全 文 :上海交通大学学报 医学版 | 2015 年 第 35 卷 第 5 期
[基金项目]国家自然科学基金(81001426) ;上海市教委基金(12YZ038) ;教育部归国学者基金(National Natural Science Foundation of China,
81001426;Shanghai Municipal Education Commission Foundation,12YZ038;Foundation of the Ministry of Education of China for Returned Scholars)。
[作者简介]江文青(1990—) ,女,硕士生;电子信箱:qwjjwq@ 126. com。
[通信作者]张永芳,电子信箱:zhangyongfang1@ yahoo. com;胡雅儿,电子信箱:yaerhu@ shsmu. edu. cn。
论 著
基础研究
异菝葜皂苷元对 H2 O2氧化损伤 SH-SY5Y细胞的
保护作用及其分子机制
江文青, 李加梅, 王韫智, 张 瑞, 胡雅儿, 张永芳
上海交通大学 医学院细胞调控研究室,上海 200025
[摘要] 目的 观察异菝葜皂苷元(SMI)对氧化应激损伤人神经母细胞瘤株(SH-SY5Y)细胞的保护作用,并
初步探讨其分子机制。方法 将 SH-SY5Y细胞用不同浓度(0. 01、0. 1、1 μmol /L)SMI或等体积 DMSO预处理
24 h,然后加入 600 μmol /L 过氧化氢(H2O2)处理。显微镜下观察 SH-SY5Y细胞形态学变化,噻唑蓝(MTT)
法检测细胞存活率,流式细胞仪检测胞内活性氧(ROS)水平,Western blotting 检测 p-Akt /Akt 和 HSP70 的表
达,并检测 PI3K抑制剂 LY294002 对 HSP70 表达的影响。结果 SMI 预处理浓度依赖地改善 H2O2 损伤
SH-SY5Y细胞的形态,提高损伤细胞存活率,其中 0. 1、1 μmol /L SMI预处理细胞存活率显著升高(P < 0. 05,
P < 0. 001)。1 μmol /L SMI显著抑制 H2O2 诱导的 ROS升高(P < 0. 05)。H2O2 诱导 p-Akt /Akt 和 HSP70 表
达,但 SMI 预处理进一步提高 p-Akt /Akt 和 HSP70 表达水平(P < 0. 01,P < 0. 05) ,且 PI3K 抑制剂能阻断
HSP70 表达的升高(P < 0. 001)。结论 SMI 对 H2O2诱导的氧化应激损伤 SH-SY5Y 细胞具有明显的保护作
用,其作用机制可能与降低胞内 ROS水平及高度激活 PI3K /Akt /HSP70 信号通路有关。
[关键词]异菝葜皂苷元;氧化应激;Akt;HSP70;活性氧
[DOI] 11. 3969 / j. issn. 1674-8115. 2015. 05. 002 [中图分类号] R966 [文献标志码] A
Protective effect of smilagenin on H2O2-induced oxidative damage of
SH-SY5Y cells and relevant molecular mechanisms
JIANG Wen-qing, LI Jia-mei, WANG Yun-zhi, ZHANG Rui, HU Ya-er, ZHANG Yong-fang
Research Laboratory of Cell Regulation, Shanghai Jiao Tong University School of Medicine, Shanghai 200025, China
[Abstract] Objective T o observe the protective effect of smilagenin ( SM I) on oxidative stress damage of
human neuroblastoma cells ( SH-SY5Y ) and preliminarily investigate the possible molecular mechanisms.
Methods SH-SY5Y cells were pretreated with different concentrations ( 0. 01, 0. 1, and 1 μmol /L) of SM I or an
equal volume of DMSO for 24 h and then added H2O 2 of 600 μmol /L. M orphological changes of SH-SY5Y cells
were observed under the inverted microscope. Cell viability was detected by the MTT method. Reactive oxygen
species ( ROS) was detected by the flow cytometer. T he expressions of p-Akt /Akt and HSP70 and the effect of
PI3K inhibitor LY294002 on the expression of HSP70 were detected by the W estern blotting. Results SM I
pretreatment improved the morphology and cell viability of SH-SY5Y cells damaged by H2O 2 in a dose
dependent manner. T he cell viability significantly increased after being treated by SM I of 0. 1 and 1 μmol /L ( P <
0. 05, P < 0. 001 ) . Pretreatment by SM I of 1 μmol /L significantly inhibited the increase of ROS induced by
H2O 2 ( P < 0. 05 ) . H2O 2 induced the expression of p-Akt /Akt and HSP70 and SM I pretreatment further
increased expressions of p-Akt /Akt and HSP70 ( P < 0. 01,P < 0. 05) . PI3K inhibitor could block the increase of
HSP70 expression ( P < 0. 001 ) . Conclusion SM I can significantly protect SH-SY5Y cells against H2O 2-
induced oxidative stress damage, which may be relevant to down-regulating the intracellular ROS level and
highly activating the PI3K /Akt /HSP70 signaling pathway.
[Key words] smilagenin; oxidative stress; Akt; HSP70; reactive oxygen species
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JOURNAL OF SHANGHAI JIAO TONG UNIVERSITY MEDICAL SCIENCE | Vol. 35 No. 5 May 2015
江文青,等. 异菝葜皂苷元对 H2O2氧化损伤 SH-SY5Y细胞的保护作用及其分子机制
氧化应激主要由过量产生的活性氧(reactive
oxygen species,ROS)引起。一直以来,氧化应激都被
认为与神经退行性疾病[如阿尔茨海默病(Alzheimers
disease,AD)、帕金森病(Parkinsons disease,PD)等]
的发生和发展密切相关[1,2]。以往研究表明,氧化应
激可引起蛋白、脂质及 DNA 氧化修饰,继而引发线
粒体功能障碍,导致细胞损伤[3]。此外,中枢神经系
统由于其相对较低水平的细胞抗氧化活性、高代谢
率及高含量多不饱和脂肪酸,对于氧化应激更为敏
感[4]。因此,氧化应激被认为是神经退行性疾病的
主要风险因素,而寻找无毒的抗氧化药物成为治疗
这类疾病的新策略[5]。
异菝葜皂苷元(smilagenin,SMI)是来源于知母
的脂溶性小分子甾体皂苷元(图 1)。前期研究证明
SMI能显著改善老年鼠的记忆缺失[6],且对于 AD 及
PD模型有显著的保护作用[7 - 9],但是关于 SMI 是否
具有针对氧化应激损伤的神经保护潜能还未可知。
因此,本研究通过过氧化氢(hydrogen peroxide,H2O2)诱
导 SH-SY5Y细胞氧化损伤模型研究 SMI的抗氧化损
伤神经保护作用,并初步探讨其可能的分子机制。
图 1 SMI的化学结构
Fig 1 Chemical structure of SMI
1 材料与方法
1. 1 试剂
SMI(纯度 > 98%)购自英国 Phytopharm Plc 公
司;DMEM培养基和胎牛血清购自英国 Gibco 公司;
MTT和多聚赖氨酸购自美国 Sigma 公司;ROS 试剂
盒、RIPA裂解液、BCA 蛋白浓度测定试剂盒、超敏
ECL化学发光试剂盒及 LY294002 购自广州碧云天
生物技术研究所;p-Akt(Ser473)、Akt 抗体购自美国
Cell Signaling 公司;HSP70 抗体购自美国 Santa Cruz
公司;β-actin抗体购自北京中杉生物技术有限公司。
1. 2 细胞培养与处理
SH-SY5Y 神经母细胞瘤细胞置于 5% CO2、
37 ℃的培养箱,用含 10%胎牛血清及 2% 青霉素和
链霉素的 DMEM培养基培养。对数期细胞接种于多
聚赖氨酸包被后的多孔板 12 h 后,换含不同终浓度
SMI (0. 01、0. 1、1 μmol /L)或同体积 DMSO 的无血
清 DMEM 培养基孵育 24 h,然后加入终浓度为 600
μmol /L 的 H2O2 处理。PI3K 抑制剂 LY294002(终浓
度 25 μmol /L)在加入 H2O2 前 30 min 加入。细胞存
活率、ROS及蛋白表达水平的检测在 H2O2 处理对应
时间后进行。
1. 3 细胞形态观察及细胞活力测定
SH-SY5Y细胞以 8 × 103 个 /mL,100 μL 每孔接
种于 96孔板,H2O2 处理 24 h。相差显微镜(DXM1200,
尼康)下观察细胞生长情况及形态变化。细胞的存
活率用 MTT 法检测,即细胞经对应处理后每孔加入
MTT 至终浓度 0. 5 mg /mL,培养箱中 37 ℃孵育 4 h,
弃去上清,每孔加入 150 μL DMSO,酶标仪振荡溶解
后于 492 nm 波长处测定光密度值[D(492 nm) ]。
1. 4 细胞内 ROS水平检测
胞内 ROS 水平测定参照试剂盒说明书操作。
SH-SY5Y以 2 × 105 个 /mL、1. 5 mL /孔接种于 6 孔板
中,H2O2 处理 6 h 后,胰酶消化并离心收集细胞,加
入溶有 2. 5 μmol /L DCFH-DA的无血清培养基 37 ℃
避光孵育 30 min,PBS 漂洗 2 次后加入 500 μL PBS
重悬,上流式细胞仪(Becton Dickinson,美国)检测荧光
值,激发波长 488 nm,发射波长 530 nm。每个样品至少
收集 5 000个细胞,ROS水平以平均荧光强度表示。
1. 5 Western blotting检测
细胞接种于 6 孔板,分组处理后,预冷 PBS 洗
1 遍,每孔加入 120 μL RIPA裂解液裂解。细胞裂解
物于 4 ℃、12 000 × g 离心 5 min,收集上清,BCA 试
剂盒测定总蛋白浓度。选用 8% ~10% SDS-PAGE进
行电泳,每孔蛋白上样量为 40 μg。电泳结束后湿法
转移蛋白至 PVDF膜(Millipore,美国)上,5%脱脂奶
粉(TBST配)室温封闭 1 h 后,加入一抗(anti-p-Akt、
anti-Akt 及 anti-β-actin,1 ∶ 1 000 稀释;anti-HSP70,
1∶ 600稀释)4 ℃孵育过夜,TBST漂洗 3 次,室温孵育
相应辣根过氧化物酶标记的 IgG(1∶ 5 000 稀释)2 h。
目的蛋白条带用 ECL 通过双色红外成像系统(LI-
COR,美国)检测。
1. 6 统计学方法
采用 GraphPad Prism 5 软件进行统计学分析,数
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上海交通大学学报 医学版 | 2015 年 第 35 卷 第 5 期
江文青,等. 异菝葜皂苷元对 H2O2氧化损伤 SH-SY5Y细胞的保护作用及其分子机制
据以 珋x ± s表示。采用 Students t 检验进行两组间比
较,多组比较用 one-way ANOVA结合 Dunnetts检验,
P < 0. 05 表示差异有统计学意义。
2 结 果
2. 1 SMI 对 H2O2 诱导的氧化损伤 SH-SY5Y 细
胞的保护作用
如图 2A所示,与正常细胞相比,H2O2损伤细胞
出现细胞皱缩、空泡变性及数量减少的现象,然而,
SMI预处理浓度梯度依赖地减少了以上现象的发生。
MTT结果与形态学观察结果一致,SMI 预处理剂量
依赖地抑制 H2O2 诱导的细胞损伤,促进细胞存活,
其中 0. 1 和 1 μmol /L SMI预处理细胞存活率显著升
高(P < 0. 05,P < 0. 001) (图 2B)。同时,与正常细
胞相比,SMI (1 μmol /L)单独处理细胞对于细胞形
态及存活率无明显影响。1 μmol /L SMI 保护作用最
明显,因此选用这个浓度进行后续实验。
2. 2 SMI对 H2O2 诱导的 SH-SY5Y细胞内 ROS
蓄积的抑制作用
ROS检测结果显示:相对于正常细胞,H2O2 组
最大发射光谱右移(图 3A) ,荧光强度明显增加;而
经 SMI预处理后,荧光强度明显降低(P < 0. 05) ,几
乎恢复到正常水平(图 3B)。相对于正常细胞,SMI
单独作用并不影响胞内 ROS水平。
注:A. SH-SY5Y细胞经对应处理后的形态学变化[a. 正常细胞;b. H2O2(600 μmol /L)损伤;c. SMI (0. 01 μmol /L)+ H2O2(600 μmol /L) ;
d. SMI (0. 1 μmol /L)+ H2O2(600 μmol /L) ;e. SMI (1 μmol /L)+ H2O2(600 μmol /L) ;f. SMI (1 μmol /L) ];B. MTT 检测细胞存活率。①P <
0. 001 与正常细胞比较;②P < 0. 05,③P < 0. 001 与 H2O2 损伤细胞比较。
图 2 SMI对 H2O2 诱导 SH-SY5Y细胞毒性的作用(n = 5)
Fig 2 Effects of SMI on H2O2-induced cytotoxicity towards SH-SY5Y cells (n = 5)
注:A.流式细胞仪检测胞内 ROS水平;B.胞内 ROS水平比较。①P < 0. 01 与正常细胞比较;②P < 0. 05 与 H2O2 损伤细胞比较。
图 3 SMI对 H2O2 诱导 SH-SY5Y细胞内 ROS累积的影响(n = 5)
Fig 3 Effects of SMI on the intracellular accumulation of ROS induced by H2O2 in SH-SY5Y cells (n = 5)
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JOURNAL OF SHANGHAI JIAO TONG UNIVERSITY MEDICAL SCIENCE | Vol. 35 No. 5 May 2015
江文青,等. 异菝葜皂苷元对 H2O2氧化损伤 SH-SY5Y细胞的保护作用及其分子机制
2. 3 SMI对 H2O2 损伤 SH-SY5Y 细胞内的 Akt
磷酸化及 HSP70 表达的促进作用
Western blotting 分析结果显示:SH-SY5Y暴露于
H2O2 后,Akt 磷酸化水平较正常细胞明显提高(P <
0. 001) ,而经过 SMI预处理后,Akt信号通路进一步激
活,p-Akt /Akt的比率较 H2O2 损伤细胞显著升高(P <
0. 01) (图 4A)。如图 4B所示,与正常细胞相比,H2O2
处理促进细胞内 HSP70 的表达(P < 0. 01) ;但经过
SMI预处理,HSP70表达进一步升高(P <0. 05)。
2. 4 LY294002对 SMI预处理H2O2 损伤 SH-SY5Y
细胞中HSP70表达的影响
使用 PI3K 抑制剂 LY294002 阻断 p-Akt 的表
达,观察在本实验条件下,Akt 磷酸化是否参与调控
HSP70 的表达。如图 5 所示,25 μmol /L LY294002
阻断了 p-Akt 的表达 (P < 0. 001) ,且预孵育
LY294002 后,SMI 预处理细胞 HSP70 表达水平下降
64. 61%(P < 0. 001) ,接近正常细胞。此外,单独孵
育 LY294002 并不影响 HSP70 表达。
注:A. Western blotting检测对应处理后 SH-SY5Y细胞内 p-Akt和 Akt的表达;B. SH-SY5Y细胞内 HSP70 表达的比较。①P < 0. 001,③P < 0. 01 与
正常细胞比较;②P < 0. 01,④P < 0. 05 与 H2O2 损伤细胞比较。
图 4 SMI对 H2O2 损伤 SH-SY5Y细胞内 Akt磷酸化和 HSP70 表达水平的影响(n = 3)
Fig 4 Effects of SMI on Akt phosphorylation and HSP70 expression in SH-SY5Y cells impaired by H2O2(n = 3)
注:A. Western blotting检测 LY294002 对 p-Akt和 Akt表达水平的影响;B. SH-SY5Y细胞内 HSP70 表达水平的比较。①P < 0. 001 与正常细胞比
较;②P < 0. 001 与 SMI + H2O2 细胞比较。
图 5 PI3K /Akt 通路参与 SMI上调 H2O2 损伤 SH-SY5Y细胞内的 HSP70 表达(n = 3)
Fig 5 Involvement of PI3K /Akt pathway in the up-regulation of HSP70 expression by SMI in SH-SY5Y cells impaired by H2O2(n = 3)
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上海交通大学学报 医学版 | 2015 年 第 35 卷 第 5 期
江文青,等. 异菝葜皂苷元对 H2O2氧化损伤 SH-SY5Y细胞的保护作用及其分子机制
3 讨 论
ROS介导的氧化应激损伤被认为与各种脑部疾
病的发生和发展有关,如各种神经退行性疾病和老
化等[10]。因此,具有清除胞内过量 ROS 或能抑制胞
内过多 ROS产生的药物可能是治疗氧化应激损伤相
关脑部疾病的潜力药物。H2O2 是 ROS 的一种主要
形式,易于穿过细胞膜并引起细胞氧化应激,被广泛
应用于构建体外模型来研究氧化应激机制和评估新
药物疗法的神经保护潜能[11]。SH-SY5Y 细胞由于
具有类似于神经元的细胞形态、生理及生化功能,经
常用于神经细胞损伤的研究[12]。因此,本研究使用
H2O2 诱导 SH-SY5Y 细胞构建氧化应激损伤细胞模
型。形态学观察及 MTT实验发现 SMI能浓度梯度依
赖地改善损伤细胞形态并提高细胞存活率,初步证
明 SMI具有抗氧化损伤的神经保护潜力。
外源 H2O2 可以进入细胞膜,引起胞内 ROS 累
积,同时会刺激胞内其他种类 ROS 的产生;过高的
ROS水平将引起细胞氧化应激,致使细胞重要组成
成分如蛋白、脂质体等过氧化,细胞功能紊乱,最终
导致细胞损伤甚至死亡[3]。因此,我们对经相应处
理的细胞 ROS水平进行检测,发现 H2O2 处理显著提
高胞内 ROS水平,而 SMI预孵育可以明显抑制 H2O2
诱导的 ROS水平上升,表明 SMI 具有一定的抗氧化
活性。SMI的抗氧化神经保护作用可能与其降低胞
内 ROS水平有关。
抗氧化活性药物改变的信号通路也可能是其发
挥神经保护作用的原因[13],其中 PI3K /Akt信号通路
和 HSP70 蛋白作用较为突出。PI3K /Akt 信号通路
在介导众多类型神经元细胞的生存信号中发挥关键
作用[14,15],且急性激活 Akt 可以有效抑制有害刺激
诱导的细胞死亡[16];HSP70 是应激蛋白热休克蛋白
中的一种,它能保护各种病理状态下的细胞或组织
免于损伤[17,18]。由于激活 PI3K /Akt 和 HSP70 能够
有效中和氧化应激的有害影响[19 - 21],本研究对磷酸
化 Akt及 HSP70 的表达水平进行检测,以进一步研
究 SMI的作用机制。与以往报道一致,当 SH-SY5Y
暴露于 H2O2 时,其磷酸化 Akt (Ser473)和 HSP70 表
达水平迅速提高[22,23]。这可能是细胞应对 H2O2 刺
激的补偿机制,但是还没有强大到足以抵消氧化损
伤[24]。与 H2O2 损伤细胞相比,SMI 预处理能进一步
显著地增强 p-Akt 和 HSP70 的表达,提示 SMI 可能
通过高度激活 Akt 和 HSP70 抑制 H2O2 刺激诱导的
细胞死亡。以往资料表明,一些复合物通过上调
p-Akt或 HSP70 的表达发挥其对抗 H2O2 氧化损伤的
神经保护作用[24,25]。由此,我们推测 p-Akt和 HSP70
的高度激活可能介导了 SMI 的抗氧化损伤神经保护
作用。
有研究表明,H2O2 诱导的 Akt 激活完全由 PI3K
介导[26],HSP70 的诱导表达与 Akt 激活有关[27],且
阻断 PI3K /Akt活性,降低 HSP70 表达[28]。因此,我
们使用 PI3K 抑制剂 LY294002 阻断 PI3K /Akt 后检
测 HSP70 的表达,进一步研究 PI3K /Akt信号通路是
否参与调控 HSP70 表达。结果显示,阻断 PI3K /Akt
通路后,诱导表达的 HSP70 几乎完全被抑制。由此
推测,SMI 可能通过诱导 Akt 磷酸化诱导 HSP70
表达。
综上所述,本研究表明 SMI 具有抗氧化损伤神
经保护潜能,且这一神经保护作用可能与 SMI 下调
ROS水平及高度激活 PI3K /Akt /HSP70 信号通路有
关。为研究 SMI神经保护作用及可能的机制提供了
新的线索,并进一步证明 SMI 是治疗神经退行性疾
病的潜力药物。
[参考文献]
[1] Dias-Santagata D,Fulga TA,Duttaroy A,et al. Oxidative stress
mediates tau-induced neurodegeneration in Drosophila[J]. J Clin
Invest,2007,117(1) :236 - 245.
[2]Hsieh HL,Yang CM. Role of redox signaling in neuroinflammation
and neurodegenerative diseases[J]. Biomed Res Int,2013,761
(4) :85 - 94.
[3]Gorman AM,McGowan A,ONeill C,et al. Oxidative stress and
apoptosis in neurodegeneration[J]. J Neurol Sci,1996,139(4) :
45 - 52.
[4]Brown DR,Schmidt B,Kretzschmar HA. Effects of oxidative stress
on prion protein expression in PC12 cells[J]. Int J Dev Neurosci,
1997,15(8) :961 - 972.
[5]Rasool M,Malik A,Qureshi MS,et al. Recent updates in the treat-
ment of neurodegenerative disorders using natural compounds[J].
Evid Based Complement Alternat Med,2014,2014:979730.
[6]Hu Y,Wang Z,Zhang R,et al. Regulation of M1-receptor mRNA
stability by smilagenin and its significance in improving memory of
aged rats[J]. Neurobiol Aging,2010,31(6) :1010 - 1019.
[7]Zhang Y,Xia Z,Hu Y,et al. Role of glial cell derived neurotro-
phic factor in the protective effect of smilagenin on rat mesencephalic
dopaminergic neurons damaged by MPP +[J]. FEBS Lett,2008,
582(6) :956 - 960.
·536·
JOURNAL OF SHANGHAI JIAO TONG UNIVERSITY MEDICAL SCIENCE | Vol. 35 No. 5 May 2015
江文青,等. 异菝葜皂苷元对 H2O2氧化损伤 SH-SY5Y细胞的保护作用及其分子机制
[8]Zhang R,Wang Z,Howson PA,et al. Smilagenin attenuates beta
amyloid (25 - 35)-induced degeneration of neuronal cells via
stimulating the gene expression of brain-derived neurotrophic factor
[J]. Neuroscience,2012,210:275 - 285.
[9]Visanji NP,Orsi A,Johnston TH,et al. PYM50028,a novel,orally
active,nonpeptide neurotrophic factor inducer,prevents and rever-
ses neuronal damage induced by MPP + in mesencephalic neurons
and by MPTP in a mouse model of Parkinsons disease[J]. FASEB
J,2008,22(7) :2488 - 2497.
[10]Sas K,Robotka H,Toldi J,et al. Mitochondria,metabolic disturb-
ances,oxidative stress and the kynurenine system,with focus on
neurodegenerative disorders[J]. J Neurol Sci,2007,257(1):221 -
239.
[11]Zhao ZY,Luan P,Huang SX,et al. Edaravone protects HT22
neurons from H2O2-induced apoptosis by inhibiting the MAPK
signaling pathway[J]. CNS Neurosci Ther,2013,19(3) :163 -
169.
[12]冯波,王蓉,盛树力. 神经退行性疾病研究中拟神经细胞模型:
人神经母细胞瘤株 SH-SY5Y 的来源特性及应用[J]. 临床康
复,2006,10(6) :121 - 123.
[13]Weinreb O,Amit T,Mandel S,et al. Neuroprotective molecular
mechanisms of (-)-epigallocatechin-3-gallate:a reflective outcome
of its antioxidant,iron chelating and neuritogenic properties[J].
Genes Nutr,2009,4(4) :283 - 296.
[14]Brunet A,Datta SR,Greenberg ME. Transcription-dependent and-
independent control of neuronal survival by the PI3K-Akt signaling
pathway[J]. Curr Opin Neurobiol,2001,11(3) :297 - 305.
[15]Marte BM,Downward J. PKB /Akt:connecting phosphoinositide 3-
kinase to cell survival and beyond[J]. Trends Biochem Sci,1997,
22(9) :355 - 358.
[16] Downward J. PI 3-kinase,Akt and cell survival[J]. Semin Cell
Dev Biol,2004,15(2) :177 - 182.
[17]Eroglu B,Kimbler DE,Pang J,et al. Therapeutic inducers of the
HSP70 /HSP110 protect mice against traumatic brain injury[J]. J
Neurochem,2014,130(5) :626 - 641.
[18] Jaattela M. Heat shock proteins as cellular lifeguards[J]. Ann
Med,1999,31(4) :261 - 271.
[19] Zhang L,Zhou R,Xiang G. Stepholidine protects against H2O2
neurotoxicity in rat cortical neurons by activation of Akt[J].
Neurosci Lett,2005,383(3) :328 - 332.
[20]Dal-Cim T,Molz S,Egea J,et al. Guanosine protects human neu-
roblastoma SH-SY5Y cells against mitochondrial oxidative stress by
inducing heme oxigenase-1 via PI3K /Akt /GSK-3beta pathway[J].
Neurochem Int,2012,61(3) :397 - 404.
[21] Ikeyama S,Kusumoto K,Miyake H,et al. A non-toxic heat shock
protein 70 inducer,geranylgeranylacetone,suppresses apoptosis of
cultured rat hepatocytes caused by hydrogen peroxide and ethanol
[J]. J Hepatol,2001,35(1) :53 - 61.
[22]Sadidi M,Lentz SI,Feldman EL. Hydrogen peroxide-induced Akt
phosphorylation regulates Bax activation[J]. Biochimie,2009,91
(5) :577 - 585.
[23]Chen HW,Chien CT,Yu SL,et al. Cyclosporine A regulate oxida-
tive stress-induced apoptosis in cardiomyocytes:mechanisms via
ROS generation,iNOS and Hsp70[J]. Br J Pharmacol,2002,137
(6) :771 - 781.
[24]Wang XJ,Wang LY,Fu Y,et al. Promising effects on ameliorating
mitochondrial function and enhancing Akt signaling in SH-SY5Y
cells by (M)-bicelaphanol A,a novel dimeric podocarpane type tri-
norditerpene isolated from Celastrus orbiculatus[J]. Phytomedicine,
2013,20(12) :1064 - 1070.
[25]Kim HS,Skurk C,Maatz H,et al. Akt /FOXO3a signaling modu-
lates the endothelial stress response through regulation of heat shock
protein 70 expression[J]. FASEB J,2005,19(8) :1042 - 1044.
[26]Konishi H,Fujiyoshi T,Fukui Y,et al. Activation of protein kinase
B induced by H2O2 and heat shock through distinct mechanisms
dependent and independent of phosphatidylinositol 3-kinase[J]. J
Biochem,1999,126(6) :1136 - 1143.
[27]Kim HS, Skurk C,Maatz H, et al. Akt /FOXO3a signaling
modulates the endothelial stress response through regulation of heat
shock protein 70 expression[J]. FASEB J,2005,19(8) :1042 -
1044.
[28] Kong XC,Zhang D,Qian C,et al. FLZ,a novel HSP27 and
HSP70 inducer,protects SH-SY5Y cells from apoptosis caused by
MPP +[J]. Brain Res,2011,1383:99 - 107.
[收稿日期]2015-01-14 [本文编辑]吴 洋
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