全 文 ：广 西 植 物 Guihaia 23(5)：453— 456 2003年 9月
四种 山蓝加工方法的比较
文永新，谢运昌 ，蒋小华，方 宏
(； 薯 星广西植物研究所，广西桂林54106)
摘 要 ：用高效液相色谱法 和分光光度 法测定 了l~ Jn-r方法所得 山蓝加 工提取物 中有效成分 含量 ，结果 表
明 ，经 阴干 ，晒干 ，乙醇浸泡几 种传 统加 工 方法加工 的山蓝 中紫蓝 素含量 分别 为 311、456、472 mg／100 g(干
重)，而采用避氧热处理加工 的山蓝 中 ，紫蓝索含 量达 1．73 g／lOO g。用 传统 加工方 法对 山蓝 进行加工 ，有效
成分含量低，制约了山蓝的利用价值，而避氧热处理能大大提高有效成分含量，提升山蓝的品质。研究结果对
山蓝的加工、炮制和开发利用有重大意义。
关键词 ：山蓝 ；加工；有效成分；紫蓝素
中图分 类号 ：Q946；R283．3；TS201 文献标识码 ：A 文章编号 ：i000—3142(2003)05—0453—04
The comparison 0f four methods for
‘ Pem‘stro he baphicaprocessmg／-ro 0pU P
WEN Yong-xin，XIE Yun—chang ，J IANG Xiao—hua，FANG Hong
(Guangxi Institute of Botany，Guangxi Zhuangzu Autonomous Region and Academia Sinica，Guilin 541006，China)
Abstract：The content of the effective component，Zilanine，in Peristrophe baphica processed by four methods
was measured by HPLC and photometric techniques．In samples processed by drying in the shade，by drying in
the sun，and by steeping in 50％ alcohol，its content is 311 mg／lO0 g，456 mg／100 g and 472 mg／lO0 g related
to the dry weight．h reaches 1．73 rag／i00 g in that processing by heating with deoxygenation，a noval meth—
od．The value of P．baphica is limited if traditional methods are used．The noval method can increase the con—
tent of the effective component and thus improve the quality drastically．It is possible to make the best use of
P．baphica by the noval method．
Key words：Peristrophe baph ica；processing；effective component；zilanine
山 蓝 (Peristrophe baphica(Spreng．)Bre—
mek．)，又名红丝线、观音草，为爵床科植物，药材有
清热止咳、凉血解毒 、消炎止血、散瘀消肿等功效(国
家 中医药 管理局 中华本 草 编委 会 ，1999)，用 于肺燥
热咳、咯血、肺结核、糖尿病、跌打损伤、毒蛇咬伤等
的治疗(罗献瑞 ，1993)。药理研究表 明该植物有显
著的降压(王宇等 ，1995)、降血脂 、清除氧自由基、改
善心功能(周良等，2OOO)的作用。印度 民间用于席
子 、布料的染色并用于治疗皮肤病(Council of Sci—
entific and Industrial Research，1969)。广东 中部和
广西 民间常于端午节用本品鲜叶裹粽吃；广西、云南
少数民族以之制作民族食品“五色米饭”，其紫、蓝、
红色者系采用山蓝为原料以不同温度提取的提取液
染制并调节不同 pH而成。广西宜山用山蓝作为酿
酒原料制作红兰酒已有 600多年历史 ，1958年建成
德胜红兰酒厂工业化生产红兰酒作为广西宜山特产
投放市场(中国商业 出版社 ，1992)。以山蓝提取食
用色素 ，具有原料易得 ，得率高 ，色素稳定性较好，安
收稿 日期 ：2003—02—25 修 订 日期 ：2003—04—22
基金 项 目：国家 自然 科学 基金 项 目(29862001)；广 西 自然 科学基 金匹 配项 目(9912023)资 助 。
作者简介：文永新(1953一)，男，广西全州人，副研究员，从事植物化学研究工作。 *为通讯作者
—■—1—～ 一 ⋯ ’ ‘
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454 广 西 植 物 23卷
全无 毒 等优 点，有 较 好 的市 场 前 景 (谢 运 昌等，
1997)。除鲜用外 ，其采 收加工 方法为 晒干，还 有
5O 乙醇浸提(覃洁萍等 ，1994)。为提高 山蓝加工
品的品质 ，保证 山蓝 的药 效 ，指 导 山蓝 的加工 、炮制
和正确利用(王琦等，2000)，本文根据紫蓝素含量对
4种 山蓝加工方法进行 比较 。
1 材料和仪器
1．1仪器
高效液相色谱仪(Waters，486紫外检测器，510
泵，U6K进样器)，721型分光光度计 (上海第三分
析仪器厂 )，台式 离 心机 (TL一5．0，上 海市 离 心 机械
研究所 )，旋 转 蒸 发 仪 (R一3000，BUCHI)，冰 柜 (海
尔 )。
1．2试剂
紫蓝素对照品(自制)，乙腈(色谱纯)，C18色谱
填料(北京金欧亚公司)，氮气 。
1．3植物材料
山蓝 (Peristrophe baphica(Spreng．)Bremek．)
栽培于广西植物研 究所 栽 培试 验地 (桂 林 市雁 山)，
2002年 8月摘取其枝叶部分 ，随机分为 12份，每份
1O0 g。
2 方法
2．1山蓝加工
2．1．1阴干 取经称量的 1O0 g山蓝鲜料 3份，置于
室内通风处阴干 5 d，再置于内装变色硅胶干燥器中
存 放。
2．1．2晒干 取 经称量 的 100 g山蓝 鲜料 3份 ，置于
烈 日下曝晒 1 d，再置于内装变色硅胶干燥器中存
放 。
2．1．3 5O 乙醇冷浸 取经 称 量 的 100 g山蓝 鲜料
3份 ，每份 加 800 mL50 oA乙醇浸泡 30 d。
2．1．4避 氧热 处理 取 经称量 的 1O0 g山蓝 鲜料 3
份，每份置于 1 000 mL圆底烧瓶 中，以氮气驱除瓶
内氧气，加入经沸腾脱氧的 98℃热水 400 mL(混合
物平衡温度 84℃)，置于旋转蒸发器上 ，于 84℃保
温 90 min，倾出，放冷(谢运 昌等，2003a)。
2．2紫蓝 索含量测定 (洪筱坤等 ，2000)
2．2．1供 试品制备 对前述 四种加 工方法 所得 山蓝
加工品，阴干及晒干品加 2O倍水提取 3次；避氧热
处理样料渣再加水 4倍提取 2次；酒精冷浸样倾 出
酒精浸 提液 ，残渣 用 200 mL水洗 除酒精 ，真空蒸 发
除去酒精，料渣再加 4倍水提取 2次。各样分别合
并提取液 ，定容 至 2 000 mL，取样 ，离 心 ，取上 清液 ，
得供试品 ，置冰柜保存 。
2．2．2分 光 光 度 法 取 供 试 品 ，以 pH8．0，0．05
mol／L Tris一缓冲液稀释，使吸光度在 0．2～0．7之
间，测吸光度，以 E。I N 一1 026计算紫蓝素含量。
0 2 4 6 8 10 12 14
时问t／min
图 1 山蓝加工品的高效液相色谱 图
Fig．1 HPLC profiles of samples of processed
Peristrophe baphica
(a)紫蓝素对照品；(b)避氧热处理；(c)5O 乙醇
浸 泡 ；(d)阴 干 ；(e)晒 干。
(a)Standard of zilanine；(b)Heating with deoxygenation；
(c)Steeping in 5O alcohol；(d)Drying in the
shade~(e)Drying in the sHn．
2．2．3高效液相 色谱 (HPLC)法 (1)色谱条件：色
谱柱为 Spherisob C18(4．6 mm×2．5 mm，10 m)，
柱温为室 温 3O℃ ，流动 相 B为 乙腈 ，A 为重 蒸水 ，
梯度洗 脱 (Krstulovic等，1982)，梯 度 条件：B从
1O 开始，以线性 3 min达 25 ，6 min达 35 ，1O
min达 42 。，12 rain达 6O ，12～ 14 rain保 持
6O 9／6，16 min降至 1O 。流速 1．0 mL／min。检测
波长 590 nm，进样量 1O L。以紫蓝素为外标(以水
溶解)，制作标准曲线，得线性回归方程 C一0．789 2
+2．27×1O A，相关系数 r一0．999 0。线性范围 4
～ 2O mg／L。(2)含量测定 ：取供试液，用蒸馏水稀
释 ，使溶液中紫蓝素浓度在 4～20 mg／L范围内，进
样 10 L，测定峰面积积分值 ，代人 回归方程，计算
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5期
紫蓝素含量 。
文永 新等 ：四种 山蓝加工方法 的 比较 455
3 结果 与讨论
避氧热处理 ，阴干 ，晒干 ，50 乙醇 冷 浸 4种 山
蓝加工方法对 山蓝 鲜 品进 行 加工 ，加 工 品 的高 效液
相色谱 (HPLC)图见图 1，其紫蓝素的含量见表 1。
从 图 1可见 ，4种 山蓝 加工 方 法 所 得 加工 品 的
高效液相色谱(HPLC)图有较大差异 。避氧热处理
加工 品的谱 图 以紫蓝 素峰 为主 ；阴干 ，晒干 ，50 乙
醇冷浸 3种 加工品的 HPLC谱 图色谱 峰较杂 ，紫蓝
素峰不是主峰。阴干 、晒干品的色谱 图相似。从表
1可见 ，经阴干，晒干 ，乙醇浸泡几种传统加工方法
加工的山蓝中紫蓝素含量分别为 311、456、472 rag／
100 g(干重)，其加工品的紫蓝素含量均不高；采用
避氧热 处理 加 工 的 山蓝 中 ，紫蓝 素 含量 达 1．73 g／
100 g，紫蓝素含量与传 统方法相 比 ，可提高 3O倍 左
右。分光光度法与 HPLC法相比，测定结果偏高，这
是由于 HPLC法能分离纯化紫蓝素组分，而分光光度
法受到其它色素成分及杂质的干扰。HPLC法测定
结果更为可靠 。避氧热处理法 中，HPLC法结果接近
分光光度法 ，表明紫蓝素为紫蓝中色素主要成分。
表 1 四种加工方法所得 山蓝 加工品中紫蓝素的含量
Table 1 The content of zilanine in Peristrophe baphica processed by four methods
”避氧热处理和 5O 乙醇浸泡样根据阴干及晒干样的干重平均值(17．95 g干重／lOO g鲜重)计算干重。
The dry weight of the samples processed by heating with deoxygenation and by steeping in 50％ alcohol was calculated with the average
data of the sundried and the airdry samples．
紫蓝素为山蓝的主要有效成分和山蓝色素主成
分。它有较强的抗乙型肝炎病毒 、很强的抗脂质过
氧化 、抑制蛋白酪氨酸酯酶 、抗糖尿病作用 (谢运昌
等，2003a)。传统方法对山蓝进行加工 ，山蓝中的紫
蓝素前体物质紫蓝胺 酚(谢运 昌等 ，2003b)会发生
分解 、聚合、与其他成分缩合等反应 ，紫蓝索含量低，
品质不佳 ，是当前山蓝的药用价值及作为食用色素
的价值不高的原因。用避氧热处理法对山蓝进行加
工是山蓝加工方法的一个创新 ，可大大提高山蓝有
效成分及山蓝色素的含量 ，提升山蓝的品质，使山蓝
的价值得到充分的体现。研究结果对广西特色植物
山蓝 的加工 、炮制和开发 利用有重大 意义 。
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(上接第 444页 Continue from page 444)
during the initial stage of the germination．Showing the cel group before the vascular bundle formed × 1 82；3
． The sec—
ondary leaf during the initial stage of the germination．Showing the vascular bundle of the defferentiation ×262：4
．
The
semi—amphivasal bundle in the coleoptile × 250；5．The secondary leaf with limited protein
． Showing the protein × 325：
6．The secondary leaf before the vascular bundle formed．Showing the starch grain ×200；7
． The first(white arrow)and
the second(black arrow)secondary leaf during the initial stage of the germination．Showing the starch grain ×9 1；8
．
The secondary leaf during the plumule showing．Showing the starch grain in the parenchyma cells of the main vein ×
1 38；9．The primary leaf blade during the plumule showing．Showing the starch grain in the parenchyma cells of the main
vein × 126；10．The primary leaf blade during the initial germination period of the seed
． Showing the starch grain in the
parenchyma cells of the main vein × 1 1 3；1 1．The secondary leaf during the initial germination period of the seed
． Show—
ing the starch grain in the parenchyma cells of the vascular bundle and the cells around it×1 75；12
．
The secondary Ieaf
during the initial germination period of the seed．Showing the starch grain in the parenchyma cells of the edge by the leaf
blade× 337．
Plate I 1．The cells of the secondary leaf in initial stage of the germination
． Showing the unformed organelle × 60
000；2．The cells of the secondary leaf in initial stage of the germination
． Showing the heterochromatin in the nuc1eus×
8 000；3．The cells of the secondary leaf in initial stage of the germination
． Showing the granal thylakoid × 40 000；4
．
The cells of the secondary leaf．Showing the mitochondrium(black arrow)，and the amyloplast(white arrow)×20 000：
5．The cells of the secondary leaf，showing the microboby with crystalloid × 50 000；6
． The c eIls 0f the sec0ndarv leaf，
showing the chloroplast× 25 000．
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