全 文 :中草药 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第2期2007年2月·265·
仙茅叶片的组织培养及其细胞学观察
彭海峰,曹友培,俞新华,赵晟,黄晓柯
(华南农业大学生命科学学院,广东广州 510642)
摘 要:目的 通过对仙茅叶片组织培养的研究与细胞学观察,为仙茅的快速繁殖提供技术依据。方法将仙茅幼
叶培养在MS培养基,通过设计不同的光照条件,附加不同的激素、水解酪蛋白和活性炭成分,调查出愈率和成苗
率。细胞学观察采用石蜡切片法。结果对仙茅叶片的愈伤诱导,黑暗的效果好于光照;在所试验的培养基成分中,
适宜的激素配比是2.0mg/L2,4-D或6一BA1.5mg/L+2,4-D2.5mg/L,并且附加300mg/L水解酪蛋白和
0.2%活性炭,对于仙茅叶片的离体成苗较好;培养后,愈伤组织主要由叶片的中脉产生,位于中脉上表皮内侧的薄
壁细胞首先启动分裂,随后维管束鞘薄壁细胞及其外侧的叶肉细胞也启动分裂,参与愈伤组织的形成。愈伤分化时,
芽发生于愈伤组织的表面,根发生于愈伤组织的内部。结论可以通过仙茅幼叶的组织培养进行仙茅的快速繁殖。
关键词:仙茅;叶片;组织培养;细胞学
中图分类号:R282.1 文献标识码:A 文章编号:0253—2670(2007)02—0265—05
TissuecultureandcytologicalobservationsofleafexplantsofCurculigoorchioides
PENGHai—feng,CAOYou—pei,YUXin—hua,ZHAOSheng,HUANGXiao—ke
(CollegeofLifeScience,SouthChinaAgriculturalUniversity,Guangzhou510642,China)
Abstract:ObjectiveThes udiesontissuecultureandcytologicalobservationsofleafexplantsof
Curculigoorchioideswereconductedinor ertoprovidethbasisfortherapidpropagationofC. rchioides.
MethodsYoungleafexplantsofC.orchioideswerculturedonMSbasalmedia.Differencesinthecallus
inductionandplantletr generationra ewereobservedbydifferentlightreatmentaswellaschemicalfac—
torslikedifferentphytohormones,caseinhydrolysate(CH),andactivatedcharcoal(AC)concentrations.
Paraffinmethodwasusedtocytologicalobservation.ResultsForcal uinductionofleafexplantsofC.
orchioides,darktre tmentgavebetterresultscomparedtolighttreatment;amongthemediatested,the
suitablephytohormonecombinationswere2.0mg/L2,4-Dor6一BA1.5mg/L+2,4一D2.5mg/L,and
300mg/LCH+O.2%ACwasgoodforplantletr generationfromleafexplants.Thecallusfromleafex—
plantsmainlyoriginatedfrommidrib.Thepar nchymacellsnearepicuticleofmidribfirstlywereinitiated
todivision.Thentheparenchymacellsofvascularbundlesheathndmesophyllcel soneachsideofvascu—
larbundlewerealsodividedtoformcallus.Thebudsdevelopedntheperipheralpartsofthecalli,butthe
rootsdevelopedintheregionsdeepwithinthecalli.ConclusionTi suecultureofyoungleafexplantsof
C.orchioidescanmakethepropagationofC. rchioidesrapid.
Keywords:Curculigoorch oidesGaertn.;leafexplants;tissuecult re;cytology
仙茅CurculigoorchioidesGa rtn.系石蒜科仙
茅属多年生草本植物,其根状茎人药,是一种传统的
中药材。能补肾助阳、益精血、强筋骨、行血消肿。用
于肾阳不足、阳痿遗精、腰脊冷痛、尿频尿急、寒虚崩
漏、疮疡肿痛、痨虚内伤、筋骨冷痛等临床病症[1]。随
着人们对仙茅药用价值的不断深入认识,对其开发
和应用越来越广泛,但由于仙茅在自然界的数量有
限,且传统的获取方法又以采集和消耗大量的野生
资源为代价,造成仙茅资源短缺。因此,有必要对其
进行以组织培养为手段的人工繁殖研究。目前,国内
外关于仙茅组织培养的研究报道较少[2’3],且对其形
态发生的细胞学研究尚未见报道。本实验以仙茅叶
片为外植体,对其离体成苗的影响因素以及器官发
生的细胞学过程进行研究,以期为仙茅快繁体系的
建立提供理论依据和技术路线。
1材料与方法
1.1仙茅叶片的组织培养:挑选自然环境下生长健
壮的仙茅植株,取其新长出的长度约为8cm的幼
叶,流水冲洗干净后用75%酒精表面消毒30S,无
菌水冲洗1次,再用0.1%升汞消毒10~12min,
收稿日期:2006—05~05
作者简介:彭海峰(1972一),女,山西右玉人,硕士,讲师,主要从事植物发育生物学研究。
Tel:(020)85280193E—mail:phf72@126.com
万方数据
·266· 中草芮 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第2期2007年2月
无菌水冲洗5~6次。然后将叶片切割成0.5cm×
0.5cm的小块接种到MS培养基,每瓶接种4块。
诱导培养基添加的激素见表1,分化培养基添加的
激素为0.5mg/[。6-BA。所有培养基除特别说明
外,均附加300mg/I。水解酪蛋白,3.0%蔗糖及
0.2%活性炭,用0.6%琼脂固化,pH值调至
5.86。培养室的温度控制在26~28℃,在全黑暗、
全光照(12h/d)或先2d黑暗再光照(12h/d)的
条件下进行愈伤组织的诱导培养,绿苗分化在12
h/d光照的条件下进行。接种后约2个月统计出愈
率,并将愈伤组织转移到分化培养基上,1个月后统
计成苗率。出愈率一罐糕糌×100%成苗率==叁芸岩燃X100%
1.2 仙茅叶片组织培养的细胞学观察:将培养前的
叶片、培养不同时间的叶片以及愈伤组织,用FAA
固定液同定.按常规石蜡切片法制片。连续横切,切
片厚6~8pm.用番红~固绿或铁矾~海氏苏木精染
色,中性树胶封片。
2结果与分析
2.1 仙茅11{1片的组织培养
2.1.1 激素对仙茅叶片组织培养的影响:由表1可
知.单独使用2.4D时,在1.o~3.0mg/L的质量
浓度范围内.附加2.0mg/L2,4一D的诱导培养基,
其}_}j愈率和成莳率都是最高的,分别达到80.4%
和8s.7%.而u{2.4-D质量浓度为1.0或3.0mg/
I,时.H{愈率和成苗率均有所下降,且3.0mg/L
2.4D的下降幅度较大,出愈率和成苗率分别低至
37.5%和28。1%;单独使用6-BA时,在0.5~2.0
mg/I,内.出愈率最高的是附加0.5mg/L6一BA的
诱导培养基,而成苗率最高的是附加1.0mg/L6一
BA的诱导培养基,出愈率和成苗率分别为27。3%
和50.0%。附加2.0mg/L6-BA的培养基其出愈
率和成苗率都是最低的,出愈率仅为2.1%,成苗率
为0;2,4-I)与6BA搭配使用时,当2.0mg/L6一
BA配合使用不同质量浓度的2,4-D(1.5~2.5
mg/I。)时,出愈率和成苗率均随2,4一D的升高而增
加,并a附加2.0mg/L6一BA与2.0mg/L2,4一D
的诱导培养基,其出愈率和转分化后的成苗率比单
独使用2.0mg/L6-BA高,却比单独使用2.0rag/
I.2,4-D低。而当2,4一D为2.5mg/L时,使用1.5
mg/I,6BA的效果又好于2.0mg/L6一BA,成苗率
由31.3%上升到50.0%。
表1激素对仙茅叶片组织培养的影响
Table1 Effectofdifferentphytohormoneco binations
ontissuecultureofl afexplantsofC.orchioides
以上结果表明单独使用2,4一D和6一BA时,2,
4一D的效果比6一BA好;2,4一D和6-BA搭配使用
时,较高质量浓度的2,4一D有利于仙茅叶片的愈伤
诱导及进一步分化成苗,而较高质量浓度的6一BA
对仙茅叶片的愈伤诱导及成苗具有一定的抑制作
用。形态学观察还发现,单独附加6-BA的诱导培养
基获得的愈伤组织分化的绿苗数较少,多数为1~2
棵苗;而单独使用2,4一D以及6-BA与2,4一D搭配
使用时,诱导产生的愈伤组织容易增殖,且获得的愈
伤组织分化的绿苗数较多,但单独使用2,4-D获得
的试管苗由于数量较多而生长相对较弱。
2.1.2水解酪蛋白和活性炭对仙茅叶片组织培养
的影响:由表2可知,在MS+0.5mg/I.6BA的培
养基上加入0.2%活性炭后仙茅叶片的出愈率明
显升高,达到59.1%,是不加活性炭的1.7倍。形态
学观察表明这与活性炭有效防止褐变有关。当再加
入300mg/L水解酪蛋白后则出愈率下降,但成苗
率却由11。4%提高到37.5%,这可能与水解酪蛋
白改善了愈伤质量有关。
表2水解酪蛋白和活性炭对仙茅叶片组织培养的影响
Table2 EffectofCHandAContissueculture
ofleafexplantsofC.orchioides
2.1.3光照条件对仙茅叶片组织培养的影响:将仙
茅叶片接入MS+0.5mg/L6-BA+300mg/I。水
解酪蛋白+0.2%活性炭的培养基,在3种光照条
件下进行诱导培养。由表3可知,3种光照条件均能
诱导仙茅叶片产生愈伤组织并分化成苗,其中全黑
暗条件对仙茅叶片的诱导效果较好,出愈率高且愈
∞弱驼“弘够跎∞∞“
O
0
O
5
O
5
5
1
2
3
0
O
0
l
2
2
2
万方数据
中草药 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第2期2007年2月·267·
表3不同光照条件对仙茅叶片组织培养的影响
Table3 Effectofdifferentlightreatmentsonti sue
cultureofl afexplantsofC.orchiordes
伤质量好,成苗率达到37.5%;2d黑暗再光照虽然
诱导愈伤组织反应快,但出愈率不高,且愈伤组织质
量较差,成苗率仅为15.9%;全光照条件则出愈率
低且愈伤组织容易褐变而死亡,但其成苗反应快。
2.1.4炼苗与移栽的条件:对不同大小的试管苗进
行炼苗移栽的结果表明,当试管苗长到6cm时打
开瓶盖.在培养室放置3~5d,然后将试管苗从培
养瓶中取出,用清水洗净根系上的培养基,移栽到无
菌沙土里.10d后将小苗移到自然环境中的存活率
较高,可达85%以上(图1—5)。
2.2仙茅叶片组织培养的细胞学观察:培养前的仙
茅幼叶由表皮、叶肉和叶脉组成。表皮是单层细胞,
分卜^、下表皮。叶肉无栅栏组织和海绵组织的分化,
叶肉细胞内含大量叶绿体。叶脉为平行脉,中脉由维
管束、厚壁组织和薄壁组织组成。维管束的木质部近
叶腹面.韧皮部近叶背面,维管束鞘由2层细胞组
成,内层是较小的厚壁细胞,外层是较大的薄壁细
胞。维管束的上下方是厚壁纤维细胞,其中下方(即
近背面)的厚壁纤维细胞木化程度高而层数多,直接
与下表皮相接;上方(即近腹面)的厚壁纤维细胞木
化程度低而层数少,与上表皮之间还有薄壁细胞
(图1-6)。这些维管束上方的厚壁纤维细胞及其与
上表皮之间的薄壁细胞的层数会随着叶片的发育而
变化,在成熟叶片中全部为厚壁纤维细胞(图1—7)。
接种后几天,叶片伸展增大,中脉慢慢变白,培
养至3~4周左右,中脉膨大处产生白色的愈伤组
织(图1一1)。组织切片观察表明,上表皮内侧的薄壁
细胞首先启动分裂(图1—8),形成愈伤组织(图1—
9),随后维管束鞘薄壁细胞也启动分裂参与愈伤组
织的形成(图1一lo)。培养后期,中脉两侧的叶肉细
胞经多次横向分裂后呈放射状整齐排列,也形成愈
伤组织的一部分(图1一11)。愈伤组织细胞的增殖方
式有无丝分裂和有丝分裂(图1—12~14),但主要是
无丝分裂,有劈裂(图1—15、16)、碎裂(图1—17)、缢
裂(图1—18)、出芽(图1—19)等多种方式,其中以劈
裂的方式较为常见。由于核分裂较胞质分裂快,也经
常可见到双核细胞(图1-9)。
随着愈伤组织的增殖,下表皮被愈伤组织形成
的突起撑破,在维管束近腹面一侧的愈伤组织中开
始出现成团的分生细胞群,也称为分生组织结节
(图1-20),分生组织结节可以成为愈伤组织的生长
中心,也可以进一步分化出成群的管状分子,形成鸟
巢状的维管组织结节(图1—21)。近维管束的维管组
织结节进一步向着叶背面侧发育成根(图1.22),而
在远离根的另一端的愈伤表面形成芽,芽与根之间
有维管组织相连(图l一23),并可进一步发育成完整
的小植株(图1—2、4)。此外,上表皮内侧的薄壁细胞
启动分裂后不久形成的愈伤组织,也可不经过明显
的增殖阶段进行器官发生,分化出根和芽f图卜24、
25),在中脉切口处成苗(图1—3)。
3讨论
关于植物叶片组织培养的愈伤组织起源和形成
已有一些报道。许智宏等[4]对烟草叶片(切去主脉
及大的侧脉)培养的细胞学观察,认为诱导愈伤组
织形成的是两类细胞,即叶肉细胞,以及小维管束中
的韧皮薄壁细胞和维管束鞘细胞。过令,},对含主
脉的杨树叶薄层培养的细胞组织学研究表明,愈伤
组织主要由维管束鞘薄壁细胞,以及‘j其邻接的一
些栅栏组织细胞和韧皮薄壁细胞分裂而来.陈明霞
等[6]对怀山药叶片(试管苗叶片)脱分化过秤的细
胞学研究,指出愈伤组织起源于切【l附近的叶肉细
胞。暨淑仪等¨]对茶叶片(芽下第l、2片叶)愈伤形
成的组织细胞学观察,认为叶外植体叶肉中的小叶
脉周围以及主脉中的薄壁细胞首先启动脱分化,分
裂形成分生细胞团,继而形成愈伤组织。fj文和等圳
对草莓叶片培养的组织学研究,表明愈伤组织足由
维管束周围的薄壁细胞和叶肉细胞脱分化形成的分
裂中心进一步发育而成的。而对于单子叶植物,陈惠
民等[93报道小麦幼叶(发芽第4天的第1片幼叶)
愈伤组织最初起源于维管束鞘细胞,而且从靠近韧
皮部的位置开始,继而扩展至整个周圈及束内,维管
束以外的细胞未见分裂。李春瑶[1叩报道甘蔗幼叶
(高约2m成长蔗的蔗尾一1及一2叶)的愈伤组织起
源于两小维管束或小维管束与下表皮之间的薄壁细
胞。实验对单子叶植物仙茅叶片(8cm长幼叶)培
养的细胞学观察表明,其愈伤组织首先起源于中脉
维管束与上表皮之间的薄壁细胞,以后扩展至维管
束鞘薄壁细胞及其外围的叶肉细胞,韧皮薄壁细胞
未参与愈伤组织的形成。与前人研究结果的差异,可
能与植物种类、叶片结构与发育阶段以及叶片接种
部位的不同有关。
万方数据
·268· 中草药 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第2期2007年2月
1一叶片中脉处诱导出愈伤2一愈伤增殖并分化
出芽3一中脉切口处成苗,未见明显的愈伤
4一分化出芽和根的试管苗 5一移栽的组培苗
6、7-仙茅叶片横切面(6幼叶,7成熟叶,Ph韧
皮部,Xy木质部,VBS维管束鞘,S厚壁组织,
P薄壁组织)8-上表皮内侧的薄壁细胞分裂
(十)9-刚产生的愈伤组织lo一维管束鞘薄
壁细胞分裂形成的细胞团(+)11一中脉两侧
的叶肉细胞经多次横向分裂呈放射状排列
12~14一有丝分裂方式(12中期,13前期,14后
期) 15~19-无丝分裂方式(15劈裂,16劈
裂,17碎裂,18缢裂,19出芽)20一分生组织
结节(十)21一维管组织结节22一维管组织结
节分化出根23一愈伤组织的表面分化出芽,内
部分化出根24初始愈伤的芽原基分化 25一
不经明显愈伤阶段的根芽分化(十)
1callusinducedfrommidribofleafexplants
2-adventitiousbudsdeve—.10pedfrommultipliea—.
tivecalliofthemidrib3-midribofleafex—
plantsshowingor anogenesiswithoutevident
calli4-fullygrowni vitroplantshowing
multipleshoots5 plantletstransferredtOsoil
6,7-transverseectionofleafwithmidrib(6
youngleaf,7maturel af,Phloem,Xy
Xylem,VBSvascularbundlesheath,Sscle—
renchyma,Pparenchyma)8-parenchyma
cellsnearepicuticlebegintodivide9-calliof
earlyphase10cellgroupsfromparenchyma
cellsofvascularbundlesheath(arrow)¨一
regularrowsofcalliformedasaresultofcon—
secutivefissuratransversaofmesophyllcel s
12—14~modefmitosis(12metaphase,13
prophase,14anaphase)15m19-modeofami—
tosis(15 fissuratedivision,16-fissuratedivi
sion,17-fragmentationdivision,18一constric—
tiondivision,19-buddingdivisio )20一meris—
ternodule(arrow)21一vascularnodules22一
rootdevelopedfromnodularv sculartissue
(arrow)23一budsevelopedonperipheral
partsofthecalli,butrootsinregionsdeep
withinthecalli24——initiationofbudprimordi,.
umonperipheralpartsofcalliatearlyphase
25differentiationof rootandbudwithout
evidentcalli
图1 仙茅叶片培养的形态学及细胞学观察
Fig.1MorphologicalandcytologicalobservationsOiltis ueeultureofleafexplantsofC.orchioides
由于仙茅叶片的愈伤组织形成与器官发生部位 先将幼叶(长度不超过8cm)的带中脉叶块,接入
主要集中分布在中脉维管束附近,特别是维管柬与 诱导培养基(MS+1.5mg/L6一BA+2.5mg/L2,
上表皮之间的薄壁细胞在此过程中起了非常重要的 4一D或MS+2.0mg/L2,4一D,并附加300mg/I。
作用,但这些薄壁细胞会随着叶片的成熟逐渐分化 水解酪蛋白和0.2%活性炭),在26~28℃的黑暗
为厚壁纤维细胞而失去脱分化能力。因此,对于仙茅 条件下进行诱导培养;当愈伤组织大小长到2~3
叶片的组织培养,取材时应选取长度不超过8cm mITl时转入分化培养基(MS+6一BA0.5mg/L+
的幼叶,并切取带有中脉的叶块,以提高仙茅的离体 300mg/L水解酪蛋白+0.2%活性炭),在26~28
成苗率。另外,综合本研究中光照条件、培养基成分 ℃12h/d光照的条件下进行愈伤增殖及绿苗分化
及炼苗移栽条件对仙茅叶片离体培养成苗影响的研 培养;当试管苗生长至6crn高时,打开瓶盖3~5
究结果,可初步建立了一套仙茅快繁的技术体系:首d,然后将小苗移栽到无菌沙土里,10d后将小苗移
万方数据
中草药 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第38卷第2期2007年2月·269·
栽到自然环境中生长。
致谢:在切片,gg,0e曾得到华南农业大学生命
[6]
科学学院严学成教授的热心帮助。
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防己药材的HPLC指纹图谱研究
崔金国1’2,饶 毅“,魏惠珍1,黎 莉2,刘隆洪3,王跃生1,杨世林1
(1.中药固体制剂制造技术国家工程研究中心,江西南昌 330006;2.江西中医学院,江西南昌330006;
3.江西翔云生物药业有限公司,江西遂川 343900)
摘 要:目的 用HPLC法对防己药材指纹图谱进行研究。方法采用色谱条件:ShimadzuVP—ODS柱(250mm×
4.6ram);流动相为乙腈一0.1%磷酸溶液,梯度洗脱进行色谱分离;检测波长为282nm;以防己诺林碱作为参照物。
结果 初步建立了防己药材的HPLC指纹图谱,并进行相似度评价。结论方法简单可行,能够有效地控制防己药
材的内在质量。
关键词:防己;指纹图谱;HPLC;相似度
中图分类号:R282.7R286.02 文献标识码:A 文章编号:0253—2670(2007)02—0269—04
HPLCFingerprintofRadixStephaniaeTetrandrae
CUIJin—gu01~,RAOYil,WEIHui—zhenl,LILi2,LIULong~hon93,
WANGYue—shen91,YANGShi—linl
(1.NationalPharmaceuticalEngineeringCenter(NPEC)forSolidPrepa ationinChineseMateriaMedica,Nanchang
330006,China;2.JiangxiUniversityofTraditionalChineseMedicine,Nanchang330006,China;
3.JiangxiXiangyunBiologyPharmaceuticalCo.,Ltd.,Suichuan343900,China)
Abstract:ObjectiveTos udythefingerprintofRadixStephaniaeTetrandraebyHPI。C.Methods
HPLCcondition:COlumnShimadzuVP一0DS(250mm×4.6mm);themobilephasewasacetonotrilewith
0.1%phosphoricacidandthegradientelutionm dewasappliedinchromatographicseparation;thedetee—
tivewavelengthwas282nm;fangchinolinewasusedasthereferencecompound,ResultsHPLCFinger—
printofRadixStephaniaeTetrandrawasestablishedandthesimilarityofthefingerprintwascompared.
收稿日期:2006—04—25
作者简介:崔金国(1978一),男,江西中医学院药物分析专业硕士研究生。E—mail:lanshu2005@163.corn
*通讯作者饶毅Tel:(0791)7119609E—mail:raoyi99@126.com
万方数据
仙茅叶片的组织培养及其细胞学观察
作者: 彭海峰, 曹友培, 俞新华, 赵晟, 黄晓柯, PENG Hai-feng, CAO You-pei, YU Xin-
hua, ZHAO Sheng, HUANG Xiao-ke
作者单位: 华南农业大学生命科学学院,广东,广州,510642
刊名: 中草药
英文刊名: CHINESE TRADITIONAL AND HERBAL DRUGS
年,卷(期): 2007,38(2)
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1. 潘馨.郭素华 高效液相色谱法测定仙茅中仙茅苷的含量[期刊论文]-中国药学杂志2002,37(5)
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3. 曾倩.纪晖.Zeng Qian.Ji Hui 反相高效液相色谱法同时测定不同产地仙茅中仙茅苷和仙茅苷乙的含量[期刊论
文]-药学实践杂志2010,28(3)
4. 聂诗明.张丽萍.卢水珍.黎祥胜.校合香 正交试验法优选仙茅提取工艺的研究[期刊论文]-中成药2002,24(9)
5. 李向阳.屠万倩.翟乙娟.侯文峰 HPLC测定骨仙片中仙茅苷的含量[期刊论文]-中成药2005,27(9)
6. 余晓红.YU Xiao-hong 仙茅多糖对小鼠免疫功能影响的实验研究[期刊论文]-海峡药学2011,23(3)
7. 潘馨 仙茅指纹图谱的研究[期刊论文]-海峡药学2003,15(4)
8. 杨光义.叶方.潘红.马冰.胡延.李诗 仙茅药理作用和临床应用研究概述[期刊论文]-中国药师2011,14(7)
9. 李宁.谭宁华.周俊 大叶仙茅中一个新的木脂素苷[期刊论文]-云南植物研究2003,25(6)
10. 陈剑.周岩 仙茅乳消汤治疗乳腺增生病210例[期刊论文]-河南中医2005,25(11)
引证文献(1条)
1.张萍.魏琴.张超.周黎军.袁吉有.刘庆.蒲国萍 仙茅地下茎段组织培养研究[期刊论文]-安徽农业科学 2009(10)
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