全 文 ：西北农业学报　２０１６，２５（５）：７６３－７６９
Ａｃｔａ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｅ　Ｂｏｒｅａｌｉ－ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ　Ｓｉｎｉｃａ　 ｄｏｉ：１０．７６０６／ｊ．ｉｓｓｎ．１００４－１３８９．２０１６．０５．０１８
网络出版日期：２０１６－０５－０５
网络出版地址：ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｎｋｉ．ｎｅｔ／ｋｃｍｓ／ｄｅｔａｉｌ／６１．１２２０．Ｓ．２０１６０５０５．１５５８．０３６．ｈｔｍｌ
Ｄｉｕｒｎａｌ　Ｃｈａｎｇｅｓ　ｏｆ　Ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　Ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ａｎｄ
Ｌｉ－ｍＴＰＳ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’
ＬＩ　Ｔｉａｎｊｉａｏ１，ＨＵ　Ｚｅｎｇｈｕｉ　１，ＺＨＥＮＧ　Ｊｉａｎ１，ＬＥＮＧ　Ｐｉｎｇｓｈｅｎｇ１　ａｎｄ　ＹＡＮＧ　Ｋａｉ　２
（１．Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｌａｎｄｓｃａｐｅ　Ａｒｃｈｉｔｅｃｔｕｒｅ，Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ／Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｃｅｎｔｅｒ　ｏｆ　Ｒｕｒａｌ
Ｌａｎｄｓｃａｐｅ　Ｐｌａｎｎｉｎｇ　ａｎｄ　Ｄｅｓｉｇｎ／Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｏｆ　Ｕｒｂａｎ　ａｎｄ　Ｒｕｒａｌ　Ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ，Ｂｅｉｊｉｎｇ　１０２２０６，Ｃｈｉｎａ；
２．Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｐｌａｎｔ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，Ｂｅｉｊｉｎｇ　１０２２０６，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ　Ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ａｒｅ　ａｎ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｃａｔｅｇｏｒｙ　ｏｆ　ｖｏｌａｔｉｌｅ　ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ．Ｉｎ　ｔｈｉｓ
ｓｔｕｄｙ，ｕｓｉｎｇ　ｄｙｎａｍｉｃ　ｈｅａｄｓｐａｃｅ　ｍｅｔｈｏｄ，ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｅｍｉｔｔｅｄ　ｆｒｏｍＬｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｆｌｏｗｅｒｓ　ｗａｓ
ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ａｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｔｉｍｅ　ｐｏｉｎｔｓ（７：３０，９：３０，１１：３０，１３：３０，１５：３０，１７：３０，１９：３０）ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ，
ｔｈｅｎ　ｔｈｅ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ　ａｎｄ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｗｅｒｅ　ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ　ａｎｄ　ａｎａｌｙｚｅｄ　ｂｙ　ｔｈｅ　ａｕｔｏｍａｔｅｄ　ｔｈｅｒｍａｌ
ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ－ｇａｓ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ／ｍａｓｓ　ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ（ＡＴＤ－ＧＣ／ＭＳ）ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ．Ｗｅ　ｆｏｕｎｄ　ｔｈａｔ　ｒｅｌｅａｓｅ
ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｆｉｒｓｔ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　ａｎｄ　ｔｈｅｎ　ｄｅｃｒｅａｓｅｄ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ，ａｎｄ　ａ　ｈｉｇｈ　ｌｅｖｅｌ
ｏｃｃｕｒｒｅｄ　ａｔ　１１：３０，１３：３０，ａｎｄ　１５：３０．Ｔｈｅ　ｈｉｇｈ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆ　ｏｃｉｍｅｎｅ，ｌｉｎａｌｏｏｌ，ａｎｄβ－ｍｙｒｃｅｎｅ
ｉｎｄｉｃａｔｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅｙ　ｗｅｒｅ　ｔｈｅ　ｄｏｍｉｎａｎｔ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｏｆ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’．Ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｏｌ－
ｌｏｗｉｎｇ　ｓｔｕｄｙ，ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ （ａＬｉｌｉｕｍ ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅ）ｉｎ　ｔｅｐａｌｓ
ｗａｓ　ｅｘａｍｉｎｅｄ．ＬｉｍＴＰＳｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｓｈｏｗｅｄ　ａ　ｓｉｍｉｌａｒ　ｐａｔｔｅｒｎ　ｗｉｔｈ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ
ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｍａｙ　ｐｌａｙ　ａ　ｋｅｙ　ｒｏｌｅ　ｉｎ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｆｒｏｍ　Ｌｉｌｉｕｍ
‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｆｌｏｗｅｒｓ，ｂｕｔ　ｔｈｅ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍ　ｎｅｅｄｓ　ｔｏ　ｂｅ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｕｔｕｒｅ　ｓｔｕｄｙ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’；Ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ；Ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ；Ｌｉ－ｍＴＰＳｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ
ＣＬＣ　ｎｕｍｂｅｒ　Ｓ６８２．２　　　　Ｄｏｃｕｍｅｎｔ　ｃｏｄｅ　Ａ　　　　Ａｒｔｉｃｌｅ　ＩＤ　１００４－１３８９（２０１６）０５－０７６３－０７
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ　２０１５－０４－２０　　　　Ｒｅｔｕｒｎｅｄ　２０１５－０６－０２
Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ　ｉｔｅｍ　Ｔｈｅ　Ｐｒｏｊｅｃｔ　ｏｆ　Ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｉｎｎｏｖａｔｉｖｅ　Ｔｅａｍｓ　ａｎｄ　Ｔｅａｃｈｅｒ　Ｃａｒｅｅｒ　Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ　ｆｏｒ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｉｅｓ　ａｎｄ　Ｃｏｌｅｇｅｓ
ｕｎｄｅｒ　Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｍｕｎｉｃｉｐａｌｉｔｙ（Ｎｏ．ＩＤＨＴ２０１５０５０３）；Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ｎａｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ　Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｃｈｉｎａ（Ｎｏ．３１０７１８１７）；
Ｓｃｉｅｎｃｅ　ａｎｄ　Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　Ｐｒｏｊｅｃｔ　ｏｆ　Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｍｕｎｉｃｉｐａｌ　Ｅｄｕｃａｔｉｏｎ　Ｃｏｍｍｉｓｓｉｏｎ（Ｎｏ．ＰＭ２０１４０１４２０７）；Ｂｕｉｌｄｉｎｇ　Ｐｒｏ－
ｊｅｃｔ　ｏｆ　Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｏｆ　Ｕｒｂａｎ　ａｎｄ　Ｒｕｒａｌ　Ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ（Ｎｏ．ＰＸＭ２０１５－０１４２０７－００００１４）．
Ｆｉｒｓｔ　ａｕｔｈｏｒ　ＬＩ　Ｔｉａｎｊｉａｏ，ｆｅｍａｌｅ，ｍａｓｔｅｒ　ｓｔｕｄｅｎｔ．Ｒｅｓｅａｒｃｈ　ａｒｅａ：ｅｃｏｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ｏｆ　ｌａｎｄｓｃａｐｅ　ｐｌａｎｔｓ．Ｅ－ｍａｉｌ　ｌｉｔｉａｎｊｉａｏ１２３１９８８＠
１６３．ｃｏｍ
Ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ　ａｕｔｈｏｒ　ＬＥＮＧ　Ｐｉｎｇｓｈｅｎｇ，ｍａｌｅ，ｐｒｏｆｅｓｓｏｒ，ｍａｓｔｅｒ　ｓｕｐｅｒｖｉｓｏｒ．Ｒｅｓｅａｒｃｈ　ａｒｅａ：ｅｃｏｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ｏｆ　ｌａｎｄｓｃａｐｅ　ｐｌａｎｔｓ．
Ｅ－ｍａｉｌ：ｂｕａｌｅｎｇｐｉｎｇｓｈｅｎｇ＠１６３．ｃｏｍ
　　Ｉｔ　ｉｓ　ｗｅｌ－ｋｎｏｗｎ　ｔｈａｔ　ｐｌａｎｔｓ　ｃａｎ　ｅｍｉｔ　ａ　ｌｏｔ　ｏｆ
ｓｅｃｏｎｄａｒｙ　ｖｏｌａｔｉｌｅ　ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ　ｔｏ　ａｉｒ，ｗｈｉｃｈ　ｃｏｎ－
ｔｒｉｂｕｔｅｓ　ｔｏ　ｔｈｅ　ａｔｍｏｓｐｈｅｒｉｃ　ｃｈｅｍｉｃａｌ　ｒｅａｃｔｉｏｎ　ａｎｄ
ｐｏｓｓｅｓｓｅｓ　ａｎ　ｅｃｏｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌｙ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｆｕｎｃ－
ｔｉｏｎ　ｆｏｒ　ｐｌａｎｔｓ［１］．Ａｓ　ａｎ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｐａｒｔ　ｏｆ　ｐｌａｎｔ
ｖｏｌａｔｉｌｅ　ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ，ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｐｌａｙｓ　ａ　ｋｅｙ
ｒｏｌｅ　ｉｎ　ｐｌａｎｔ　ｅｃｏｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，ａｎｄ　ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｓ　ａ　ｄｅ－
ｃｉｓｉｖｅ　ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎ　ｃｈａｎｎｅｌ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｐｌａｎｔｓ
ａｎｄ　ａｎｉｍａｌｓ［２］．Ｔｈｅ　ｔｅｒｐｅｎｏｉｄｓ　ａｒｅ　ｕｂｉｑｕｉｔｏｕｓｌｙ
ｆｏｕｎｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｔｈｅ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｖｏｌａｔｉｌｅ　ｃａｔｅｇｏｒｙ　ｉｎ　ｔｈｅ
ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ［３－５］．
Ｔｈｅ　ｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅｓ（ＴＰＳ）ｗｅｒｅ　ｔｈｅ　ｋｅｙ
ｅｎｚｙｍｅｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　ｏｆ　ｔｅｒｐｅｎｏｉｄｓ［６］．
Ａ　ｌａｒｇｅ　ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ＴＰＳ　ｂｅｌｏｎｇｉｎｇ　ｔｏ　ａ　ｌａｒｇｅ　ｆａｍ－
ｉｌｙ　ｈａｖｅ　ｂｅｅｎ　ｆｏｕｎｄ　ｉｎ　ｐｌａｎｔｓ，ａｎｄ　ｍａｎｙ　ＴＰＳ
ｇｅｎｅｓ　ａｎｄ　ｐｒｏｔｅｉｎｓ　ｈａｖｅ　ｂｅｅｎ　ｉｓｏｌａｔｅｄ　ａｎｄ　ｃｈａｒ－
ａｃｔｅｒｉｚｅｄ　ｆｒｏｍ　ｓｅｖｅｒａｌ　ｐｌａｎｔｓ［７］．Ｔｈｅ　ａｎｇｉｏｓｐｅｒｍ
ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｉｓ　ｆｏｕｎｄ　ｔｏ　ｂｅｌｏｎｇ　ｔｏ　ｔｈｅ
ＴＰＳ－ｂ　ｇｒｏｕｐ　ｉｎ　ｖｉｅｗ　ｏｆ　ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ　ａ　Ｒ（Ｒ）ｘ８Ｗ
ｍｏｔｉｆ［８］．Ｆｒｏｍ　１９９２，ｗｈｅｎ　ｔｗｏ　ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅ
ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅｓ　ｗｅｒｅ　ｉｓｏｌａｔｅｄ　ｉｎ　ｔｏｂａｃｃｏ［９］，ｍｏｒｅ
ｔｈａｎ　２００ＴＰＳ　ｇｅｎｅｓ　ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ　９０ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ
ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅｓ　ｈａｖｅ　ｂｅｅｎ　ｃｌｏｎｅｄ　ｉｎ　ｍｏｒｅ　ｔｈａｎ　４０
ｋｉｎｄｓ　ｏｆ　ｐｌａｎｔｓ［１０］．Ａｍｏｎｇ　ｔｈｅ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎ－
ｔｈａｓｅｓ，ｌｉｎａｌｏｏｌ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅ　ｉｓ　ｔｈｅ　ｆｉｒｓｔ　ｇｅｎｅ
ｉｓｏｌａｔｅｄ　ａｎｄ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚｅｄ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｆｌｏｗｅｒｓ　ｏｆ
Ｃｌａｒｋｉａ　ｂｒｅｗｅｒｉ［１１－１２］．Ｉｎ　ａｄｄｉｔｉｏｎ，ｔｈｅ　ＴＰＳ　ｈａｓ
ｂｅｅｎ　ｓｕｃｃｅｓｓｉｖｅｌｙ　ｉｓｏｌａｔｅｄ　ｆｒｏｍ　ｍａｎｙ　ｐｌａｎｔｓ’
ｆｌｏｗｅｒｓ　ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ　Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ［１３］，ｌａｖｅｎｄｅｒ［１４］，
ｋｉｗｉｆｒｕｉｔ［１５］，ａｎｄ　Ａｌｓｔｒｏｅｍｅｒｉａ［１６］．
Ｌｉｌｉｕｍｉｓ　ｏｎｅ　ｏｆ　ｗｏｒｌｄ　ｐｏｐｕｌａｒ　ｏｒｎａｍｅｎｔａｌ
ｆｌｏｗｅｒｓ，ａｎｄ　ｔｈｅ　ｐｒｅｖｉｏｕｓ　ｓｔｕｄｉｅｓ　ｏｎ　ｉｔｓ　ｆｌｏｒａｌ
ｓｃｅｎｔ　ｉｎｄｉｃａｔｅ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｔｅｒｐｅｎｏｉｄｓ，ｅｓｐｅｃｉａｌｙ
ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ，ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ　ｌｉｎａｌｏｏｌ，ｏｃｉｍｅｎｅ，ａｎｄ
β－ｍｙｒｃｅｎｅ　ａｒｅ　ｅｍｉｔｔｅｄ　ｆｒｏｍ　ｏｒｉｅｎｔａｌ　ｈｙｂｒｉｄ　ｌｉｌｉｅｓ
ｉｎ　ａ　ｌａｒｇｅ　ｑｕａｎｔｉｔｙ，ｗｈｉｃｈ　ｉｓ　ｔｈｏｕｇｈｔ　ｔｏ　ｒｅｓｕｌｔ　ｉｎ
ｔｈｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ｉｎ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ａｍｏｎｇ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｈｙ－
ｂｒｉｄ　ｌｉｌｉｅｓ［１７－１８］．Ｈｏｗｅｖｅｒ，ｌｉｔｔｌｅ　ａｂｏｕｔ　ｔｈｅ　ｅｍｉｓ－
ｓｉｏｎ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ．Ｓｏ　ｉｎ
ｔｈｉｓ　ｓｔｕｄｙ，ｔｈｅ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｉｎ　ｆｒｏｍ
Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｆｌｏｗｅｒｓ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ　ｗａｓ
ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ，ａｎｄ　ｔｈｅ　ｇｅｎｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ａ
ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｗａｓ　ａｌｓｏ　ｅｘａｍｉｎｅｄ．
１　Ｍａｔｅｒｉａｌｓ　ａｎｄ　ｍｅｔｈｏｄｓ
１．１　Ｐｌａｎｔ　ｍａｔｅｒｉａｌｓ
Ｉｎ　ｔｈｉｓ　ｓｔｕｄｙ，Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｐｌａｎｔｓ
ｇｒｏｗｎ　ｆｒｏｍ　ｂｕｌｂｓ　ｗｅｒｅ　ｕｓｅｄ．Ｔｈｅ　ｂｕｌｂｓ　ｃｕｌｔｕｒｅｄ
ｉｎ　ｐｌａｓｔｉｃ　ｐｏｔｓ（２０ｃｍ　ｄｉａｍｅｔｅｒ，２０ｃｍ　ｈｅｉｇｈｔ）
ｗｈｉｃｈ　ｃｏｎｔａｉｎ　ｍｅｄｉｕｍ　ｗｅｒｅ　ｃｏｍｐｏｓｅｄ　ｏｆ　ｐｅａｔ
ａｎｄ　ｖｅｒｍｉｃｕｌｉｔｅ　ａｔ　ｔｈｅ　ｖｏｌｕｍｅ　ｒａｔｉｏ　ｏｆ　２ｔｏ　１．Ｔｈｅ
ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ　ｗｅｒｅ　ｐｌａｃｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｇｒｅｅｎｈｏｕｓｅ　ａｔ　ｔｈｅ
Ｓｃｉｅｎｃｅ　Ｐａｒｋ　ｏｆ　Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ
ｕｎｄｅｒ　１６ｈ／８ｈｌｉｇｈｔ／ｄａｒｋ　２５ ℃／２０ ℃ ｃｙｃｌｅ．
Ｔｈｅｙ　ｗｅｒｅ　ｉｒｒｉｇａｔｅｄ　ｅｖｅｒｙ　ｔｈｒｅｅ　ｄａｙｓ　ａｎｄ　ｓｕｐ－
ｐｌｉｅｄ　ｗｉｔｈ　ａ　ｆｕｌ　Ｈｏａｇｌａｎｄ　ｎｕｔｒｉｅｎｔ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ
ｅｖｅｒｙ　ｔｗｏ　ｗｅｅｋｓ．Ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ
ｄａｙｔｉｍｅ　ａｔ　ｔｈｅ　ｆｕｌ　ｏｐｅｎｉｎｇ　ｓｔａｇｅ（ａｂｏｕｔ　６－ｄａｙ－
ｏｌｄ　ｆｌｏｗｅｒ）ｗａｓ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ，ａｎｄ　ｔｈｅｎ　ｔｈｅ　ｆｌｏｗｅｒｓ
ｗｅｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ａｎｄ　ｑｕｉｃｋｌｙ　ｔｈｒｏｗｎ　ｉｎｔｏ　ｌｉｑｕｉｄ
ｎｉｔｒｏｇｅｎ　ｆｏｒ　ｇｅｎｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ａｎａｌｙｓｉｓ．
１．２　Ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｃｏｌｅｃｔｉｏｎ
Ｔｈｅ　ｄｙｎａｍｉｃ　ｈｅａｄｓｐａｃｅ　ｓａｍｐｌｉｎｇ　ｗａｓ　ｕｓｅｄ
ｔｏ　ｃｏｌｅｃｔ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ａｔ　７ｔｉｍｅｓ（７：３０，９：３０，
１１：３０，１３：３０，１５：３０，１７：３０，ａｎｄ　１９：３０）ｄｕｒｉｎｇ
ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ．Ａｎ　ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌ　ｆｌｏｗｅｒ　ｗａｓ　ｐｕｔ　ｉｎ　ａ
Ｒｅｙｎｏｌｄｓ　ｏｖｅｎ　ｂａｇ（１６×１７．５ＩＮ）ｗｈｉｃｈ　ｒｅｌｅａ－
ｓｅｓ　ａｎｄ　ａｂｓｏｒｂｓ　ｆｅｗ　ｖｏｌａｔｉｌｅｓ．Ａ　ｓｔａｉｎｌｅｓｓ　ｓｔｅｅｌ
ｔｕｂｅ（０．２５×３．５ＩＮ，ＵＳＡ）ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ　Ｔｅｎａｘ－
ＧＲ（６０－８０ｍｅｓｈ，Ｃｈｒｏｍｐａｃｋ）ｗａｓ　ｕｓｅｄ　ａｓ　ｔｈｅ
ｖｏｌａｔｉｌｅ　ｔｒａｐ，ａｎｄ　ａｖｏｉｄｅｄ　ｔｏｕｃｈｉｎｇ　ｔｈｅ　ｆｌｏｗｅｒ．Ａ
ｐｏｒｔａｂｌｅ　ａｉｒ　ｓａｍｐｌｅｒ（ＱＣ－１；Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｍｕｎｉｃｉｐａｌ
Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｌａｂｏｕｒ　Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ，Ｃｈｉｎａ）ｓｅｒｖｅｄ　ａｓ
ｔｈｅ　ｐｕｍｐ，ａｎｄ　ａｉｒ　ｆｉｌｔｅｒｅｄ　ｔｈｒｏｕｇｈ　ａ　ｄｒｙｉｎｇ　ｃｏｌ－
ｕｍｎ　ｆｉｌｅｄ　ｗｉｔｈ　ｃｈａｒｃｏａｌ　ｗａｓ　ｐｕｍｐｅｄ　ｉｎｔｏ　ｔｈｅ
ｂａｇ．Ｔｈｅ　ｖｏｌａｔｉｌｅｓ　ｗｅｒｅ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ｆｏｒ　２０ｍｉｎ　ａｔ　ａ
ｆｌｏｗ　ｒａｔｅ　ｏｆ　３００ｍＬ·ｍｉｎ－１　ｆｏｒ　ｅａｃｈ　ｆｌｏｗｅｒ．
Ａｆｔｅｒｗａｒｄｓ，ｔｈｅ　ｓｔａｉｎｌｅｓｓ　ｓｔｅｅｌ　ｔｕｂｅｓ　ｗｅｒｅ　ｓｅａｌｅｄ
ａｎｄ　ｐｌａｃｅｄ　ｉｎ　ａ　ｒｅｆｒｉｇｅｒａｔｏｒ．
１．３　Ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｔｈｅ　ａｕｔｏｍａｔｅｄ　ｔｈｅｒｍａｌ　ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ－ｇａｓ
ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ／ｍａｓｓ　ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ（ＡＴＤ－ＧＣ／
ＭＳ）ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ　ｗａｓ　ｕｓｅｄ　ｔｏ　ａｎａｌｙｚｅ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ
ｓｃｅｎｔ．Ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｓｔａｉｎｌｅｓｓ
ｓｔｅｅｌ　ｔｕｂｅ　ｗａｓ　ｄｅｓｏｒｂｅｄ　ｂｙ　ｈｅａｔｉｎｇ　ｉｎ　ａｎ　ＡＴＤ
（Ａｕｔｏ　Ｔｈｅｒｍａｌ　Ｄｅｓｏｒｂｅｒ，ＴｕｒｂｏＭａｔｒｉｘ　６５０，
ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ）ａｔ　２６０ ℃ ｆｏｒ　１０ｍｉｎ，ａｎｄ　ｔｈｅｎ
ｃｒｙｏｆｏｃｕｓｅｄ　ｉｎ　ａ　ｃｏｌｄ　ｔｒａｐ　ｗｈｏｓｅ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ
ｗａｓ　ｍａｉｎｔａｉｎｅｄ　ａｔ－２５℃ｆｏｒ　３ｍｉｎ．Ｔｈｅ　ｃｏｌｄ
ｔｒａｐ　ｗａｓ　ｔｈｅｎ　ｑｕｉｃｋｌｙ　ｈｅａｔｅｄ　ｔｏ　３００ ℃ ｍａｉｎ－
ｔａｉｎｅｄ　ｆｏｒ　５ｍｉｎ　ｔｏ　ｔｒａｎｓｐｏｒｔ　ｔｈｅ　ｖｏｌａｔｉｌｅｓ　ｔｏ　ＧＣ
（Ｃｌａｒｕｓ　６００，Ｐｅｒｋｉｎ　ＥＩｍｅｒ）．Ｔｈｅ　ＧＣ　ｗａｓ
ｅｑｕｉｐｐｅｄ　ｗｉｔｈ　ａ　ｃａｐｉｌａｒｙ　ＤＢ－５ＭＳ　ｃｏｌｕｍｎ
（３０ｍ ×０．２５ｍｍ　ｉ．ｄ．，ｗｉｔｈ　ａ　０．２５μｍ　ｆｉｌｍ
ｔｈｉｃｋｎｅｓｓ）．Ｈｅｌｉｕｍ　ｗａｓ　ｕｓｅｄ　ａｓ　ｔｈｅ　ｃａｒｒｉｅｒ　ｇａｓ．
Ｔｈｅ　ＧＣ　ｗａｓ　ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ　ａｔ　４０ ℃ｆｏｒ　２ｍｉｎ，
４℃·ｍｉｎ－１　ｕｐ　ｔｏ　１６０℃，ｔｈｅｎ　２０℃·ｍｉｎ－１　ｕｐ
ｔｏ　２７０℃，ａｎｄ　ｈｅｌｄ　ａｔ　２７０℃ｆｏｒ　３ｍｉｎ．Ｔｈｅ　ＭＳ
（Ｃｌａｒｕｓ　６００Ｔ，Ｐｅｒｋｉｎ　ＥＩｍｅｒ）ｗａｓ　ｏｐｅｒａｔｅｄ　ｉｎ　ＥＩ
ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ　ｍｏｄｅ　ａｔ　７０ｅＶ，ａｎｄ　ａ　ｍａｓｓ　ｓｃａｎ　ｒａｎｇｅ
ｏｆ　２９－６００ａｍｕ　ｗａｓ　ｍｏｎｉｔｏｒｅｄ．Ｉｎｔｅｒｆａｃｅ　ａｎｄ　ｉｏｎ
ｓｏｕｒｃｅ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ　ｗｅｒｅ　２５０ ℃ ａｎｄ　２２０ ℃，
ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．
Ｐｒｅｌｉｍｉｎａｒｙ　ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ
ｗａｓ　ｍａｄｅ　ｂｙ　ｓｅａｒｃｈｉｎｇ　ｔｈｅ　ＮＩＳＴ０８ａｎｄ　ＷＩＥＬＹ
ｌｉｂｒａｒｙ　ｉｎ　ｔｈｅ　ＴｕｒｂｏＭａｓｓ　Ｖｅｒ　５．４．２ｓｏｆｔｗａｒｅ
ａｃｃｏｒｄｉｎｇ　ｔｏ　ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ　ｔｉｍｅ．Ｉｎ　ｏｒｄｅｒ　ｔｏ　ｅｎａｂｌｅ　ｔｏ
ｃｏｍｐａｒｅ　ｔｈｅ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆ　ｖｏｌａｔｉｌｅ　ｃｏｍｐｏ－
ｎｅｎｔｓ，α－ｐｉｎｅｎｅ（Ｆｌｕｋａ，ＵＳＡ）ｗａｓ　ｕｓｅｄ　ａｓ　ａｎ
ｅｘｔｅｒｎａｌ　ｓｔａｎｄａｒｄ．Ａｓ　ｗｅ　ｄｅｓｃｒｉｂｅｄ　ｐｒｅｖｉｏｕｓｌｙ［１９］
ｗｉｔｈ　ｓｏｍｅ　ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ，α－ｐｉｎｅｎｅ　ｗａｓ　ｄｉｓｓｏｌｖｅｄ
ｉｎ　ｅｔｈｙｌ　ａｃｅｔａｔｅ　ｗｉｔｈ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｓｏｌｕｔｉｏｎ　ｃｏｎｃｅｎ－
·４６７· 西　北　农　业　学　报 ２５卷
ｔｒａｔｉｏｎｓ．μｇ·ｈ
－１　ｗａｓ　ｕｓｅｄ　ａｓ　ｕｎｉｔ　ｔｏ　ｄｅｓｃｒｉｂｅ
ｔｈｅ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔ．
１．４　Ｇｅｎｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ
Ｔｏｔａｌ　ＲＮＡ　ｗａｓ　ｅｘｔｒａｃｔｅｄ　ｆｒｏｍ　ｔｅｐａｌｓ．ｃＤ－
ＮＡ　ｒｅｖｅｒｓｅ　ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ　ｆｒｏｍ　ｔｏｔａｌ　ＲＮＡ　ｗａｓ
ｕｓｅｄ　ａｓ　ｒｅａｃｔｉｏｎ　ｔｅｍｐｌａｔｅ．Ｐｒｉｍｅｒｓ　ｏｆ　ＲＴＴＰＳ－Ｆ
ａｎｄ　ＲＴＴＰＳ－Ｓ　ｗｅｒｅ　ｄｅｓｉｇｎｅｄ　ｆｏｒ　ｒｅａｌ－ｔｉｍｅ　ＰＣＲ
ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ．Ｒｅａｃｔｉｏｎ　ｓｙｓｔｅｍ　ｗａｓ　２５μＬ，ｔｈｅ　ａ－
ｍｏｕｎｔ　ｏｆ　ｅａｃｈ　ｒｅａｇｅｎｔ　ｗａｓ　ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｄ　ＳＹＢＲ○Ｒ
Ｐｒｅｍｉｘ　Ｅｘ　ＴａｑＴＭＩＩ　ｉｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ．Ｒｅａｌ－ｔｉｍｅ　ＰＣＲ
ｗａｓ　ｐｒｏｃｅｅｄ　ｏｎ　Ｂｉｏ－Ｒａｄ　ａｐｐａｒａｔｕｓ，ｔｈｅ　ｐｒｏｇｒａｍ
ｗａｓ　ａｆｔｅｒ　９５℃ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　３ｍｉｎ，４０ｃｙｃｌｅｓ　ｏｆ
９５℃ｆｏｒ　３０ｓ，５５℃ｆｏｒ　３０ｓ，７２℃ｆｏｒ　３０ｓ，
ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　ｓｉｇｎａｌ　ａｃｑｕｉｓｉｔｉｏｎ　ｉｎ　５５ ℃．Ｍｅｌｔｉｎｇ
ｃｕｒｖｅ　ｗａｓ　ｄｒａｗｎ　ａｆｔｅｒ　ｔｈｅ　ｒｅａｃｔｉｏｎ．Ｔｈｒｅｅ　ｓａｍｐｌｅ
ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ　ｗｅｒｅ　ｒｕｎ．Ｔｈｅ　ｒｅｌａｔｉｖｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ
ｌｅｖｅｌ　ｗａｓ　ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ　ｂｙ　ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ　ｇｅｎｅ　ｏｆ
β－Ａｃｔｉｎ．
２　Ｒｅｓｕｌｔｓ　ａｎｄ　ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｆｉｇ．１ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈｅ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｉｃ　ｐｒｏｆｉｌｅｓ
ｏｆ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｅｍｉｔｔｅｄ　ｆｒｏｍＬｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’
Ｆｉｇ．１　Ｔｏｔａｌ　ｉｏｎ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｉｃ　ｐｒｏｆｉｌｅｓ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ
ｅｍｉｔｔｅｄ　ｆｒｏｍＬｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ‘ｄｕｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ
·５６７·
５期
ＬＩ　Ｔｉａｎｊｉａｏ，ｅｔ　ａｌ：Ｄｉｕｒｎａｌ　Ｃｈａｎｇｅｓ　ｏｆ　Ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　Ｅｍｉｓｓｉｏｎ
ａｎｄ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’
ａｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｔｉｍｅ　ｐｏｉｎｔｓ，ａｎｄ　ａ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ｄｉｆｆｅｒ－
ｅｎｃｅ　ｗａｓ　ｆｏｕｎｄ．Ｔｈｅ　ｔｏｔａｌ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔ　ｏｆ
ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｆｉｒｓｔ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　ａｎｄ　ｔｈｅｎ　ｄｅｃｒｅａｓｅｄ
ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ（Ｆｉｇ．２，Ｐ＜０．０５）．Ｔｈｅ　ｈｉｇｈ
ｌｅｖｅｌ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｗａｓ　ｆｏｕｎｄ　ａｔ
１１：３０，１３：３０，１５：３０，ａｎｄ　１７：３０，ｆｏｌｏｗｅｄ　ｂｙ　ａ
ｓｕｄｄｅｎ　ｄｅｃｒｅａｓｅ　ａｔ　１９：３０．Ｔｈｅ　ｍａｘｉｍｕｍ　ｒｅｌｅａｓｅ
ａｍｏｕｎｔ　ａｔ　１５：３０ｗａｓ　ａｂｏｕｔ　２５－ａｎｄ　１２－ｆｏｌｄ　ｈｉｇｈ－
ｅｒ　ｔｈａｎ　ｔｈａｔ　ａｔ　７：３０ａｎｄ　１９：３０ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．
　　Ｅａｃｈ　ｐｏｉｎｔ　ｉｓ　ｔｈｅ　ａｖｅｒａｇｅ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．
Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ［ｌｅａｓｔ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ（ＬＳＤ）ｔｅｓｔ］ｏｆ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ａｍｏｎｇ　ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ　ｓｔａｇｅｓ　ｉｓ　ｉｎｄｉｃａｔｅｄ　ｂｙ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｌｏｗｅｒ－
ｃａｓｅ　ｌｅｔｔｅｒｓ（Ｐ＜０．０５）．Ｓｔａｎｄａｒｄ　ｅｒｒｏｒｓ　ａｒｅ　ｓｈｏｗｎ．
Ｆｉｇ．２　Ｔｈｅ　ｔｏｔａｌ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ
ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｆｌｏｗｅｒｓ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ
　　Ｔｈｅ　ｖｉｓｉｂｌｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ｉｎ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｉｃ
ｐｒｏｆｉｌｅｓ　ｗａｓ　ｆｏｕｎｄ．Ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｄｅｔｅｃｔｅｄ　ｂｙ
ＧＣ／ＭＳ　ｗａｓ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ｆｏｒ　２０ｍｉｎ　ａｔ　ａ　ｆｌｏｗ　ｒａｔｅ　ｏｆ
３００ｍＬ·ｍｉｎ－１．
　 　Ｓｅｖｅｎ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ，ｉｎｃｌｕｄｉｎｇα－ｐｉｎｅｎｅ，
β－ｍｙｒｃｅｎｅ， ｄ－ｌｉｍｏｎｅｎｅ， ｏｃｉｍｅｎｅ， ｌｉｎａｌｏｏｌ，
Ｅ，Ｅ－２，６－ｄｉｍｅｔｈｙｌ－１，３，５，７－ｏｃｔａｔｅｔｒａｅｎｅ，ａｎｄ　ａｌ－
ｌｏｏｃｉｍｅｎｅ　ｗｅｒｅ　ｄｅｔｅｃｔｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｏｆ
Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’，ａｎｄ　ｔｈｅｉｒ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ａｌｓｏ
ｆｉｒｓｔ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　ａｎｄ　ｔｈｅｎ　ｄｅｃｒｅａｓｅｄ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ
ｄａｙｔｉｍｅ（Ｆｉｇ．３）．Ｔｈｅｉｒ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ
ｔｈｅ　ｈｉｇｈ　ｌｅｖｅｌ　ａｔ　１１：３０，１３：３０，ａｎｄ　１５：３０，
ｗｈｉｃｈ　ｗｅｒｅ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ　ｔｈａｎ　ｔｈａｔ　ａｔ　ｏｔｈｅｒ　ｔｉｍｅ
ｐｏｉｎｔｓ（Ｐ＜０．０５）．Ｔｈｅ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆα－ｐｉ－
ｎｅｎｅ，ｄ－ｌｉｍｏｎｅｎｅ，ａｎｄ　ａｌｏｏｃｉｍｅｎｅ　ａｒｒｉｖｅｄ　ａｔ　ｔｈｅ
ｐｅａｋｓ　ａｔ　１３：３０，ｗｈｉｌｅ　ｔｈｅ　ｍａｘｉｍｕｍ　ｒｅｌｅａｓｅ
ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆβ－ｍｙｒｃｅｎｅ，ｏｃｉｍｅｎｅ，ｌｉｎａｌｏｏｌ，ａｎｄ
Ｅ，Ｅ－２，６－ｄｉｍｅｔｈｙｌ－１，３，５，７－ｏｃｔａｔｅｔｒａｅｎｅ　ｏｃｃｕｒｒｅｄ
ａｔ　１５：３０．Ａｍｏｎｇ　ｔｈｅｓｅ　ｓｅｖｅｎ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ，ｏｃｉ－
ｍｅｎｅ　ａｎｄ　ｌｉｎａｌｏｏｌ　ｐｒｅｓｅｎｔｅｄ　ｔｈｅ　ｈｉｇｈ　ｌｅｖｅｌ　ｏｆ　ｒｅ－
ｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｏｎｔ，ｗｈｏｓｅ　ｍａｘｉｍｕｍｓ　ｂｏｔｈ　ｅｘｃｃｅｅｄ－
ｅｄ　３００μｇ·ｈ
－１，ｆｏｌｏｗｅｄ　ｂｙβ－ｍｙｒｃｅｎｅ，ａｎｄ　ｔｈｅ
ｓｕｍ　ｏｆ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆ　ｔｈｅｓｅ　３ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ
ａｃｃｏｕｎｔｅｄ　ｆｏｒ　８４％ｏｆ　ｔｈｅ　ｔｏｔａｌ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔ　ｏｆ
ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ．
　　Ｉｎ　ｏｒｄｅｒ　ｔｏ　ｅｘｐｌｏｒｅ　ｔｈｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍ
ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ，ｔｈｅ　ｅｘｐｒｅｓ－
ｓｉｏｎ　ｏｆ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ，ａ　ｎｅｗ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ
ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ，ｗａｓ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ．Ｆｉｇ．４ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈｅ
ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｐａｔｔｅｒｎ　ｏｆ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｔｅｐａｌｓ
ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ　ａｔ　ｆｕｌ　ｏｐｅｎｉｎｇ　ｓｔａｇｅ．Ｗｅ
ｆｏｕｎｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｆｉｒｓｔ
ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　ａｎｄ　ｔｈｅｎ　ｄｅｃｒｅａｓｅｄ　ｆｒｏｍ　７：３０ｔｏ
１９：３０．Ｔｈｅ　ｇｅｎｅｒａｌ　ｐａｔｔｅｒｎ　ｗａｓ　ｓｉｍｉｌａｒ　ｔｏ　ｔｈｅ
ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ．
３　Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
Ｒｅｌｅａｓｉｎｇ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｉｓ　ａｎ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｆｅａ－
ｔｕｒｅ　ｏｆ　ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ　ｐｌａｎｔｓ［２０］．Ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｉｓ　ａ
ｍｉｘｔｕｒｅ　ｏｆ　ｖｏｌａｔｉｌｅ　ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ，ｉｔ　ｂｅｌｏｎｇｓ　ｔｏ　ｔｅｒ－
ｐｅｎｏｉｄｓ，ａｒｏｍａｔｉｃｓ，ａｎｄ　ｆａｔｔｙ　ａｃｉｄ　ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ
ｗｉｔｈ　ｌｏｗ　ｖａｐｏｕｒ　ｐｒｅｓｓｕｒｅ　ａｎｄ　ｌｏｗ　ｍａｓｓ　ｏｆ　ｍｏｌｅ－
ｃｕｌｅ［２１］．Ｍｏｒｅ　ａｎｄ　ｍｏｒｅ　ｒｅｓｅａｒｃｈｅｓ　ｆｏｃｕｓ　ｏｎ　ｆｌｏ－
ｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｉｎ　ｒｅｃｅｎｔ　ｙｅａｒｓ［４，２２－２４］．Ｔｈｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ
ｍｅｃｈａｎｉｓｍ　ｉｓ　ｔｈｅ　ａｔｔｒａｃｔｉｖｅ　ｆｉｅｌｄ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ
ｒｅｓｅａｒｃｈ． Ｔｅｒｐｅｎｏｉｄ　 ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ， ｅｓｐｅｃｉａｌｙ
ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ａｒｅ　ｔｈｅ　ｍａｉｎ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｃｏｍｐｏ－
ｎｅｎｔｓ　ｏｆ　ｍａｎｙ　ｐｌａｎｔｓ［２５］．Ｉｎ　ｔｈｉｓ　ｓｔｕｄｙ，ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ
ｓｃｅｎｔ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｏｆ　Ｌｉｌｉｕｍ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ａｎｄ　ｔｈｅ　ｅｐｒｅｓ－
ｓｉｏｎ　ｏｆ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ，ａ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ
ｇｅｎｅ，ｗｅｒｅ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ．
Ａｍｏｎｇ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ　ｏｆ　Ｌｉｌｉ－
ｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’，ｓｅｖｅｎ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｎｅｓ　ｗｅｒｅ　ｉｄｅｎｔｉ－
ｆｉｅｄ．Ｍｏｒｅｏｖｅｒ，ｏｃｉｍｅｎｅ，ｌｉｎａｌｏｏｌ，ａｎｄβ－ｍｙｒｃｅ－
ｎｅ　ｗｅｒｅ　ｆｏｕｎｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｅｍｉｔｔｅｄ　ｉｎ　ｈｉｇｈ　ｌｅｖｅｌ　ｏｆ
ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ，ｓｏ　ｗｅ　ｔｈｉｎｋ　ｉｔ　ｉｓ　ｔｈｅ　ｄｏｍｉｎａｎｔ
ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｏｆ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉ－
ｂｅｒｉａ’．Ｉｎ　ｔｈｅ　ｐｒｅｖｉｏｕｓ　ｓｔｕｄｉｅｓ，ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｉｓ
ａｌｓｏ　ｆｏｕｎｄ　ｔｏ　ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ　ｔｏ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ
ｓｃｅｎｔ　ｏｆ　ｎｕｍｅｒｏｕｓ　ｐｌａｎｔ　ｓｐｅｃｉｅｓ［３，２５－２６］．Ｉｎ
Ｃ．ｂｒｅｗｅｒｉ，ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｂｏｕｑｕｅｔ　ｉｓ　ｄｏｍｉｎａｔｅｄ
ｂｙ　ｌｉｎａｌｏｏｌ［２７］，ｗｈｉｌｅ　ｉｎ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ，
β－ｏｃｉｍｅｎｅ　ａｎｄ　ｍｙｒｃｅｎｅ　ａｃｃｏｕｎｔ　ｆｏｒ　２０ａｎｄ　８％ｏｆ
·６６７· 西　北　农　业　学　报 ２５卷
ｔｈｅ　ｔｏｔａｌ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ，ｗｈｉｃｈ　ａｒｅ　ｔｈｅ
ｄｏｍｉｎａｎｔ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｆｒａｃ－
ｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｂｏｕｑｕｅｔ［２８］．
　　Ｔｈｅ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆα－ｐｉｎｅｎｅ（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ　ｔｉｍｅ　８．９１），β－ｍｙｒｃｅｎｅ（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ　ｔｉｍｅ　１０．１３），ｄ－ｌｉｍｏｎｅｎｅ（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ　ｔｉｍｅ　１１．４９），ｏｃｉ－
ｍｅｎｅ（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ　ｔｉｍｅ　１１．８２），ｌｉｎａｌｏｏｌ（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ　ｔｉｍｅ　１４．１３），Ｅ，Ｅ－２，６－ｄｉｍｅｔｈｙｌ－１，３，５，７－ｏｃｔａｔｅｔｒａｅｎｅ（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ　ｔｉｍｅ　１４．７０），ａｎｄ　ａｌ－
ｌｏｏｃｉｍｅｎｅ（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ　ｔｉｍｅ　１５．６８）．Ｅａｃｈ　ｐｏｉｎｔ　ｉｓ　ｔｈｅ　ａｖｅｒａｇｅ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ．Ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅ［ｌｅａｓｔ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ
ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ（ＬＳＤ）ｔｅｓｔ］ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ　ａｍｏｎｇ　ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ　ｓｔａｇｅｓ　ｉｓ　ｉｎｄｉｃａｔｅｄ　ｂｙ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｌｏｗｅｒｃａｓｅ　ｌｅｔｔｅｒｓ（Ｐ＜０．０５）．Ｓｔａｎｄａｒｄ　ｅｒｒｏｒｓ　ａｒｅ
ｓｈｏｗｎ
Ｆｉｇ．３　Ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆ　７ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｆｌｏｗｅｒｓ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ
　　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｌｅｖｅｌ　ａｔ　７：３０ｗａｓ　ｔａｋｅｎ　ａｓ　１．Ｅａｃｈ　ｐｏｉｎｔ　ｉｓ　ｔｈｅ
ａｖｅｒａｇｅ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ　ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ
Ｆｉｇ．４　Ｄａｙｔｉｍｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ
ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｔｅｐａｌｓ
　　Ｍｏｒｅｏｖｅｒ，ｔｈｅ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒ－
ｐｅｎｅｓ　ｗｅｒｅ　ｆｏｕｎｄ　ｔｏ　ｉｎｃｒｅａｓｅ　ｆｉｒｓｔｌｙ　ｔｈｅｎ
ｄｅｃｒｅａｓｅ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｄａｙｔｉｍｅ，ａｎｄ　ｔｈｅ　ｐｅａｋ
ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔ　ａｐｐｅａｒｅｄ　ａｔ　ａｂｏｕｔ　１５：３０．Ｓｉｍｉｌａｒ
ｃｈａｎｇｅ　ｐａｔｔｅｒｎ　ｗａｓ　ｆｏｕｎｄ　ｉｎ　ｍｙｒｃｅｎｅ　ａｎｄ（Ｅ）－β－
ｏｃｉｍｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｆｒｏｍＡ．ｍａｊｕｓ　ｆｌｏｗｅｒｓ，ｗｈｏｓｅ
ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｐｅａｋｅｄ　ａｔ　１５：００［２９］．Ｉｎ　ｔｈｅ　ｆｌｏｗ－
ｅｒｓ　ｏｆ　ｋｉｗｉｆｒｕｉｔ，ｔｈｅ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆ（Ｅ）－β－
ｏｃｉｍｅｎｅ　ｒｅａｃｈ　ｔｈｅ　ｈｉｇｈ　ｌｅｖｅｌ　ａｔ　１２：００［１５］．Ｉｔ　ｈａｓ
ｂｅｅｎ　ｒｅｐｏｒｔｅｄ　ｔｈａｔ　ｇｅｎｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒ－
ｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｐｌａｙｓ　ａ　ｋｅｙ　ｒｏｌｅ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ
ｐａｔｔｅｒｎ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ［１２，２９］．Ｔｈｅ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ
ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｍＲＮＡ　ｌｅｖｅｌｓ　ｉｎ　ｕｐｐｅｒ　ａｎｄ　ｌｏｗｅｒ　ｐｅｔａｌ
ｌｏｂｅｓ　ｏｆ　Ａ．ｍａｊｕｓ　ｓｈｏｗ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｐａｔｔｅｒｎ　ｗｉｔｈ
ｔｈｅ　ｒｅｌｅａｓｅ　ａｍｏｕｎｔｓ　ｏｆ　ｍｙｒｃｅｎｅ　ａｎｄ（Ｅ）－β－ｏｃｉ－
ｍｅｎｅ［２９］．Ａ　ｐｏｓｉｔｉｖｅ　ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｍｏｎｏｔ－
ｅｒｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ａｎｄ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｗａｓ
ａｌｓｏ　ｆｏｕｎｄ　ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｆｌｏｗｅｒｓ　ｄｕｒｉｎｇ
ｄａｙｔｉｍｅ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｉｍｐｌｉｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｃｈａｎｇｅｓ　ｉｎ
ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔ　ｌｅｖｅｌ　ａｒｅ　ｍａｉｎ　ｄｅｔｅｒｍｉｎａｎｔｓ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔ－
ｅｒｐｅｎｅ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ．Ｂｕｔ　ｉｎ　ｔｈｉｓ
ｓｔｕｄｙ，ｔｈｏｕｇｈ　ｓｉｍｉｌａｒ　ｐａｔｔｅｒｎ　ｗａｓ　ｆｏｕｎｄ　ｂｅ－
ｔｗｅｅｎ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ａｎｄ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　ｅｘ－
ｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｅｘｉｓｔ　ｔｉｍｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ．Ｔｈｅ　ｈｉｇｈｅｓｔ　ｅｘ－
ｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｌｅｖｅｌ　ｏｆ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　ｏｃｃｕｒｒｅｄ　ａｔ　１３：３０，
ｗｈｉｃｈ　ｗａｓ　ｅａｒｌｉｅｒ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｐｅａｋ　ｔｉｍｅ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒ－
·７６７·
５期
ＬＩ　Ｔｉａｎｊｉａｏ，ｅｔ　ａｌ：Ｄｉｕｒｎａｌ　Ｃｈａｎｇｅｓ　ｏｆ　Ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　Ｅｍｉｓｓｉｏｎ
ａｎｄ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’
ｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ．Ｓｏ　ｏｔｈｅｒ　ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍ
ｍａｙ　ｂｅ　ｉｎｖｏｌｖｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｏｆ
Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’．Ｉｎ　ｔｈｅ　ｐｒｅｖｉｏｕｓ　ｓｔｕｄｙ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ
ｓｃｅｎｔ，ｔｈｅ　ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＭｅＳＡ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｉｎ　Ａ．
ｍａｊｕｓ　ｆｌｏｗｅｒ　ｉｓ　ｆｏｕｎｄ　ｔｏ　ｏｃｃｕｒ　ａｔ　ｔｈｅ　ｓｕｂｓｔｒａｔｅ，
ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌ，ａｎｄ　ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ　ｌｅｖｅｌｓ，ｉｎｄｉｃａ－
ｔｉｎｇ　ｔｈａｔ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ａｔ　ｍｏｒｅ　ｔｈａｎ　ｏｎｅ　ｌｅｖｅｌ　ｉｓ　ｎｅｃｅｓ－
ｓａｒｙ　ｔｏ　ｇｕａｒａｎｔｅｅ　ｔｈｅ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ［２８］．Ｓｏ
ｔｈｅ　ｐｏｓｓｉｂｌｅ　ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ　ａｔ　ｔｈｅ　ｓｕｂ－
ｓｔｒａｔｅ，ｐｏｓｔ－ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌ，ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ，ａｎｄ
ｐｏｓｔ－ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎａｌ　ｌｅｖｅｌｓ　ｒｅｍａｉｎｅｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｉｎｖｅｓｔｉ－
ｇａｔｅｄ．
４　Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎｓ
Ｉｎ　ｇｅｎｅｒａｌ，ｉｔ　ｗａｓ　ｆｏｕｎｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｍｏｎｏｔｅｒ－
ｐｎｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｆｒｏｍ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｆｌｏｗｅｒｓ
ｓｈｏｗｅｄ　ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ　ｄａｙｔｉｍｅ　ｐａｔｔｅｒｎ．Ｔｈｅ　ｅｘ－
ｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｌｅｖｅｌ　ｏｆ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　ｓｈｏｗｅｄ　ｓｉｍｉｌａｒ　ｐａｔ－
ｔｅｒｎ　ｔｏ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ．Ｓｏ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　ｅｘ－
ｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｐｌａｙｓ　ａｎ　ｉｍｐｏｒｔａｎｔ　ｒｏｌｅ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｍｏｎｏｔｅｒ－
ｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ．Ｂｕｔ　ｏｔｈｅｒ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ　ｍａｙ　ａｌｓｏ
ｂｅ　ｉｎｖｏｌｖｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ，ｗｈｉｃｈ
ｎｅｅｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｄ　ｉｎ　ｆｕｔｕｒｅ　ｓｔｕｄｙ．
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ　参考文献：
［１］　ＤＵＤＡＲＥＶＡ　Ｎ，ＰＩＣＨＥＲＳＫＹ　Ｅ，ＧＥＲＳＨＥＮＺＯＮ　Ｊ．Ｂｉｏ－
ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　ｏｆ　ｐｌａｎｔ　ｖｏｌａｔｉｌｅｓ［Ｊ］．Ｐｌａｎｔ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，２００４，
１３５（４）：１８９３－１９０２．
［２］　ＤＥ　ＶＥＧＡ　Ｃ，ＨＥＲＲＥＲＡ　Ｃ　Ｍ，ＤＴＴＥＲＬ　Ｓ，ｅｔ　ａｌ．Ｆｌｏｒａｌ
ｖｏｌａｔｉｌｅｓ　ｐｌａｙ　ａ　ｋｅｙ　ｒｏｌｅ　ｉｎ　ｓｐｅｃｉａｌｉｚｅｄ　ａｎｔ　ｐｏｌｉｎａｔｉｏｎ［Ｊ］．
Ｐｅｒｓｐｅｃｔｉｖｅｓ　ｉｎ　Ｐｌａｎｔ　Ｅｃｏｌｏｇｙ，Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃｓ，
２０１４，１６（１）：３２－４２．
［３］　ＹＵ　Ｆ　Ｎ，ＵＴＳＵＭＩ　Ｒ．Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ，ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ，ａｎｄ　ｇｅｎｅｔｉｃ　ｍａ－
ｎｉｐｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｐｌａｎｔ　ｍｏｎｏ－ａｎｄ　ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｏｉｄ　ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ
［Ｊ］．Ｃｅｌｌｕｌａｒ　ａｎｄ　Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，２００９，６６（１８）：
３０４３－３０５２．
［４］　ＳＨＡＲＫＥＹ　Ｔ　Ｄ，ＧＲＡＹ　Ｄ　Ｗ，ＰＥＬＬ　Ｈ　Ｋ，ｅｔ　ａｌ．Ｉｓｏｐｒｅｎｅ
ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅｓ　ｆｏｒｍ　ａ　ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃ　ｃｌａｄｅ　ｏｆ　ａｃｙｃｌｉｃ　ｔｅｒｐｅｎｅ
ｓｙｎｔｈａｓｅｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　Ｔｐｓ－ｂ　ｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｆａｍｉｌｙ［Ｊ］．Ｅｖｏｌｕ－
ｔｉｏｎ，２０１３，６７（４）：１０２６－１０４０．
［５］　ＦＥＮＧ　Ｌ　Ｇ，ＣＨＥＮ　Ｃ，ＬＩ　Ｔ　Ｌ，ｅｔ　ａｌ．Ｆｌｏｗｅｒｙ　ｏｄｏｒ　ｆｏｒｍａｔｉｏｎ
ｒｅｖｅａｌｅｄ　ｂｙ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｂｉｏｓｙｎ－
ｔｈｅｔｉｃ　ｇｅｎｅｓ　ａｎｄ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｒｏｓｅ（Ｒｏｓａ
ｒｕｇｏｓａ　Ｔｈｕｎｂ．）［Ｊ］．Ｐｌａｎｔ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，
２０１４，７５：８０－８８．
［６］　ＡＨＡＲＯＮＩ　Ａ，ＪＯＮＧＳＭＡ　Ｍ　Ａ，ＢＯＵＷＭＥＥＳＴＥＲ　Ｈ　Ｊ．
Ｖｏｌａｔｉｌｅ　ｓｃｉｅｎｃｅ？Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ　ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ　ｏｆ　ｔｅｒｐｅｎｏｉｄｓ　ｉｎ
ｐｌａｎｔｓ［Ｊ］．Ｔｒｅｎｄｓ　ｉｎ　Ｐｌａｎｔ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００５，１０（１２）：５９４－
６０２．
［７］　ＣＨＥＮ　Ｆ，ＴＨＯＬＬ　Ｄ，ＢＯＨＬＭＡＮＮ　Ｊ，ｅｔ　ａｌ．Ｔｈｅ　ｆａｍｉｌｙ　ｏｆ
ｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅｓ　ｉｎ　ｐｌａｎｔｓ：ａ　ｍｉｄ－ｓｉｚｅ　ｆａｍｉｌｙ　ｏｆ　ｇｅｎｅｓ　ｆｏｒ
ｓｐｅｃｉａｌｉｚｅｄ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ　ｔｈａｔ　ｉｓ　ｈｉｇｈｌｙ　ｄｉｖｅｒｓｉｆｉｅｄ　ｔｈｒｏｕｇｈｏｕｔ
ｔｈｅ　ｋｉｎｇｄｏｍ［Ｊ］．Ｐｌａｎｔ　Ｊｏｕｒｎａｌ，２０１１，６６（１）：２１２－２２９．
［８］　ＢＯＨＬＭＡＮＮ　Ｊ，ＭＥＹＥＲ－ＧＡＵＥＮ　Ｇ，ＣＲＯＴＥＡＵ　Ｒ．Ｐｌａｎｔ
ｔｅｒｐｅｎｏｉｄ　ｓｙｎｔｈａｓｅｓ：ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｂｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ
ａｎａｌｙｓｉｓ［Ｊ］．Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉ－
ｅｎｃｅｓ，１９９８，９５（８）：４１２６－４１３３．
［９］　ＦＡＣＣＨＩＮＩ　Ｐ　Ｊ，ＣＨＡＰＰＥＬＬ　Ｊ．Ｇｅｎｅ　ｆａｍｉｌｙ　ｆｏｒ　ａｎ　ｅｌｉｃｉｔｏｒ－
ｉｎｄｕｃｅｄ　ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅ　ｃｙｃｌａｓｅ　ｉｎ　ｔｏｂａｃｃｏ［Ｊ］．Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ
ｏｆ　ｔｈｅ　Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，１９９２，８９（２２）：
１１０８８－１１０９２．
［１０］　ＤＥＧＥＮＨＡＲＤＴ　Ｊ，ＫＬＬＮＥＲ　Ｔ　Ｇ，ＧＥＲＳＨＥＮＺＯＮ　Ｊ．
Ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ａｎｄ　ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅｓ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｏｒｉｇｉｎ
ｏｆ　ｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｋｅｌｅｔａｌ　ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｉｎ　ｐｌａｎｔｓ［Ｊ］．Ｐｈｙｔｏｃｈｅｍｉｓ－
ｔｒｙ，２００９，７０（１５）：１６２１－１６３７．
［１１］　ＰＩＣＨＥＲＳＫＹ　Ｅ，ＬＥＷＩＮＳＯＨＮ　Ｅ，ＣＲＯＴＥＡＵ　Ｒ．Ｐｕｒｉｆｉ－
ｃａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｓ－ｌｉｎａｌｏｏｌ　ｓｙｎｔｈａｓｅ，ａｎ　ｅｎ－
ｚｙｍｅ　ｉｎｖｏｌｖｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｉｎ　Ｃｌａｒｋｉａ
ｂｒｅｗｅｒｉ［Ｊ］．Ａｒｃｈｉｖｅｓ　ｏｆ　Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　ａｎｄ　Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃｓ，
１９９５，３１６（２）：８０３－８０７．
［１２］　ＤＵＤＡＲＥＶＡ　Ｎ，ＣＳＥＫＥ　Ｌ，ＢＬＡＮＣ　Ｖ　Ｍ，ｅｔ　ａｌ．Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ
ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｉｎ　Ｃｌａｒｋｉａ：ｎｏｖｅｌ　ｐａｔｔｅｒｎｓ　ｏｆ　Ｓ－ｌｉｎａｌｏｏｌ　ｓｙｎ－
ｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｉｎ　ｔｈｅ　Ｃ．ｂｒｅｗｅｒｉ　ｆｌｏｗｅｒ［Ｊ］．Ｔｈｅ
Ｐｌａｎｔ　Ｃｅｌｌ，１９９６，８（７）：１１３７－１１４８．
［１３］　ＴＨＯＬＬ　Ｄ，ＣＨＥＮ　Ｆ，ＰＥＴＲＩ　Ｊ，ｅｔ　ａｌ．Ｔｗｏ　ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅ
ｓｙｎｔｈａｓｅｓ　ａｒｅ　ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｃｏｍｐｌｅｘ　ｍｉｘｔｕｒｅ　ｏｆ　ｓｅｓ－
ｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｅｍｉｔｔｅｄ　ｆｒｏｍ　Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ　ｆｌｏｗｅｒｓ［Ｊ］．Ｔｈｅ
Ｐｌａｎｔ　Ｊｏｕｒｎａｌ，２００５，４２（５）：７５７－７７１．
［１４］　ＬＡＮＤＭＡＮＮ　Ｃ，ＦＩＮＫ　Ｂ，ＦＥＳＴＮＥＲ　Ｍ，ｅｔ　ａｌ．Ｃｌｏｎｉｎｇ
ａｎｄ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　ｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅｓ
ｆｒｏｍ　ｌａｖｅｎｄｅｒ（Ｌａｖａｎｄｕｌａ　ａｎｇｕｓｔｉｆｏｌｉａ）［Ｊ］．Ａｒｃｈｉｖｅｓ　ｏｆ
Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ　ａｎｄ　Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃｓ，２００７，４６５（２）：４１７－４２９．
［１５］　ＮＩＥＵＷＥＮＨＵＩＺＥＮ　Ｎ　Ｊ，ＷＡＮＧ　Ｍ　Ｙ，ＭＡＴＩＣＨ　Ａ　Ｊ，ｅｔ
ａｌ．Ｔｗｏ　ｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅｓ　ａｒｅ　ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｍａｊｏｒ
ｓｅｓｑｕｉｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｅｍｉｔｔｅｄ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｆｌｏｗｅｒｓ　ｏｆ　ｋｉｗｉｆｒｕｉｔ（Ａｃ－
ｔｉｎｉｄｉａ　ｄｅｌｉｃｉｏｓａ）［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｂｏｔａｎｙ，
２００９，６０（１１）：３２０３－３２１９．
［１６］　ＡＲＯＳ　Ｄ，ＧＯＮＺＡＬＥＺ　Ｖ，ＲＵＤＯＬＦ　Ｋ，ｅｔ　ａｌ．Ｖｏｌａｔｉｌｅ
ｅｍｉｓｓｉｏｎｓ　ｏｆ　ｓｃｅｎｔｅｄ　Ａｌｓｔｒｏｅｍｅｒｉａ　ｇｅｎｏｔｙｐｅｓ　ａｒｅ　ｄｏｍｉｎａ－
ｔｅｄ　ｂｙ　ｔｅｒｐｅｎｅｓ，ａｎｄ　ａ　ｍｙｒｃｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅ　ｉｓ　ｈｉｇｈｌｙ　ｅｘ－
ｐｒｅｓｓｅｄ　ｉｎ　ｓｃｅｎｔｅｄ　Ａｌｓｔｒｏｅｍｅｒｉａｆｌｏｗｅｒｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ
Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｂｏｔａｎｙ，２０１２，６３（７）：２７３９－２７５２．
［１７］　ＫＯＮＧ　Ｙ，ＳＵＮ　Ｍ，ＰＡＮ　Ｈ　Ｔ，ｅｔ　ａｌ．Ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ　ａｎｄ
ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｒｈｙｔｈｍ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｖｏｌａｔｉｌｅｓ　ｆｒｏｍ　ｅｉｇｈｔ　ｌｉｌｙ　ｃｕｔ
ｆｌｏｗｅｒｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ａｍｅｒｉｃａｎ　Ｓｏｃｉｅｔｙ　ｆｏｒ　Ｈｏｒｔｉ－
ｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１２，１３７（６）：３７６－３８２．
［１８］　张辉秀，胡增辉，冷平生，等．不同品种百合花挥发性成分
定性与定量分析［Ｊ］．中国农业科学，２０１３，４６（４）：７９０－
７９９．
ＺＨＡＮＧ　Ｈ　Ｘ，ＨＵ　Ｚ　Ｈ，ＬＥＮＧ　Ｐ　ＳＨ，ｅｔ　ａｌ．Ｑｕａｌｉｔａｔｉｖｅ
ａｎｄ　ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｖｏｌａｔｉｌｅ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ
ｆｒｏｍ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｖａｒｉｅｔｉｅｓ　ｏｆ　Ｌｉｌｉｕｍｓｐｐ．［Ｊ］．Ｓｃｉｅｎｔｉａ　Ａｇｒｉ－
ｃｕｌｔｕｒａ　Ｓｉｎｉｃａ，２０１３，４６（４）：７９０－７９９ （ｉｎ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　ｗｉｔｈ
Ｅｎｇｌｉｓｈ　ａｂｓｔｒａｃｔ）．
［１９］　ＨＵ　Ｚ　Ｈ，ＺＨＡＮＧ　Ｈ　Ｘ，ＬＥＮＧ　Ｐ　Ｓ，ｅｔ　ａｌ．Ｔｈｅ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｏｆ
ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｆｒｏｍＬｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’ｉｎ　ｒｅｓｐｏｎｓｅ　ｔｏ　ｌｉｇｈｔ　ｉｎ－
·８６７· 西　北　农　业　学　报 ２５卷
ｔｅｎｓｉｔｙ　ａｎｄ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ［Ｊ］．Ａｃｔａ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａｅ　Ｐｌａｎｔａ－
ｒｕｍ，２０１３，３５（５）：１６９１－１７００．
［２０］　ＫＮＵＤＳＥＮ　Ｊ　Ｔ，ＥＲＩＫＳＳＯＮ　Ｒ，ＧＥＲＳＨＥＮＺＯＮ　Ｊ，ｅｔ　ａｌ．
Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ　ａｎｄ　ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ［Ｊ］．Ｔｈｅ　Ｂｏｔａｎｉ－
ｃａｌ　Ｒｅｖｉｅｗ，２００６，７２（１）：１－１２０．
［２１］　ＴＨＯＬＬ　Ｄ，ＫＩＳＨ　Ｃ　Ｍ，ＯＲＬＯＶＡ　Ｉ，ｅｔ　ａｌ．Ｆｏｒｍａｔｉｏｎ　ｏｆ
ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｉｎ　Ａｎｔｉｒｒｈｉｎｕｍ　ｍａｊｕｓ　ａｎｄ　Ｃｌａｒｋｉａ　ｂｒｅｗｅｒｉ
ｆｌｏｗｅｒｓ　ｉｎｖｏｌｖｅｓ　ｈｅｔｅｒｏｄｉｍｅｒｉｃ　ｇｅｒａｎｙｌ　ｄｉｐｈｏｓｐｈａｔｅ　ｓｙｎ－
ｔｈａｓｅｓ［Ｊ］．Ｔｈｅ　Ｐｌａｎｔ　Ｃｅｌｌ，２００４，１６（４）：９７７－９９２．
［２２］　徐　瑾，李莹莹，郑成淑，等．菊花不同花期及花序不同部
位香气成分和挥发研究［Ｊ］．西北植物学报，２０１２，３２（４）：
７２２－７３０．
ＸＵ　Ｊ，ＬＩ　Ｙ　Ｙ，ＺＨＥＮＧ　ＣＨ　ＳＨ，ｅｔ　ａｌ．Ｓｔｕｄｉｅｓ　ｏｆ　ａｒｏｍａ
ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ　ｉｎ　Ｃｈｒｙｓａｎｔｈｅｍｕｍｉｎ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｆｌｏｒｅｓｃｅｎｃｅ　ａｎｄ
ｉｎｆｌｏｒｅｓｃｅｎｃｅ　ｐａｒｔｓ　ａｎｄ　ａｒｏｍａ　ｒｅｌｅａｓｉｎｇ［Ｊ］．Ａｃｔａ　Ｂｏｔａｎｉｃａ
Ｂｏｒｅａｌｉ－Ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉａ　Ｓｉｎｉｃａ，２０１２，３２（４）：７２２－７３０（ｉｎ　Ｃｈｉ－
ｎｅｓｅ　ｗｉｔｈ　Ｅｎｇｌｉｓｈ）．
［２３］　ＤＥＭＩＳＳＩＥ　Ｚ　Ａ，ＥＲＬＡＮＤ　Ｌ　Ａ，ＲＨＥＡＵＬＴ　Ｍ　Ｒ，ｅｔ　ａｌ．
Ｔｈｅ　ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｔｉｃ　ｏｒｉｇｉｎ　ｏｆ　ｉｒｒｅｇｕｌａｒ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　ｉｎ　Ｌａ－
ｖａｎｄｕｌａ：ｉｓｏｌａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａ
ｎｏｖｅｌ　ｃｉｓ－ｐｒｅｎｙｌ　ｄｉｐｈｏｓｐｈａｔｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅ，ｌａｖａｎｄｕｌｙｌ
ｄｉｐｈｏｓｐｈａｔｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ ［Ｊ］．Ｔｈｅ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２０１３，２８８（９）：６３３３－６３４１．
［２４］　徐　婉，石　俊，蔡　明，等．尾叶紫薇与紫薇杂交后代花
香气成分分析［Ｊ］．西北植物学报，２０１４，３４（２）：３８７－３９４．
ＸＵ　Ｗ，ＳＨＩ　Ｊ，ＣＡＩ　Ｍ，ｅｔ　ａｌ．Ｆｌｏｗｅｒ　ｆｒａｇｒａｎｃｅ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ
ｏｆ　ｔｈｅ　ｈｙｖｂｒｉｄｓ　ｂｅｔｗｅｅｎ　Ｌａｇｅｒｓｔｒｏｅｍｉａ　ｃａｕｄａｔａ　ａｎｄ
Ｌ．ｉｎｄｉｃ［Ｊ］．Ａｃｔａ　Ｂｏｔａｎｉｃａ　Ｂｏｒｅａｌ－Ｏｃｃｉｄ　Ｓｉｎｉｃａ，２０１４，
３４（２）：３８７－３９４（ｉｎ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　ｗｉｔｈ　Ｅｎｇｌｉｓｈ　ａｂｓｔｒａｃｔ）．
［２５］　ＣＨＥＮ　Ｆ，ＴＨＯＬＬ　Ｄ，Ｄ′ＡＵＲＩＡ　Ｊ　Ｃ，ｅｔ　ａｌ．Ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ
ａｎｄ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｔｅｒｐｅｎｏｉｄ　ｖｏｌａｔｉｌｅｓ　ｆｒｏｍＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓｆｌｏｗ－
ｅｒｓ［Ｊ］．Ｔｈｅ　Ｐｌａｎｔ　Ｃｅｌｌ，２００３，１５（２）：４８１－４９４．
［２６］　ＦＨＮＲＩＣＨ　Ａ，ＫＲＡＵＳＥ　Ｋ，ＰＩＥＣＨＵＬＬＡ　Ｂ．Ｐｒｏｄｕｃｔ
ｖａｒｉａｂｉｌｉｔｙ　ｏｆ　ｔｈｅ‘ｃｉｎｅｏｌｅ　ｃａｓｓｅｔｔｅ’ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓ－
ｅｓ　ｏｆ　ｒｅｌａｔｅｄ　Ｎｉｃｏｔｉａｎａ　ｓｐｅｃｉｅｓ ［Ｊ］．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｐｌａｎｔ，
２０１１，４（６）：９６５－９８４．
［２７］　ＰＩＣＨＥＲＳＫＹ　Ｅ，ＲＡＧＵＳＯ　Ｒ　Ａ，ＬＥＷＩＮＳＯＨＮ　Ｅ，ｅｔ　ａｌ．
Ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｉｎ　Ｃｌａｒｋｉａ（Ｏｎａｇｒａｃｅａｅ）（Ｉ．Ｌｏｃａｌ－
ｉｚａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ　ｍｏｄｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅ
ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ａｎｄ　ｌｉｎａｌｏｏｌ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ａｃｔｉｖｉｔｙ）［Ｊ］．Ｐｌａｎｔ　Ｐｈｙｓｉ－
ｏｌｏｇｙ，１９９４，１０６（４）：１５３３－１５４０．
［２８］　ＤＵＤＡＲＥＶＡ　Ｎ，ＭＵＲＦＩＴＴ　Ｌ　Ｍ，ＭＡＮＮ　Ｃ　Ｊ，ｅｔ　ａｌ．Ｄｅ－
ｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ　ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｍｅｔｈｙｌ　ｂｅｎｚｏａｔｅ　ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ
ａｎｄ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｉｎ　ｓｎａｐｄｒａｇｏｎ　ｆｌｏｗｅｒｓ［Ｊ］．Ｐｌａｎｔ　Ｃｅｌｌ，２０００，
１２（６）：９４９－９６１．
［２９］　ＤＵＤＡＲＥＶＡ　Ｎ，ＭＡＲＴＩＮ　Ｄ，ＫＩＳＨ　Ｃ　Ｍ，ｅｔ　ａｌ．（Ｅ）－β－ｏｃｉ－
ｍｅｎｅ　ａｎｄ　ｍｙｒｃｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅｓ　ｏｆ　ｆｌｏｒａｌ　ｓｃｅｎｔ　ｂｉｏｓｙｎ－
ｔｈｅｓｉｓ　ｉｎ　ｓｎａｐｄｒａｇｏｎ：ｆｕｎｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　ｔｅｒ－
ｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｇｅｎｅｓ　ｏｆ　ａ　ｎｅｗ　ｔｅｒｐｅｎｅ　ｓｙｎｔｈａｓｅ　ｓｕｂｆａｍｉｌｙ
［Ｊ］．Ｔｈｅ　Ｐｌａｎｔ　Ｃｅｌｌ，２００３，１５（５）：１２２７－１２４１．
‘西伯利亚’百合单萜释放与Ｌｉ－ｍＴＰＳ表达日变化动态分析
李天娇１，胡增辉１，郑　健１，冷平生１，杨　凯２
（１．北京农学院 园林学院／北京乡村景观规划设计工程技术研究中心／城乡生态环境北京实验室，北京　１０２２０６；
２．北京农学院 植物科学技术学院，北京　１０２２０６）
摘　要　使用动态顶空法采集‘西伯利亚’百合不同时间点（７：３０、９：３０、１１：３０、１３：３０、１５：３０、１７：３０、１９：３０）释
放的香气，采用自动热脱附－气相色谱／质谱联用（ＡＴＤ－ＧＣ／ＭＳ）技术分析鉴定花香成分及释放量。结果表
明：单萜释放量呈现先增后减的规律，１１：３０、１３：３０、１５：３０时的释放量较高。在所有的花香成分中，罗勒烯、
芳樟醇和β－月桂烯的释放量最高，它们是‘西伯利亚’百合主要的单萜花香化合物。进一步研究发现，‘西伯利
亚’百合花瓣中的Ｌｉ－ｍＴＰＳ（一种百合单萜合成酶基因）的表达与单萜释放表现相似的规律。可见，Ｌｉ－ｍＴＰＳ
的表达在‘西伯利亚’百合主要的单萜释放中起着关键作用，而调控机制有待于进一步研究。
关键词　 ‘西伯利亚’百合；花香；单萜；Ｌｉ－ｍＴＰＳ表达
收稿日期：２０１５－０４－２０　　修回日期：２０１５－０６－０２
基金项目：北京市属高等学校创新团队建设与教师职业发展计划项目（ＩＤＨＴ２０１５０５０３）；国家自然科学基金（３１０７１８１７）；北
京市教委科技提升计划项目（ＰＭ２０１４０１４２０７）；城乡生态环境北京实验室建设项目（ＰＸＭ２０１５－０１４２０７－００００１４）。
第一作者：李天娇，女，硕士研究生，从事园林植物生理与生态研究。Ｅ－ｍａｉｌ：ｌｉｔｉａｎｊｉａｏ１２３１９８８＠１６３．ｃｏｍ
通信作者：冷平生，男，教授，硕士生导师，主要从事园林植物生理与生态研究。Ｅ－ｍａｉｌ：ｂｕａｌｅｎｇｐｉｎｇｓｈｅｎｇ＠１６３．ｃｏｍ
（责任编辑：史亚歌　Ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ　ｅｄｉｔｏｒ：ＳＨＩ　Ｙａｇｅ）
·９６７·
５期
ＬＩ　Ｔｉａｎｊｉａｏ，ｅｔ　ａｌ：Ｄｉｕｒｎａｌ　Ｃｈａｎｇｅｓ　ｏｆ　Ｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｓ　Ｅｍｉｓｓｉｏｎ
ａｎｄ　Ｌｉ－ｍＴＰＳ　Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｉｎ　Ｌｉｌｉｕｍ ‘ｓｉｂｅｒｉａ’