全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 5 期 2015 年 3 月
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白木香倍半萜合成酶 As-SesTPS1 基因的克隆、生物信息学和表达分析
何 欣 1, 2,叶 伟 2,高晓霞 1,王 磊 2, 3*,章卫民 2*
1. 广东药学院药科学院,广东 广州 510006
2. 广东省微生物研究所 省部共建华南应用微生物国家重点实验室 广东省菌种保藏与应用重点实验室 广东省微生物应
用新技术公共实验室,广东 广州 510070
3. 内蒙古医科大学基础医学院,内蒙古 呼和浩特 010110
摘 要:目的 基于前期对白木香 Aquilaria sinensis 转录组测序结果,从白木香总 RNA 中克隆白木香倍半萜合成酶基因
(As-SesTPS1),并对其进行生物信息学及表达分析。方法 利用逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)从白木香总 RNA 中获得
倍半萜合成酶基因 As-SesTPS1 的 cDNA 全长序列;利用生物信息学手段对该序列进行相似性和同源性分析,并预测其编码
蛋白的结构和功能;利用 qRT-PCR 技术检测该基因在白木香不同样品中的表达水平。结果 得到倍半萜合成酶基因
As-SesTPS1,开放阅读框(ORF)全长 1 671 bp,编码 556 个氨基酸,其与多条倍半萜合成酶基因具有较高相似性,并含有
RRx8W 和 DDxxD 的保守序列;该基因在白木香的沉香样品中高表达。结论 As-SesTPS1 的克隆及其生物信息学和在白木
香不同部位表达差异性分析,为白木香倍半萜生物合成代谢途径的研究奠定基础。
关键词:白木香;倍半萜合成酶;克隆;表达;生物信息学
中图分类号:R286.12 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2015)05 - 0733 - 07
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2015.05.020
Cloning, bioinformatics, and expression analysis of sesquiterpene synthase gene
As-SesTPS1 from Aquilaria sinensis
HE Xin1, 2, YE Wei2, GAO Xiao-xia1, WANG Lei2, 3, ZHANG Wei-min2
1. Department of Pharmacy, Guangdong Pharmaceutical College, Guangzhou 510006, China
2. State Key Laboratory of Applied Microbiology Southern China, Guangdong Open Laboratory of Applied Microbiology,
Guangdong Provincial Key Laboratory of Microbial Culture Collection and Application, Guangdong Institute of Microbiology,
Guangzhou 510070, China
3. College of Basic Medicine, Inner Mongolia Medical University, Hohhot 010110, China
Abstract: Objective To clone a sesquiterpene synthase gene denoted As-SesTPS1 from total RNA of Aquilaria sinensis based on
previous transcriptome sequencing data and analyze the bioinformatics and expression of the gene. Methods The full length cDNA of
As-SesTPS1 was obtained by reverse transcription-PCR (RT-PCR). The sequence similarity and homology were analyzed, and the
structure and function of the coding protein were predicted by bioinformatics method. The gene expression levels in different samples
of A. sinensis were quantified using qRT-PCR technique. Results The sesquiterpene synthase gene As-SesTPS1 was cloned, which
contained an ORF of 1 671 bp, encoding 556 amino acids, and shared high similarity to multiple sesquiterpene synthase genes. The
protein encoded by this gene had conserved RRx8W and DDxxD motifs. It was confirmed the gene was highly expressed in agarwood
sample through qRT-PCR technique. Conclusion The sesquiterpene synthase gene As-SesTPS1 is cloned, which will lay a foundation
for further study of sesquiterpene biosynthase pathway in A. sinensis.
Key words: Aquilaria sinensis (Lour.) Gilg.; sesquiterpene synthase; clone; expression; bioinformatics
沉 香 是 我 国 传 统 名 贵 中 药 , 为 瑞 香 科
(Thymelaeaceae)植物白木香 Aquilaria sinensis
(Lour.) Gilg. 含有黑色树脂的木材[1],其味辛、苦,
性微温,具行气止痛、温中止呕、纳气平喘等功效[2]。
健康的白木香树体不能产生沉香类物质,只有在外
界物理、化学伤害或真菌的刺激作用下才能够产生,
收稿日期:2014-10-26
基金项目:国家自然科学基金项目(31100496,81102418);“973”前期专项(2014CB460613);广东省科技计划项目(2012A030100014);
广东省中国科学院全面战略合作项目(2011B090300078);广东省科学院野外科学实验站基金项目(Sytz201204)
*通信作者 章卫民 Tel: (020)87688309 E-mail: wmzhang58@qq.com
王 磊 Tel: (020)87137598 E-mail: tuiliwang@gmail.com
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故沉香资源十分珍稀。
沉香的成分主要包括倍半萜类(挥发性成
分)、2-(2-苯乙基) 色酮类、芳香族类、三萜类及
脂肪酸类化合物,其中前三者是沉香的特征性成
分。倍半萜类化合物为沉香主要药效成分,药理
学实验证明该类化合物对神经系统有明显的生理
活性[3]。目前大量不同植物种类的倍半萜类合成酶
基因已经被成功克隆[4],但沉香倍半萜合酶相关基
因的生物合成研究并不多,仅克隆得到主产物为愈
创木烯型倍半萜的合成酶基因[5-6]。因此,研究沉香
倍半萜合成酶基因对于阐明倍半萜生物合成途径,
进而揭示白木香结香的分子机制具有重要意义。
本课题组前期对化学诱导后的白木香转录组进
行了测序和分析[7],获得多条预测为倍半萜合成酶
基因的编码序列,并首次成功从白木香总 RNA 中
克隆到可能编码大根香叶烯 -D-合成酶的基因
(As-SesTPS)[8]。本研究选取了与 As-SesTPS 同一
条倍半萜代谢通路中的另一条编码序列,该序列经
生物信息学分析后预测其为一种新的倍半萜合成酶
关键基因,与 As-SesTPS 编码不同结构类型的倍半
萜合成酶蛋白。利用 RT-PCR 扩增,在诱导结香后
的白木香 cDNA 中克隆得到该序列,命名为白木香
倍半萜合成酶(As-SesTPS1)基因,将其在基因组
进行验证,运用生物信息学的方法对该序列进行同
源性分析,预测其编码蛋白及各种理化性质,最后
通过实时荧光定量 PCR 技术对 As-SesTPS1 基因在
诱导结香后的白木香不同部位的表达进行差异对比
分析,为后续进一步研究其功能及白木香倍半萜生
物合成途径奠定基础。
1 材料
沉香样品(结香部位)、白木样品(白木部位)
和过渡样品(结香与白木过渡部位)取自经化学
诱导后已结香的白木香植株[7],经广东药学院中
药学院严寒静副教授鉴定为白木香 Aquilaria
sinensis (Lour.) Gilg.。参照吴宏清等[8]方法配制改
良异硫氰酸胍-CTAB 提取液;DNase I,RNase-free
(Thermo 公司);植物基因组提取试剂盒(天根生
化科技有限公司);Promega 第一链合成试剂盒;
Ex Taq DNA 聚合酶,Ex Taq HS DNA 聚合酶
(Takara 公司);零背景快速克隆试剂盒(天根生
化科技有限公司);超纯 dNTP(Takara 公司);
SYBR Green qPCR Mix(东盛生物公司);主要化
学试剂为国产分析纯,引物委托华大基因(广州)
有限公司合成(表 1)。
表 1 引物序列
Table 1 Primer sequences
引物 序列 (5’-3’)
As-SesTPS1 基因上游引物(C5155.1) ATGTCAGCTGCTCAGGTCTCAC
As-SesTPS1 基因下游引物(C5155.2) TCATATAGTAATTGGATGGACCAGC
Histone 基因上游引物(HF) GTACCGCTACCGGAGGGAAGTTGAAGA
Histone 基因下游引物(HR) CTTCTTGGGCGACTTGGTAGCCTTGGT
q-PCR 上游引物(Q4.1) ATGGTGGAAGGATCTTGATTTCAAAACA
q-PCR 下游引物(Q4.2) ACCTCTCAATTGCATCTGTGAGTAGCTT
2 方法
2.1 白木香总 RNA 的提取与 cDNA 的合成
参照改良异硫氰酸胍-CTAB 提取方法[9],以 1%
的非变性琼脂糖凝胶电泳检测 RNA 的完整性,采
用分光光度法检测 RNA 的量和纯度。以提取的
RNA 样品为模板,使用 Promega 公司的 cDNA 第
一链合成试剂盒合成第一条链,获得的 cDNA 样品
于−20 ℃贮存备用。
2.2 白木香 As-SesTPS1 的克隆
根据前期白木香转录组测序获得的长度为 1 853
bp 的 CL5155.Contig3_B1 序列(KM881473),设计
特异性引物,上游引物 C5155.1,下游引物 C5155.2。
以“2.1”项方法获得的 cDNA 为模板进行 PCR 扩
增,反应体系 50 μL,扩增程序:94 ℃预变性 3 min,
94 ℃变性 45 s,56 ℃退火 45 s,72 ℃延伸 110 s,
30 个循环后 72 ℃延伸 10 min。PCR 产物经 1%琼
脂糖凝胶电泳后,回收目的条带,使用零背景快速
克隆试剂盒进行克隆,挑取单克隆转化至大肠杆菌
TOP10 后,菌落 PCR 验证阳性克隆,送菌液至华
大基因进行测序,将测序结果上传至 ORF Finder
(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/gorf/gorf.html)分析以
确定是否获得全长。
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2.3 白木香 As-SesTPS1 的扩增
取沉香样品约 100 mg 加入液氮充分研磨;使
用植物基因组提取试剂盒提取沉香样品基因组,引
物同“2.2”项方法,以提取的基因组为模板进行
PCR 扩增,反应体系 50 μL。反应条件为 94 ℃预
变性 5 min,94 ℃变性 45 s,56 ℃退火 45 s,72 ℃
延伸 2 min,30 个循环后 72 ℃延伸 10 min。PCR
产物经 1%琼脂糖凝胶电泳后,回收测序。
2.4 As-SesTPS1 基因的生物信息学分析
使 用 Lasergene 7.1 的 EditSeq 软 件 将
As-SesTPS1 基因翻译成氨基酸序列,并用 NCBI 的
Nr 数据库进行 BLASTp 分析,获得相似度最高的序
列,预测编码蛋白质;使用 GENEDOC 软件将预测
的氨基酸序列与在 NCBI 比对相似度最高的 5 条序
列以及本课题组先前获得的一条倍半萜合成酶基因
As-SesTPS 一并进行保守序列分析;使用 MEGA5
软件将预测的氨基酸序列与 GenBank 上的其他序
列进行系统进化分析,采用邻接法(neighbor-
joining,NJ)法构建系统进化树;ExPASy 在线服
务器的 ProtParam(http://web.expasy.org/protparam/)
预测蛋白质的基本理化性质;PSORT 服务器
(http://wolfpsort.org/)预测蛋白质的亚细胞定位;
Predictprotein 在线网站(http://www.predict protein.
org/)进行蛋白质二级结构分析;使用 Swiss-model
(http://swissmodel.expasy.org/)进行三维结构预测;
使用 Discovery Studio 软件进行蛋白三级结构建模。
2.5 As-SesTPS1 基因的表达水平分析
按“2.1”项方法从沉香样品、过渡样品和白木
样品中提取 RNA 并逆转录合成 cDNA 样品。选取
Histone 基因为内参基因[10],以上述 3 个不同样品的
cDNA 为模板,进行实时荧光定量 PCR 扩增。内参
Histone 基因上游引物 HF,下游引物 HR,预测扩增
大小 200 bp 左右;目的基因 As-SesTPS1 上游引物
Q4.1,下游引物 Q4.2,预计扩增大小 200 bp 左右。
首先用常规 PCR 进行扩增,检测引物特异性,PCR
条件同“2.3”项方法,如产物通过琼脂糖凝胶电泳
检测可见符合预测大小的清晰条带,再采用“三步
法”,反应体系 20 μL,其中上游引物和下游引物各
0.4 μL,样品 cDNA 模板 0.5 μL,2×SYBR Green
qPCR Mix 10 μL,补超纯水至 20 μL。反应条件为 94
℃、4 min,94 ℃、30 s,56 ℃退火 30 s,72 ℃、
40 s,35 个循环,20 min 内从 60 ℃升温到 95 ℃,
每个样品重复 3 次,空白对照以超纯水代替 cDNA
作为模板,qPT-PCR 以 Histone 为内参基因。数据
处理采用相对定量法,参照 2−ΔΔCt 方法进行计算
分析[11]。
3 结果与分析
3.1 白木香总 RNA 的提取
按照“2.1”项方法提取沉香样品、过渡样品和白
木样品的RNA,1%琼脂糖凝胶电泳检测结果见图 1。
结果显示所提RNA的28 S与18 S条带明亮清晰,RNA
28 S 亮度约为 18 S 亮度的 2 倍,且两条带均无明显拖
尾。经紫外分光光度计检测A260/A280大小在 1.8~2.0,
RNA 完整性较好,未发生降解,可满足后续实验要求。
1-白木样品 2-过渡样品 3-沉香样品
1-whitewood sample 2-transition sample 3-agarwood sample
图 1 白木香总 RNA 电泳图
Fig. 1 Electrophoretogram of total RNA from A. sinensis
3.2 白木香 As-SesTPS1 基因的获得
根据前期白木香转录组倍半萜代谢通路差异表
达基因测序结果分析,选取长度为 1 853 bp 的
CL5155.Contig3_B1 序列,将该序列进行 CD-search
分析,发现其可能编码倍半萜合成酶。将其进行
ORF Finder 分析,发现该序列包含完整的开放阅读
框(ORF)。根据完整开放阅读框设计特异性引物,
以沉香样品逆转录 cDNA 为模板进行扩增,在 1 700
bp 左右有明显特异性条带,初步认为得到目的基
因(图 2)。将 PCR 产物纯化后克隆,挑取阳性
1-以 cDNA 为模板的 As-SesTPS1 扩增 2-以基因组 DNA 为模板
的 As-SesTPS1 扩增 3-阴性对照 M-Marker
1-As-SesTPS1 amplification from cDNA 2-As-SesTPS1
amplification from genomic DNA 3-negative control M-Marker
图 2 As-SesTPS1 扩增
Fig. 2 As-SesTPS1 amplifications
28 S
18 S
1 2 3
1 2 3 M
2 000 bp
1 000 bp
750 bp
500 bp
250 bp
100 bp
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菌落进行菌液 PCR 验证并测序,测序结果经
Lasergene 7.1 的 SeqMan 软件拼接,对该序列进行
ORF 查找,得到完整的编码序列,长 1 671 bp,编
码 556 个氨基酸,命名为 As-SesTPS1 基因
(KM881473)。
3.3 白木香 As-SesTPS1 基因的基因组验证
以沉香样品的基因组为模板进行扩增,可得到
1 条约 2 200 bp 条带(图 2)。将此条带测序后的拼
接结果上传至 NCBI 的 Spidey(http://www.ncbi.nlm.
nih.gov/IEB/Research/Ostell/Spidey/)进行分析,发现
该序列的内含子核苷酸序列符合典型的 TG-AG 拼接
点序列特征,且整个序列中分散着富含碱基 AT 或 T
的区段;将 As-SesTPS1 基因与其进行 Spidey 比对,
发现 As-SesTPS1 与该序列外显子的同源性为 100%。
该结果从基因组验证了扩增得到 As-SesTPS1 基因的
正确性。
3.4 白木香 As-SesTPS1 相似性及同源性分析
将 As-SesTPS1 基因编码的氨基酸序列在 NCBI
上进行 BLASTp 分析,发现其与多条倍半萜合成酶
基因具有较高相似性,其中相似性最高的为白木香
δ- 愈 创 木 烯 合 成 酶 ( delta-guaiene synthase ,
AFV99466.1)基因,达 54%,与越南沉香 δ-愈创木
烯合成酶(delta-guaiene synthase,AEG77020.1)基
因,可可 δ-杜松烯合成酶(delta-cadinene synthase,
XP_007021123.1)基因,刺五加 α-古巴烯合成酶
(alpha-copaene synthase,ADK94034.1)基因,葡萄
大根香叶烯 D 合成酶 [ (−)-germacrene D synthase,
NP_001268213.1]基因也有较高的同源性,分别为
53%、48%、48%、45%;与课题组之前克隆得到的
倍半萜合成酶基因 As-SesTPS 的相似性为 41%。运
用 GENEDOC 软件将 As-SesTPS1 基因编码的氨基
酸序列与相似基因编码的 6 条氨基酸序列共同比
对,结果显示 As-SesTPS1 基因具有植物倍半萜合成
酶家族典型的保守序列 RRx8W 和 DDxxD(图 3),
推测其可能编码植物倍半萜合成酶类蛋白。
萜类合成酶基因根据其氨基酸序列的相关性以
及功能的评价,分为 7 大亚家族 TPSa~TPSg,使
用 MEGA5.0 软件中的 NJ 法构建聚类树(图 4),
从聚类结果可以看出,初级代谢相关萜类合成酶分
别聚类为 TPSc 和 TPSe 亚家族,而次级代谢相关的
被子植物单萜合成酶、倍半萜合成酶和裸子植物萜
类合成酶分别聚类为 TPSb、TPSa、TPSd。TPSf 和
TPSg 亚家族成员酶产物为非环化单萜,其中 TPSf
是进化关系比较遥远的一个分支。本研究中的目的
As-SesTPS1 :
AFV99466.1 :
AEG77020.1 :
XP_0070211 :
ADK94034.1 :
NP_0012682 :
As-SesTPS_ :
* 20 * 40 * 60 * 80 * 100 *
MSAAQVSPAPVPAHNAAASKEEV-RRSAGYHPSFWGEFFLTHTSEYAKKDDKIQKQH-EELKQEVKGMLVDATTE-PTKKLELIDAILRLGVGYHFEDEIQAELERIH-R---LG
----------MSSAKLGSASEDVSRRDANYHPTVWGDFFLTHSSNFLENNDSILEKH-EELKQEVRNLLVVETSD-LPSKIQLTDEIIRLGVGYHFETEIKAQLEKLHDH---QL
----------MSSAKLGSASEDVSRRDANYHPTVWGDFFLTHSSNFLENNDNILEKH-EELKQEVRNLLVVETSD-LPSKIQLTDEIIRLGVGYHFEMEIKAQLEKLHDH---QL
MSSLASSSLPVSTND--SMSNE-NRRSTKFHPSIWGDLFLSFPSK--VNVDTTTQLHYEELKQEVRRMLRVPTDNQLSQKLRLIETIKRLGVSYHFEREIEDVLQNIYDQ--DYK
ATYLQASS---GPCS--TIVPEITRRSANYHPNIWGDQFLKYNSFDLSKTDANTKEHFRQLKEEVKKML-VDAGPN--QQLNLIDDIQRLGVAYQFEAEIDAALQRM-NV--IFQ
-MSVQSSGVLLAPSK--NLSPEVGRRCANFHPSIWGDHFLSYAS-EFTNTDDHLKQHVQQLKEEVRKML-MAADDDSAQKLLLIDAIQRLGVAYHFESEIDEVLKHMFDG--SVV
-------------------MAETNRPLAHFQANIWEEHFISSPLLHL-ETEQASK-H-QKLKEQVRELLLAGLDKPWEQ-LDLIDSIQRSGVAYHFEDEIENLLQRIHKNLDTCL
: 108
: 100
: 100
: 108
: 104
: 108
: 92
As-SesTPS1 :
AFV99466.1 :
AEG77020.1 :
XP_0070211 :
ADK94034.1 :
NP_0012682 :
As-SesTPS_ :
120 * 140 * 160 * 180 * 200 * 220 *
DLDCDLYNTCIWFRVLRGQGFTVSAEEFEKIKSRDGGFKA---KDAKTLLCLYETTQLRIQGEEVLEEALEFSSKQLEALVPEL--SAPLVDYVKNSLELPYHKGMQRLEARQYI
HLNFDLLTTSVWFRLLRGHGFSISSDVFKRFKNTKGEFKT---EDARTLWCLYEATHLRVDGEDVLEEAIQFSRKKLEALLPEL--SFPLSECVRDALHIPYHRNVQRLAARQYI
HLNFDLLTTSVWFRLLRGHGFSISSDVFKRFKNTKGEFET---EDARTLWCLYEATHLRVDGEDILEEAIQFSRKRLEALLPKL--SFPLSECVRDALHIPYHRNVQRLAARQYI
--DDNLEVTSLRFRLLREHGFNVQCETFNKFKDDKGNFKVSLKSDVKGLLELYEAAHIRTHGEHILEEALAFTTTHLESA-KTSLCEYPISVLVSHARKRPIRKGLQRLEARRFI
GNDDDLHTISLRFRLLRQHGYNVSSDVFRKFMDNNGKFKECLISDLRGVLSLYEATHFRVHGEDILEDALEFTTSHLERL-KSHL-KNPLAAQVIRALKCPIHKGLNRLEAKHYI
SAEEDVYTASLRFRLLRQQGYHVSCDLFNNFKDNEGNFKESLSSDVRGMLSLYEATHFRVHGEDILDEALAFTTTHLQSA-TKHS-SNPLAEQVVHALKQPIRKGLPRLEARHYF
EENDNLHFISLLFRLLRQSSLTVSCDVFNKFKDDSGKLKESLIEDVIGLLSLHEAACMRLHGEDILEQAFDFTTTYLKSIVEDTSSSSKLAAQASQALKYPVRKNIPRLEAKYYI
: 218
: 210
: 210
: 220
: 217
: 221
: 207
As-SesTPS1 :
AFV99466.1 :
AEG77020.1 :
XP_0070211 :
ADK94034.1 :
NP_0012682 :
As-SesTPS_ :
240 * 260 * 280 * 300 * 320 * 340
PIYEA-DMTKNISLLHFAKLDFNLLQALHQSEIREITRWWKDLDFKTRLPYARDRLVECYFWILGVQYEPQYSMSRLFLTKVISLASVFDDTYDIYGTFEELKLLTDAIERWEIE
PQYDA-EPTKIESLSLFAKIDFNMLQALHQSELREASRWWKEFDFPSKLPYARDRIAEGYYWMMGAHFEPKFSLSRKFLNRIIGITSLIDDTYDVYGTLEEVTLFTEAVERWDIE
PQYDA-EQTKIESLSLFAKIDFNMLQALHQSELREASRWWKEFDFPSKLPYARDRIAEGYYWMMGAHFEPKFSLSRKFLNRIIGITSLIDDTYDVYGTLEEVTLFTEAVERWDIE
SIYQE-DGSHDKTLLKFAKLDFSLVQNLHKEELSKISRWWKDLDFKRQLPFARDRLVEGYFWILGVYFEPQYSFARQILTKAIVMASTMDDIYDAYGTFEELQLFTKAIERWDTN
SIYQQEDDSHNKVLLNFAKLDFNLLQKMHQGELSHITRWWKELNFAKKLPFARDRVVECYFWILGVYFEPQYLIARRFLTKIIAMASVADDIYDVYGTLEELVILTDAIERWDMG
SVYQA-DDSHNKALLKLAKLDFNLLQKLHQKELSDISAWWKDLDFAHKLPFARDRVVECYFWILGVYFEPQFFFARRILTKVIAMTSIIDDIYDVYGTLEELELFTEAVERWDIS
SVYPLLN---NPVVLTFAKLDFNILQKLHQNELREIVRWWKDLDIPRRLPYARDRITELFFWAIGVYYEPCYALGRKILTKVFALTSFLDDMYDAYGTIEELELLTQAIQRWDRN
: 332
: 324
: 324
: 334
: 332
: 335
: 319
As-SesTPS1 :
AFV99466.1 :
AEG77020.1 :
XP_0070211 :
ADK94034.1 :
NP_0012682 :
As-SesTPS_ :
* 360 * 380 * 400 * 420 * 440 * 460
ATDSLPS-YMQILYRALLDVFDEYKDKLINVQGKDYCLYYGKEAMKGLIRSYHTEAVSFHTGYVQNFEEYLDNSAVSSGYPMLTVEALIGMGHPYATKEALDWALKVPRVIKASS
AVKDIPK-YMQVIYTGMLGIFEDFKDNLINARGKDYCIDYAIEVFKEIVRSYQREAEYFHTGYVPSYDEYMENSIISGGYKMFIILMLIGRGE-FELKETLDWASTIPEMVKASS
AVKDIPK-YMQVIYIGMLGIFEDFKDNLINARGKDYCIDYAIEVFKEIVRSYQREAEYFHTGYVPSYDEYMENSIISGGYKMFIILMLIGRGE-FELKETLDWASTIPEMVKASS
CMDRLPA-YMKLFYKALLDVYEEMEEVMTKQVK-SYRVKYAKEAMKQLSQAYFVEAKWYHENYVPTVEEYMTNALVSSGYIMVTVTSFVGMGNVVT-KETFQWASNNPRIVRASS
ALDQIPE-CMRVYHRALLDVYTEMEEEMAKTGRPSYRVHYAKEAYKELVRQYLAEAKWFQEDYDPTLEEYLPVALISGGYKMLATHSFVGMGDLAT-KEAFDWVSNNPLIVKASS
AIDQLPE-YMRVCYQALLYVYSEIEEEMAKEGR-SYRLYYAKEAMKNQVRAYYEEAKWLQVQQIPTMEEYMPVALVTSAYSMLATTSFVGMGDAVT-KESFDWIFSKPKIVRASA
AMDGLNNKCSKELYQILLDVYDEIGEDMAKLGK-SYRLNYAVEMMKGQARTYLTEARWFSQNYTPTFEEYLKRGINTSACPLLTLSSLLGIGDDIS-RDAFEWILSTPKSLIASS
: 446
: 437
: 437
: 446
: 445
: 447
: 432
As-SesTPS1 :
AFV99466.1 :
AEG77020.1 :
XP_0070211 :
ADK94034.1 :
NP_0012682 :
As-SesTPS_ :
* 480 * 500 * 520 * 540 * 560 *
DICRLVDDLRTYKVEEERGDAPSGVHCYMRDYNVSEEEACSKIEEMIDLAWKAINEEMQKPGH-LPLPILLPALNFTRMMEVLYQNIDGYTNSGGRTKDRITSLLVHPITI
LIARYIDDLQTYKAEEERGETVSAVRCYMREYGVSEEEACKKMREMIEIEWKRLNKTTLEADE-ISSSVVIPSLNFTRVLEVMYDKGDGYSDSQGVTKDRIAALLRHAIEI
LIARYIDDLQTYKAEEERGETVSAVRCYMREYDVSEEEACKKMREMIEIEWKRLNKTTLEADE-VSSSVVIPSLNFTRVLEVMYDKGDGYSDSQGVTKDRIAALLRHAIEI
IIARLMDDIVSHKFEQERGHVASAIECYMKQHGVSEEKACNELNKQIENAWKDINQELVRPPAGVPMPVLTRILNLARVMDFLYKEGDGYTHVGEAVKDGITSLMIDPIPI
VICRLSDDMVGHEVEHERGDVASAVECYMKQYGVTKQEVYIEFQKQISNAWKDMNQECLHPTT-VTMPLLTVIFNMTRVINLLYDEEDGYTNSNTRTKDFITSVLIDPVQI
IVCRLMDDMVFHKFEQKRGHVASAVECYMKQHGASEQETPNEFPQPVREAWKDINEECLIPTA-VPMPILMRVLNLARVIDVIYKNEDGYTHFGAVLKDFVTSMLIDPVPI
LTGRLADDIMSHEFEKKRGHADTAVECYMKEYGATKQETVKELYKRIESAWKDMNEELLQPTE-VPKAVLMRVLNFTRCNQVVYADADAYT-FPDYLKDFVAALLVHQLPL
: 556
: 547
: 547
: 557
: 555
: 557
: 541
黑色表示完全相同,灰色表示部分相同
Black represent identical and gray represent partly identical
图 3 As-SesTPS1 编码蛋白与已知倍半萜合成酶蛋白的相似性分析
Fig. 3 Similarity analysis of As-SesTPS1-coding protein and other known sesquiterpene synthase proteins
As-Se TPS1
AFV99466.1
AEG77020.1
XP_007021123.
ADK94034.1
NP_001268213.1
As-SesTPS
As-SesTPS1
AFV99466.1
AEG77020.1
XP_007021123.1
ADK94034.1
NP_001268213.1
As-SesTP
As-SesTPS1
AFV99466.1
AEG77020.1
XP_007021123.1
ADK94034.1
NP_001268213.1
As-SesTPS
As-Se TPS1
AFV99466.1
AEG77020.1
XP_007021123.
ADK94034.1
NP_001268213.1
As-SesTPS
As-SesTPS1
AFV99466.1
AEG77020.1
XP_007021123.1
ADK9403 .1
NP_001268213.1
As-SesTP
108
100
100
108
104
108
92
218
210
210
220
217
2 1
207
332
324
324
334
332
335
319
4 6
437
437
4 6
445
447
432
547
547
557
555
557
541
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图 4 植物萜类合成酶基因家族系统进化树
Fig. 4 Phylogenetic tree of genes in plant TPS family
基因 As-SesTPS1 被分到由被子植物倍半萜合成酶
基因组成的 TPSa 亚族中,可确定其编码倍半萜合
成酶类蛋白。
3.5 白木香 As-SesTPS1 基因编码蛋白特性分析
利用 ExPASy Proteomics Server 的在线软件
Protparam(http://www.cn.expasy.org/tools/protparm.
html)对 As-SesTPS1 蛋白的理化性质进行预测分析,
推测其分子式为 C2890H4481N747O859S22,相对分子质量
为 641 400,等电点为 5.14,为酸性蛋白,正电残基
(Arg+Lys)为 89,负电残基(Asp+Glu)为 64。其
半衰期在体外哺乳动物网织红细胞为 30 h,在酵母体
内大于 20 h,在大肠杆菌体内大于 10 h。不稳定系数
为 44.57,为不稳定蛋白,脂肪系数为 90.18。对该氨
基酸序列进行亲疏水性分析,结果显示其总平均疏水
指数(grand average of hydropathicity,GRAVY)为
−0.343,预测其为亲水性蛋白。通过 TMHMM 软件分
析得知,该编码蛋白质无跨膜区域,全部位于膜外。
通过 PSORT 服务器的分析,初步判断 As-SesTPS1
蛋 白 定 位 于 细 胞 质 中 。 运 用 predictprotein
(http://www.predictprotein)预测 As-SesTPS1 基因编
码蛋白质的二级结构,α螺旋结构(Helix)占总氨
基酸的 64.93%,其他结构占总氨基酸的 35.07%。
运用 Swiss-model(http://swissmodel.expasy.org/)进
行三维结构预测,用于建立该模型的氨基酸残基为
TPSf
TPSe
TPSc
TPSd
TPSg
TPSb
TPSa
沉香δ-愈创木烯合成酶 4(AEG77020.1)
白木香倍半萜合成酶As-SesTPS1(KM881473)
白木香倍半萜合成酶As-SesTPS1(KM881473)
甜橙(-)-大根香叶烯-D-合成酶同工酶X2(XP006494713.1)
猕猴桃大根香叶烯-D-合成酶(AAX16121.1)
茶树萜烯合酶(AFE56211.1)
葡萄(-)-大根香叶烯-D-合成酶(NP001268213.1)
葡萄(E)-β-石竹烯合成酶(XP006494713.1)
五加α-古巴烯合成酶(ADK94034)
番茄α-蛇麻烯合成酶(NP001234766.1)
番茄(+)-δ-杜松烯合成酶(CAA77191.1)
树棉 (+)-δ-杜松烯合成酶(CAA77191.1)
可可δ-杜松烯合成酶同工酶A(XP007021120.1)
可可δ-杜松烯合成酶同工酶A1(XP007021123.1)
广藿香大根香叶烯-D-合成酶(Q49SP4.1)
广藿香δ-愈创木烯合成酶(Q49SP3.1)
白木香倍半萜合成酶As-SesTPS(KF135950)
柠檬γ-萜烯合成酶(AAM53943.1)
蜜柑γ-萜烯合成酶(BAD27259.1)
柠檬(-)-β-松萜合成酶(AAM53945.1)
蜜柑(E)-β-罗勒烯合成酶(BAD91046.1)
葡萄(E)-β-罗勒烯合成酶(ADR74205.1)
柠檬 (+)-罗勒烯合成酶1(AAM53944.1)
柠檬 (+)-罗勒烯合成酶2(AAM53946.1)
鼠尾草(+)-松烯合成酶(AAC26018.1)
百里香γ-萜烯合成酶(AGK88261.1)
薰衣草柠檬烯合成酶(ABB73044.1)
薄荷4S-柠檬烯合成酶(AAC37366.1)
紫苏月桂烯合成酶(AAF76186.1)
薰衣草1,8-桉树酚合成酶(AFL03423.1)
迷迭香柠檬烯合成酶(ABD77416.1)
檀香檀香烯合成酶(E3W202.1)
金鱼草(E)-β-罗勒烯合成酶(AAO42614.1)
金鱼草月桂烯合成酶Oc15(AAO41726.1)
软枣猕猴桃芳樟醇合成酶(ADD81294.1)
拟南芥芳樟醇合成酶(AAO85533.1)
大冷杉δ-蛇床烯合成酶(AAC05727.1)
大冷杉γ-蛇床烯合成酶(AAC05728.1)
大冷杉松萜合成酶(AAB71085.1)
北美云杉松萜合成酶(AAP72020.1)
大冷杉(-)-莰烯合成酶(AAB70707)
大冷杉月桂烯合成酶1(AAB71084.1)
大冷杉月桂烯合成酶2(O24474.1)
云杉月桂烯合成酶(AAS47696.1)
北美云杉(-)-柠檬烯合成酶(ABA86248.1)
大冷杉β-水芹烯合成酶(AAF61453.1)
大冷杉异松油烯合成酶(AAF61454.1)
北美云杉(E)-β-罗勒烯合成酶(ADZ45502.1)
大冷杉(-)-4S-柠檬烯合成酶(AAK83565.1)
笋瓜对映贝壳杉烯合成酶B(AAB39482.1)
黄瓜对映贝壳杉烯合成酶(BAB19275.1)
番茄焦磷酸合酶1(AEP82766.1)
番茄焦磷酸合酶2(NP001234008.1)
仙女扇S-芳樟醇合成酶(AAC49395.1)
克拉花芳樟醇合成酶(AAD19839.1)
0.1 .1
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 5 期 2015 年 3 月
• 738 •
3~556 位,该模型以 [3g4dA]蛋白为模板,序列同
源性为 44.53%。运用 Discovery Studio 软件对
As-SesTPS1 基因编码的蛋白质进行三维结构建模,
见图 5。
黄色球棍结构和棒状结构分别表示倍半萜保守结构域 RRx8W 和
DDxxD
Yellow ball & stick model and stick model represent conserved motif
RRx8W and DDxxD respectively
图 5 白木香 As-SesTPS1 基因的预测蛋白三维结构
Fig. 5 Predicted 3D structure of As-SesTPS1 protein in A. sinensis
3.6 白木香 As-SesTPS1 基因的表达差异性分析
本课题组前期转录组测序中,分别制备了白木
香不同组织部位 RNA-Seq 测序样品,通过 Illumina
HiSeqTM 2000 测序平台构建了各组织的转录组测序
文库[7]。本研究以获得的白木香转录组序列为参考数
据库,进行基因注释,基因的表达量使用 RPKM
(Reads Per Kb per Million reads)法[12],根据 RPKM
值筛选出满足 FDR≤0.001,且差异表达倍数不低于
2 倍(log2Ratio≥1)[13-14]的基因作为差异表达基因。
RPKM 法能消除基因长度和测序量差异对计算基因
表达的影响,计算得到的基因表达量可直接用于比
较不同样品间的基因表达差异。本研究选择的
CL5155.Contig3_B1 基因即为差异表达基因,沉香样
品、过渡样品、白木样品的 RPKM 值分别为 124.44、
41.73、7.14,其在不同样品中的表达量有明显差异,
在沉香样品中最高。根据其扩增得到的 As-SesTPS1
基因利用 qRT-PCR 检测,结果表明,As-SesTPS1 基
因在沉香样品中高表达,在过渡样品中有少量表达,
在白木样品中几乎没有表达。根据统计学分析,沉
香样品中 As-SesTPS1 基因表达水平显著高于未结香
部位(P<0.01),验证了 As-SesTPS1 基因主要在沉
香部位高表达。将 qRT-PCR 扩增产物进行 1%琼脂
糖电泳检测,内参基因 Histone 在白木香 3 个不同部
位样品中扩增产物亮度一致,目的基因 As-SesTPS1
在 3 个样品中扩增产物结果符合预期,只有沉香样
品能扩增到目的条带,实验结果进一步验证了
qRT-PCR 结果的可靠性。
4 讨论
沉香作为传统名贵中药,其倍半萜等特征成分
大多具有一定的生物活性,克隆并研究沉香活性成
分的相关合成基因,对于沉香药用价值的开发及利
用具有积极的促进作用。本研究通过对白木香倍半
萜合成酶 As-SesTPS1 基因的研究,为从基因水平探
索沉香代谢的生理生化研究奠定基础。
研究表明,萜类合成酶在三维结构上有很高的
同源性,由 α-螺旋、短的连接环和拐角等立体结构
组成,并含有 2 个明显的结构区域,即 C 末端结构
区域和 N 末端结构区域[15]。酶的活性中心是 C 末端
的一个疏水区域,由 6 个 α-螺旋组成,这个疏水区
域有利于底物疏水烃基部分的进入和结合[16]。N 末
端没有特殊的功能元件,突变分析显示,这个区域
起到方便C末端催化活性区域正确折叠的脚手架作
用。几乎所有的萜类合成酶都含有一个天冬氨酸富
集基序(DDxxD),这个基序被认为起到结合金属
离子的作用,其定位在活性位点的入口处,在引导
底物催化时发挥重要的作用,若基序发生突变则会
导致酶催化活性的下降或产生异常的产物[17]。本研
究获得的倍半萜合成酶基因 As-SesTPS1 具有倍半
萜合成酶的保守结构域 RRx8W 和 DDxxD,聚类到
萜类 TPSa 家族,经 BLASTp 分析发现其与多条愈
创木烯型倍半萜合成酶基因具有较高相似性;经
qRT-PCR 验证,确定其在结香部位具有较高的表达
水平,显著高于未结香部位的表达水平(P<0.01),
这与测序结果相符,说明该基因编码的蛋白具有催
化倍半萜合成的功能。
将本研究获得的 As-SesTPS1 基因与之前获得
的倍半萜合成酶基因进行 BLASTp 相似性分析,发
现它们之间存在较大差异,As-SesTPS1 基因与
Kumeta 等[5]和 Xu 等[6]得到的愈创木烯合成酶基因
编码的氨基酸序列相似性分别为 54%、53%,与本
课题组获得的 As-SesTPS 基因编码的氨基酸序列相
似性为 41%,推测 As-SesTPS1 基因为一种新的倍半
萜合成酶基因,可能编码不同结构类型倍半萜的合
成酶蛋白。本研究结果将为深入研究沉香倍半萜合
成酶基因之间的共性与特征差异提供基础数据,并
为今后提高白木香中倍半萜类物质量提供了理论依
据。另外,本研究通过对 As-SesTPS1 基因在沉香基
因组与 cDNA 的扩增结果的比对,为后期研究内含
子与外显子间的关系,并从转录水平解析倍半萜合
成酶基因的功能奠定基础。
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 5 期 2015 年 3 月
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参考文献
[1] 中国科学院中国植物志编辑委员会. 中国植物志 [M].
北京: 科学出版社, 1999.
[2] 中国药典 [S]. 一部. 2010.
[3] 刘军民 , 徐鸿华 . 国产沉香研究进展 [J]. 中药材 ,
2005, 28(7): 628-629.
[4] 岳跃冲, 范燕萍. 植物萜类合成酶及其代谢调控的研
究进展 [J]. 园艺学报, 2011, 3(2): 379-388.
[5] Kumeta Y, Ito M. Characterization of δ-guaiene synthases
from cultured cells of Aquilaria, responsible for the
formation of the sesquiterpenes in agarwood [J]. Plant
Physiol, 2010, 154(4): 1998-2007.
[6] Xu Y, Zhang Z, Wang M, et al. Identification of genes
related to agarwood formation: transcriptome analysis of
healthy and wounded tissues of Aquilaria sinensis [J].
BMC Genom, 2013, 14(1): 227-243.
[7] 吴宏清, 王 磊, 陶美华, 等. 化学诱导后白木香转录组
文库的构建与测序 [J]. 生物技术通报, 2013(8): 63-67.
[8] 吴宏清, 王 磊, 何 欣, 等. 白木香倍半萜合成酶基
因 As-SesTPS 的克隆及生物信息学与表达分析 [J]. 中
草药, 2014, 45(1): 94-101.
[9] 吴宏清, 王 磊, 章卫民, 等. 药用植物白木香高质量
总 RNA 提取方法的研究 [J]. 中药材, 2013, 25(7):
1055-1059.
[10] Okudera Y, Ito M. Production of agarwood fragrant
constituents in Aquilaria calli and cell suspension cultures
[J]. Plant Biotechnol, 2009, 26(3): 307-315.
[11] Livak K J, Schmittgen T D. Analysis of relative gene
expression data using real-time quantitative PCR and the
2−ΔΔCT method [J]. Method, 25(4): 402-408.
[12] Mortazavi A, Williams B A, McCue K, et al. Mapping
and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-Seq
[J]. Nature, 2008, 5(7): 621-628.
[13] Audic S, Claverie J M. The significance of digital gene
expression profiles [J]. Genome Res, 1997, 7(10): 986-995.
[14] Benjamini Y, Yekutieli D. The control of the false
discovery rate in multiple testing under dependency [J].
Ann Stat, 2001, 25(9): 1165-1188.
[15] Yu F N A, Utsumi R. Diversity, regulation, and genetic
manipulation of plant mono-and sesquiterpenoid biosynthesis
[J]. Cell Mol Life Sci, 2009, 66(18): 3043-3052.
[16] Schilmiller A L, Schauvinhold I, Larson M, et al.
Monoterpenes in the glandular trichomes of tomato are
synthesized from a neryl diphosphate precursor rather
than geranyl diphosphate [J]. Proc Natl Acad Sci USA,
2009, 106(26): 10865-10870.
[17] Degenhardt J, Köllner T G, Gershenzon J. Monoterpene
and sesquiterpene synthases and the origin of terpene
skeletal diversity in plants [J]. Phytochemistry, 2009,
70(15): 1621-1637.