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三叶青水提取物对NK细胞杀伤胃癌BGC-823细胞的影响



全 文 :第一作者简介:袁雨,硕士研究生,研究方向:消化道肿瘤的基础与临
床。E-mail:779192313@ qq. com
通讯作者:朱炳喜,主任医师,副教授,研究方向:消化道肿瘤的基础与
临床。E-mail:82200496@ 163. com
doi:10. 3969 / j. issn. 1006-5709. 2016. 06. 010
三叶青水提取物对 NK 细胞杀伤胃癌 BGC-823 细胞的
影响
袁 雨1,朱炳喜1,刘军权2,周 燏2,吕小婷2,周忠海2,陈永强2,杨 阳2
1. 徐州医科大学,江苏 徐州 221002;2. 中国人民解放军第九七医院
【摘要】 目的 探讨三叶青水提取物对人 NK细胞杀伤胃癌 BGC-823 细胞的影响及机制。方法 采用干细胞生长培养基(SCGM)
体外扩增人外周血 NK细胞,不同浓度三叶青水提取物作用于 NK细胞后,采用 CCK8 法检测三叶青水提取物对 NK 细胞增殖率的
影响,流式细胞术(FCM)检测 NK细胞穿孔素(PFP)、颗粒酶 B(GraB)及 CD107a的表达,乳酸脱氢酶(LDH)释放法检测 NK细胞对
胃癌 BGC-823 细胞的杀伤活性。结果 三叶青水提取物作用人 NK细胞 48 h后,三叶青水提取物 0. 0003 ~ 78. 125 μg /ml 浓度组的
NK细胞增殖明显(P < 0. 05);三叶青水提取物 0. 305 ~ 4. 883 μg /ml浓度组人 NK细胞 PFP、GraB及 CD107a表达高于对照组(P <
0. 05) ;三叶青水提取物 0. 305 ~ 19. 531 μg /ml 浓度组人 NK细胞对胃癌 BGC-823 细胞杀伤活性较对照组增强,差异有统计学意义
(P < 0. 05)。结论 三叶青水提取物能促进 NK细胞的增殖,能增强 NK细胞对胃癌 BGC-823 细胞的杀伤活性,这可能与三叶青水
提取物上调 NK细胞 PFP、GraB及 CD107a表达有关。
【关键词】 三叶青;NK细胞;胃癌 BGC-823 细胞;杀伤活性
中图分类号:R735. 2 文献标识码:A 文章编号:1006 - 5709(2016)06 - 0633 - 05 收稿日期:2015-10-20
Effect of the water extract of Tetrastigma hemsleyani on the cytotoxic activity of NK
cells against gastric cancer cell lines BGC-823
YUAN Yu1,ZHU Bingxi1,LIU Junquan2,ZHOU Yu2,LV Xiaoting2,ZHOU Zhonghai2,CHEN Yongqiang2,
YANG Yang2
1. Xuzhou Medical University,Xuzhou 221002;2. The 97th Hospital of Chinese PLA,China
【Abstract】 Objective To explore the effect and mechanism of the water extract of Tetrastigma hemsleyani on the cy-
totoxic activity of NK cells against gastric cancer cell lines BGC-823. Methods The amplification of human NK cells
was induced by stem cell growth medium (SCGM)in vitro. NK cells with different concentrations of water extract of Tet-
rastigma hemsleyani in vitro were cultured. CCK8 assay was used to measure the growth curve of NK cells. The expres-
sions of perforin (PFP),Granzyme B (GraB)and CD107a on NK cells were detected by flow cytometry (FCM). The
cytotoxic activity of NK cells to gatric cancer BGC-823 cells was detected by lactate dehydrogenase (LDH)release. Re-
sults With the water extract of Tetrastigma hemsleyani after 48 hours,the proliferation rate of human NK cells was in-
creased significantly with the water extract of Tetrastigma hemsleyani at concentrations from 0. 0003 to 78. 125 μg /ml
(P < 0. 05) ;the expressions of GraB,PFP and CD107a of human NK cells with the water etract of Tetrastigma hemsley-
ani at concentrations from 0. 305 to 4. 883 μg /ml were significantly higher than control group (P < 0. 05) ;the cytotoxic
activity of human NK cells against BGC-823 with the water extract of Tetrastigma hemsleyani at concentrations from
0. 305 to 19. 531 μg /ml was remarkably higher than the control group (P < 0. 05). Conclusion The water extract of
Tetrastigma hemsleyani at a certain range of concentrations could promote the proliferation of NK cells and enhance the
cytotoxic activity of NK cells to BGC-823 cells. The possible mechanism may be that the water extract of Tetrastigma
hemsleyani could increase expressions of PFP,GraB and CD107a.
【Key words】 Tetrastigma hemsleyani;NK cells;Gastric cancer cell lines BGC-823;Cytotoxic activity
三叶青(Tetrastigma hemsleyani)为葡萄科崖爬藤
属植物三叶崖爬藤,主要分布于我国西南及安徽、浙
江、江西等地[1]。作用于机体后可发挥清热解毒、活
血止痛、祛风化痰、调节免疫等作用,现在临床上多采
用三叶青治疗哮喘、肺炎、肝炎、风湿、咽痛、瘰疬等疾
病,且具有很好的疗效[2]。近几年来,三叶青的抗肿
瘤作用成为研究热点,许多文献[3-4]报道三叶青提取
物在体外具有抑制肿瘤细胞增殖及诱导其凋亡的作
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用。自然杀伤细胞(natural killer cells,NK)是人体固
有免疫的主要淋巴细胞之一,无需事先致敏和免疫即
可识别肿瘤及病毒感染细胞,发挥细胞毒性无主要组
织相容性复合体(major histocompatibility complex,
MHC)限制性[5]。NK 细胞杀伤肿瘤细胞主要是通过
Fas和 FasL 相互作用后释放颗粒酶 B(Granzyme B,
GraB)和穿孔素(perforin,PFP)来实现[6]。本实验主
要研究三叶青水提取物在体外作用于人 NK 细胞后对
人 NK细胞杀伤胃癌 BGC-823 细胞的影响及其可能的
机制,为将来深入研究三叶青的抗肿瘤机制提供实验
依据。
1 材料与方法
1. 1 实验材料 三叶青块茎(浙江汉邦生物科技有
限公司);人胃癌细胞株 BGC-823(中国科学院上海细
胞研究所);二甲亚砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)
(Sigma公司);人 AB血浆(徐州市血站);淋巴细胞分
离液(中国科学院血液病研究所);RPMI 1640 培养基、
胰蛋白酶、胎牛血清(Gibco 公司);PE 标记的 CD3、
FITC标记的 CD56(美国 BD 公司);PE 标记的 GraB
(Granzyme B,GraB)、穿孔素(Perforin,PFP)(Ebio-
science 公司);乳酸脱氢酶试剂盒、APC 标记的
CD107a(美国 BD公司);CCK8 试剂(碧云天生物技术
研究所)。
1. 2 主要仪器 恒温 CO2 培养箱(德国 Heraeus 公
司);倒置显微镜(德国 Wilovert 公司);超净工作台
(苏州净化设备厂);低温高速离心机(德国 Eppendorf
公司);流式细胞检测仪(美国 BD 公司);SEAC 全自
动酶免系列分析仪(北京西亚克技术有限公司)。
1. 3 三叶青水提取物制备 由解放军第九七医院药
剂科杨阳[7]进行提取,取三叶青干燥药材 200 g,加 5
倍体积 80%乙醇水溶液浸泡 24 h 后,加热回流提取,
共 3 次,每次 40 min,合并提取液,过滤,减压回收蒸
干,得总提取物。取总提取,加水混悬,分别采用 10 倍
体积的石油醚、乙酸乙酯等进行分步萃取。将上述经
有机溶剂提取后的三叶青药材水煮后减压回收蒸干,
获得三叶青水提取物。
1. 4 NK 细胞培养及表型鉴定 取健康成年志愿者
外周静脉血 20 ml,低分子肝素钠抗凝后加入淋巴细胞
分离液,离心 2 000 r /min × 13 min(离心半径为 10
cm)。玻璃吸管吸取单个核细胞层,PBS 洗涤 2 次,将
细胞加入含有 rhIL-2 和人 AB 血浆的 SCGM 培养基
中,置于 37 ℃、5% CO2 培养箱中培养。收集培养10 d
的 NK 细胞,PBS 洗涤后将细胞浓度调整为 1 × 106 /
ml。在细胞悬液中加入 FITC-Anti-CD56 和 PE-Anti-
CD3,室温下避光孵育 15 min,PBS 洗涤并重悬细胞,
采用流式细胞术检测 NK细胞表型。
1. 5 胃癌细胞株 BGC-823 的培养 取复苏后的胃癌
BGC-823细胞加入细胞培养瓶,随后加入含 10%胎牛血
清的 RPMI 1640培养液15 ml,于 37 ℃、5% CO2 的培养
箱中培养。每天观察细胞生长情况,根据细胞生长情况
进行换液。待细胞铺满瓶底时,用 2. 5 g /L胰蛋白酶消
化细胞使其脱壁,收集细胞后离心 800 r /min ×3 min,弃
去上清,使用生理盐水反复吹打混匀细胞,计数后用于
实验。
1. 6 CCK8 法检测三叶青水提取物对人 NK 细胞增
殖的影响 取培养 10 d 的 NK 细胞,将其配制成 1 ×
105 /ml,以 180 μl /孔的剂量接种于 96 孔板。设置对照
组和实验组,对照组不加三叶青水提取物,实验组加入
三叶青水提取物(终浓度分别为 0. 0003、0. 0012、
0. 0048、0. 019、0. 076、0. 305、1. 221、4. 883、19. 531、
78. 125、312. 5、1250 μg /ml),每组设 3 个复孔,将 96 孔
板放入 37 ℃、5% CO2 培养箱中继续培养 NK 细胞
24 h、48 h、72 h,随后在每孔中加入 CCK8 20 μl,继续培
养 4 h后弃去上清。将酶标仪测定波长调为 450 nm,检
测 96孔板各孔吸光度(OD)值,根据公式计算细胞增殖
率(%),每组实验重复 3 次,取平均值。增殖率(%)=
(实验组 OD 值 - 对照组 OD 值)/对照组 OD 值
×100%。
1. 7 流式细胞术检测三叶青水提取物作用 48 h 后
NK细胞 PFP、GraB、CD107a 的表达 NK 细胞培养
10 d后,将其铺入 6孔板,3 ml /孔。设置对照组和实验
组,对照组不加三叶青水提取物,实验组加入不同浓度
三叶青水提取物(终浓度分别为 0. 076、0. 305、1. 221、
4. 883、19. 531 μg /ml),用 PBS 洗涤 3 次后将细胞数调
至1 × 106 /ml。每管加入 FITC-Anti-CD56 和 PE-Anti-
CD3各 20 μl,GraB和 PFP组均加入固定剂 100 μl及破
膜剂 100 μl,随后分别加入 anti-GraB-PE、anti-PFP-PE
各 5 μl。CD107a组不加入破膜剂,仅加入 anti-CD107a-
APC,三组均设置同型对照抗体管,孵育、洗涤后采用流
式细胞检测仪检测 NK细胞 GraB、PFP 及 CD107a 的表
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达,每组实验重复 3次,取平均值。
1. 8 LDH 释放法检测三叶青水提取物作用 48 h 后
NK细胞对胃癌 BGC-823 细胞的杀伤活性 取培养
10 d的 NK细胞铺入 6 孔板,3 ml /孔。对照组不加三
叶青水提取物,实验组加入不同浓度的三叶青水提取
物(终浓度分别为 0. 076、0. 305、1. 221、4. 883、19. 531
μg /ml),继续培养 48 h,收集 NK 细胞作为效应细胞,
胃癌 BGC-823 细胞作为靶细胞,将效应细胞和靶细胞
分别配成 2 × 106 /ml 和 2 × 105 /ml 的细胞悬液,效靶
细胞等体积混合(效靶细胞数比例为 10∶ 1)。将混合
后的效靶细胞置于 37 ℃、5% CO2 培养箱中孵育 6 h
后,离心 1 500 r /min × 10 min,取上清液。按 LDH 试
剂说明书要求操作,340 nm波长下全自动生化分析仪
测定吸光度值(A),每检测样本设 3 个复管,实验重复
3 遍。NK细胞的杀伤活性(%)=(A实验组 - A效应
细胞自然释放组)/(A 靶细胞最大释放组 - A 靶细胞
自然释放组)× 100%。
1. 9 统计学方法 采用 SPSS 13. 0 软件进行统计分
析,计量资料用 x- ± s 表示,多组间比较采用单因素方
差分析(One-way ANOVA),检验水准取 α = 0. 05,P <
0. 05 为差异有统计学意义。
2 结果
2. 1 人 NK细胞的培养及鉴定 NK细胞培养结果显
示,人 NK细胞在体外扩增培养 10 d后,可见大的集落
和散在的细胞生长,单个细胞呈椭圆形或梭形生长。
流式细胞术检测结果显示,PBMC 未培养前 NK 细胞
(CD3 - CD56 +)比例为 6. 12%,培养 10 d 后 NK 细胞
比例增加到 81. 33%(见图 1)。
图 1 培养 10 d的 NK细胞倒置显微镜照片(400 ×)
Fig 1 Inverted microscope photo of NK cells cultured
after 10 days (400 ×)
2. 2 CCK8法检测不同浓度三叶青水提取物对 NK细
胞增殖的影响 三叶青水提取物作用于 NK细胞 24 h、
48 h和72 h后,三叶青水提取物0. 0012 ~78. 125 μg /ml
浓度组的 NK细胞增殖率均较对照组升高(P < 0. 05)。
三叶青水提取物作用 24 h和 48 h 后 1 250 μg /ml 组和
72 h后 312. 5 ~ 1 250 μg /ml 组对 NK 细胞生长有抑制
作用(P < 0. 05)。相同浓度的三叶青水提取物作用于
NK细胞后(0. 076 ~78. 125 μg /ml 浓度组),48 h 组 NK
细胞增殖率与 24 h、72 h组比较,差异有统计学意义(P
<0. 05);作用 48 h 时,三叶青水提取物浓度为
1. 221 μg /ml时细胞增殖率为(41. 75 ±2. 64)%,达到最
高值(见图 2)。
注:与对照组比较,* P <0. 05;浓度相同时,与其他时间组比较,
△P <0. 05。
图 2 不同浓度三叶青水提取物对 NK细胞增殖率的影响
Fig 2 Effect of different concentrations of water extract of
Tetrastigma hemsleyani on the proliferation rate of NK cells
2. 3 三叶青水提取物对 NK 细胞 PFP、GraB、
CD107a表达的影响 三叶青水提取物作用于 NK 细
胞 48 h后,NK细胞 PFP、GraB和 CD107a的表达均有
升高,0. 305 ~ 4. 883 μg /ml 浓度组与对照组比较,差
异均有统计学意义(P < 0. 05);且当三叶青水提取物
浓度为 1. 221 μg /ml 时,GraB、PFP 和 CD107a 的表达
率均达到最大值;浓度 > 1. 221 μg /ml 时,三者的表达
率开始下降(见表 1、图 3)。
表 1 不同浓度三叶青水提取物对 NK细胞 PFP、GraB、CD107a
表达的影响(x- ± s,%)
Tab 1 Effect of different concentrations of water extract of
Tetrastigma hemsleyani on the expressions of PFP,GraB,
CD107a in NK cells (x- ± s,%)
三叶青水提
取物(μg /ml)
PFP GraB CD107a
0(对照组) 72. 89 ± 2. 08 53. 69 ± 3. 55 83. 76 ± 3. 76
0. 076 76. 16 ± 3. 12 56. 68 ± 2. 13 88. 01 ± 1. 86
0. 305 82. 58 ± 3. 84* 62. 47 ± 2. 60* 90. 45 ± 2. 63*
1. 221 90. 17 ± 2. 14* 69. 19 ± 1. 33* 93. 91 ± 2. 08*
4. 883 83. 81 ± 4. 47* 67. 44 ± 2. 04* 90. 68 ± 3. 26*
19. 531 80. 61 ± 2. 73* 60. 56 ± 3. 05* 84. 10 ± 2. 47
注:与对照组相比,* P < 0. 05。
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注: A1 ~ 3:同型对照组;B1 ~ 3:对照组;C1 ~ 3:实验组。
图 3 NK细胞 PFP、GraB、CD107a的 FCM检测结果
Fig 3 Expressions of PFP,GraB,CD107a of NK cells tested by FCM
2. 4 三叶青水提取物对 NK 细胞杀伤胃癌 BGC-823
细胞的影响 浓度为 0. 305 ~ 19. 531 μg /ml的三叶青
水提取物作用 NK细胞 48 h 后,NK 细胞对胃癌 BGC-
823 细胞的杀伤活性较对照组增强(P < 0. 05);且浓
度为 1. 221 μg /ml时,NK细胞对胃癌 BGC-823 细胞的
杀伤活性达到最大[(67. 75 ± 2. 58)%,见图 4]。
注:与对照组比较,* P < 0. 05。
图 4 三叶青水提取物对 NK细胞杀伤活性的影响
Fig 4 Effect of water extract of Tetrastigma hemsleyani on
killing activity of NK cells
3 讨论
近年来,从天然中药中寻找活性成分成为抗肿瘤
药物发展的重点之一。三叶青为我国特有珍稀植物,
研究[8-9]发现三叶青多种提取成分在体外可抑制肿瘤
细胞的生长。丁丽等[10-11]发现三叶青水提取物对胃
癌、宫颈癌及恶性黑色素瘤有较强抑制作用。然而,三
叶青水提取物对体外诱导培养的 NK 细胞的增殖作用
及其免疫学影响尚未见报道。本实验结果表明,三叶
青水提取物作用于 NK细胞 24 h、48 h和 72 h后,三叶
青水提取物浓度为 0. 0012 ~ 78. 125 μg /ml 时可促进
NK细胞的增殖,浓度为 0. 0012 ~ 1. 221 μg /ml 时,三
叶青水提取物促进 NK 细胞增殖呈上升趋势,浓度为
1. 221 μg /ml 时,NK 细胞增殖率达峰值,1. 221 ~
78. 125 μg /ml时三叶青水提取物促进 NK细胞增殖呈
下降趋势,由此说明三叶青水提取物对 NK 细胞具有
双向调节作用,在适宜的浓度下可促进 NK 细胞增殖,
提示三叶青水提取物对 NK 细胞的增殖具有一定程度
的促进作用,这可能对提高体外培养 NK 细胞的数量
用于肿瘤的免疫治疗提供了实验依据。
NK 细胞是固有免疫应答中最主要的效应细胞
群,其两大主要功能是识别与溶解肿瘤细胞和病毒感
染细胞及产生免疫调节性细胞因子[12]。NK细胞功能
低下或缺陷的患者易发感染,且肿瘤的发生率和转移
率提高[13]。彭六生等[14]研究发现胃癌患者肿瘤组织
内 NK细胞的百分率与胃癌的进展密切相关,且高于
NK细胞百分率中位数的患者总体存活时间较长。本
实验发现,0. 305 ~ 19. 531 μg /ml 的三叶青水提取物
作用于 NK细胞后能提高 NK细胞对胃癌 BGC-823 细
胞的杀伤作用,且 NK 细胞杀伤活性增高趋势与三叶
青水提取物作用于 NK 细胞后 NK 细胞增殖增长趋势
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一致,由此提示,三叶青水提取物可能通过促进 NK 细
胞的增殖进而增强对胃癌 BGC-823 细胞的抑制。
穿孔素和颗粒酶被认为是存在于细胞毒性 T 淋
巴细胞(cytotoxic T lymphocyte,CTL)和 NK 细胞中的
具有细胞毒性的物质。GraB 以酶原的形式合成加工
后储存在细胞质颗粒内,细胞质颗粒内的酸性环境可
保持 GraB处于非活性状态,从而保障细胞不被自身颗
粒酶溶解,然而当与靶细胞接触后,穿孔素可从这些细
胞中释放出来,在靶细胞膜上形成穿孔素管道,GraB
N-端的酸性二肽被切除成为活性型 GraB,通过靶细胞
膜上的多聚穿孔素通道进入靶细胞从而杀伤靶细
胞[15]。因此,穿孔素和颗粒酶被认为是可以反映 NK
细胞功能活性的可靠指标。此外,CD107a 分子随着
细胞脱颗粒到达细胞膜表面,且其表达程度与穿孔素
的分泌多少一致。因此,NK细胞表达 CD107a 分子也
可代表其具有杀伤活性[16]。本实验发现,0. 305 ~
4. 883 μg /ml浓度组三叶青水提取物作用于 NK 细胞
48 h后,与对照组相比,PFP、GraB、CD107a 的表达均
有不同程度的增加,差异有统计学意义,且在三叶青水
提取物浓度为 1. 221 μg /ml 时,PFP、GraB、CD107a 表
达均达最高。这与三叶青水提取物作用后 NK 细胞对
胃癌 BGC-823 细胞杀伤活性的峰值一致,表明三叶青
水提取物增强 NK细胞对胃癌 BGC-823 细胞的杀伤活
性,我们猜测这可能与三叶青水提取物上调 PFP、
GraB、CD107a的表达有关。
综上所述,三叶青水提取物不仅能够促进 NK 细
胞的增殖,而且可以增强其杀伤胃癌细胞的能力,我们
推测这可能与三叶青水提取物促进 NK 细胞 PFP、
GraB及 CD107a 的表达有关,可为三叶青用于胃癌的
免疫治疗提供一定的实验依据。
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(责任编辑:马 军)
·736·胃肠病学和肝病学杂志 2016 年 6 月第 25 卷第 6 期 Chin J Gastroenterol Hepatol,Jun 2016,Vol. 25,No. 6