免费文献传递   相关文献

DNA fragment isolation of genomic microsatellite in Pinellia ternata by magnesphere

磁珠富集法分离半夏微卫星序列



全 文 :·研究论文·
磁珠富集法分离半夏微卫星序列
张君毅1,2,郭巧生1
(1.南京农业大学 中药材研究所,江苏 南京 210095;
2.华侨大学 生物工程与技术系,福建 泉州 362021)
[摘要] 目的:利用磁珠富集法分离半夏微卫星序列,以开发半夏微卫星引物。方法:根据链亲和素磁珠和生物素特异
结合的特性,将微卫星探针5′端生物素化后与链亲和素磁珠特异结合,用磁珠和探针的结合物与两端连接已知序列人工接头
的半夏基因组DNA酶切片段杂交,洗脱未杂交DNA片断后,建立微卫星文库。以此为模板用人工接头序列为引物进行PCR
扩增,产物直接克隆,经菌液PCR筛选后测序分析。结果:得到15条半夏微卫星序列,开发效率为9375%。结论:结果显示
这是一种快速而有效的微卫星开发方法。
[关键词] 半夏;磁珠富集法;SSR标记
[收稿日期] 20080904
[基金项目] 国家自然科学基金项目(30070922);华侨大学科研基
金项目(08BS103)
[通信作者] 郭巧生,Tel:(025)84395980,Email:gqs@njau.edu.
cn
  微卫星(microsatelite),又称为简单序列重复
(simplesequencerepeat,SSR),短串联重复(short
tandemrepeat,STR),是以少数几个核苷酸(一般2~
4个)为重复单位的串联重复 DNA序列。这一分子
标记具有一些显著的特征:①均匀、随机、广泛地分
布于植物基因组,平均间隔约15kb;②在同种植物
中SSR序列的两侧顺序常较保守,其特异性引物扩
增具有良好的重复性和保真性;③大多数 SSR存在
非转录区,重复序列变异频率高,因而在品种间具广
泛位点变异;④呈孟德尔式遗传,共显性,对个体鉴
定具特殊意义;⑤仅需微量植物组织,即便 DNA降
解,也能有效地分析鉴定;⑥虽然开始筛选重复序列
和引物设计过程较慢,但只要引物确知,使用便极为
简单方便,结果也很稳定。基于上述特征,SSR已成
为植物研究中应用最广也最为重要的分子标记之
一。目前,关于微卫星序列的开发方法有很多
种[1],但磁珠富集法依然是近些年较为常用的方法
之一。
半夏Pineliaternata(Thunb.)Breit.为天南星
科半夏属植物,其干燥块茎是我国传统的大宗中药
材。近些年由于野生资源的匮乏,半夏市场出现供
不应求局面,且随着中药材 GAP工作的深入开展,
半夏资源研究日益得到高度重视。运用 SSR分子
标记技术对于半夏资源遗传多样性分析、药材的真
伪鉴别和品种鉴别具有重要意义。本研究改进了磁
珠富集法,使之可以快捷高效地开发半夏微卫星序
列。
1 材料
1.1 半夏 选取江苏省泰州市半夏(俗称泰半夏)
为实验材料,经南京农业大学中药材研究所郭巧生
教授鉴定均为天南星科植物半夏P.ternata。
1.2 试剂 克隆转化采用的菌株为大肠杆菌
DH5α。试验中PCR扩增所用试剂购自宝生物工程
(大连)有限公司,引物合成与克隆的测序由上海英
俊生物技术有限公司完成,pGEMTEasyVectorSys
temI(Cat.#A1360)购于Promega公司。其他实验所
需试剂为市售分析纯试剂,配制方法参见文献[2]。
2 方法
2.1 基因组DNA的提取 采取改良的CTAB法提
取半夏 DNA,使用 Eppendorf核酸蛋白测定仪测定
基因组DNA浓度和纯度,在1%琼脂糖凝胶电泳检
测,调整确定其工作质量浓度为25mg·L-1。
2.2 限制性内切酶酶切 用 FbaI和 MboI2种限
制性内切酶对基因组 DNA进行复合酶切,37℃水
浴12h。40μL酶切反应体系中含2μLFbaI(12U
·μL-1),2μLMboI(10U·μL-1),2μgDNA和4
μL10×BuferK。酶切后反应体系 85℃水浴 10
·9741·
第34卷第12期
2009年6月
                           
Vol.34,Issue 12
  June,2009
min灭活限制性内切酶。
2.3 酶切产物与接头连接 将酶切产物与接头连
接,50μL反应体系见中含5μL10×T4DNALigase
Bufer,2μL接头(001mmol·L-1),2μLT4DNA
Ligase,35μL基因组酶切产物。接头由 OligoA(5′
TCCATTCGGCATCGCAGACA)和 OligoB(5′phos
CTAGTGTCTGCGATGCCGAATGG)组成。连接反应
16℃过夜,取出加热至70℃,保温10min,灭活连
接酶活性。
2.4 连接产物 PCR扩增 以 OligoA为引物对连
接产物进行抑制性 PCR扩增,用2%琼脂糖凝胶电
泳检测扩增效果。100μLPCR扩增反应体系中含
10μL10×ExTaqBufer(Mg2+ Free),8μLdNTP
Mixture(25mmol·L-1),6μLMgCl2(25mmol·
L-1),8μLOligoA(001mmol·L-1),4μL连接产
物和05μLTaKaRaExTaq(5U·μL-1)。反应程
序如下:72℃延伸1min;94℃变性10min,60℃复
性45s,72℃延伸1min,l个循环;94℃预变性5
min,94℃,1min;60℃,1min;72℃,1min;35个循
环,72℃延伸5min。
2.5 磁珠富集 SSR ①扩增产物变性:将抑制性
PCR扩增产物94℃变性10min,迅速置于碎冰中快
速冷却备用,双链 DNA变性为单链,以使目的片段
与探针杂交。②准备磁珠:取有活性的磁珠,用500
μL05×SSCBufer(1×TE +100mmol·L-1
NaCl)洗涤3次,然后以100μL05×SSCBufer悬
浮磁珠。③磁珠与探针结合:在磁珠悬浮液中加入
10μL探针(1μmol·L-1),摇匀后室温放置 10
min。磁场中吸走上清,用300μL01×SSC洗涤磁
珠4次,洗脱未结合的探针。探针为链亲和素标记
的(AC)15(5′BiotinACACACACACACACACACACA
CACACACAC3′)。④杂交:将变性的扩增产物加入
上述磁珠与微卫星探针结合物中,68℃杂交 1h。
⑤洗脱:杂交结束后,将混合物置于室温冷却5min,
在磁场中吸走上清液,用400μL01×SSC洗涤磁
珠4次,洗脱未杂交上的 DNA片断。最后加入100
μLddH2O悬浮磁珠,溶解目的片断,得到磁珠探
针目的片段的复合体,放置4℃冰箱备用。
2.6 PCR产物克隆与转化 吸取上述磁珠悬浮液
1μL作为模板,以 OligoA为引物进行 PCR扩增。
利用pGEMTEasyVectorSystemI将PCR扩增产物
转化到CaCl2法制备的感受态大肠杆菌 DH5α中。
经培养挑取阳性克隆于含抗生素Amp的LB液体培
养基中,震荡培养(37℃,200r·min-1)过夜。以引
物(AC)10(5′ACACACACACACACACACA3′)和通
用引物 SP6对阳性克隆菌液进行 PCR扩增检测。
取5μLPCR产物用2%琼脂糖凝胶电泳检测。选
取有PCR产物的克隆进行测序 (测序反应由上海
英俊生物技术有限公司完成),片断大小在 250~
500bp克隆以SP6引物进行测序,在500~1000bp
以T7引物测序。
2.7 测序结果分析 用 VecScreen软件去除载体
序列,避免载体序列污染。使用 ClustalX181软件
对所有结果进行多重序列比对分析,去除重复的序
列。用SSRHunter软件结合人工搜寻对测序结果
进行序列的SSR搜索。搜索SSR的长度为12bp以
上的 SSR核苷酸。另外使用 Censor软件和 Repeat
Masker软件也可用于重复序列的寻找和注释。使
用BLASTX软件预测序列的功能。使用Sequin70
向GenBank提交序列,Primerprimer50设计引物。
3 结果与分析
3.1 DNA酶切产物与接头连接后PCR扩增 以泰
半夏基因组DNA为底物进行 FbaI和 MboI双酶切。
取酶切产物与接头进行连接,PCR产物为一片清晰明
亮可见的片段,大部分片断集中在大约100~1000bp
(图1),说明基因组酶切充分,酶解产物与接头的连
接是成功的。通过抑制性PCR,让两端连接上接头的
序列的的双酶切产物得以扩增。
图1 连接后PCR扩增(A)及吸附后PCR扩增(B)
3.2 磁珠吸附后PCR扩增 磁珠吸附后的悬浮液
即为SSR文库,以此为模板进行抑制性 PCR扩增,
获得目的片断,扩增片断大部分集中在 250~700
bp,便于克隆和测序。
·0841·
第34卷第12期
2009年6月
                           
Vol.34,Issue 12
  June,2009
3.3 菌液PCR扩增检测 菌液PCR扩增检测常出
现以下几种情况(图2):①泳道没有条带,其原因可
能是因为 PCR产物没转进质粒,克隆为假阳性,也
可能是由于克隆中没有包含重复序列造成的,如泳
道20;②泳道中有2条或2条以上的条带,可能是
克隆序列中含有至少2段的重复序列的缘故,如泳
道14;③泳道中只有1个条带且清晰明亮,说明是
克隆序列中仅含1段重复序列。
1~27.阳性克隆;M.marker。
图2 菌液PCR扩增
3.4 序列整理分析 从60个克隆里筛选16个克
隆进行测序,分析发现有15个克隆含有重复序列。
所有克隆经 ClustalX分析没有发现相同的克隆结
果。使用BLASTX软件对所有结果进行比对分析,
将含有微卫星的克隆提交 Genbank,分别为
EF513095, EF513096, EF513097, EF513098,
EF513099, EF513100, EF513101, EF513102,
EF513103, EF513104, EF513105, EF513106,
EF513107,EF513108,EF513109。并对其中部分序
列设计引物(表1)。
表1 半夏微卫星位点分析及其引物序列
登录号 序列(5′3′) Tm/℃ 重复基元 大小/bp
EF513096 GTGCCTACATCCACTACCCGGCTCACTCGGCGAACAT 528 (CA)7 371
EF513097 AACCCGTAGTTAGCGTAGAAATCTTCCTCGTGTAATC 497 (AC)19 297
EF513098 TGGGTACAGACGAAGACCCTCGACAAACAAGGGAAT 496 (AC)7…(AC)6 206
EF513100 CGCCTACTTCCACCCTCCATTCGGCATCGCAGACAGA 523 (AC)13 355
EF513101 CATTCGGCACGCAGACAGAGGGCACTACAGGAGGGAG 546 (CA)8…(AC)5 269
EF513102 GGCTTGCTCGACAAACATGCCTACATCCACCCTCCA 520 (CA)6…(CA)9 274
EF513103 ACATAAGCAATCGCAAACTGTCAGGCAACTCATAAAC 514 (AC)6…(AC)6 268
EF513106 TACATCCACCCTCCACTTTTCTGTCGGGCACTTTAT 504 (AC)9…(CA)6 216
EF513107 GAGCGGTCCTGAGTATGGGAGATTGTTCGAGCGTG 510 (AC)6…(CA)6 384
EF513108 CTACATCCACCCTCCACTATATGTCGGGCACTCTAT 502 (AC)7…(AC)5 208
4 讨论
在预试验中采用 BamHI和 HindⅢ 2种限制性
内切酶对半夏基因组进行酶切,并以4条寡核苷酸
分别合成2条接头引物 I和 I。其中引物 I接头对
应BamHI酶切位点,引物 I对应 HindⅢ位点。使
用双引物进行 PCR扩增。通过测序结果发现接头
引物之间很容易自行连接,严重影响试验结果。分
析其原因,在接头与酶切产物连接时,接头的量远大
于酶切产物的量,而且后续步骤没有去除多余的接
头,由此影响PCR扩增[3]。
本试验采用MboI和FbaI2种限制性内切酶双
酶切,接头引物II由OligoA和OligoB合成,并使用
OligoA单引物扩增。以生物素标记(AC)15为探针,
提高杂交温度至68℃,延长杂交时间至1h,并充分
洗脱非特异片断。除此之外,以引物(AC)10代替通
用T7,检测筛选目的克隆片断。测序结果显示,16
个克隆中有 15个含有重复序列,开发效率到达
9375%。同采用传统法制备微卫星标记相比[4],本
法获得的微卫星标记不仅数量多,而且效率高。采
用该方法最大的不足之处是不能确保每个微卫星序
·1841·
第34卷第12期
2009年6月
                           
Vol.34,Issue 12
  June,2009
列之侧翼序列的有效分离,在获得的18个微卫星序
列中,有 2个微卫星序列 EF513099,EF5130958因
侧翼序列太短而无法设计 PCR引物。根据引物设
计 原 则, EF5130950, EF5130951, EF513098,
EF5130956没有得到合适引物。
[参考文献]
[1] 张增翠,侯喜林.SSR分子标记开发策略及评价[J].遗传,
2004,26(5):763.
[2] 萨姆布鲁克 J,拉塞尔 DW.分子克隆实验指南[M].3版.黄
培堂译.北京:科学出版社,2002:667.
[3] 孙效文,贾智英,魏东旺,等.磁珠富集法与小片段克隆法筛选
鲤微卫星的比较研究[J].中国水产科学,2005,12(3):126.
[4] 魏东旺,楼允东,孙效文,等.鲤鱼微卫星分子标记的筛选[J].
动物学研究,2001,22(3):238.
DNAfragmentisolationofgenomicmicrosateliteinPineliaternataby
magnesphere
ZHANGJunyi1,2,GUOQiaosheng1
(1.InstituteofChineseMedicinalMaterials,NanjingAgricultureUniversity,Nanjing210095,China;
2.DepartmentofBioengineering&Biotechnology,HuaqiaoUniversity,Quanzhou362021,China)
[Abstract] Objective:TodevelopmicrosateliteprimerswiththemethodofisolationofgenomicmicrosateliteinPineliaterna
tabymagnesphere.Method:Bytakingadvantageofthehighbindingafinityofbiotintostreptavidin,microsateliteprobeofthe5'end
biotinwascombinedwithmagnesphereparamagneticparticles,andthencombinationswerehybridizedwiththedigestedP.ternata
DNAfragmentsinwhichbothendsofthemconnectedwithspecialadaptor,theotherDNAfragmentswereelutedout.Themicrosatel
litelibrarywasestablished.ThecrossedfragmentswereusedasthetemplatetoconductPCRamplificationwiththeadaptersequences
asprimers,theproductswerecloneddirectly,subsequentlyscreenedbybacteriumliquidPCR,andDNAsequencingwascariedout.
Result:FifteenmicrosatelitesofP.ternatawereobtained,developmenteficiencywas93.75%.Conclusion:Theresultdemonstrates
thatmagnesphereisafastandeficientmethodtodevelopmicrosatelite.
[Keywords] Pineliaternata;magnesphere;SSRmarker
[责任编辑 吕冬梅]
本刊重要启事
本刊已开通在线支付功能,作者请登录本刊网站 www.cjcmm.com.cn“作者中心”,点击在线充值,可以
选择网上银行(没开通网银功能的帐户可以选择信用卡充值)和手机充值卡2种充值方式,充值成功后系统
会显示您的账号余额。然后您可以根据稿件状态和编辑部邮件通知来缴纳相应的费用,如审稿费,发表费
等。如有疑问请咨询鲍雷编辑:13683362408,178562955@qq.com。
·2841·
第34卷第12期
2009年6月
                           
Vol.34,Issue 12
  June,2009