全 文 :31卷07期
Vol.31,No.07
草 业 科 学
PRATACULTURAL SCIENCE
1283-1289
07/2014
DOI:10.11829\j.issn.1001-0629.2013-0684
甘菊CBL基因的克隆与表达分析
董凤丽1,2,刘 杰1,黄 河3,张 蜜3,周蕴薇1,戴思兰3
(1.东北林业大学园林学院,黑龙江 哈尔滨150040;2.黑龙江生态工程职业学院,黑龙江 哈尔滨150025;
3.北京林业大学园林学院,北京100083)
摘要:基于已建立的甘菊ESTs文库,检索到了CBL基因4个不同的EST序列;采用RACE技术获得了它们的全
长序列,并命名为ClCBL1-4。将甘菊(Chrysanthemum lavandulifolium)ClCBL与拟南芥(Arabidopsis thali-
ana)的CBL进行多重序列比对发现,它们都含有4个结合钙离子的EF-hand结构域,且ClCBL1在 N端有一个
豆蔻酰化序列(MGCXXSK/T)。采用RT-PCR技术,分析了甘菊中CBL基因的表达与不同逆境胁迫的关系,表
明甘菊CBL基因的表达在冷、干旱、热、盐及 ABA胁迫中可被不同程度地诱导,而在非逆境胁迫条件下,甘菊
CBL基因在根、茎、叶及花等不同器官中均有表达,且表达量相对一致。这些结果说明该家族基因参与了植物非
生物逆境胁迫的抵御。
关键词:甘菊;CBL基因;基因克隆;表达分析
中图分类号:S567.903;Q943.2 文献标识码:A 文章编号:1001-0629(2014)07-1283-07*
Cloning and expression analysis of CBLgenes fromChrysanthemum lavandulifolium
DONG Feng-li 1,2,LIU Jie1,HUANG He3,ZHANG Mi 3,ZHOU Yun-wei 1,DAI Si-lan3
(1.Colege of Landscape Architecture,Northeast Forestry University,Harbin 150040,China;
2.Heilongjiang Ecological Engineering Training Colege,Harbin 150025,China;
3.Colege of Landscape Architecture,Beijing Forestry University,Beijing 100083,China)
Abstract:Four ESTs encoding CBLfromChrysanthemum lavandulifolium were identified in our previous
study.Four CBLgenes were isolated fromC.lavandulifoliumand named after ClCBL1-4 using RACE
method.The multiple sequence alignment analysis of Arabidopsis thaliana and C.lavandulifoliumCBL
sequences suggested that al of the ClCBL1-4 proteins coding sequence contained four EF-hand motifs
and the ClCBL1 protein coding sequence had N-terminal myristoylation sequence.The expression patterns of
ClCBLs were analysis under salt,drought,cold,heat and ABA treatments as wel as under normal conditions in dif-
ferent developmental stages.The results suggested that ClCBLs might play important roles in C.lavandulifoli-
um’s responses to abiotic stresses because ClCBLs can be induced under diferent stresses.
Key words:Chrysanthemum lavandulifolium;CBLgenes;gene cloning;expression analysis
Corresponding author:ZHOU Yun-wei E-mail:dlzhyw@126.com
DAI Si-lan E-mail:silandai@sina.com
植物在生长发育过程中经常受到低温、干旱、
盐碱等各种非生物胁迫,因此在长期进化过程中
植物形成了一套复杂的逆境信号应答网络。研究
表明,Ca2+作为第二信使,在逆境胁迫应答信号转
* 收稿日期:2013-12-11 接受日期:2014-04-18
基金项目:中央高校基本科研业务费专项资金(DL13CA14)
第一作者:董凤丽(1978-),女,黑龙江泰来人,副教授,博士,主要从事园林植物种质资源研究。E-mail:kuer-li@126.com
通信作者:周蕴薇(1970-),女,吉林九台人,教授,博导,博士,主要从事园林植物种质资源研究。E-mail:dlzhyw@126.com
戴思兰(1962-),女,北京人,教授,博导,博士,主要从事花卉分子生物学研究。E-mail:silandai@sina.com
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导过程中起到重要的作用[1]。不同逆境胁迫诱发
的钙信号具有特异性,可被其下游相应的钙结合
或传感蛋白感知和转导,从而在细胞内引起一系
列的生理生化和分子反应,使植物能够适应或抵
抗不良环境[2]。
类钙调磷酸酶B蛋白(Calcineurin B-like Pro-
teins,CBLs)是植物中重要的钙信号感受蛋白。它
们的结构相对保守,具有4个可结合Ca2+的EF-
hand结构域,其中部分成员的 N端还含有一个与
膜结 合 及 蛋 白 互 作 有 关 的 豆 蔻 酰 化 序 列
(MGCXXSK/T)[3-4]。Ca2+ 可与 CBL中 EF-hand
结构域结合,引发CBL蛋白质构象的变化,来激活
该蛋白,从而与下游的靶蛋白CIPK(CBL-interac-
ting Protein Kinases)相互作用。CBL感受蛋白与
其相互作用的蛋白激酶CIPK构成CBL-CIPK信
号系统将信号向下游传递[5]。一个CBL可以和几
个CIPK发生互作,而一个CIPK也可以和一个或
几个CBL发生互作,从而组成多条信号传递的通
路。不同逆境或逆境的不同程度可以通过不同信
号支路途径向下游传递,引起与逆境因子相应的
转录因子和功能基因表达,从而调节细胞来适应
和抵抗外来逆境[4]。现已经在拟南芥(Arabidopsis
thaliana)、水稻(Oryza sativa)和杨树(Populus tri-
chocarpa)中各发现10个CBL基因[4],另外在高
粱(Sorghum bicolor)(6个CBL)、葡萄(Vitis vinif-
era)(8个CBL)、苔鲜(Physcomitrella patens)(4
个CBL)、蕨类(Selaginella moellendorffii)(4个
CBL)等植物体内都有关于CBL成员的报道[6]。
植物中CBL 基因可响应不同的胁迫刺激,有研
究[7]表明,拟南芥中AtCBL1 基因在干旱、盐、冷、
ABA 及伤害胁迫下被诱导表达,而 AtCBL2 和
AtCBL3受光照诱导表达[8]。拟南芥AtCBL9 基
因的功能缺失突变体对 ABA胁迫表现出超敏感
性,说明该基因参与了 ABA的应答途径[9]。最近
研究发现,CBL1/CBL9-CIPK23调控质膜上的 K+
运输器AKT1活性,在拟南芥耐低K+胁迫中起重
要作用[10]。
甘菊(Chrysanthemum lavandulifolium)是菊
科(Compositae)菊属的二倍体植物,是栽培菊花近
缘种[11-12],具有分布广泛、抗逆性强等特点,是近年
来园林盐碱地上新引入的绿化观赏植物之一[13]。
本研究以已获得的甘菊CBL基因的EST为模板,
利用RACE技术克隆得到4个甘菊CBL基因,并
分析它们在多种逆境胁迫下的表达方式,以期为深
入研究其功能提供基础,也为菊花抗逆性分子育种
提供参考基因资源。
1 材料与方法
1.1 甘菊培养和处理
将甘菊播种到草炭∶蛭石为1∶1的基质中,于
14h/10h(长日照/黑暗)、光照度2 500lx人工气候
室内培养[培养温度(23±2)℃,湿度60%~80%]。
待甘菊生长至8~10片真叶时,进行胁迫处理:将甘
菊植株从容器中取出,用蒸馏水洗去根部基质,放置
在润湿的脱脂棉中2、12、24h模拟干旱胁迫;使用
200mmol·L-1 NaCl溶液浇灌甘菊12、24h模拟
盐胁迫;将植株置于4℃培养箱中处理2、12、24h
模拟冷胁迫;将植株置于40℃培养箱中处理12、24
h模拟热胁迫;用200μmol·L
-1 ABA溶液喷施甘
菊叶片处理12、24h,进行 ABA诱导;以未进行任
何胁迫处理的甘菊植株作为对照。取非胁迫处理的
甘菊植株中部叶片、茎段、根系及开放的花序,用于
测定ClCBL基因在不同器官中的表达;取对照和各
种胁迫植株的叶片用于测定ClCBL基因在各种胁
迫条件下的表达情况。将上述材料迅速在液氮中速
冻,保存于-80℃冰箱中备用。
1.2 总RNA的提取及第一链cDNA合成
利用 改 良 Trizol 法 提 取 各 处 理 材 料 总
RNA[14],RNA经琼脂糖凝胶电泳检测质量及分光
光度计测定浓度后,取2μg总 RNA为模板,参照
M-MLV反转录酶(Promega,美国)说明书合成cD-
NA第一链。
1.3 甘菊CBL同源基因的克隆
以课题组获得的甘菊CBL基因的EST信息设
计3′端特异引物(表1)进行3′RACE扩增[15],扩增
产物经1.2%琼脂糖凝胶检测,将目的片段回收后
与pGEM-T载体(Promega)连接,转化到大肠杆菌
DH5α菌株,然后进行蓝白斑筛选,选取阳性克隆送
至北京奥科公司测序。
1.4 数据库搜索和序列分析
使用DNAMAN将3′RACE扩增得到的4个
ClCBL基因片段与其EST序列进行拼接,将拼接
序列 提 交 至 NCBI(www.ncbi.nlm.nih.gov/
BLASTx)网站上,利用BLASTx进行搜索。下载
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所有拟南芥、水稻的 CBL 基因的蛋白序列,用
MEGA 5.0程序进行多序列比对,并用 Neighbor-
Joining法生成系统进化树。
1.5 基因的表达分析
根据ClCBL基因的cDNA序列设计特异性引
物(表1),用半定量RT-PCR分析ClCBL基因在各
种逆境、激素处理及甘菊各器官组织特异性的表达
情况。以甘菊а-tubulin(ClTUA)为内参基因[16],
引物序列见表1。用 Quantity One软件(Bio-Rad)
进行电泳条带量化,目的基因与а-tubulin的条带密
度比值作为目的基因的相对表达水平。3次重复试
验。
表1 ClCBL基因克隆和表达分析用PCR引物
Table 1 PCR primers for cloning and expression analysis of ClCBL
引物名称
Primer name
引物序列
Primer sequences(5′-3′)
引物用途
Primer usage
AP GGCCACGCGTCGACTAGTAC(T)16 反转录Reverse transcription
AUAP GGCCACGCGTCGACTAGTAC 锚定引物Anchor primer
TUAs TTTCGTCATACGCTCCTGTA
TUAx TGGATGGTTCTCTTGGTCTT
ClTUA内参基因
а-tubulin(ClTUA)
CS-CBL1-1 ATTTGTTCCACTTCCACTGGCATT
CS-CBL1-2 CTCTTCTGGCAAAGGAAACCC
CS-CBL2-2 CTCGATGACCCTGCAATTCTC
CS-CBL2-1 TGTCTCAGTGCTTAGAAGGGATC
CS-CBL3-1 GAAGAGTTCCAGTTGGCGTTGT
CS-CBL3-2 ATCGGGTGTTTGACCTATTTG
CS-CBL4-1 TTCCATCCTAATGCTCCTCAA
CS-CBL4-2 CGGAACAGGATTCATAGAGCG
3′RACE特异引物
3′RACE specific primer
CBL1s GTTGCATTTGTTCCACTTCCACT
CBL1x TTGCTTCCATTCGTCTTCATCTA
CBL2s GCACTTCCCTACTTTCTTGTTGT
CBL2x CATTTGCTTCACCTCTTGCCTCT
CBL3s TCAGGCATTTACTTGCTTCCATA
CBL3x GTCGCAATACAAGACTCCTCCAT
CBL4s CCGACTTTACTTGCTTCTC
CBL4x TTGTGCCATTCTGATTTGT
表达分析
RT-PCR
2 结果与分析
2.1 甘菊ClCBL基因cDNA克隆
通过对已有的EST序列在BLASTx比对,发
现转录组数据库中的部分序列已具5′端,所以只需
获得 3′端 全 长。根 据 已 有 的 EST 序 列 设 计
3′RACE引物,通过3′RACE技术分别获得942、
870、715和665bp的片段,分别命名为ClCBL1、
ClCBL2、ClCBL3、ClCBL4(图1),将EST序列与
3′RACE测序结果经 DNAMAN 软件拼装,获得
ClCBL1、ClCBL2的基因全长分别为1 035和1 065
bp,具有完整开放阅读框分别为675和696bp,编
码224、231个氨基酸残基。但ClCBL3与ClCBL4
缺失5′端,仅获得671和615bp部分开放阅读框,
分别编码222、204个氨基酸残基。
2.2 甘菊ClCBL基因的多序列比对及系统进化树
分析
将ClCBL1-4与部分拟南芥AtCBL 进行序列
比对发现(图2),ClCBL都含有4个可结合钙离子
的EF-hand结构域(EF1-4),这些EF-hand不仅结
构保守,而且EF-hand结构域之间的相对位置也很
保守,在EF1与EF2、EF2与EF3和EF3与EF4之
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图1 ClCBL的3′RACE扩增产物
Fig.1 The RACE-PCR amplification of 3′end
sequence of ClCBL
注:M,DNA Marker 5000;A、B、C、D泳道分别为ClCBL1-4 的3′
RACE扩增产物。
Note:Lane M,DNA Marker 5000;LaneA、B、C、D,RACE-PCR am-
plification of 3′end sequence of ClCBL1-4,respectively.
间分别间隔23、25和32个氨基酸残基。这种大小
和结构上的保守性预示其在作用机制上可能也是相
当保守的。另外,ClCBL1 与拟南芥中的AtCBL4、
AtCBL9的蛋白产物属于同类,在 N端含有一个与
膜结合或蛋白互作有关的豆蔻酰化序列(MGCXX-
SK/T)(图2方框所示),而ClCBL2、ClCBL3 及
ClCBL4与拟南芥AtCBL2、AtCBL3 属于一类,在
N端不存在此保守序列。
为了分析甘菊ClCBL与拟南芥和水稻CBL 之
间的进化关系,构建拟南芥、水稻及甘菊CBL序列
的进化树(图3)。该进化树表明,所有CBL基因被
分为4组。甘菊的4个CBL基因分布在3个不同
的类群中,其中ClCBL1 包含于组I;ClCBL4 包含
于组II;ClCBL2 和ClCBL3 包含于组IV。此外,
该系统进化还表明ClCBL1与拟南芥AtCBL4同源
性较高,属于垂直同源基因;ClCBL2、ClCBL3与拟
南芥AtCBL2、AtCBL3 同源性较高;ClCBL4 与拟
南芥AtCBL1和AtCBL9同源性较高。
图2 甘菊ClCBL与部分拟南芥CBL蛋白的序列比较
Fig.2 Alignment of the CBLs sequences fromC.lavandulifoliumand Arabidopsis thaliana
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图3 ClCBL1-4基因的系统进化关系
Fig.3 A phylogenetic analysis of ClCBL1-4 gene
注:CBL蛋白的来源及其在GenBank中的登录号Sources of CBL and their GenBank accession numbers are as folows:拟南芥(Arabidopsis
thaliana)AtCBL1(O81445.3),AtCBL2(NP_200410.1),AtCBL3(Q8LEM7.2),AtCBL4(O81223.3),AtCBL5(Q7FZF1.3),AtCBL6
(Q9C5P6.2),AtCBL7(Q9SUA6.1),AtCBL8(Q9FUQ7.1),AtCBL9(BAB69895.1),AtCBL10(Q7FRS8.1),水稻(Oryza sativa)OsCBL1
(Q7XC27.2),OsCBL2(ABA54177.1),OsCBL3(Q75LU8.1),OsCBL4(Q75KU4.1),OsCBL5(Q3HRP2.1),OsCBL6(ABA54181.1),OsCBL7
(Q3HRP0.1),OsCBL8(ABA54183.1),OsCBL9(Q3HRN8.2),OsCBL10(ABA54185.1)。
2.3 表达分析
以甘菊中的ClTUA 为内参基因,通过对非胁
迫条件下根、茎、叶、花的 RT-PCR分析发现:甘菊
中的ClCBL 基因在不同器官中均有表达,其中
ClCBL1在花和根中表达量相对较低,在茎和叶中
的表达量相对较高;ClCBL2在根中的表达量较低,
而在茎、叶和花中的表达量较高;ClCBL3在根和茎
中的表达量相对较低,而在叶和花中表达量相对较
高;ClCBL4 在不同器官中表达差异不十分明显
(图4)。
对甘菊进行冷、干旱、热、盐及 ABA的胁迫处
理 ,通过RT-PCR分析发现,ClCBL1不受干旱和
图4 甘菊CBL1-4基因在甘菊不同器官中的表达模式
Fig.4 Expression patterns of CBL1-4 in different
organs of Chrysanthemum lavandulifolium
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ABA的诱导,受冷胁迫诱导但不是很强烈,同时受
NaCl胁迫的抑制,但受热强烈诱导,表明ClCBL1
可能参与甘菊的热胁迫响应;ClCBL2 在干旱胁迫
和热胁迫下表达量都明显增加,但在 NaCl胁迫下
表达量呈先升高后降低的表达模式,受冷及 ABA
诱导不明显;ClCBL3 在干旱胁迫下,表达量在2h
明显增加,当达到12h时表达量下降,但在24h表
达量又逐渐增加,且高于2h,表明ClCBL3在干旱
胁迫下有表达量出现震荡变化,ClCBL3 也受冷诱
导,变化不明显,但不受热、NaCl和 ABA 诱导;
ClCBL4仅受干旱与NaCl胁迫诱导,表达量明显增
加(图5)。
图5 甘菊CBL1-4基因在甘菊不同胁迫下的表达模式
Fig.5 Expression patterns of CBL1-4 in different stress of Chrysanthemum lavandulifolium
3 讨论与结论
本研究从甘菊中克隆到 ClCBL1、ClCBL2、
ClCBL3、ClCBL4 基 因 的 编 码 区 cDNA,其 中
ClCBL3和ClCBL4缺少部分5′端。由序列分析得
知,这4个基因编码的蛋白分别为224、231、222和
204个氨基酸残基组成,结构上都含有4个 EF-
hand结构域,与拟南芥的CBL基因结构相似。但
ClCBL2 在 EF-hand1 与 EF-hand2 之间比其他
ClCBL相应结构多出一段氨基酸序列(VARIQ),
通过多序列比对发现,拟南芥AtCBL3在此区域也
多出一段序列(YQSQ),而其他3个ClCBL基因每
个EF-hand之间的距离与其他已知CBL蛋白完全
一致。多出几个碱基是否影响ClCBL2的功能有待
于进一步研究。在ClCBL1的 N端含有 N-豆蔻酰
化结构域 (MGCXXSK/T),与拟南芥 AtCBL1、
AtCBL4、AtCBL5和AtCBL9的N-端结构相同,该
序列是与膜结合或蛋白互作相关的位点[5],因此推
测ClCBL1也具有相关的功能。ClCBL4由于获得
序列不完整,没有发现该保守系列,但在系统进化分
析中,ClCBL4 与含有豆蔻酰化序列的AtCBL1、
AtCBL9、OsCBL1在同一组中,所以预测其也有该
保守序列,有待进一步获得ClCBL4完整序列来验
证。
分析基因的表达模式可获知其功能方面的潜在
信息。在拟南芥中己经证明 AtCBL1、AtCBL4、
AtCBL9与渗透胁迫的信号转导密切相关[5,9,17],它
们在盐、干旱、冷害等非生物胁迫条件下,mRNA水
平上受诱导表达上升。4个甘菊CBL基因中3个
(ClCBL2、ClCBL3 和ClCBL4)明显受干旱诱导,
ClCBL基因在干旱胁迫处理中不同基因的具体表
达模式不尽相同,可能是ClCBL基因参与干旱逆境
应答调控的信号途径不同所致,ClCBL3 在干旱胁
迫条件下,表达量在2h上升,12h下降,24h达到
最大,其表达量是正常植株的数倍。在干旱胁迫条
件下ClCBL3出现震荡变化,胡杨(Populus euph-
ratica)PeCBL6在干旱胁迫条件下也呈现忽高忽低
的震荡变化的情况[18]。而ClCBL2 与ClCBL4 在
干旱胁迫条件下持续高表达,是否表明它们在甘菊
抗旱作用中的重要性,值得更深入和详细的研究。
拟南芥AtCBL1和AtCBL9在NaCl和干旱处理时
其表达量明显被诱导,本研究初步结果也表明
ClCBL4也受NaCl和干旱胁迫强烈诱导,因此推测
甘菊中一些ClCBL基因可能参与甘菊对盐、干旱等
逆境胁迫的应答。同时研究表明ClCBL1可能参与
热胁迫响应过程,Chen等[19]报道冬青(Ammopip-
tanthus mongolicus)AmCBL1可以被干旱、高盐、热
和CaCl2 诱导。以上表达结果说明,CBL基因在不
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同物种中的表达模式可能不同。
通过本研究发现,ClCBLs具备植物CBLs基因
家族的固有特征,同时RT-PCR分析表明其能够响
应干旱、盐、热等非生物胁迫,说明它可能在响应非
生物胁迫过程中起重要作用,要揭示ClCBLs基因
在非生物逆境胁迫中的确切功能尚需要借助转基因
植物等手段开展大量深入细致的研究,目前有关工
作正在进行中。
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(责任编辑 王芳)
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