全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 24 期 2014 年 12 月 ·3585·
鱼腥草素钠联合 EDTA-Na2对生物被膜菌的影响
李 芳,黄卫锋,段强军,吴大强,程惠娟*
安徽中医药大学,安徽 合肥 230038
摘 要:目的 探索鱼腥草素钠(SH)联合乙二胺四乙酸二钠(EDTA-Na2)对生物被膜菌的影响,寻找潜在的抗生素替代
品。方法 通过微量稀释法以及棋盘法,测定 SH 和 EDTA-Na2对铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa,PA)、金黄色葡
萄球菌(Staphylococcus aureus,SA)、白色念珠菌(Candida albicans,CA)的最小抑菌浓度(MIC)和最小膜清除浓度(MBEC)
以及两药协同点;通过平板稀释涂布法测定 3 种菌在协同点的生存曲线;扫描电子显微镜法(SEM)观察 PA、SA 和 CA 生
物被膜的形态。结果 SH 对 PA、SA 和 CA 的 MIC 分别为 2.048、0.064、0.064 mg/mL,MBEC 分别为 2.048、0.256、0.512
mg/mL;EDTA-Na2对 PA、SA 和 CA 的 MIC 分别为 3.75、0.938、0.117 mg/mL,MBEC 分别为 15、3.75、30 mg/mL;SH
联合 EDTA-Na2(SH/EDTA-Na2)对 PA、SA 和 CA 的 MIC(mg/mL)分别为 0.256/0.938、0.008/0.233、0.008/0.029,MBEC
(mg/mL)分别为 0.512/3.722、0.032/0.469、0.064/0.938;SEM 观察到两药联合对细菌的生长抑制和生物被膜的清除有明显
作用,载体上的细菌显著减少,未见或仅有少量的生物被膜结构,与空白对照组比较差异明显。结论 SH 与 EDTA-Na2 具
有协同作用,二者联合能够显著增强 SH 对 PA、SA 和 CA 的生长抑制和生物被膜的清除作用。
关键词:鱼腥草素钠;乙二胺四乙酸二钠;生物被膜;铜绿假单胞菌;金黄色葡萄球菌;白色念珠菌
中图分类号:R285.5 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2014)24 - 3585 - 05
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2014.24.016
Effect of sodium houttuyfonate combined with EDTA-Na2 against biofilm bacteria
LI Fang, HUANG Wei-feng, DUAN Qiang-jun, WU Da-qiang, CHENG Hui-juan
Anhui University of Chinese Medicine, Hefei 230038, China
Abstract: Objective To investigate the effect of sodium houttuyfonate (SH) combined with EDTA-Na2 (SH/EDTA-Na2) against
biofilm bacteria, and to search for an alternative antibiotics. Methods The microdilution method and checkboard test were adopted to
determine the minimal inhibitory concentration (MIC), minimal biofilm eradication concentration (MBEC), and synergistic points of
SH and EDTA-Na2 for Pseudomonas aeruginosa (PA), Staphylococcus aureus (SA), and Candida albicans (CA); Time-kill (T-K)
curves of three kinds of bacteria in synergistic points were determined by dilution coating method; The morphology of PA, SA, and CA
was observed by scanning electronic microscope (SEM). Results The MIC of PA, SA, and CA for SH was 2.048, 0.064, and 0.064
mg/mL, and MBEC was 2.048, 0.256, and 0.512 mg/mL, respectively; The MIC of PA, SA, and CA for EDTA-Na2 was 3.75, 0.938, and
0.117 mg/mL, and MBEC was 15, 3.75, and 30 mg/mL, respectively; The MIC of PA, SA, and CA for SH/EDTA-Na2 was 0.256/0.938,
0.008/0.233, and 0.008/0.029 mg/mL, and MBEC was 0.512/3.722, 0.032/0.469, and 0.064/0.938 mg/mL, respectively. Combination
of the two drugs could significantly inhibit the growth and eradicate the biofilm of bacteria. The number of bacteria on carriers reduced
notably under SEM, with no or little biofilm on carriers, compared with the blank control group. Conclusion EDTA-Na2 could play a
synergistic role in combination with SH against pathogens, and SH could inhibit the growth and eradicate biofilm of PA, SA, and CA
more powerfully in combination with EDTA-Na2.
Key words: sodium houttuyfonate; EDTA-Na2; biofilm; Pseudomonas aeruginosa; Staphylococcus aureus; Candida albicans
细菌的耐药性已成为医学的一个棘手的问题,
耐药性的重要原因之一是因为由胞外聚合物组成
的生物被膜为膜内病原体提供保护,从而避免宿
主免疫系统和抗生素的作用 [1]。铜绿假单胞菌
(Pseudomonas aeruginosa,PA)和白色念珠菌
(Candida albicans,CA)是临床最常见的条件致病
收稿日期:2014-04-27
基金项目:国家自然科学基金面上项目(81173629);安徽中医药大学人才引进基金(2013RC003);安徽中医药大学青年科学研究基金
(2014qn007)
作者简介:李 芳(1988—),女,硕士在读,主要从事中药新剂型研究。E-mail: lfahuang@163.com
*通信作者 程惠娟,教授,硕士生导师。Tel: (0551)65169204 E-mail: chenghuijuan53@126.com
·3586· 中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 24 期 2014 年 12 月
菌,在医院感染中占有非常重要的地位,金黄色葡
萄球菌(Staphylococcus aureus,SA)是常见的化脓
性病原菌,这 3 种菌极易形成生物被膜并对传统抗
生素都具有耐药性,使感染难以控制[2-4]。因此,寻
找毒性较低、抗菌、抗生物被膜作用强的传统抗生
素替代品引起了人们的兴趣。中药及其有效成分已
经被证明是具有前途的抗菌药物[5-6]。此外,据报道,
一些“非抗生素”类物质对细菌和真菌也有广谱的
抑制作用,如 EDTA[7-8]和乙醇[9]。但是这些药物往
往抗菌作用较弱。中药的有效成分和“非抗生素”
类有抗菌作用物质联合是否能增强抗菌、抗生物被
膜作用是值得探讨的问题。本实验探索已经被证明
在体外有抗生物被膜作用的鱼腥草素钠(sodium
houttuyfonate,SH)[10-14]及有抗菌效果的乙二胺四
乙酸二钠(EDTA-Na2)联合用药对 PA、CA、SA 3
种病原菌和生物被膜的作用。
1 材料
1.1 菌株
PA(ATCC27853)、SA(ATCC25923)和 CA
(SC5314),均购于中国食品药品检定研究院。
1.2 药品、试剂和仪器
SH(质量分数 94.5%,批号 100247-199601,
中国食品药品检定研究院);LB(Luria-Bertani)培
养基(北京奥博星生物技术有限责任公司);RPMI
1640(Gibco);EDTA-Na2(国药集团化学试剂有限
公司);DPH—9162 型恒温培养箱(上海一恒科技
有限公司);NRY—200 型台式恒温摇床(上海南荣
实验室设备有限公司);SpectraMax M2e多功能酶标
仪[美谷分子仪器(上海)有限公司];Sirion200
扫描电镜(SEM,FEI 公司)。
2 方法
2.1 最小抑菌浓度(MIC)的测定
采用微量稀释法测定 SH、EDTA-Na2 对 PA、
SA 和 CA 的 MIC。PA 和 SA 终浓度为 1×106
CFU/mL,CA 浓度为 1×103 CFU/mL。SH 与
EDTA-Na2 设定的梯度分别为 2 048、1 024、512、
256、128、64、32、16、8、4、2 μg/mL 和 120、
60、30、15、7.5、3.75、1.875、0.938、0.469、0.235、
0.117 mg/mL。在 96 孔板中每个梯度设 8 个复孔,
每孔分别加入100 μL含2种药物的培养液和100 μL
菌液。混合后 PA、SA 和 CA 分别置于 37 ℃下静
置培养 24、48 h,测定 600 nm 吸光度(A600)值,
与空白对照组(不含药物)比较,抑制率 80%以上
的最低药物浓度为 MIC。实验重复 3 次。
2.2 最小膜清除浓度(MBEC)的测定
采用微量稀释法测定 SH、EDTA-Na2 对 PA、
SA 和 CA 的 MBEC。3 种菌的终浓度均为 1×106
CFU/mL。药物梯度设置同“2.1”项。在 96 孔中每
个梯度设 8 个复孔,每孔分别加入 200 μL 菌液后,
37 ℃恒温过夜培养 24 h,去除培养基,用无菌 PBS
洗涤 2~3次去除浮游菌。再在每孔分别加入 100 μL
含 2 种药物的培养液和 100 μL 的无药培养基,混合
后 37 ℃恒温过夜培养 24 h,测定 A600,与空白对
照组(不含药物)比较,抑制率 80%以上的最低药
物浓度为 MBEC。实验重复 3 次。
2.3 SH 与 EDTA-Na2 协同点的测定
采用棋盘法分别向 96 孔板分别加入 SH 和
EDTA-Na2,每种抗菌药物从 2 倍 MIC 浓度开始用
无菌培养基倍比稀释(SH 稀释 7 个浓度,EDTA-Na2
稀释 11 个浓度),各取 50 μL 分别排列在平板的行
与列上,然后在 96 孔板中加入 100 μL 菌液,37 ℃
恒温培养 24 h,测定 A600,与空白对照组(不含药
物)比较,抑制率 80%以上的最低药物浓度为联合
MIC。通过计算部分抑制浓度指数( fractional
inhibitory concentration index,FICI)[15]判断相互作
用:FICI<0.5 为协同作用,0.5≤FICI≤4.0 为联合
作用,FICI>4.0 为拮抗作用。
FICI=联合 MICSH/单独 MICSH+联合 MICEDTA-Na2/单独
MICEDTA-Na2
2.4 协同点时细菌的生存曲线
选取合适的协同点,采用平板稀释涂布法测定
PA、SA 和 CA 在 SH、EDTA-Na2 单独干预、SH 与
EDTA-Na2 共同干预 1、3、6、12、24 h 后的细菌数
量。以不加药物的空白组作为对照。绘制细菌生存
曲线。
2.5 扫描电子显微镜观察细菌形态
PA、SA 和 CA 分别接种于 LB 和 RPMI 1640
培养基中,在 37 ℃下,220 r/min 恒温摇床培养 24
h,2 000 r/min 离心 10 min,倾去上清液,用 LB
和 RPMI 1640 培养基分别稀释,PA 和 SA 终浓度为
7.5×105 CFU/mL,CA 浓度为 1×106 CFU/mL。将
3 种菌液各 1 mL 分别接种于置入无菌玻片的 24 孔
板中,分别加入含有 SH、EDTA-Na2 和含有两药的
培养基,至药物终浓度为协同点的药物浓度,37 ℃
条件下,培育 24 h,镀银染色后,扫描电镜观察细
菌形态。
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 24 期 2014 年 12 月 ·3587·
3 结果
3.1 SH 和 EDTA-Na2 的 MIC 和 MBEC
采用微量稀释法测定 SH 和 EDTA-Na2 两种药
物分别对 PA、SA 和 CA 的 MIC 和 MBEC,结果
见表 1。
3.2 SH 与EDTA-Na2对浮游菌和生物被膜的协同点
由 SH 与 EDTA-Na2 两种药物干预 PA、SA 和
CA 的浮游菌和生物被膜 24 h 后的 A600 值得出 SH
与 EDTA-Na2 联合应用的 MIC,进而得到 FICI,以
SH 与 EDTA-Na2 对 PA、SA 和 CA 浮游菌和生物被
膜具有协同作用的 MIC 或 MBEC 为协同点,具体
表 1 SH 和EDTA-Na2对PA、SA 和CA 的MIC 和MBEC 值
Table 1 MIC and MBEC of SH and EDTA-Na2 for PA,
SA, and CA
MIC / (mg·mL−1) MBEC / (mg·mL−1) 药物
PA SA CA PA SA CA
SH >2.048 0.064 0.064 >2.048 0.256 0.512
EDTA-Na2 3.75 0.938 0.117 15 3.75 30
协同点对应的药物(SH/EDTA-Na2 )质量浓度
( mg/mL )分别为 0.256/0.938 和 0.512/3.722 、
0.008/0.233和 0.032/0.469、0.008/0.029和 0.064/0.938。
具体结果见表 2。
表 2 SH 与 EDTA-Na2联合抗 PA、SA 和 CA 的协同点
Table 2 Synergistic point of SH in combination with EDTA-Na2 against PA, SA, and CA
浮游菌 生物被膜 菌株
MICSH/MICEDTA-Na2 / (mg·mL
−1) FICIMIC MBECSH/MBECEDTA-Na2 / (mg·mL
−1) FICIMBEC
PA 0.256/0.938 <0.5 0.512/3.722 <0.5
SA 0.008/0.233 0.375 0.032/0.469 0.250
CA 0.008/0.029 0.375 0.064/0.938 0.156
3.3 生存曲线
分别以协同点对应的药物(SH/EDTA-Na2)质
量浓度干预 PA、SA 和 CA 的浮游菌和生物被膜菌
不同时间,得到 3 种菌在药物协同点质量浓度时的
生存曲线。见图 1。
3.4 形态学观察
扫描电子显微镜观察 PA、SA 和 CA 浮游菌和
生物被膜在协同点药物质量浓度作用 24 h 后的形
态,镜下观察到浮游菌的空白对照组载体上由密集
的胞外基质形成黏液层,大部分细菌已被包裹在有
胞外基质形成的黏液层下,少量细菌镶嵌在黏液层
之间,形成了早期的生物被膜;SH 和 EDTA-Na2
抑制了浮游菌的生物被膜形成,镜下均未观察到明
显的生物被膜结构;两药联合作用的载体上仅存在
散在的黏液且细菌数量少,形态清晰,没有生物被
膜形成(图 2)。图 2 显示生物被膜的空白对照组载
体上的生物被膜层明显增厚如蘑菇状形态,其内部
有相互交织的孔道,细菌被胞外基质完全覆盖;而
A-浮游菌 B-生物被膜菌
A-planktonic B-biofilm
图 1 PA、SA 和 CA 在 SH 和 EDTA-Na2 协同点质量浓度下的生存曲线
Fig. 1 T-K curves of PA, SA, and CA in synergistic points
15
10
5
0
lg
细
菌
数
量
lg
细
菌
数
量
lg
细
菌
数
量
lg
细
菌
数
量
lg
细
菌
数
量
lg
细
菌
数
量
15
10
5
0
15
10
5
0
15
10
5
0
10
8
6
4
2
0
10
8
6
4
2
0
空白对照
SH
EDTA-Na2
SH+EDTA-Na2
0 1 3 6 12 24
t / h
0 1 3 6 12 24
t / h
0 1 3 6 12 24
t / h
0 1 3 6 12 24
t / h
0 1 3 6 12 24
t / h
0 1 3 6 12 24
t / h
A
B
·3588· 中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 24 期 2014 年 12 月
空白对照 SH EDTA-Na2 SH+EDTA-Na2 空白对照 SH EDTA-Na2 SH+EDTA-Na2
图 2 扫描电镜下 PA、SA 和 CA 菌的形态
Fig. 2 Morphological observation of PA, SA, and CA by SEM
SH和EDTA-Na2组的生物被膜结构被局部破坏;SH
与 EDTA-Na2 联合作用的载体上的生物被膜结构被
破坏,仅存在散在的黏液或较少的交织物,出现散
落的细菌。同一质量浓度下,联合用药组对细菌生
长的抑制作用和对生物被膜的清除作用较单药组
显著。
4 讨论
鱼腥草是我国传统中药,具有清热解毒、抗菌、
抗病毒、利尿消肿等作用,并是治疗痰热壅肺、发
为肺痈、咳吐脓血的要药,是国家卫生部正式确定
为药食两用的品种之一。SH 是鱼腥草(三白草科)
中由挥发油组成的鱼腥草素和亚硫酸氢钠共同合
成的化合物[16]。在国内 SH 作为抗菌药用于临床多
年,取得了很好的疗效。然而,研究 SH 或者联合
其他药物抗菌或生物被膜方面仍然很少。最近有文
献报道[10,17],SH 及其衍生物在体外单独或与其他
抗生素联用能够有效抑制 PA 和 SA 的生长繁殖。
EDTA-Na2 是常用的螯合试剂,作为联合药物或抑
制细菌、真菌等病原体蛋白的合成的试剂已经被广
泛应用,这可能与其抑制菌丝的生成从而破坏生物
被膜的形成有关[18]。本实验用 SH 联合 EDTA-Na2
抗生物被膜菌 PA、SA 和 CA,证明了 SH 与
EDTA-Na2 联用不仅对 PA 具有协同作用,而且对
SA 和 CA 也有协同作用,尤其对他们的生物被膜。
由于细胞数量增加,SH 和 EDTA-Na2对 CA 生物被
膜(约为 106 CFU/mL)的 MBEC 值显著高于浮游细
胞(约为 103 CFU/mL),因此,相比于对 SA 和 PA
生物被膜的抑制作用,EDTA-Na2 更难以完全消除
CA 的生物被膜。SH 与 EDTA-Na2 联用时能够大大
降低药物的用量,并能杀死浮游菌和清除生物被膜。
一般传统抗生素在抗菌方面往往优于中药或其
有效成分,但目前常规应用的抗生素只能杀灭浮游
菌,对膜内菌的清除没有很好的疗效,致使膜内菌长
期存活,释放时又会引起新的感染,从而使感染反复
发作,长期应用会导致耐药菌株的增多。鱼腥草是
药食两用的天然植物,具有长期服用对人体无毒副
作用[19],不形成耐药两大优势。总之,本研究结果
显示:(1)SH 对 PA、SA 和 CA 都有抑制作用,尤
其对 SA 和 CA 更加有效;(2)SH 与 EDTA-Na2联合
对 PA、SA 和 CA 都具有协同作用,并对这 3 种菌的
生长和生物被膜有强有力的抑制和清除作用,表明
SH 可能是潜在的抗生素替代品,特别是结合
EDTA-Na2,使其在抗感染治疗中有良好的应用前景。
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