全 文 ：doi:10． 3969 / j． issn． 1000-484X． 2013． 05． 007
①本文为广西科学研究与科技开发攻关项目(桂科攻 10124008-6，
桂科攻 0992003A-2) ，广西科技基础条件平台建设(12-97-20)
②通讯作者，E-mail:huangjianchun008@ 163． com
作者简介:汤小军(1978 年 －) ，男，硕士，讲师，主要从事免疫调节方
面研究，E-mail:tangxiaojun008@ 163． com，同时就职于广
西卫生职业技术学院，南宁 530021。
六月青皂苷对免疫抑制小鼠免疫功能的影响①
汤小军 黄建春② 梁 韬 黄仁彬 (广西医科大学药学院，南宁 530021)
中国图书分类号 R392 文献标识码 A 文章编号 1000-484X(2013)05-0486-05
［摘 要］ 目的:研究六月青皂苷(Liuyueqing Saponins，LYQS)对免疫抑制小鼠免疫功能的影响。方法:实验动物随机
分为 5 组:空白对照组、环磷酰胺(Cyclophosphamide，CTX)模型组和 LYQS高、中、低剂量组。除空白对照组外，其它各组小鼠
于给药的第 2、4、6、8、10 天腹腔注射 CTX(0． 02 g·kg － 1·d － 1)造模。空白对照组和 CTX 模型组均用生理盐水(20
ml·kg －1·d －1)灌胃;LYQS高、中、低剂量 + CTX组用 LYQS［(1、0． 5、0． 25)g·kg －1·d － 1) ］灌胃，给药 10 天后，检测小鼠血
中红细胞(RBC)、白细胞(WBC)、血小板(PLT)数量、血红蛋白(Hb)含量和 TNF-α、IFN-γ、TGF-β1、IL-2 含量;检测胸腺指数、
脾脏指数、脾淋巴细胞转化功能、腹腔巨噬细胞吞噬功能、NK细胞杀伤活性和血清 50% 溶血值(HC50) ;观察二硝基氟苯诱导
的迟发型超敏反应。结果:与 CTX模型组比较，LYQS各剂量组的胸腺指数明显提高;高剂量组的 WBC数量、耳肿胀度明显提
高;高、中剂量组的 RBC、Hb、IL-2、脾脏指数、HC50、脾淋巴细胞转化功能、巨噬细胞廓清指数和吞噬指数明显提高;高、中剂量
组的 TGF-β1明显降低。结论:LYQS能增强 CTX免疫抑制模型小鼠的特异性及非特异性免疫反应，提高其免疫功能。
［关键词］ 六月青皂苷;免疫抑制;免疫功能
The effect of Liuyueqing Saponins on regulation of immune functions in immuno-
suppressive mice model
TANG Xiao-Jun，HUANG Jian-Chun，LIANG Tao，HUANG Ren-Bin． Pharmaceutical College，Guangxi Medical
University，Nanning 530021，China
［Abstract］ Objective:To study the effect of Liuyueqing Saponins (LYQS)on regulation of immune functions in immunosup-
pressive mice model． Methods:The mice were divided into five groups randomly:normal mice group，cyclophosphamide (CTX)
group and high，medium，low-doses of LYQS groups． Except the normal group，other groups were intraperitoneal injection with CTX in
2，4，6，8，10 d． The normal mice and CTX groups were intragastric administration with NS(20 ml·kg －1·d －1)． The high，medi-
um，low-doses of LYQS + CTX groups were intragastric administration with LYQS ［(1，0． 5，0． 25)g·kg －1·d －1) ］for 10 d． The
blood cells were counted by hematology analyzer，the level of TNF-α，IFN-γ，TGF-β1 and IL-2 products in serum were measured． In-
dexs of thymus and spleen were calculated． Proliferated ability of lymphocyte，the phagocytosis ability of macrophage，50% serum he-
molysin concentration(HC50)were assayed． And the function of NK cells was detected with NK cells mediated cytotoxicity assay． The
delayed type hypersensitivity (DTH)was also observed． Results:Compare with the CTX group，indexs of thymus in the high，medi-
um，low-doses of LYQS groups were enhanced． WBC and ear swellings in the high-doses of LYQS group were enhanced． RBC，Hb，
IL-2，HC50，indexs of spleen，proliferated ability of lymphocyte and the phagocytosis ability of macrophage in the high，medium-doses
of LYQS groups were enhanced． TGF-β1 in the high，medium-doses of LYQS groups were reduced． Conclusion:LYQS can regulate
the specific and non-specific immune functions to enhance immune functions of immunosuppressive mice．
［Key words］ Liuyueqing Saponins;Immunosuppression;Immune functions
六月青系爵床科(Acanthaceae)植物肖鸡笼(顶
头马兰)Tarphochlamys affinis (Griff) Bremekhu
［Strobilanthes affinis (griff)Y． C． Tang］的干燥地
上部分，是一种广西民间草药。《本草拾遗》记载，
六月青能活血、凉血、疏肝泻湿、消肿止痛，主要用于
急慢性肝炎、黄疸等治疗［1］。前期研究发现，六月
青皂苷(Liuyueqing Saponins，LYQS)对小鼠免疫性
肝损伤具有明显的保护作用［2］，六月青萃取物石油
醚部位、氯仿部位、乙酸乙酯部位、水饱和正丁醇部
位、60% 乙醇部位能提高环磷酰胺(Cyclophospha-
mide，CTX)所致免疫抑制小鼠的免疫功能［3］。本
实验用 CTX所致免疫抑制小鼠为模型，探讨 LYQS
·684· 中国免疫学杂志 2013 年第 29 卷
对免疫抑制小鼠的免疫功能影响。
1 材料与方法
1． 1 动物 健康昆明种小鼠，SPF级，雌雄各半，体
重(20 ± 2)g，由广西医科大学实验动物中心提供，
试验动物生产许可证:SCXKG 桂 2003-0003，试验动
物使用许可证:SYKG桂 2003-0005。
1． 2 药品和试剂 LYQS 由广西医科大学药理实
验室提取，经常规化学定性试验证实为皂苷类，纯
度为 84． 7%，临用前用生理盐水配制并稀释;CTX
注射液(江苏恒瑞医药股份有限公司) ;RPMI1640
培养基(美国 Gibco 公司) ;新生小牛血清(杭州四
季青生物工程材料有限公司) ;小鼠 TNF-α、IFN-γ、
TGF-β1、IL-2 ELISA 试剂盒(晶美生物工程有限公
司) ;K562 白血病细胞(长春生物制品研究所) ;D-
Hank’s、ConA(北京北方同正生物有限公司) ;MTT
(Amresco) ;DMSO(广州市新港化工有限公司) ;印
度墨汁(Wason公司)。
1． 3 仪器 酶标仪(Thermo Labsystems 公司) ;
Olympus倒置式生物显微镜(日本奥林巴司公司) ;
水套式二氧化碳培养箱(美国 SHELLAB) ;Sigma 台
式高速冷冻离心机(德国 Sigma) ;全自动血细胞分
析仪(上海维世康医用电子有限公司) ;分光光度计
(上海精密科学仪器有限公司)。
1． 4 实验动物分组及给药 75 只小鼠随机分成 5
组，每组 15 只。除空白对照组外，其它各组小鼠于
给药的第 2、4、6、8、10 天均按 0． 02 g·kg － 1·d － 1
腹腔注射 CTX造模。空白对照组和 CTX 模型组均
按 20 ml·kg －1·d －1生理盐水灌胃;LYQS 高剂量
(LYQSH，1 g·kg
－1·d －1)+ CTX 组;LYQS 中剂量
(LYQSM，0． 5 g·kg
－ 1·d － 1)+ CTX组;LYQS低剂
量(LYQSL，0． 25 g·kg
－ 1·d － 1)+ CTX 组。连续
灌胃给药 10 天，每天 1 次。
1． 5 对免疫抑制小鼠红细胞、白细胞、血小板数量
和血红蛋白含量的影响 第 11 天小鼠摘除眼球采
集全血 40 μl，全自动血细胞分析仪检测小鼠血中红
细胞(RBC)、白细胞(WBC)、血小板(PLT)数量和
血红蛋白(Hb)含量。
1． 6 对免疫抑制小鼠巨噬细胞吞噬功能和胸腺指
数、脾脏指数的影响 分组及给药同上，于末次给药
后 0． 5小时，于各鼠尾静脉注射经稀释的印度墨汁 5
μl /g，于 1分钟(t1)和 5分钟(t5)后，分别从眼眶静脉
取血20 μl，加到1 g /L Na2CO3溶液2 ml中摇匀，用分
光光度计在 680 nm 处测定 t1和 t5的吸光度值(A1，
A5) ，计算廓清指数 K。之后，将小鼠处死，取肝脏及
脾脏称质量，计算吞噬指数 α。廓清指数 K = (logA1 －
logA5)/(t5 － t1)= log(A1 /A5)/4，吞噬指数 α =体质量 /肝脾重 × K1/3。
取胸腺和脾脏，吸干表面血液，称重，计算胸腺指数和
脾指数，胸腺(脾脏)指数 = 胸腺(脾脏)重量(mg)/体重(g)。
1． 7 对免疫抑制小鼠 NK 细胞杀伤活性的影响［4］
分组及给药同上，取脾制备小鼠脾细胞悬液，调整
细胞浓度为 2 × 107ml － 1作为效应细胞。传代培养的
K562 细胞(细胞浓度为 1 × 106 ml － 1)作为靶细胞。
取靶细胞悬液 100 ml 加入 96 孔板(每组 3 个平行
孔) ，各孔再加入等体积的效应细胞。另设效应细
胞和靶细胞对照组。于 37℃ 5% CO2培养箱中杀伤
4 小时，加 MTT 试剂(5 mg /ml)20μl /孔，孵育 4 小
时，快速倒去培养液，加入 DMSO 100μl /孔，混匀，酶
标仪 570 nm测定 A值。NK细胞杀伤活性 = ［1 － (实验组
A 值 －效应细胞 A值)/ 靶细胞 A值］ × 100%。
1． 8 对免疫抑制小鼠迟发型超敏反应的作用 分
组及给药同上，第 1 天将鼠腹部去毛，范围为3 cm ×
3 cm，将 10 g /L二硝基氟苯(DNFB)均匀涂抹其上。
末次给药后 0． 5 小时，将 10 g /L DNFB 均匀涂抹于
小鼠右耳，攻击后 24 小时，脱颈椎处死小鼠，剪下左
右耳壳，用打孔器取下直径 8 mm 的耳片，称质量，
以左右耳片重量之差作为肿胀度。
1． 9 对免疫抑制小鼠脾淋巴细胞转化功能的影
响［5］ 分组及给药同上，处死小鼠后浸泡 75%乙醇
中 5 秒，无菌取出脾脏，用 D-Hank’s 洗 3 次，剪碎，
经 200 目不锈钢筛网过滤至离心管中，离心弃上清，
加 2 ml D-Hank’s，用小鼠淋巴细胞分离液分离出淋
巴层细胞，调整细胞浓度为 5 × 106 ml － 1，加入 96 孔
中，100 μl 细胞悬液 /孔，6 孔 /鼠，其中对照孔 3 孔:
加 RPMI1640 培养液 100 μl /孔;Con A 刺激孔 3 孔:
加 Con A(10 mg /L)溶液 100 μl /孔。于 37℃ 5%
CO2培养箱中孵育 68 小时后，加 MTT(5 mg /ml)溶
液 10 μl /孔，孵育 4 小时后，1 000 r /min 离心 10 分
钟，小心吸去上清，加 DMSO 150 μl /孔，振荡 10 分
钟，酶标仪 570 nm 测定 A 值，计算刺激指数(SI)。
SI = Con A刺激孔 A值 / 对照孔 A值。
1． 10 对免疫抑制小鼠血清溶血素的影响 小鼠分
组同上，除 CTX 外均灌胃给药，1 次 /天，连续 4 天。
给药第 1 日腹腔注射 20% SRBC 0． 2 ml /只进行免
疫，除正常对照组外各组在实验开始时尾静脉注射
CTX，连续 3 天。免疫后第 4 日摘眼球取血，分离血
清，将血清稀释 500 倍后取稀释血清 1 ml，分别加
入 5% SRBC 0． 5 ml，10%补体 1 ml，置于 37℃恒温
水浴中保温 30 分钟，移至冰浴中终止反应，离心取
上清液 1 ml加都氏试剂 3 ml，摇匀放置 10 分钟，酶
·784·汤小军等 六月青皂苷对免疫抑制小鼠免疫功能的影响 第 5 期
标仪 540 nm 测定 A 值，同时取 5% SRBC 0． 25 ml
加都氏试剂至 4 ml，540 nm测定 A值。血清半数溶血值
(HC50)=样品 A值 / SRBC半数溶血值 ×稀释倍数。
1． 11 对免疫抑制小鼠 TNF-α、IFN-γ、TGF-β1、IL-2
的影响 分组及给药同上，给药 10 天后，第 11 天眼
球取血，分离血清，参照 ELISA 试剂盒说明书操作，
酶标仪 450 nm 测定各孔 A 值。结果处理:标准品
和标本的 A值减去空白孔 A值。以 A值为纵坐标，
以标准品浓度为横坐标，绘制散点图，将各标准品所
得散点进行线性拟合，求出线性方程。将各样品 A
值代入方程求出对应的浓度。
1． 12 数据分析 采用 SPSS13． 0 软件进行分析，实
验数据的结果以 x ± s表示，多组均数比较采用方差
分析，组间差异的显著性检验采用 LSD法。
2 结果
2． 1 对免疫抑制小鼠 RBC、WBC、PLT 数量和 Hb
含量的影响 从表 1 可以看出 CTX 模型组 WBC、
RBC和 Hb显著低于正常对照组(P ＜ 0． 05) ，而高
剂量组能明显提高 CTX 降低的 WBC 水平(P ＜
0. 05) ，高、中剂量组能明显提高 CTX 降低的 RBC
和 Hb水平(P ＜ 0． 05) ，呈剂量依赖性，而各组间的
PLT无明显差异。
2． 2 对免疫抑制小鼠巨噬细胞吞噬功能、胸腺指数
和脾脏指数的影响 从表 2 可以看出 CTX 模型组
巨噬细胞廓清指数 K、吞噬指数 α、胸腺指数和脾脏
指数显著低于正常对照组(P ＜ 0． 05 或 P ＜ 0． 01) ，
而各剂量组能明显提高 CTX 降低的胸腺指数(P ＜
0. 05) ，高、中剂量组能明显提高 CTX降低的巨噬细
胞廓清指数 K、吞噬指数 α和脾脏指数(P ＜ 0． 05 或
P ＜ 0． 01) ，呈剂量依赖性。
2． 3 对免疫抑制小鼠迟发型超敏反应、血清溶血
素、NK细胞杀伤活性和脾淋巴细胞转化功能的影
响 从表 3 可以看出 CTX 模型组耳肿胀度、HC50、
NK细胞活性和脾淋巴细胞转化功能显著低于正常
对照组(P ＜ 0． 05 或 P ＜ 0． 01) ，而高剂量组能明显
提高 CTX 降低的耳肿胀度(P ＜ 0． 01) ，高、中剂量
组能明显提高 CTX降低的 HC50和脾淋巴细胞转化
功能(P ＜ 0． 05) ，呈剂量依赖性，各给药组 NK 细胞
活性较 CTX模型组有所提高但均无统计学意义。
2． 4 对免疫抑制小鼠 TNF-α、IFN-γ、TGF-β1和 IL-2
的影响 从表 4 可以看出 CTX 模型组 TNF-α 和
IL-2 显著低于正常对照组(P ＜ 0． 05) ，CTX 模型组
TGF-β1显著高于正常对照组(P ＜ 0． 05) ，而高剂量
组能明显提高 CTX降低的 IL-2(P ＜ 0． 05) ，高、中剂
量组能明显降低 CTX提高的 TGF-β1(P ＜ 0． 05) ，呈
剂量依赖性，各给药组 TNF-α和 IFN-γ较 CTX模型
组均无统计学意义。
表 1 LYQS对免疫抑制小鼠 RBC、WBC、PLT和 Hb的影响(x ± s，n =15)
Tab． 1 Effect of LYQS on RBC，WBC，PLT and Hb in immunosuppressed mice(x ± s，n =15)
Groups Dose (g /kg) WBC(109 L －1) RBC(1012 L －1) Hb(g /L) PLT(109 L －1)
Normal — 7． 01 ± 1． 682) 10． 09 ± 2． 052) 103． 14 ± 25． 222) 296． 91 ± 64． 37
CTX 0． 02 5． 51 ± 2． 061) 8． 15 ± 1． 861) 80． 81 ± 20． 081) 259． 75 ± 50． 32
LYQSH + CTX 1 6． 95 ± 1． 742) 9． 82 ± 1． 972) 99． 31 ± 25． 782) 280． 87 ± 73． 73
LYQSM + CTX 0． 5 6． 04 ± 1． 53 10． 01 ± 2． 112) 97． 18 ± 22． 592) 266． 52 ± 67． 45
LYQSL + CTX 0． 25 6． 79 ± 1． 83 9． 01 ± 1． 88 90． 84 ± 20． 29 271． 64 ± 69． 77
Note:Compare with normal group，1)P ＜ 0． 05;Compare with CTX group，2)P ＜ 0． 05．
表 2 LYQS对免疫抑制小鼠巨噬细胞吞噬功能、胸腺指数和脾脏指数的影响(x ± s，n =15)
Tab． 2 Effect of LYQS on the phagocytosis ability of macrophage and immune organs in immunosuppressed mice(x ± s，
n =15)
Groups Dose(g /kg) K α Indexes of thymus (mg /g) Indexes of spleen (mg /g)
Normal — 0． 0313 ± 0． 01164) 4． 89 ± 0． 934) 3． 43 ± 0． 634) 6． 18 ± 1． 403)
CTX 0． 02 0． 0209 ± 0． 00842) 3． 88 ± 0． 732) 2． 59 ± 0． 692) 4． 84 ± 1． 271)
LYQSH + CTX 1 0． 0339 ± 0． 01354) 4． 71 ± 0． 814) 3． 19 ± 0． 873) 6． 01 ± 1． 433)
LYQSM + CTX 0． 5 0． 0298 ± 0． 00953) 4． 58 ± 0． 743) 3． 22 ± 0． 793) 6． 04 ± 1． 513)
LYQSL + CTX 0． 25 0． 0276 ± 0． 0103 4． 36 ± 0． 59 3． 15 ± 0． 743) 5． 66 ± 1． 23
Note:Compare with normal group，1)P ＜ 0． 05，2)P ＜ 0． 01;Compare with CTX group，3)P ＜ 0． 05，4)P ＜ 0． 01．
·884· 中国免疫学杂志 2013 年第 29 卷
表 3 LYQS对小鼠迟发型超敏反应、HC50、NK细胞活性和脾淋巴细胞转化功能的影响(x ± s，n =15)
Tab． 3 Effect of LYQS on Ear swellings，HC50，NK activity，SI in immunosuppressed mice(x ± s，n =15)
Groups Dose (g / kg) Ear swellings (mg) HC50 NK activity (%) SI
Normal — 2． 5 ± 0． 63) 179． 5 ± 36． 53) 57． 8 ± 9． 83) 2． 33 ± 0． 674)
CTX 0． 02 2． 0 ± 0． 41) 153． 6 ± 31． 71) 48． 6 ± 8． 61) 1． 59 ± 0． 542)
LYQSH + CTX 1 2． 5 ± 0． 44) 188． 5 ± 41． 13) 55． 6 ± 10． 1 2． 24 ± 0． 903)
LYQSM + CTX 0． 5 2． 3 ± 0． 5 180． 7 ± 37． 43) 55． 4 ± 9． 8 2． 18 ± 0． 823)
LYQSL + CTX 0． 25 2． 2 ± 0． 5 165． 3 ± 34． 7 54． 8 ± 9． 2 1． 90 ± 0． 69
Note:Compare with normal group，1)P ＜ 0． 05，2)P ＜ 0． 01;Compare with CTX group，3)P ＜ 0． 05，4)P ＜ 0． 01．
表 4 LYQS对免疫抑制小鼠血清 TNF-α、IFN-γ、TGF-β1和 IL-2 含量的影响(x ± s，n =15)
Tab． 4 Effect of LYQS on serum TNF-α，IFN-γ，TGF-β1，IL-2 productions in immunosuppressed mice(x ± s，n =15)
Groups Dose (g /kg) TNF-α(pg /ml) IFN-γ(pg /ml) TGF-β1(ng /ml) IL-2(pg /ml)
Normal — 55． 96 ± 8． 722) 41． 3 ± 10． 1 1． 62 ± 0． 222) 163． 87 ± 47． 552)
CTX 0． 02 48． 41 ± 9． 841) 34． 7 ± 9． 2 1． 87 ± 0． 311) 118． 66 ± 43． 851)
LYQSH + CTX 1 51． 31 ± 8． 04 35． 1 ± 8． 6 1． 66 ± 0． 242) 157． 45 ± 52． 962)
LYQSM + CTX 0． 5 51． 40 ± 9． 61 33． 4 ± 8． 2 1． 65 ± 0． 212) 150． 10 ± 51． 65
LYQSL + CTX 0． 25 49． 87 ± 7． 72 34． 1 ± 8． 3 1． 77 ± 0． 23 141． 04 ± 30． 09
Note:Compare with normal group，1)P ＜ 0． 05;Compare with CTX group，2)P ＜ 0． 05．
3 讨论
中药提取物具有双向调节作用，能够使机体异
常的免疫状态恢复正常，而对正常的免疫功能无明
显影响。皂苷由皂苷元和糖、糖醛酸或其他有机酸
所组成，通过作用于机体的免疫器官、免疫分子和
T、B 淋巴细胞等发挥免疫调节作用，具有增强机体
的免疫功能而发挥抗病毒、抗肿瘤等功效［6］。环磷
酰胺所致免疫低下小鼠是研究药物免疫调节作用较
为理想的动物模型［7］。目前 LYQS对免疫功能的影
响尚未见报道，本实验用 CTX制备免疫功能低下小
鼠模型，观察 LYQS 对免疫功能低下模型小鼠的
影响。
胸腺和脾脏均为免疫器官，是淋巴细胞分化、成
熟和产生免疫应答的场所，胸腺系数和脾脏系数是
衡量机体免疫功能的重要指标［8］。在免疫功能低
下时胸腺、脾脏萎缩，体积变小。本实验结果显示各
剂量 LYQS能明显提高 CTX 降低的胸腺指数，高、
中剂量能明显提高 CTX 降低的脾脏指数，提示高、
中剂量 LYQS 对 CTX 抑制的免疫器官有一定的保
护和促进恢复正常的作用。
脾淋巴细胞体外转化代表着机体的细胞免疫功
能，因此测定小鼠淋巴细胞体外转化功能是研究细
胞免疫功能的重要手段［8］。迟发性变态反应是 T
细胞介导的细胞免疫应答。本研究显示高、中剂量
LYQS能提高免疫低下小鼠脾淋巴细胞转化率，高
剂量 LYQS 能增强免疫低下小鼠的迟发型超敏反
应，提示高剂量 LYQS 能提高免疫低下小鼠的细胞
免疫功能。高、中剂量 LYQS 能显著增加血清溶血
素抗体生成，提示高、中剂量 LYQS 可提高免疫低下
小鼠的体液免疫功能。巨噬细胞具有吞噬细胞、诱
发特异性免疫应答、参与免疫调节等多种作用，其吞
噬指数是反映机体非特异性免疫功能的指标［9］。
本研究显示高、中剂量 LYQS 能明显提高免疫低下
小鼠廓清指数 K值及吞噬指数 α 值，使其恢复至正
常水平，提示高、中剂量 LYQS可活化巨噬细胞从而
增强其吞噬能力，对免疫低下小鼠的非特异性免疫
功能有一定的恢复作用。
RBC具有识别、粘附、杀伤抗原，清除免疫复合
物及参与机体免疫调控等作用，是机体免疫系统的
重要组成部分。实验结果证明，高剂量 LYQS 能明
显提高 CTX降低的 WBC 水平，高、中剂量 LYQS 能
明显提高 CTX降低的 RBC和 Hb水平，提示高剂量
LYQS能促进免疫细胞生成的作用。
IL-2 作用于免疫细胞和细胞因子，能调节 B 淋
巴细胞、单核巨噬细胞、NK 细胞的功能，促进抗体
和细胞因子产生［10］。TGF-β1能抑制所有淋巴细胞
的增殖及功能，并能抑制巨噬细胞激活，TGF-β1 可
能是免疫系统关闭的信号［11］。本实验结果显示高
(下转第 494 页)
·984·汤小军等 六月青皂苷对免疫抑制小鼠免疫功能的影响 第 5 期
用可使其逐渐接近于正常人 CD4 + CD25 + T 细胞水
平但却达不到正常人的水平。通过实验我们认为由
于 CD4 + CD25 +调节性 T 细胞(Treg)的下调使得对
自身反应性 T 细胞的控制出现异常而出现机体免
疫系统功能异常而导致自身免疫性疾病的发生，骨
髓MSCs对 ITP患者 T淋巴细胞 CD4 + CD25 + T细胞
的显著上调作用提示:MSCs可能是通过诱导并增强
CD4 + CD25 +调节性 T 细胞(Treg)的免疫调控作用
而发挥免疫调节作用的。
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［收稿 2012-08-27 修回 2013-01-18］
(编辑 张晓舟)
(上接第 489 页)
剂量 LYQS能明显增高免疫抑制小鼠血清 IL-2 含
量，高、中剂量 LYQS 明显降低 CTX提高的 TGF-β1，
说明高剂量 LYQS在一定程度上可使 CTX抑制细胞
因子的合成发生逆转，增强机体的免疫功能。
综上所述，LYQS 对 CTX 免疫抑制模型小鼠的
免疫功能影响呈剂量依赖性，其中高剂量(1 g·
kg －1·d －1)LYQS可作用于免疫系统的多个环节，对
免疫低下小鼠的非特异性免疫、细胞免疫和体液免
疫均有一定增强作用，逆转因 CTX 而造成的免疫低
下状态。
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［收稿 2012-11-10 修回 2013-01-05］
(编辑 倪 鹏)
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·494· 中国免疫学杂志 2013 年第 29 卷