅｔｈｏｄｓꎬ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ｐｌａｔｅ ｃｏｕｎｔｓꎬ ｉｎ
ｓｉｔｕ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｉｃ ｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎｓ ａｎｄ ｃｕｌｔｕｒｅ￣ｉｎｄｅｐｅｎｄ￣
ｅｎｔꎬ ｈａｖｅ ｆｏｕｎｄ ｂａｃｔｅｒｉａ ｏｎ ｔｈｅ ｓｕｒｆａｃｅｓ ｏｆ ｔｒｕｆｆｌｅｓ
ａｎｄ ｏｔｈｅｒ ｆｕｎｇｉ’ ｈｙｐｈａｅ ａｎｄ ｓｐｏｒｅｓꎬ ｏｎ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ
ｒｏｏｔｓꎬ ａｎｄ ｉｎｓｉｄｅ ｔｈｅ ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ (Ｋａｔｚｎｅｌｓｏｎ ｅｔ
ａｌ.ꎬ １９６２ꎻ Ａｎｄｒａｄｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９８ꎻ Ｔｉｍｏｎｅｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ
１９９８ꎻ Ｂｅｄｉｎｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｍａｎｓｆｅｌｄ￣Ｇｉｅｓｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００２ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０００ꎻ Ｂａｒｂｉｅｒｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５).
Ｉｔ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ ｓｏｍｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｉｎｔｅｒａｃ￣
ｔｉｏｎ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｆｕｎｇｉ ａｎｄ ｂａｃｔｅｒｉａ. Ｆｏｒ ｉｎ￣
ｓｔａｎｃｅꎬ ｔｈｅ ｅｘｕｄａｔｅｓ ｏｆ ｆｕｎｇｉ ｍｉｇｈｔ ｂｅ ａ ｍａｊｏｒ ｏｒ ｅｘ￣
ｃｌｕｓｉｖｅ ｓｏｕｒｃｅ ｏｆ ｎｕｔｒｉｅｎｔｓ ｆｏｒ ｔｈｅｓｅ ｂａｃｔｅｒｉａ (Ｄａｎｅｌｌ
ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９３ꎻ Ａｎｄｒａｄｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７ꎻ Ｂａｒｅａ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００２ꎻ Ｒａｎｇｅｌ￣Ｃａｓｔｒｏ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００２ꎻ Ｒｉｌｌｉｇꎬ ２００４).
Ａｎｄ ｃｏｎｖｅｒｓｅｌｙꎬ ｂａｃｔｅｒｉａ ｃｏｕｌｄ ａｆｆｅｃｔ ａｓｃｏｓｐｏｒｅ ｇｅｒ￣
ｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｆｕｎｇｉ ａｎｄ ｆａｃｉｌｉｔａｔｅ ａｓｃｕｓ ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇ ａｎｄ
ｍｙｃｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ (Ｇａｚｚａｎｅｌｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９ꎻ Ｓｂｒａｎａ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２００２). Ｉｎ ｔｅｒｍｓ ｏｆ ｔｈｅ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ
ｂｅｔｗｅｅｎ ｆｕｎｇｉ ａｎｄ ｂａｃｔｅｒｉａꎬ ｔｈｅｒｅ ｗｅｒｅ ｓｏｍｅ ｐａｒｔｉ￣
ｃｕｌａｒ ａｎｄ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ ｆｕｎｇｕｓ￣ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａꎬ ｓｏ￣
ｃａｌｌｅｄ ＭＨＢｓ (ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｈｅｌｐｅｒ ｂａｃｔｅｒｉａ)ꎬ ｐｏｓｓｅｓ￣
ｓｉｎｇ ｔｈｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ａｃｔｉｖｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｂｉｏｃｏｎｔｒｏｌ ｏｒ ｔｈｅ ａ￣
ｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｓｕｓｔａｉｎ ｔｈｅ ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｉｎ￣
ｆｅｃｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｎ ｔｈｅ ｐｌａｎｔｓ￣ｂａｃｔｅｒｉａ￣
ｆｕｎｇｕｓ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａ ａｂｏｖｅꎬ Ｂｒａ￣
ｄｙｒｈｉｚｏｂｉｕｍꎬ Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｎｄ Ｂａｃｉｌｌｕｓ.
Ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｉｓ ｍｏｒｅ ｑｕａｌｉｔａｔｉｖｅ ｔｈａｎ ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ
ｉｎ ｄｅｍｏｎｓｔｒａｔｉｎｇ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｉｎ ｗｈｉｔｅ
ｔｒｕｆｆｌｅ. Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅ ｒａｎｇｅ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａｌ￣ｔｒｕｆｆｌｅ ｉｎｔｅｒ￣
ａｃｔｉｏｎｓ ｔｈａｔ ｏｃｃｕｒ ｉｎ ｎａｔｕｒｅ ｈａｓ ｎｏｔ ｙｅｔ ｂｅｅｎ ｆｕｌｌｙ ｉｎ￣
ｖｅｓｔｉｇａｔｅｄꎬ ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｏｕｒ ｗｏｒｋ ｅｘｔｅｎｄ
ｔｈｅ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ａｖａｉｌａｂｌｅ ｏｎ Ｔｕｂｅｒ￣ａｓｓｏｃｉ￣
ａｔｅｄ ｂａｃｔｅｒｉａ. Ｂａｓｅｄ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓꎬ ｉｔ ｉｓ ｒｅａｓｏｎａ￣
ｂｌｅ ｔｏ ｅｘｐｅｃｔ ｔｈａｔ ｔｈｉｓ ｓｕｐｅｒｆｉｃｉａｌ ｔｒｕｆｆｌｅ￣ｂａｃｔｅｒｉａ ｃｏｎ￣
ｎｅｃｔｉｏｎ ｈａｓ ｍｕｔｕａｌ ｂｅｎｅｆｉｔｓ ｆｏｒ ｂｏｔｈ ｓｉｄｅｓ. Ｆｕｒｔｈｅｒ
ａｎａｌｙｓｅｓ ａｒｅ ｓｕｒｅｌｙ ｒｅｑｕｉｒｅｄ ｔｏ ｉｍｐｒｏｖｅ ｋｎｏｗｌｅｄｇｅ ｏｎ
ｔｈｅ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｒｕｆｆｌｅｓ ａｎｄ ｂａｃｔｅｒｉａ. Ａｎｄ
ｂｙ ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ ｏｕｔ ｔｈｅ “ｈｅｌｐｅｒ” ｍｉｃｒｏｂｅꎬ ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ
ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｕｔｉｌｉｚｅｄ ｔｏ ｉｍｐｒｏｖｅ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｍｅｎｔ ａｎｄ ｍａｉｎ￣
ｔｅｎａｎｃｅ ｏｆ ａ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｓｙｍｂｉｏｓｉｓꎬ ａｎｄ ｔｏ ｅｎｈａｎｃｅ
ｔｈｅ ｓｕｃｃｅｓｓ ｏｆ ｔｒｕｆｆｌｅ ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ.
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:
Ａｎｔｏｕｎ Ｈꎬ Ｂｅａｕｃｈａｍｐ ＣＪꎬ Ｇｏｕｓｓａｒｄ Ｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９８. Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｏｆ Ｒｈｉ￣
ｚｏｂｉｕｍ ａｎｄ Ｂｒａｄｙｒｈｉｚｏｂｉｕｍ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｓ ｐｌａｎｔ ｇｒｏｗｔｈ ｐｒｏｍｏｔｉｎｇ ｒｈｉ￣
ｚｏｂａｃｔｅｒｉａ ｏｎ ｎｏｎ￣ｌｅｇｕｍｅｓ: ｅｆｆｅｃｔ ｏｎ ｒａｄｉｓｈｅｓ (Ｒａｐｈａｎｕｓ ｓａｔｉｖｕｓ
Ｌ.) [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ ａｎｄ Ｓｏｉｌꎬ ２０４: ５７—６７
Ａｍｏｒａ￣Ｌａｚｃａｎｏ Ｅꎬ Ｖａｚｑｕｅｚ ＭＭꎬ Ａｚｃｏｎ Ｒꎬ １９９８. Ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｏｆ ｎｉｔｒｏ￣
ｇｅｎ￣ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ ｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ ｔｏ ａｒｂｕｓｃｕｌａｒ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ
[Ｊ] . Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｆｅｒｔｉｌｉｔｙ ｏｆ Ｓｏｉｌｓꎬ ２７: ６５—７０
Ａｎｄｒａｄｅ Ｇꎬ Ｌｉｎｄｅｒｍａｎ ＲＧꎬ Ｂｅｔｈｌｅｎｆａｌｖａｙ ＧＪꎬ １９９８. Ｂａｃｔｅｒｉａｌ ａｓｓｏ￣
ｃｉａｔｉｏｎｓ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｏｆ ｔｈｅ ａｒｂｕｓｃｕｌａｒ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ
ｆｕｎｇｕｓ Ｇｌｏｍｕｓ ｍｏｓｓｅａｅ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ ａｎｄ Ｓｏｉｌꎬ ２０２: ７９—８７
Ａｎｄｒａｄｅ Ｇꎬ Ｍｉｈａｒａ ＫＬꎬ Ｌｉｎｄｅｒｍａｎ ＲＧ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７. Ｂａｃｔｅｒｉａ ｆｒｏｍ
ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ａｎｄ ｈｙｐｈｏｓｐｈｅｒｅ ｓｏｉｌｓ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ａｒｂｕｓｃｕｌａｒ￣ｍｙｃｏｒ￣
ｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ [Ｊ] . Ｐｌａｎｔ ａｎｄ Ｓｏｉｌꎬ １９２: ７１—７９
Ｂａｒｂｉｅｒｉ Ｅꎬ Ｂｅｒｔｉｎｉ Ｌꎬ Ｒｏｓｓｉ Ｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５. Ｎｅｗ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ ｂａｃｔｅｒｉａｌ
ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ａｓｃｏｍａ ｏｆ ｔｈｅ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｕｓ Ｔｕｂｅｒ ｂｏｒｃｈｉｉ
Ｖｉｔｔａｄ [Ｊ] . ＦＥＭＳ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ Ｌｅｔｔｅｒｓꎬ ２４７: ２３—３５
Ｂａｒｂｉｅｒｉ Ｅꎬ Ｇｕｉｄｉ Ｃꎬ Ｂｅｒｔａｕｘ Ｊ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７. Ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ ａｎｄ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ
ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓ ｉｎ Ｔｕｂｅｒ ｍａｇｎａｔｕｍ ｄｕｒｉｎｇ ｔｒｕｆｆｌｅ ｍａｔｕ￣
ｒａｔｉｏｎ [Ｊ] . Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙꎬ ９: ２２３４—２２４６
Ｂａｒｂｉｅｒｉ Ｅꎬ Ｃｅｃｃａｒｏｌｉ Ｐꎬ Ｓａｌｔａｒｅｌｌｉ Ｒ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０. Ｎｅｗ ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ
ｎｉｔｒｏｇｅｎ ｆｉｘａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ Ｉｔａｌｉａｎ ｗｈｉｔｅ ｔｒｕｆｆｌｅ Ｔｕｂｅｒ ｍａｇｎａｔｕｍ
[Ｊ] . Ｆｕｇａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙꎬ １１４: ９３６—９４２
Ｂａｒｅａ ＪＭꎬ Ａｚｃóｎ Ｒꎬ Ａｚｃóｎ￣Ａｇｕｉｌａｒ Ｃꎬ ２００２. Ｍｙｃｏｒｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｉｎｔｅｒ￣
ａｃｔｉｏｎｓ ｔｏ ｉｍｐｒｏｖｅ ｐｌａｎｔ ｆｉｔｎｅｓｓ ａｎｄ ｓｏｉｌ ｑｕａｌｉｔｙ [Ｊ] . Ａｎｔｏｎｉｅ ｖａｎ
Ｌｅｅｕｗｅｎｈｏｅｋꎬ ８１: ３４３—３５１
Ｂｅｄｉｎｉ Ｓꎬ Ｂａｇｎｏｌｉ Ｇꎬ Ｓｂｒａｎａ Ｃ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９９. Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｄｓ ｉｓｏｌａｔｅｄ
ｆｒｏｍ ｗｉｔｈｉｎ ｆｒｕｉｔｉｎｇ ｂｏｄｉｅｓ ｏｆ Ｔ. ｂｏｒｃｈｉｉ ａｒｅ ｃａｐａｂｌｅ ｏｆ ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ
ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｃｏｎｔｒｏｌ ｏｒ ｐｈｙｔｏｓｔｉｍｕｌａｔｏｒｙ ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ ｉｎ ｐｕｒｅ ｃｕｌｔｕｒｅ
[Ｊ] . Ｓｙｍｂｉｏｓｉｓꎬ ２６: ２２３—２３６
Ｂｉａｎｃｉｏｔｔｏ Ｖꎬ Ｍｉｎｅｒｄｉ Ｄꎬ Ｐｅｒｏｔｔｏ Ｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９６. Ｃｅｌｌｕｌａｒ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎｓ
ｂｅｔｗｅｅｎ ａｒｂｕｓｃｕｌａｒ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ ａｎｄ ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｂａｃｔｅｒｉａ
[Ｊ] . Ｐｒｏｔｏｐｌａｓｍａꎬ １９３: １２３—１３７
Ｄａｎｅｌｌ Ｅꎬ Ａｌｓｔｒöｍ Ｓꎬ Ｔｅｒｎｓｔｒöｍ Ａꎬ １９９３. Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ ｉｎ
ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｆｒｕｉｔ ｂｏｄｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｍｕｓｈｒｏｏｍ
Ｃａｎｔｈａｒｅｌｌｕｓ ｃｉｂａｒｉｕｓ [ Ｊ] . Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ Ｒｅｖｉｅｗｓꎬ ９７: １１４８—
１１５２
ｄｅ Ｒｉｄｄｅｒ￣Ｄｕｉｎｅ ＡＳꎬ Ｋｏｗａｌｃｈｕｋ ＧＡꎬ Ｋｌｅｉｎ Ｇｕｎｎｅｗｉｅｋ ＰＪＡ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００５. Ｒｈｉｚｏｓｐｈｅｒｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ ｉｎ ｎａｔｕｒａｌ
ｓｔａｎｄｓ ｏｆ Ｃａｒｅｘ ａｒｅｎａｒｉａ (ｓａｎｄ ｓｅｄｇｅ) ｉｓ ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ ｂｙ ｂｕｌｋ ｓｏｉｌ
ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ [ Ｊ ] . Ｓｏｉｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙꎬ ３７:
３４９—３５７
Ｄｅｎｇ ＸＪꎬ Ｌｉｕ ＰＧꎬ Ｌｉｕ ＣＹ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１２. Ａ ｎｅｗ ｗｈｉｔｅ ｔｒｕｆｆｌｅ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ
Ｔｕｂｅｒ ｐａｎｚｈｉｈｕａｎｅｎｓｅ ｆｒｏｍ Ｃｈｉｎａ [ Ｊ] . Ｍｙｃｏｌｏｇｉｃａｌ Ｐｒｏｇｒｅｓｓꎬ
ＤＯＩ: １０. １００７ / ｓ １１５５７￣０１２￣０８６２￣６
Ｄｕｐｏｎｎｏｉｓ Ｒꎬ Ｇａｒｂａｙｅ Ｊꎬ １９９２. Ｓｏｍｅ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ ｇｒｏｗｔｈ
ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｅｃｔｏｍｙｃｏｒｒｈｉｚａｌ ｆｕｎｇｉ ｂｙｂａｃｔｅｒｉａ [ Ｊ] . Ｃａｎａｄｉａｎ
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ ６８: ２１４８—２１５２
Ｆｒｅｙ￣ Ｋｌｅｔｔ Ｐꎬ Ｇａｒｂａｙｅ Ｊꎬ Ｔａｒｋｋａ Ｍꎬ ２００７. Ｔｈｅ ｍｙｃｏｒｒｈｉｚａ ｈｅｌｐｅｒ
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ｉｎ ｄｒｙ ｐｉｎｅ ｆｏｒｅｓｔ ｈｕｍｕｓ ａｎｄ ｎｕｒｓｅｒｙ ｐｅａｔ [ Ｊ] . Ｃａｎａｄｉａｎ Ｊｏｕｒ￣
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６３ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３６卷