全 文 ：蜻蜓凤梨(Aechmea fasciata)为凤梨科光萼荷
属植物， 又名粉菠萝， 其观赏期可达数月之久， 由
于花序粉红美丽， 故商品名称之为 “粉佳人”， 原
产于南美洲热带地区， 自20世纪80年代初引入我
国。 其花形叶貌千姿百态， 是很好的室内观赏植
物， 观赏价值和经济效益很高， 市场前景广阔。 蜻
蜓凤梨传统的繁殖是利用其开花后母株产生的吸芽
分株来实现， 但由于生长不整齐、 繁殖速度慢， 后
来逐渐被组织培养方法取代。 目前我国对蜻蜓凤梨
快速繁殖的研究已经起步， 但以离体培养为手段进
行的变异品种选育、 种质资源创新等方面的研究有
待开展[1]。 已经报道的蜻蜓凤梨的离体培养均以其
短缩茎[2-3]或试管苗的茎段、 茎尖[4]为外植体进行组
织培养， 以叶片为外植体直接诱导分化芽的研究尚
未见报道。 蜻蜓凤梨开花量虽大， 但在我国栽培的蜻
蜓凤梨很难结实。 因此， 通过杂交培育蜻蜓凤梨的优
良品种较难实现。 随着分子生物学和基因工程的发
展， 利用转基因技术创新种质在多种植物上获得了成
功[5-10]。 尽管蜻蜓凤梨已经颇具观赏价值， 但人们
追求新、 奇、 特的心理使得有必要对蜻蜓凤梨进行
创新。 本研究以蜻蜓凤梨的无菌苗叶片为外植体，
建立了高效的植株再生体系， 为蜻蜓凤梨及其他凤
蜻蜓凤梨叶片组织培养植株再生的研究①
符运柳② 徐 立 李志英③ 黄碧兰 李克烈
(中国热带农业科学院热带作物品种资源研究所/
农业部华南作物基因资源与种质创制重点实验室/
海南省热带作物种质资源遗传改良与创新重点实验室 海南儋州 571737)
摘 要 以蜻蜓凤梨试管苗叶片为外植体进行离体再生研究。 结果表明， 叶片诱导直接分化不定芽的最佳培养
基是 MS＋BA5.0mg/L＋IBA1.5mg/L， 分化率高达 80%。 增殖培养基为 MS＋BA0.5mg/L＋NAA0.2mg/L。 壮苗培
养基为 MS＋NAA2.0mg/L。 生根培养基为 MS＋NAA2.0mg/L＋AC0.5g/L， 生根率达100%。
关键词 蜻蜓凤梨 ； 叶片 ； 组织培养 ； 植株再生
分类号 TP391
Tissue Culture and Plant Regeneration of Aechmea fasciata Leaf
FU Yunliu XU Li LI Zhiying HUANG Bilan LI Kelie
(Institute of Tropical Crop Genetic Resources / Ministry of Agriculture Key Laboratory
of Crop Gene Resources and Germplasm Enhancement in Southern China & Key Laboratory
of Tropical Crops Germplasm Resources Genetic Improvement and Innovation, CATAS,
Danzhou, Hainan 571737)
Abstract The regeneration system of Aechmea fasciata in vitro was studied with leaves as explants. The
results showed the optimal medium for shoots induction was MS+BA 5.0 mg/L+IBA 1.5 mg/L with the
induction frequency of 80%. The shoot multiplying medium was MS+BA 0.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L. The
elongation medium was MS+NAA 2.0 mg/L. The rooting medium was MS+NAA 2.0 mg/L+AC 0.5 g/L.
The rooting frequency was 100%.
Keywords Aechmea fasciata ; leaf ; tissue culture ; plant regeneration
① 基金项目： 国家自然科学基金(No.31372106)和中央级科研院所基本科研业务费专项(No.1630032014018)。
收稿日期： 2014-08-15； 责任编辑/白 净； 编辑部E-mail: rdnk@163.com。
② 符运柳(1978～)， 女， 硕士， 助理研究员， 研究方向为种质资源； E-mail: fyljj_2007@126.com。
③ 通讯作者。
Vol．34, No．9
2014年9月 热 带 农 业 科 学
CHINESE JOURNAL OF TROPICAL AGRICULTURE
第34卷第9期
Sep． 2014
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符运柳 等 蜻蜓凤梨叶片组织培养植株再生的研究
梨科植物的品种改良奠定技术基础。
1 材料和方法
1.1材料
蜻蜓凤梨试管苗， 来源于中国热带农业科学院
热带品种资源研究所快繁中心。
1.2方法
1.2.1丛生芽的诱导
取蜻蜓凤梨试管苗叶片， 从叶基部往上切取3
段， 每段长约0.5cm左右， 接种于以 MS为基本培
养基添加不同种类不同浓度植物生长调节剂的诱导
培养基上诱导不定芽的发生， 40d后统计结果。
1.2.2增殖、 壮苗、 生根
待丛生芽长到2cm左右时， 转接于增殖培养基
上， 反复继代增殖6代后， 转至壮苗培养基上， 待苗
长到5cm左右时， 单株切下， 接种于生根培养基上。
1.3培养基配方
1.3.1诱导培养基
以 MS为基本培养基， 添加不同种类不同浓度
的植物生长调节剂(表2)。
1.3.2增殖、 壮苗培养基
增殖培养基为MS＋BA0.5mg/L＋NAA0.2mg/L；
壮苗培养基为MS＋NAA2.0mg/L。
1.3.3生根培养基
生根培养基为MS＋NAA2.0mg/L＋AC0.5g/L。
以上培养基均附加 3%蔗糖、 0.7%琼脂， pH值
5.8～6.0， 121℃灭菌20 min。 培养温度(25±2)℃，
光照时间12h/d， 光照强度30～40μmol/m2 s。
1.4统计分析
采用邓肯氏新复极差法(SSR)对实验数据进行
统计分析。
2 结果与分析
2.1蜻蜓凤梨无菌苗叶片不同部位的分化情况
蜻蜓凤梨试管苗的叶片切段， 接种到诱导培养
基上， 10d后， 大部分带叶基的叶片切段在叶基一
端发生瘤状突起， 20 d后分化出芽(图 1 A， 1B)。
其中带叶基的叶片切段分化率高达 83.3%， 而其他
切段则不分化或很难分化， 说明叶片的不同部位的
分化能力存在极显著差异(表1)。 因此， 采用蜻蜓
凤梨的试管苗叶片进行诱导不定芽， 以带叶基的叶
片切段做外植体效果较为理想。
2.2不同激素组合对蜻蜓凤梨叶片基部诱导分化
不定芽的影响
从表2中可以看出， 诱导蜻蜓凤梨叶片产生不
定芽较理想的培养基为 MS＋BA5.0mg/L＋IBA1.5
mg/L， 诱导率高达80%。 只加IBA时， 叶片切口处
长根， 不能分化出芽。 本研究结果表明， 生长素
IBA与细胞分裂素 6-BA配合使用， 对蜻蜓凤梨叶
片诱导不定芽效果明显， 其不定芽分化率高。
表 1 蜻蜓凤梨无菌苗叶片各部位的芽分化情况
叶片不同切段 接种数/块 分化数/块 芽诱导率/%
叶片基部 90 75 83.3a
叶片中部 90 2 2.2c
叶尖部 90 0 0.0c
表 2 不同激素对蜻蜓凤梨叶片诱导芽分化的影响
IBA
/(mg·L-1)
6-BA
/(mg·L-1)
接种数
/块
分化数
/块
芽诱导率
/%
2.0 0.0 20 0 0e
1.0 2.0 20 4 20d
2.0 6.0 18 9 50c
1.0 5.0 20 14 70b
1.5 5.0 21 17 80a
2.0 5.0 21 15 71b
说明 ： 不同字母表示两个处理之间存在显著差异(p＝
0.05)， 下同。
A B
C D
图1 蜻蜓凤梨叶片组织培养分化及再生过程
说明： A叶片基部分化瘤状突起； B瘤状突起分化不定
芽； C接种40 d不定芽分化情况； D不定芽诱导生根。
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2014年9月 第34卷第9期热带农业科学
2.3增殖、 壮苗与生根
将叶片分化的不定芽转入增殖培养基。 经增殖
得到的丛生芽可反复继代， 其增殖系数为2～3。 增
殖约6代后转接至壮苗培养基上。 当不定芽长至5cm
左右时单株切下， 接于生根培养基上培养， 15 d
后便开始发根， 生根率为 100%(图 1D)。 约 30 d
后， 待小苗高7cm左右时即可炼苗移栽。
2.4炼苗、 移栽
参照徐立等[2]的方法， 将生根良好的瓶苗打开
瓶盖， 室内炼苗3d后， 取出小苗， 洗干净根部培
养基， 移植到育苗盘中。 栽培基质配比为园田土∶
椰糠∶河沙∶牛粪＝4∶1∶1∶1。 移栽前浇透水，
移栽后再浇足定根水， 用塑料薄膜和遮阴网进行遮
荫保湿， 15d后逐渐去掉塑料薄膜并及时浇水， 小
苗存活率为95%左右。
3 讨论与结论
在蜻蜓凤梨叶片诱导不定芽的研究中， 能直接
分化不定芽的基本是叶片的基部， 而叶片中部和叶
尖很难分化不定芽。 叶片不同部位分化不定芽的能
力存在明显差异， 这可能与叶基部是叶片的生长部
位， 其分生组织活跃， 或者该部位内源激素浓度较
易分化成芽有关， 而中部和顶部的叶段为成熟的组
织， 所含内源激素可能不适合分化芽， 因此在与基
部叶段相同的外源激素水平下较难诱导。
本研究以MS＋BA0.5mg/L＋NAA0.2mg/L为增殖
培养基， 增殖效果较好， 但在该培养基上芽比较细
弱， 不易长高， 需转到壮苗培养基MS＋NAA2.0mg/L
上经壮苗培养后， 再切起单芽进行生根培养获得完
整植株。
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